מאמר שיטה

אסטרטגיה בקנה מידה גדולה Metabolomics רגיש, כמותי

DOI:

10.3791/51358

⸱

27 במאי 2014

 ,  ,  ,  , 
1Division of Nutritional Sciences, Cornell University, 2Field of Biochemistry, and Molecular Cell Biology, Cornell University

במאמר זה

סיכום

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

פרופיל המטבוליט היה נכס יקר בחקר חילוף חומרים בבריאות ובחוליים. ניצול כרומטוגרפיה נוזלית בהדרגה נורמלית מצמידים ספקטרומטריית מסה ברזולוציה גבוהה עם מיתוג קוטביות ומחזור עבודה מהיר, אנו מתארים פרוטוקול לנתח את הרכב חילוף חומרים הקוטבי של חומר ביולוגי עם רגישות גבוהה, דיוק, ורזולוציה.

תקציר

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

פרופיל המטבוליט היה נכס יקר בחקר חילוף חומרים בבריאות ובחוליים. עם זאת, יש לי פלטפורמות הנוכחיות גורמים מגבילים שונים, כגון הכנות עבודה אינטנסיבית מדגם, מגבלות זיהוי נמוכות, מהירויות סריקה איטיות, אופטימיזציה בשיטה אינטנסיבית עבור כל המטבוליט, וחוסר היכולת למדוד גם באופן חיובי ויונים טעונים שלילי בניסויים אחת. לכן, פרוטוקול metabolomics רומן יכול לקדם מחקרי metabolomics. כרומטוגרפיה הידרופילי מבוססת אמיד מאפשרת ניתוח המטבוליט קוטבי ללא כל derivatization כימי. MS ברזולוציה גבוהה באמצעות Q-Exactive (QE-MS) השתפר אופטיקה יון, גדל במהירויות סריקה (256 msec ברזולוציה 70,000), ויש לו את היכולת לבצע מיתוג חיובי / שלילי. משתמש באסטרטגית חילוץ מתנול קרה, וצימוד עמודה אמיד עם QE-MS מאפשרת זיהוי חזק של 168 מטבוליטים ממוקדים קוטב ואלפים תכונות נוספות בו זמנית. Datעיבוד מתבצע עם תוכנה זמינה באופן מסחרי בצורה יעילה ביותר, ותכונות ידועות שחולצו מן הספקטרום ההמוני ניתן שאילתה במסדי נתונים.

מבוא

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Metabolomics, שהוגדר כניסוי שמודד מטבוליטים מרובים בו זמנית, כבר שטח של עניין רב. Metabolomics מספק readout ישיר של פיזיולוגיה מולקולרית וספק תובנות פיתוח ומחלות כגון סרטן 1-4. תהודה מגנטית גרעינית (NMR) וספקטרומטריית גז כרומטוגרפיה מסה (GC-MS) הן בין המכשירים 5-9 הנפוצים ביותר. NMR, במיוחד נעשה שימוש בניסויי שטף מאז תרכובות האיזוטופ הכבד שכותרתו, כגון 13 מטבוליטים C שכותרתו, הם NMR פעיל 10,11. עם זאת, אסטרטגיה זו דורשת טוהר מדגם גבוה יחסית וכמות מדגם גדולה, אשר מגבילה את היישומים שלה בmetabolomics. בינתיים, הנתונים שנאספו מתמ"ג ניתוח הצרכים אינטנסיבי והקצאת מתחם של ספקטרום NMR המורכב הוא קשה. GC-MS כבר בשימוש נרחב למטבוליטים קוטב ומחקרי שומנים בדם, אבל זה דורש compoun נדיפיםDS ולכן לעתים קרובות derivatization של מטבוליטים, שלעתים כרוך כימיה מורכבת שיכול להיות זמן רב ומכניס רעש ניסיוני.

כרומטוגרפיה נוזלית (LC) מצמידים ספקטרומטריית מסת quadrupole משולשת משתמשת quadrupole הראשון לבחירת יוני ההורה שלמים, אשר לאחר מכן מקוטעים בquadrupole השני, בעוד quadrupole השלישי משמש לבחירת ברים אופייניים או יונים בתו. שיטה זו, המתעדת את המעבר מיוני הורה ליונים בתו ספציפי, שמכונה ניטור תגובה מרובה (MRM). MRM הוא שיטה מאוד רגישה, ספציפית וחזקה עבור שתי מולקולה קטנה וquantitation חלבון 12-15,21. עם זאת, MRM יש מגבלות שלה. כדי להשיג סגוליות גבוה שיטת MRM צריכה להיות בנויה לכל המטבוליט. שיטה זו מורכבת מזיהוי שבר ספציפי ומתאימים אנרגיית התנגשות מותאמת, אשר דורשת מראש ידע של נכסrties של מטבוליטים של עניין, כגון מידע על מבנה כימי. לכן, עם כמה יוצאים מן הכלל הכולל אובדן הניטרלי של שברים נפוצים, לא ניתן לזהות מטבוליטים ידועים בשיטה זו.

בשנים האחרונות, ספקטרומטריית מסה ברזולוציה גבוהה מכשירים (HRMS) כבר פורסמו, כגון סדרת LTQ-Orbitrap וExactive, QuanTof, וTripleTOF 5600 16-18,22. HRMS יכול לספק המוני לחייב יחס (m / z) של יוני שלם בשגיאה של כמה עמודים לדקה. לכן, מכשיר HRMS המופעל על ידי איתור כל היונים המבשר (כלומר מצב סריקה מלא) ניתן לקבל מידע מבני ישיר מהמסה המדויקת והרכב יסודות וכתוצאה מכך של אנליטי, ומידע זה יכול לשמש כדי לזהות מטבוליטים פוטנציאליים. ואכן, ניתן לקבל את כל המידע על מתחם עם מסה מדויקת, עד לרמה של איזומרים מבניים. כמו כן, מלאשיטת סריקה אינה דורשת ידע קודם של מטבוליטים ואינו דורשת אופטימיזציה של שיטה. יתר על כן, מאחר שניתן לנתח את כל היונים עם מ '/ z נופל לתוך טווח הסריקה, יש HRMS קיבולת בלתי מוגבלת כמעט במונחים של מספר מטבוליטים שניתן לכמת בטווח אחת בהשוואה לשיטת MRM. HRMS הוא גם דומה לMRM quadrupole משולש ביכולת כמותית בשל מחזור העבודה הקצרה וכתוצאה מכך מספר דומה של נקודות נתונים שניתן להשיג בטרשת נפוצה סריקה מלאה. לכן, HRMS מספק גישה חלופית לmetabolomics כמותית. לאחרונה, גרסה משופרת של HRMS מכונה ספקטרומטריית מסת Q-Exactive (QE-MS) יכול להיות מופעלת תחת המיתוג בין מצבים חיוביים ושליליים עם זמני מחזור מהיר מספיק בשיטה אחת, אשר מרחיבה את טווח הגילוי 19. כאן אנו מתארים את האסטרטגיה שלנו באמצעות metabolomics QE-MS.

הגישה מוגבלת. התחברו או התחילו תקופת ניסיון כדי לצפות בתוכן זה.

פרוטוקול

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

1. הכנת LC-MS ריאגנטים, הקמת שיטת כרומטוגרפיה, וקביעת נהלי הפעלה מכשיר

  1. הכנת ממסים LC
    1. הכן 500 שלבי מיליליטר ניידים. הוא אמוניום אצטט 20 מ"מ ו15 מ"מ אמוניום הידרוקסיד ב3% אצטוניטריל / מים, pH הסופי 9.0; ו-B הוא אצטוניטריל 100%.
    2. באופן רופף מכסה את הבקבוק, למקם אותו בsonicator אמבט מים, וsonicate עבור 10 דקות ללא חימום נוסף. (שלב זה הוא להבטיח שכל מלחי אמוניום מתמוססים לחלוטין ושאין בועות אוויר שיורית.)
    3. 250 מיליליטר העברת הממס לבקבוק זכוכית מיליליטר 250 לשימוש LC-MS, ולשמור את היתרה ב 4 ° C.
  2. הכן את פתרון כיול טווח מסה הנמוך. חשוב להשתמש בתערובת כיול טווח מסה נמוכה מותאמת אישית עבור יישומי metabolomics כדי להבטיח שהמונים מדויקים זוהו במשקל מולקולרי נמוך.
    1. שוקל 5 מ"ג של שני sodiאממ fluoroacetate וחומצת homovanillic ולפזר אותם לתוך 5 מיליליטר מים כדי להפוך את הריכוז סופי של 1 מ"ג / מיליליטר. ממיסים diazinon במתנול כדי להפוך את הריכוז סופי של 10 מ"ג / מיליליטר.
    2. כדי להכין 1 מיליליטר של תמיסת כיול מסה נמוכה שלילית, לערבב 960 מיליליטר טרמו פתרון כיול שלילי עם 20 מיליליטר של fluoroaceate נתרן וחומצת פתרון homovanillic. כדי להפוך 1 מיליליטר של תמיסת כיול מסה נמוכה חיובית, לערבב 990 מיליליטר טרמו פתרון כיול חיובי ו10 מיליליטר פתרון diazinon. (פתרון כיול המסה הנמוכה צריך להיות מאוחסן על 4 מעלות צלזיוס ולהיות מוכן טרי בכל 2 חודשים.)
  3. כיול של QE-MS בטווח מסה נמוכה
    1. לפני ביצוע כיול טווח מסה נמוך, לבצע כיול סטנדרטי מסה (m / z, 150-2,000) במצבים חיוביים ושליליים המבוססים על הוראות היצרן.
    2. ברגע שכיול מסה רגיל עובר, להתאים את טווח הסריקה ל60-900 מ '/ z בלוח הבקרה של המכשירוCID מקור 25 eV למצב חיובי ו35 eV למצב שלילי מיושם. (זה ייתן אותות חזקים של יון בר קפאין ויון סולפט. טווח הסריקה כאן הוא קבוע, כי מ '/ z האחרון לא צריך להיות גדול יותר מאשר 15x של m / z מתחיל)
    3. ברגע שמקור יון הוא יציב, ולאחר מכן לבצע את הכיול המותאם אישית. הערה: מקור יציב מוגדר כפחות מ -10% מהשונות יון הנוכחיות הכוללת במצב חיובי, ופחות מ 15% במצב שלילי. יוני הכיול המותאמים אישית ומתאים מ '/ z מופיעים בטבלה 1.
  4. להקים את מכשור LC-MS לניתוח המטבוליט קוטב. LC הוא מצמידים את QE-MS להפרדת המטבוליט וזיהוי.
    1. לצייד את QE-MS עם בדיקה מחוממת electrospray יינון (H-ESI). הגדר את הפרמטרים כוונון הרלוונטיים לבדיקה כפי שמופיעה ברשימה: טמפרטורת תנור, 120 מעלות צלזיוס; גז נדן, 30; גז עזר, 10; לטאטא גז 3,; לרסס מתח, 3.6 קילו וולט עבורמצב חיובי ו2.5 קילו וולט עבור מצב שלילי. הגדר את טמפרטורת נימים ב320 ° C, ו-S-עדשה ב55.
    2. לבנות שיטת סריקה מלאה כדלקמן: טווח מלא סריקה: 60-900 (m / z); רזולוציה: 70,000; זמן הזרקה מרבי: 200 אלפיות שני עם זמני הזרקה טיפוסיים סביב 50 אלפיות שניים; בקרה אוטומטית רווח (AGC): 3,000,000 יונים. הגדרות אלה יגרמו למחזור עבודה של כ 550 msec לבצע סריקות במצב חיובי ושלילי.
    3. להקים את שיטת כרומטוגרפיה. מעסיק עמודה אמיד (100 x 2.1 id מ"מ, מ"מ 3.5) להפרדת מתחם בטמפרטורת חדר 13,15. השלב הנייד הוא כפי שתואר לעיל, והשלב נייד B הוא אצטוניטריל. השתמש בשיפוע ליניארית כדלקמן: 0 דקות, 85% B; 1.5 דקות, 85% B, 5.5 דקות, 35% B; 10min, 35% B, 10.5 דקות, 35% B, 14.5 דקות, 35% B, 15 דקות, 85% B, ו20 דקות, B. 85% קצב הזרימה הוא 0.15 מיליליטר / דקה 0-10 דקות ו15 ל20 דקות, ו0.3 מיליליטר / דקה 10.5-14.5 דקות.

2. Preparation של דוגמאות המטבוליט

  1. הכן ממס חילוץ. מערבבים 40 מיליליטר מתנול (כיתה LC-MS) ו10 מיליליטר מים (כיתה LC-MS) בצינור 50 מיליליטר, ולשמור אותו במקפיא -80 מעלות צלזיוס במשך שעה לפחות 1 לפני השימוש. הערה: הליך זה ואת הצעדים הבאים יכולים להיות שונה עבור החילוץ של רקמות ביולוגיות ודגימות נוזלים.
    1. 8 תאי HCT לסרטן מעי גס בתרבות בשלוש 10 מנות סנטימטר או 6 צלחות היטב עם מדיום גידול מלא, RPMI 1640 תוספת 10% חום בסרום שור עוברי מומת ו100,000 יחידות פניצילין / L ו100 סטרפטומיצין מ"ג / ליטר.
    2. כאשר תאים מגיעים למפגש 80%, להסיר במהירות בינונית, ומניח את הצלחת או צלחת על גבי 13,15 קרח יבשים. הוספת מיצוי 1 מיליליטר ממס באופן מיידי (80% מתנול / מים), ולהעביר את הצלחת למקפיא -80 מעלות צלזיוס. למנה 10 סנטימטר, להוסיף 3 מיליליטר של מיצוי בממסים היטב כל אחד. (נסה להסיר את המדיום ככל האפשר כדי למנוע את אפקט דיכוי יון בשל מלחים שיורית מבינוני.)
    3. השאר את הצלחת ל15 דקות. הסר אותו מהמקפיא, ומגרד תאים לתוך הממס על קרח יבש. מעביר את הפתרון ל1.7 צינורות מיליליטר Eppendorf, ו צנטריפוגות עם המהירות של 20,000 XG ב 4 מעלות צלזיוס למשך 10 דקות. (הכן מטבוליטים תא משלוש מנות נפרדות כדי להפוך את שלוש דגימות לשכפל. המטרה של שמירה על שני צינורות היא שיש אחד כגיבוי).
    4. מעביר את supernatant לשני צינורות Eppendorf חדשים, ולייבש אותם בחלל ריק במהירות. זה לוקח בערך 3-6 שעות בהתאם לוואקום במהירות בשימוש. (יכולות להיות גם מיובשים דגימות לילה מתחת לגז חנקן.)
    5. לאחר צינורות הייבוש, חנות של כל דגימה ב-80 ° C במקפיא. כאשר מוכן, מחדש דגימה אחת ל20 מיליליטר מים (כיתה LC-MS), ולהזריק 5 מיליליטר לLC-QE-MS לניתוח.

3. הגדרה של רצף לדוגמא

  1. לאחר הכיול בוצע כראוי על QE-MS, לאזן עמודת LC למשך 5 דקות עם 85% בזרימהשיעור 0.15 מיליליטר / דק ', המהווה את המצב ההתחלתי של שיפוע LC.
  2. הגדר את רצף המדגם בסדר אקראי. הערה: בדרך זו, שהיא מחלקת התנודות הוצגו על ידי LC-MS לכל דגימה ומבטיחה השוואה מדויקת יותר בין מדגמים שונים. כל 6 דגימות, להוסיף ריצה לשטוף, אשר המניות באותה שיטת MS, למעט שיפוע LC הוא 95% עבור 10 דקות ואחריו איזון עמודה 5 דקות ב85% בקצב זרימה של 0.15 מיליליטר / דקה. להוסיף דגימות ריקות (100% מים) אחרי כל הסיבוב לשטוף להעריך את הרקע של המערכת ולשאת מעל הרמות.
  3. שמור את הרצף וברגע שעמודת LC תערוכות לחץ יציב, סביב 400 psi, להתחיל את ריצת הרצף. אם אין דוגמא אחרת להפעלה לאחר רצף זה, ולאחר מכן להוסיף ריצה להפסיק בסופו של הרצף, שבו יש קצב זרימה של 0 מיליליטר / דקה בסוף השיפוע ולבחור "המתנה" לאחר שסיים את רצף.
  4. להפעיל מחדש את אותו המדגם להגדיר שעות 12 לאחר כיול. (I זהים להעריך את תנודות השגיאה ההמונית לאחר כיול).

4. הודעה ניתוח כלי ניקוי ותחזוקה

  1. בסופו של רצף, לשטוף את העמודה עם 95% בקצב זרימה של 0.2 מיליליטר / דקה במשך 2 שעות, ואם יש צורך, להפוך את העמודה לפני הכביסה.
  2. הסר את עמודת LC ולהתחבר ישירות לLC יון המקור על ידי איגוד. הכן את חומרי ניקוי, מים / מתנול / חומצה פורמית (v: v: v, 90:10:0.2), להגדיר MS במצב המתנה, ומערכת השטיפה LC-MS בקצב זרימה של 0.1 מיליליטר / דקה במשך שעה 1 כדי להסיר שיורי זירז מלחים או זיהומים אחרים. מנמיכים את קצב הזרימה אם יש לחץ במערכת יותר מדי.
  3. הגדר את טמפרטורת נימים על 50 מעלות צלזיוס, ולהסיר את כלוב היונים. מוציא בזהירות את קונוס לטאטא יון וצינור העברת יון לאחר טמפרטורת הנימים יורדת ל 50 ° C. השתמש ברשת מחוספס, כמו נייר זכוכית, כדי להסיר זיהומים שנשארו על פני השטח של חרוט לטאטא יון.
  4. הנח את העברת יוןצינור לתוך צינור פלקון 15 מיליליטר מכיל 10 מיליליטר 90% מים / מתנול עם 0.1% חומצה פורמית. לאחר sonicating הצינור בsonicator אמבט מים עבור 20 דקות, למזוג הממס בפנים, תחליף אותו במתנול הטהור 10 מיליליטר וsonicate עוד 20 דקות. (במידת צורך, sonication ניתן לעשות ב-C ° 40 או טמפרטורה גבוהה עוד יותר כדי להשיג תוצאות ניקוי טובות יותר.)

5. ניתוח של LC-MS נתונים

  1. כדי להבטיח את רצף המדגם פועל בצורה חלקה, לאחר שסיים את שתי הדגימות הראשונות ברצף, בדוק פסגות למטבוליטים לא ידועים. השתמש בקובץ CSV רישום שמות המטבוליט, נוסחה כימית ניטראלית ומצב זיהוי (חיובי או שלילי), כקובץ הקלט וקובץ הפלט מכיל פסגות חילוץ וטעייה המונית בעמודים לדקה. אם צורת השיא היא חריגה או השגיאה ההמונית כבויה יותר מ 5 עמודים לדקה, ולאחר מכן את שאר הרצף שחייב להיפסק ופתרון בעיות שצריך לעשות.
  2. בחר את השיטה "יישור שיאומיצוי מסגרת "על תוכנה זמינה באופן מסחרי. בחר נתונים גולמיים מLC-MS ולקבץ אותם. לאסוף דגימות באמצע הרצף הארוך כמו לדוגמא התייחסות כרומטוגרפיה ליישור שיא. העלה זרע מסגרת כולל מטבוליטים ידועים לניתוח הממוקד מטבוליטים עם הנתונים שנאספו ואת זרע המסגרת המתאימה.
  3. לבצע ניתוח נתונים במצב חיובי ושלילי בנפרד. השתמש בהגדרת ברירת המחדל עבור פרמטרים נוספים. כבה את פונקציית החיפוש באתר ולהפעיל את זרימת העבודה. לייצא את הנתונים מעובדים כגיליון Excel המכיל אזור שיא של כל מסגרת. ערכות הראשונות של מסגרות מתאימות למטבוליטים ברשימה הממוקד. הערה: לניתוח המטבוליט ממוקד, מידע מטבוליטים מתקבל על סמך המחקרים הקודמים 13,15.
  4. לניתוח המטבוליט לא ממוקד, לבחור את השיטה של ​​"מיצוי רכיב". טען דגימות ריקות לחיסור רקע. סף שנקבע על שיא עוצמהלא 10 5, רוחב מ '/ z של 10 עמודים לדקה ויחס אות לרעש של 3.
  5. השתמש במסד נתוני metabolome אנושי לזיהוי תרכובות ידועות. שימוש במסנן קורות חיים כדי להסיר את הרכיבים עם קורות חיים גדולים בתוך דגימות לשכפל. באופן ידני לעבור כל רכיב ולבחור את אלה עם שיא מוגדר היטב או הבדל גדול יחסית בסוגי מדגמים שונים לחיפוש באתר. נתוני יצוא עם להיטים במסד נתונים. (יישור שיא יכל לעקוף אם ציון יישור השיא הוא נמוך מדי.)

הגישה מוגבלת. התחברו או התחילו תקופת ניסיון כדי לצפות בתוכן זה.

תוצאות

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

דיוק נתוני metabolomics מאוד תלוי בביצועי מכשיר LC-QE-MS. כדי להעריך אם המכשיר פועל במצב טוב, והאם השיטה מיושמת היא ראויה, כמה פסגות LC מטבוליט הידוע המחולצים כרומטוגרפיה יון הכוללת (TIC), כפי שמוצגים באיור 1. מטבוליטים פולאר, כוללים חומצות אמינו, חומרי ביניים גליקוליזה , ביניים TCA, נוקלאוטידים, ויטמינים, ה-ATP, NADP + וכן הלאה יש שמירה טובה על צורות העמודה ושיא טוב בעמודה אמיד בתנאי LC הנוכחיים. בינתיים, במבחן שגיאה המונית נעשה בתוך 24 שעות לאחר כיול ...

הגישה מוגבלת. התחברו או התחילו תקופת ניסיון כדי לצפות בתוכן זה.

דיון

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

השלבים הקריטיים ביותר לפרופיל המטבוליט מוצלח בתאים תוך שימוש בפרוטוקול זה הם: 1) שליטה על מדיום הגידול והפקה מדוקדקת של התאים; 2) לשנות את שיטת LC מבוסס על שיטת התקנת MS, כדי להבטיח שיש מספיק (בדרך כלל לפחות 10 נקודות נתונים) על פני שיא כדי לכמת; 3) עושה כיול מסה נמוך לפני הפעלת דגימות; 4) הזרקה לא יותר מ 5 מיליליטר, כדי למנוע זמן שמירת הסטה והרחבת שיא הנגרמת על ידי מים; ו5) הכנה והפעלת דגימות להשוואה באותו אצווה כדי למזער את ההשפעות אצווה.

הגישה מוגבלת. התחברו או התחילו תקופת ניסיון כדי לצפות בתוכן זה.

גילויים

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

המחברים מצהירים שום ניגוד עניינים.

תודות

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

המחברים רוצים להכיר דטלף שומאן, ג'ניפר סאטון (תרמו פישר סיינטיפיק) ונתנאל סניידר (אוניברסיטת פנסילבניה) לדיונים חשובים בכיול מסה ועיבוד נתונים. מחקר שפורסם בפרסום זה נתמכה על ידי המכון הלאומי לסרטן של המכון הלאומי לבריאות במספר פרס R00CA168997. התוכן הוא באחריות בלעדית של הכותבים ולא בהכרח מייצג את הדעות הרשמיות של המכון הלאומי לבריאות.

הגישה מוגבלת. התחברו או התחילו תקופת ניסיון כדי לצפות בתוכן זה.

חומרים

רשימת החומרים שנעשה בהם שימוש במאמר זה
שםחברהמספר קטלוגהערות
תערובת כיול חיוביתThermo Scientific#88323הוא רגיש לאור. יש לאחסן בטמפרטורה של 4 מעלות; C
תערובת כיול שליליתThermo Scientific#88324חנות ב-4 מעלות; C
דיאזינוןסנט קרוז ביוטכנולוגיה#C0413זה גורם לגירוי בעיניים, אז עבדו במכסה המנוע. יש לאחסן בטמפרטורה של 4 מעלות; הכנסת
מחט C H-ESIפישר סיינטיפיק# 1303200ניתן להחליף או לנקות אותה בחומצה פורמית 5% / מים (הסר טבעת גומי) אם היא סתומה.
עמודת אמיד XbridgeWaters#186004860עמודת משמר מומלצת להגדיל את אורך חיי העמודה.

מקורות

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,
  1. Fiehn, O. Combining genomics, metabolome analysis, and biochemical modelling to understand metabolic networks. Comparative and Functional Genomics. 2 (3), 155-168 (2001).
  2. Mulleder, M., et al. A prototrophic deletion mutant collection for yeast metabolomics and systems biology. Nature Biotechnology. 30 (12), 1176-1178 (2012).
  3. Patel, V. R., Eckel-Mahan, K., Sassone-Corsi, P., Baldi, P. CircadiOmics: Integrating circadian genomics, transcriptomics, proteomics and metabolomics. Nature Methods. 9 (8), 772-773 (2012).
  4. Ideker, T., et al. Integrated genomic and proteomic analyses of a systematically perturbed metabolic network. Science. 292 (5518), 929-934 (2001).
  5. Jonsson, P., et al. A strategy for identifying differences in large series of metabolomic samples analyzed by GC/MS. Analytical Chemistry. 76 (6), 1738-1745 (2004).
  6. Jonsson, P., et al. High-throughput data analysis for detecting and identifying differences between samples in GC/MS-based metabolomic analyses. Analytical Chemistry. 77 (17), 5635-5642 (2005).
  7. Weljie, A. M., Newton, J., Mercier, P., Carlson, E., Slupsky, C. M. Targeted profiling: Quantitative analysis of 1H NMR metabolomics data. Analytical Chemistry. 78 (13), 4430-4442 (2006).
  8. Wiklund, S., et al. Visualization of GC/TOF-MS-based metabolomics data for identification of biochemically interesting compounds using OPLS class models. Analytical Chemistry. 80 (1), 115-122 (2008).
  9. Xia, J., Bjorndahl, T. C., Tang, P., Wishart, D. S. MetaboMiner--semi-automated identification of metabolites from 2D NMR spectra of complex biofluids. BMC Bioinformatics. 9, 507(2008).
  10. Lu, D., et al. 13C NMR isotopomer analysis reveals a connection between pyruvate cycling and glucose-stimulated insulin secretion (GSIS). Proceedings of the National Academy of Sciences of the United States of America. 99 (5), 2708-2713 (2002).
  11. Shen, J., et al. Determination of the rate of the glutamate/glutamine cycle in the human brain b. in vivo 13C NMR. Proceedings of the National Academy of Sciences of the United States of America. 96 (14), 8235-8240 (1999).
  12. Kitteringham, N. R., Jenkins, R. E., Lane, C. S., Elliott, V. L., Park, B. K. Multiple reaction monitoring for quantitative biomarker analysis in proteomics and metabolomics. Journal of Chromatography. B, Analytical Technologies in the Biomedical and Life Sciences. 877 (13), 1229-1239 (2009).
  13. Locasale, J. W., et al. Metabolomics of human cerebrospinal fluid identifies signatures of malignant glioma. Molecular & Cellular Proteomics : MCP. 11 (6), 10-1074 (2012).
  14. Wolf-Yadlin, A., Hautaniemi, S., Lauffenburger, D. A., White, F. M. Multiple reaction monitoring for robust quantitative proteomic analysis of cellular signaling networks. Proceedings of the National Academy of Sciences of the United States of America. 104 (14), 5860-5865 (2007).
  15. Yuan, M., Breitkopf, S. B., Yang, X., Asara, J. M. A positive/negative ion-switching, targeted mass spectrometry-based metabolomics platform for bodily fluids, cells, and fresh and fixed tissue. Nature Protocols. 7 (5), 872-881 (2012).
  16. Ramanathan, R., et al. It is time for a paradigm shift in drug discovery bioanalysis: From SRM to HRMS. Journal of Mass Spectrometry : JM. 46 (6), 595-601 (2011).
  17. Lu, W., Clasquin, M. F., Melamud, E., Amador-Noguez, D., Caudy, A. A., Rabinowitz, J. D. Metabolomic analysis via reversed-phase ion-pairing liquid chromatography coupled to a stand alone orbitrap mass spectrometer. Analytical Chemistry. 82 (8), 3212-3221 (2010).
  18. Michalski, A., et al. Ultra high resolution linear ion trap orbitrap mass spectrometer (orbitrap elite) facilitates top down LC MS/MS and versatile peptide fragmentation modes. Molecular & Cellular Proteomics : MCP. 11 (3), 10-1074 (2012).
  19. Michalski, A., et al. Mass spectrometry-based proteomics using Q exactive, a high-performance benchtop quadrupole orbitrap mass spectrometer. Molecular & Cellular Proteomics : MCP. 10 (9), (2011).
  20. Snyder, N. W., Khezam, M., Mesaros, C. A., Worth, A., Blair, I. A. Untargeted Metabolomics from Biological Sources Using Ultraperformance Liquid Chromatography-High Resolution Mass Spectrometry. UPLC-HRMS). J. Vis. Exp. (75), (2013).
  21. Gika, H. G., Theodoridis, G. A., Wingate, J. E., Wilson, I. D. Within-day reproducibility of an HPLC-MS-based method for metabonomic analysis: Application to human urine. Journal of Proteome Research. 6 (8), 3291-3303 (2007).
  22. Want, E. J., et al. Global metabolic profiling procedures for urine using UPLC-MS. Nature Protocols. 5 (6), 1005-1018 (2010).

הגישה מוגבלת. התחברו או התחילו תקופת ניסיון כדי לצפות בתוכן זה.

הדפסות חוזרות והרשאות

בקש הרשאה לשימוש חוזר בטקסט או באיורים של מאמר JoVE זה

בקש הרשאה

תגיות

Metabolomics ProtocolPolar Metabolite AnalysisAmide Hydrophilic ChromatographyQ Exactive MSCold Methanol ExtractionMetabolite Peak ExtractionData Processing SoftwareUntargeted Metabolite AnalysisTargeted Metabolite DetectionMass Error Calibration

מאמרים קשורים