$$\rightleftharpoonup{xx}$$
$$\longleftharp{xx}$$,
$$\longrightharp{xx}$$,
1. תרבות של תאי Saphena הנבוב אדם
- בודד תאים מוריד saphena Magna, שנרכש מתורם בהתאם להנחיות לשימוש בחומרים משני, על פי הפרוטוקול על ידי שנל ואח'. 9 ולאחסן אותם בחנקן נוזלי. מהחלק מוריד saphena Magna מאחת חתיכות לחתוך תורמות של 2 מ"מ x 2 לתרבות בצלחת שש היטב. השתמש 2 חתיכות בכל טוב. ניתן להשיג באופן כללי מספיק תאים כדי למלא כ 3 צלוחיות עם 0.25 x 10 6 תאים בחנקן נוזלי. HVSCs מאופיין כmyofibroblasts, על ידי הצגת ביטוי של vimentin, לא ביטוי של desmin וsubpopulation להביע שריר חלק α אקטין 10. הבא יתחילו הפרוטוקול להפשיר את התאים מהחנקן הנוזלי כדי להגדיל את מספר התאים.
- מניחים את התאים מבקבוקון אחד לתוך בקבוק תרבית רקמה T75 ולהוסיף מדיום גידול (GM), בהיקף של מתקדם DMEM, 50 מיליליטר סרום שור העובר (FBS), 5 מ"ל פניצילין /סטרפטומיצין ו5 מיליליטר L-Glutamax. מדיום לשנות כל 2-3 ימים.
- תאים גדלים כ מחוברות לאחר 14 ימים. חנות 0.5 x 10 6 תאים בבקבוקון אחד בחנקן נוזלי, המכונה קטע 1.
הערה: הקפאה של התאים אינה הכרחית כאשר קצירת HVSCs, אבל משמשת אך ורק לאחסון.
- מניחים את HVSCs מבקבוקון אחד לתוך בקבוק תרבית רקמה T175 ולהוסיף GM. מדיום לשנות כל 2-3 ימים. תאים גדלים מחוברות לאחר כ 7 ימים. חנות 3 x 10 6 תאים בבקבוקון אחד בחנקן נוזלי, המכונה מעבר 2.
- מניחים את התאים מבקבוקון אחד לrollerbottle ולהוסיף GM. מדיום לשנות כל 2-3 ימים. תאים גדלים כ מחוברות לאחר 8 ימים. rollerbottle אחת מכיל כ 20-30 x 10 6 תאים. תרבות תאים עד חלוף 6. אל תשתמשו בתאים של מעבר גבוהים יותר מאשר מעבר 9, מאז פנוטיפ התא עשוי להשתנות.
2. הנדסת רקמות של מבנים מבוססי הפיברין
- הכן את דבק סיליקון על ידי ערבוב עם אלסטומר סוכן הריפוי (10:1). לחתוך 7 x 3 מ"מ מגזרים מלבניים של סקוטש. דבק סקוטש ל6 צלחת תרבות היטב, עם קרום גמיש כדי ליצור צלב, ולהשאיר מקום בריבוע של 3 מ"מ בין רצועות סקוטש.
הערות: יש להשתמש בצד הרך של סקוטש ולהתמודד עם הצד הזה כלפי מעלה. כאשר הדבקת סקוטש, רק לכסות סקוטש עם סיליקון דבק, אינו מתפשט בכל דבק היטב. מאז יש לי את צלחות תרבות תחתית קרום סיליקון, להשתמש במשהו מתחת לצלחת גם לחיזוק הקרומים הגמישים, על מנת להבטיח הדבקה קלה לצלחת.
- ייבש את דבק סיליקון הלילה בתנור בחום של 60 מעלות צלזיוס, כדי להבטיח התקשות של הדבק. לעקר על ידי הוספת 70% EtOH לבארות והדגירה למשך 30 דקות. לשטוף 3x עם PBS ולהסיר את כל PBS מwelLS וסקוטש. לשים תחת UV למשך 30 דקות ולשמור סטרילי עד לשימוש.
- להכין מדיום הנדסת רקמות (TM), בהיקף של GM ו130 מ"ג של חומצה אסקורבית L-2-פוספט.
- הוסף 1 מ"ג / חומצה קפרואית ε-אמין מ"ל (ACA) למדיטציה הטרנסנדנטלית. ACA משמש במשך 7 הימים הראשונים של התרבות כדי למנוע הפיברין מ -11 משפילים. לחלופין, ניתן להשתמש aprotinin.
- כדי למנוע היווצרות גוש, פיברינוגן לאפשר להגיע לטמפרטורת חדר לפני הפתיחה. ללא פיברינוגן גושים יתמוססו בקלות רבה יותר. ממיסים פיברינוגן לריכוז של 10 מ"ג בפועל חלבון / מיליליטר TM 7 בתוספת ACA. סינון סטרילי פתרון פיברינוגן, מסננים מרובים עשויים להיות נחוצים. אחסן על קרח עד לשימוש.
הערה: כדי לפזר את התערובת בעדינות פיברינוגן כדי למנוע היווצרות קצף רבה מדי.
- ממיסים תרומבין לריכוז של 10 IU / מיליליטר TM 7 בתוספת ACA. אחסן על קרח עד לשימוש.
הערה: יש צורך בשמירה על קרח כדי למנוע gelation המוקדם של תרומבין ופיברינוגן.
- Trypsinize התאים, resuspend בGM ולספור.
- השתמש 15 x 10 6 תאים / מ"ל לזריעת מבני הרקמות מבוססי הפיברין (ריכוז המבוסס על שיטות לרקמות מסתמי לב הנדסי 7). הג'ל יחיד מורכב מ100 μl GOF אל, ובכך של 1.5 x 10 6 תאים. שים 1.5 x 10 6 תאים בצינור צנטריפוגות אחד, וכתוצאה מצינורות צנטריפוגה רבות כמו מספר ג'לי שיבוצע.
- צנטריפוגה התאים ב XG 350 במשך 7 דקות וזורקים supernatant. Resuspend התאים 50 תרומבין μl. הוסף 4 μl של כחול ניאון הקלקר microspheres להשעיה זו. לשים 50 μl של פיברינוגן בבקבוקון. השתמש פיפטה לקחת את תרומבין μl 50 עם תאים. הגבר את עוצמת הקול של פיפטה μl עד 100. פיפטה פתרון μl 50 של תרומבין עםתאים לתוך הבקבוקון עם פיברינוגן לערבב תרומבין ופיברינוגן, ולקחת את תערובת μl 100.
הערה: קלקר microspheres הניאון משמשות כסמני התייחסות פנימיות לניתוח תמונה. כאשר תרומבין ופיברינוגן ערבוב, למנוע היווצרות של בועות אוויר על ידי pipetting את התערובת בזהירות. בועות אוויר תגרום לחורים בג'ל הפיברין.
- פיפטה את התערובת לתוך הג'ל ובין רצועות סקוטש. זמן gelation האופייני לג'לי הפיברין, ברגע שהרכיבים הם מעורבים, הוא בסדר גודל של 20 שניות.
הערות: עשה זאת במהירות אפשרית כדי למנוע gelation לפני תערובת pipetted בצלחת היטב. להתאמן לפני שימוש בתאים וחרוזים.
- דגירה השעיות למשך 30 דקות ב 37 מעלות צלזיוס באוויר 95% / 5% CO 2 באינקובטור humidified לאפשר gelation לפני הוספת התרבות TM עם ACA.
- החלף TM עם ACA כל 2-3 ימים במשך 7 הימים הראשונים. ג'לי הוא יציב מספיק אחרי שבוע אחד כדי להיות מתורבת ללא ACA. אחרי השבוע הראשון להחליף TM כל 2-3 ימים. הוסף 6 מ"ל של TM בכל טוב. ביום 12 תאים יצרו מספיק קולגן להדמיה.
3. שינויי זן והתרמה החלו בזנים ואילוצים
- מתח סטטי מיושם על ידי התאים באופן ישיר, עקב מתיחה ודחיסת תא 12. כדי לגרום לארגון מחדש קולגן, לחתוך את הרקמה לבנות רופפת משתי רצועות סקוטש בכיוון אחד. התוצאה הוא חד כיווני אילוצים (איור 1 א). לבצע את זה ביום 12, שכן המבנה הוא אז מספיק יציב וקולגן הופקד.
- החל לחץ מחזורי על ידי הפעלת ואקום לתחתית של צלחות התרבות עם קרומים גמישים, עם השימוש במערכת FX4000T Flexcell. מניחים את הצלחות על baseplate, על גבי הודעות טעינה (שהנן חלק של המכשיר העמסה מחזורי ה). משאבת ואקום חלה על הממברנה ובכך מושכת את הקרום מעל ההודעה המלבנית השוכבת מתחתיו. בשל את הקבצים המצורפים בצורת הצלב של הרקמה בונה על הקרום (דרך סקוטש) וההודעה המלבנית עומס המחזורי מיושם היא uniaxial (איור 1).
- בתחילה, השתמש בתרבות סטטית במשך 5 ימים כדי להשיג את השלמות מכאנית ראשונית, לפני היישום של מתח מחזורי מתחיל ביום 6. תכנית פרוטוקול כתם מחזורי לתוך הבקר למשאבת הוואקום. לדוגמא שימוש בפרוטוקול מתח מחזורי לסירוגין הוקם בעבר, עם כיוון uniaxial 13. זה מורכב מזן לסירוגין של גל סינוס עם 1 הרץ, מאמץ של 0 עד 5% מאמץ, לתקופות של 3 שעות, לסירוגין עם 3 תקופות מנוחה משאבי אנוש. לבצע פרוטוקול מתח מחזורי זה למשך 7 ימים, גרימת ארגון קולגן מיושר.
- בדרך כלל לאחר 12 ימים HVSCs יצרו organizatio קולגן מיושרn. לאחר שיושג ארגון קולגן מיושר, לשנות את כיוון העומס המחזורי uniaxial, כדי להיות בניצב לכיוון הזן המקורי. עושה זאת על ידי הפיכת את ההודעות המלבניות ב -90 מעלות.
4. תאי קולגן ולדמיין
- כדי להמחיש את שיפוץ פעיל, בזמן אמת, קולגן, דגימות תווית עם בדיקות שאינם מפריעות לכדאיויות תא או היווצרות קולגן. השתמש בבדיקות להכתים את הציטופלסמה התא וקולגן fluorescently.
- דור השני הרמוני לחלופין באמצעות מיקרוסקופ סריקת לייזר confocal יכול לשמש כדי לחזות מבני קולגן באמצעות 14 autofluorescence, עם עירור ב 780 ננומטר וזיהוי בין 500-550 ננומטר.
- הסר את צלחות התרבות מההגדרה והחממה, לדגימות מחזורית המתוחות במהלך תקופת מנוחת שעות 3, ולהעביר אותם למיקרוסקופ סריקת לייזר confocal לדמיין תאים וקולגן.