Method Article

ייצוב Hepatocellular הפנוטיפ באמצעות משטחים סינטטיים אופטימליים

DOI:

10.3791/51723

September 26th, 2014

In This Article

Summary

Loading...
$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

מאמר זה יתמקד בפיתוח משטחים מצופים פולימר לטווח ארוך, תרבות היציבה של תאי גזע המופקת hepatocytes האנושי.

Abstract

Loading...
$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

נכון לעכשיו, אחת המגבלות העיקריות בביולוגיה של התא היא שמירה על פנוטיפ תאים מובחן. מטריצות ביולוגיות משמשות בדרך כלל לתרבית ותחזוקה של הפטוציטים ראשוניים ופלוריפוטנטיים שמקורם בתאי גזע. בעוד שמטריצות ביולוגיות שימושיות, הן מאפשרות תרבית קצרת טווח של הפטוציטים, מה שמגביל את יישומן הנרחב ניסינו להתגבר על המגבלות באמצעות ציפוי פולימרי סינטטי. פולימרים מייצגים את אחד המחלקות הרחבות ביותר של ביו-חומרים ויש להם מגוון רחב של תכונות מכניות, פיזיקליות וכימיות, שניתן לכוונן למטרה. חשוב לציין, ניתן להתאים חומרים כאלה לסטנדרטים מובטחים של איכות ולהציג עקביות אצווה לאצווה. זה חיוני אם רוצים להרחיב את התאים להקרנה בתפוקה גבוהה בתעשיית הבדיקות התרופתיות או לטיפול מבוסס תאים. פוליאוריתנים (PUs) הם קבוצה אחת של חומרים שהראו הבטחה בתרבית תאים. ההתקדמות האחרונה שלנו באופטימיזציה של משטח מצופה פוליאוריטן, לתרבית ארוכת טווח של הפטוציטים אנושיים המציגים פנוטיפ יציב, מוצגת ונדונה.

Introduction

Loading...
$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

חומרים ביולוגיים היו בשימוש נרחב בתחזוקה וההתמיינות של תאי גזע pluripotent 1. תוך שהוא מאפשר, מצעים ביולוגיים אלה לעתים קרובות מכילים מספר עצום של מרכיבים בלתי מוגדרים. Matrigel הוא מצע נפוץ לתרבית תאי גזע ובידול. לרוע המזל, ההרכב משתנה משפיע על תפקוד תא ופנוטיפ. למרות מגוון רחב של מטריצות חלופיות, מוגדרות יותר ביולוגיות היה בשימוש 2-7, מן החי או מן מדרגיות עניים שלהם הופכת אותם למועמדים שאינם מתאימים לייצור תעשייתי. לכן זיהוי של חלופות סינתטיות, עם הרכב מוגדר וביצועים אמין, הן מטרות מרכזיות במחקר בתאי גזע.

בניסיון להתגבר על המגבלות של מצעי תרבית תאים לא מוגדרים, שיתופי פעולה בין תחומיים בין הכימיה והביולוגיה זיהו חומרים סינטטיים עם היכולת לתמוך בפנוטיפ תא. Synthמצעי etic הם ניתנים להרחבה, חסכוניים, ויכולים להיות מיוצרים לתוך מבנים מורכבים 3D, מחקה את סביבת in vivo. בשל מאפיינים אלה מצעים סינטטיים היו בשימוש נרחב כדי לתמוך ולהוביל בידול של סוגי תאים רבים 8-10.

מבחני תפוקה מתקדמים וגבוהים הקלו סינון המהיר של חומרים סינטטיים, מספריות גדולות, ונמסרו חומרים חדשים בעלי תכונות גמישות עם יישומים רחבים במחקר ופיתוח ביו 11-13. ניצול תפוקה גבוהה, טכנולוגית הקרנת מיקרו מערך פולימר, אנו במהירות זיהינו פוליאוריטן פשוט (PU134), מתאים לתחזוקה של תאים כבדים בתאי גזע אנושיים נגזרים. פולימר זה נמצא להיות עדיף על מצעים מן החי בנוגע לבידול hepatocyte ותפקוד 14-16. לאחר מכן יש לנו אופטימיזציה תהליך תנאי ציפוי, הטופוגרפיה ועיקור כדי לגשת להשפעותעל ביצועי פולימרים בייצוב תפקוד הפטוציט ותוחלת חיים. יש לכך השלכות משמעותיות בכל קשור להבנת יסודות הביולוגיה הפטוציט לדוגמנות תא מבוססת ויישומי רפואה רגנרטיבית.

הטכנולוגיה שתוארה כאן מייצגת דוגמא לאופן שעל פני השטח של פולימר סינטטי יכול להיות מותאמים כדי לשמר את הפנוטיפ של תאים. אנו מאמינים כי שילוב של טכנולוגיה זו עם פרוטוקול בידול hepatocyte סרום ללא יעיל יש את הפוטנציאל לספק ייצור להרחבה של תאים כבדים לשימוש במודלים במבחנה ורפואת רגנרטיבית.

Access restricted. Please log in or start a trial to view this content.

Protocol

Loading...
$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

.1 סינתזה של PHNGAD (פולי [1,6-hexanodiol / neopentyl גליקול / די (אתילן גליקול) חומצת -alt-adipic] דיאול)

figure-protocol-1

1 תכנית: סינתזה של PHNAGD ייצוג סכמטי של הסינתזה של PHNAGD.. PHNAGD הוכן על ידי התגובה של 1,6-Hexanodiol, גליקול דיאטילן, גליקול neoppentyl וחומצת adipic. PHNAGD, פולי [1,6-hexanodiol / neopentyl גליקול / די (אתילן גליקול) החומצה -alt-adipic] דיאול.

  1. החל טיפול בחום למונומרים 1,6-hexanediol, di (אתילן גליקול) וגליקול neopentyl ב40 מעלות צלזיוס למשך 48 שעה בתנור ואקום כדי להסיר כל שאריות מים. לאפשר לקור עד לRT תחת ואקום.
  2. הוספת 22 mmol של כל מונומר וחומצת adipic (55 mmol) לבקבוק תחתון עגול שני צוואר מצויד בבר עורר ומחובר למנגנון דיקן-סטארק.
  3. מניחים את כל ההרכבה תחת ואקום ובעדינות לחמם את glassware בC ° 40 ל6 שעות, כדי להימנע מכל ספיגת לחות במהלך התוספת של החומר הכימי לתוך הבקבוק.
  4. הוסף דרך מזרק, טיפה אחרת טיפה, 0.0055 mol של טיטניום הזרז (IV) butoxide.
  5. מערבבים את תערובת התגובה ב180 ° C, תחת אווירת N 2 ל24 שעות, ולאסוף שאריות מים במלכודת הדיקן-סטארק. אפשר למוצר להתקרר לRT.

.2 סינתזה של PU134

figure-protocol-2

תכנית 2: סינתזה של PU134 ייצוג סכמטי של הסינתזה של פוליאוריטן 134. PU134 הוכנה על ידי התגובה של 1.0 equiv של PHNGAD עם 2.0 equiv של 4,4'-Methylenebis (isocyanate פניל), ואחריו התוספת של 1.0. equiv של מאריך שרשרת 1,4-butanediol.

  1. מערבבים מקבילה של PHNGAD polyol אחד (Mn ~ 1,800 Da, 3.2 mmol) עם שני שווה של 4"4-Methylenebis (isocyanate פניל) (6.4 מילימול) בN נטול מים, N -Dimethylformamide (12 מ"ל).
  2. מערבבים את תערובת התגובה על 70 מעלות צלזיוס, תחת אווירת N 2.
  3. הוסף דרך מזרק, טיפה אחרת טיפת טיטניום הזרז butoxide (WT 0.8%) (IV).
  4. אחרי שעה 1, להוסיף שווה ערך אחד מאריך שרשרת 1,4-butanediol (3.2 מילימול). להעלות את הטמפרטורה ב90 ° C ומערבבים ל24 שעות תחת אווירת N 2.
  5. בעקבות התגובה, לאסוף פוליאוריטן על ידי משקעים על ידי הוספת אתר diethyl (הקסאן או מים יכולים לשמש גם) שחרר חכם לפתרון התגובה עד הממטרים מתרחש.
  6. צנטריפוגה הפתרון ב5,300 XG למשך 5 דקות.
  7. למזוג supernatant ולהתנגב ב40 מעלות צלזיוס בתנור ואקום עד מתאדה הממס.
    שים לב: על מנת להבטיח כי המוצר הסופי של התגובה יש את הפרמטרים הנכונים בנוגע לחלוקת המשקל המולקולרית, grou הפונקציונליps של הפולימר, וטמפרטורת ההיתוך והמעבר זכוכית, ניתן להשתמש בטכניקות אנליטיות שונות ושיטות, כגון כרומטוגרפיה חלחול ג'ל או ספקטרוסקופיה פיטר.

.3 הכנת פתרונות PU134

  1. שוקל 200 מ"ג של PU134 לתוך בקבוק זכוכית.
  2. לדלל PU134 לריכוז סופי של 2% במספר הממסים: כלורופורם, שילוב של כלורופורם וטולואן ב1: 1, tetrahydrofuran, ושילוב של tetrahydrofuran וdicloromethane ב1: 1.
    הערה: בחירתו של הממס הנכון משתנה בהתאם לפולימר לשימוש. ממסים שונים יש נקודות רתיחה שונות שיכול להשפיע על solubilization של הפולימר.
  3. לנער את הפתרון נמרצות ל20 דקות ב RT באמצעות שייקר במהירות של 200 mot / דקה, עד שהפתרון הופך הומוגנית ולא משקע הוא ציין.

.4 ציפוי של זכוכית שקופיות עם PU134

  1. הנח ROU15 מ"מ 2 coverslip nd על coater הספין.
  2. החל 50 μl של פתרון PU134 לכל באמצעות פיפטה. כוון את עוצמת הקול של פתרון PU134 בהתאם לגודל coverslip נדרש שמירה על הנפח על פני השטח יחסי יחס.
  3. ספין כל coverslip ל7 שניות ב23 x גרם.
  4. coverslip האוויר היבש ב RT לפחות 24 שעות לפני העיקור.

.5 הקרנה של Coverslip

  1. Gamma-להקרין coverslip מצופה פולימר על ידי יישום מינון של 10 אפורים באמצעות irradiator מעבדה ל12 דקות.
  2. UV- להקרין coverslip מצופה פולימר באמצעות 30 W, הנורה UV ל16 דקות מכל צד.
  3. מקום coverslip מצופה הפולימר בצלחת תרבית הרקמה מתאימה בהתאם לגודל השקופית.

.6 מיקרוסקופית אלקטרונים סורק

  1. coverslip זהב מעיל פולימר על ידי מקרטעות ל200 שניות באווירה של 5 x 10 -1 מיליבר של לחץ.
  2. ללכוד את micrographs של coverslip מצופה הפולימר באמצעות מיקרוסקופ אלקטרונים סורק במתח מאיץ של 20 ק במצב שני אלקטרונים הדמיה.

.7 תצפיות מיקרוסקופית כוח האטומי

  1. לסרוק שטח של 20 x 20 מיקרומטר של משטח הפולימר.
  2. הגדר את קצב סריקה מ1.32 הרץ ל1.60 הרץ.
  3. הגדר את רזולוציה של 512 x 512 פיקסלים באזור שנסרק.
  4. לחשב את שורש ממוצע ריבוע (RMS או RQ) של הציפוי על ידי שימוש בממוצע של סטיות גובה נלקחו ממטוס נתוני תמונה הממוצע, הביע כ:
    figure-protocol-3
    איפה זי הוא ערך Z הנוכחי, וN הוא מספר הנקודות בתוך השטח נתון.
  5. 7.5 חשב את הסטייה או מתכוון חספוס פני השטח (Ra) של התמונה באמצעות,
    figure-protocol-4
    כאשר Z (x) היא הפונקציה שמתארת ​​tהוא משטח הפרופיל מנותח במונחים של גובה (Z) ומיקום (x) של המדגם על פני אורך ההערכה "L". Ra מייצג את הערך הממוצע של פני השטח ביחס למישור המרכז.

.8 תרבות והתמיינות של תאים

  1. תרבות ולבדל את שורת תאי גזע עוברית (hESC) H9 האנושי כפי שמתואר בHay 17.
  2. לנתק את התאים באמצעות מגיב ניתוק וreplate על גבי שקופיות מצופים PU134 ביום 9 של תהליך ההתמיינות, בנוכחותו של מדיום סרום ללא כלתאר בSzkolnicka 18,19.
    הערה: השימוש בתא דיסוציאציה האנזימטית הוא מועדף לניתוק תא פיזי.

.9 ציטוכרום P450 Assay פונקציונלי

  1. למדוד את פעילות CYP3A הבאה הוראות היצרן.
  2. דגירה hepatocytes hESC נגזר ביום 13 או יום 19, ותקשורת ללא תאים - כביקורת שלילית, עם substr המתאיםאכלתי במשך 5 שעות על 37 מעלות צלזיוס.
  3. לאסוף supernatants מהתאים ותקשורת, לבצע את assay לפי הוראות יצרן.
  4. מדוד את רמת פעילות CYP והיחסי מנורמלים לשטח הפנים (2 סנטימטר).

10. Immunostaining

  1. לשטוף hESC נגזר hepatocytes עם PBS, 1 דקות, חוזר שתי פעמים.
  2. הוספת מתנול קרח קר 100% לתקן תאים, מקום ב-20 מעלות צלזיוס למשך 10 דקות.
  3. שטוף תאים עם PBS במשך 5 דקות וחזור פעמיים.
  4. דגירה תאים עם PBS / BSA / 10% עבור שעה 1 ב RT T (tween 0.1%).
  5. לשאוב את פתרון PBST ולהוסיף הנוגדן הראשוני המתאים מדולל PBS / BSA / 1% T (tween 0.1%), דגירה על 4 מעלות צלזיוס עם O תסיסה עדין / N.
  6. שטוף תאים עם PBS / BSA / 1% T (tween 0.1%) במשך 5 דקות ולחזור על שלוש פעמים.
  7. לדלל את הנוגדן המתאים בPBS / BSA / 1% T (tween 0.1%), להוסיף לתאי דגירה בחושך בRT עבור שעה 1 עם תסיסה עדינה.
  8. שטוף תאים עם PBS במשך 5 דקות ולחזור על שלוש פעמים.
  9. הוספת Mowiol 488 (המכיל 1 DAPI: 1,000) זה טוב, להוסיף coverslip בעדינות כדי להפחית את מספר בועות אוויר. חנות קבועה תאים על 4 מעלות צלזיוס בחושך. שים לב מכתים באמצעות מיקרוסקופ עם מסנן מתאים ומנורת ניאון. הנוגדנים ראשוניים ומשניים המותאמים מופיעים בטבלה 1.

Access restricted. Please log in or start a trial to view this content.

Results

Loading...
$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

ממס פולימר משפיע על הטופוגרפיה של פני השטח מצופה פולימר

פוליאוריתן 134 היה solubilized בכלורופורם, לבד או בשילוב עם טולואן או tetrahydrofuran או dichloromethane ושקופיות זכוכית ספין מצופות בניסוחים השונים. במיקרוסקופ אלקטרונים סורק (SEM) ומיקרוסקופ כוח אטומי (AFM) שמשו לאפיין את התכונות הפיסיקליות של חומרי ציפוי הפולימר (איור 1). הציפוי שהושג באמצעות טולואן או כלורופורם לא היה הו...

Access restricted. Please log in or start a trial to view this content.

Discussion

Loading...
$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

רבים מהשיטות הנוכחיות משמשות ליצירת תאים כבדים מתאי גזע להסתמך על מטריצות מוגדרות מן החי. מצעים אלה יכולים להיות יקרים ומשתנים מאוד, המשפיעים על תפקוד תא ויציבות, המייצג חסם משמעותי ליישום. לכן, ביצענו מסך לחומרים סינטטיים התומכים בתרבות של תאים כבדים שמקורן בתאי גזע. אנו זיהינו, פוליאוריטן פשוט (PU134), שהוקם על ידי polymerizing PHNGAD, MDI ומאריך, שבשילוב עם גישת בידול hepatocyte חזקה, מייצב את הפנוטיפ הפטוציט ומשפר את תפקוד תא בהשוואה לmatrigel 15.

Access restricted. Please log in or start a trial to view this content.

Disclosures

Loading...
$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

DCH הוא CSO, מנהל, מייסד ובעל מניות בFibromEd המוצרים בע"מ MB וJPI הם בעלי מניות מייסד בFibromEd מוצרים בע"מ

Acknowledgements

Loading...
$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

DCH, MB וFK נתמכו על ידי מעקב EPSRC על קרן. BL-V וDS היו כל נתמך על ידי תעודת סטודנט לתואר שלישי MRC. KC נתמכה על ידי מימון מבריטניה רפואת רגנרטיבית הפלטפורמה.

Access restricted. Please log in or start a trial to view this content.

Materials

List of materials used in this article
NameCompanyCatalog NumberComments
<חזק>סינתזה, הכנה, ציפוי ואפיון של כיסויים מצופים פולימר PU134
שייקראדמון Bü hlerKS-15
IrradiatorCIS BiointernationalIBL 637 
ציפויספין מערכת ציפוי מיוחדתP-6708
מיקרוסקופ אלקטרונים סורק פיליפסXL30CPSEM
מיקרוסקופ כוח אטומיDimensionV ננוסקופ, VEECO
p4-GLO CYP3A4PromegaV8902
נורת UVESCO
תוכנת ניתוח ננו-סקופVEECOגרסה 1.20
מיקרוסקופ פלואורסצנטיאולימפוסTH45200 להשתמש בתוכנת Volocity 4
לוחות תרבית רקמהקורנינג, בריטניה 3527
שקופיות זכוכיתציוד מעבדה מדעיתMIC3308
דיאתילן גליקולסיגמא– אולדריץ'93171
1,6-הקסנדיולסיגמא– Aldrich240117
ניאופנטיל גליקולסיגמא– אולדריץ'408255
חומצה אדיפיתסיגמא– Aldrich9582
נטול מים N,N-DimethylformamideSigma– אולדריץ'227056
אתר דיאתילסיגמא– Aldrich676845
טיטניום (IV) בוטוקסיד סיגמא– אולדריץ'244112
1,4-בוטנדיול סיגמא– 493732
Thermoscientific
4,4'-Methylenebis (פניל איזוציאנט)Sigma– אולדריץ'101688
TetrahydrofuraneSigma– Aldrich401757
Sputter CoaterBal-Tec SCD 050
Inmunostaining
Phosphate buffer salt (-MgCl2, -CaCl2)Gibco10010031אחסן בטמפרטורת החדר
PBST, PBS מורכב מ-0.1% TWEEN 20   סיינטיפיק ציוד מעבדה בע"מEC607 
מתנול  Scientific Laboratory Supplies LtdCHE5010
בקר סרום אלבומיןסיגמא-אולדריץ', בריטניהA7906
MOWIOL 488 DAPICalbiochem475904מורכב מ-Tris HCl וגליצרול לפי הוראות
<חזק>תרבית תאים ובדיקה פונקציונלית
CYP3A פעילות ערכת pGLOPromegaV8902
HepatozymeGibco17705021
TryLE expressLife Technologies12604013
תנור ואקום Aldrich היצרן

References

Loading...
$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,
  1. Zhou, W., et al. SUMOylation of HNF4α regulates protein stability and hepatocyte function. J Cell Sci. 125 (15), 3630-3635 (2012).
  2. Banerjee, A., et al. The influence of hydrogel modulus on the proliferation and differentiation of encapsulated neural stem cells. Biomaterials. 30 (27), 4695-4699 (2009).
  3. Shanbhag, M. S., et al. Neural Progenitor Cells Grown on Hydrogel Surfaces Respond to the Product of the Transgene of Encapsulated Genetically Engineered Fibroblasts. Biomacromolecules. 11 (11), 2936-2943 (2010).
  4. Battista, S., et al. The effect of matrix composition of 3D constructs on embryonic stem cell differentiation. Biomaterials. 26 (31), 6194-6207 (2005).
  5. Tian, W. M., et al. Hyaluronic acid hydrogel as Nogo-66 receptor antibody delivery system for the repairing of injured rat brain: in vitro. Journal of Controlled Release. 102 (1), 13-22 (2005).
  6. Keshaw, H., Forbes, A., Day, R. M. Release of angiogenic growth factors from cells encapsulated in alginate beads with bioactive glass. Biomaterials. 26 (19), 4171-4179 (2005).
  7. Baharvand, H., Hashemi, S. M., Kazemi Ashtiani, S., Farrokhi, A. Differentiation of human embryonic stem cells into hepatocytes in 2D and 3D culture systems in vitro. The International Journal of Developmental Biology. 50 (7), 645-652 (2006).
  8. Cameron, K., Travers, P., Chander, C., Buckland, T., Campion, C., Noble, B. Directed osteogenic differentiation of human mesenchymal stem/precursor cells on silicate substituted calcium phosphate. Journal of Biomedical Materials Research Part A. 101 (1), 13-22 (2013).
  9. Pernagallo, S., Unciti-Broceta, A., Diaz-Mochon, J. J., Bradley, M. Deciphering cellular morphology and biocompatibility using polymer microarrays. Biomedical Materials. 3 (3), 034112(2008).
  10. Li, Z., Guo, X., Matsushita, S., Guan, J. Differentiation of cardiosphere-derived cells into a mature cardiac lineage using biodegradable poly(N-isopropylacrylamide) hydrogels. Biomaterials. 32 (12), 3220-3232 (2011).
  11. Tare, R. S., Khan, F., Tourniaire, G., Morgan, S. M., Bradley, M., Oreffo, R. O. C. A microarray approach to the identification of polyurethanes for the isolation of human skeletal progenitor cells and augmentation of skeletal cell growth. Biomaterials. 30 (6), 1045-1055 (2009).
  12. Khan, F., Tare, R. S., Kanczler, J. M., Oreffo, R. O. C., Bradley, M. Strategies for cell manipulation and skeletal tissue engineering using high-throughput polymer blend formulation and microarray techniques. Biomaterials. 31 (8), 2216-2228 (2010).
  13. Zhang, R., et al. A thermoresponsive and chemically defined hydrogel for long-term culture of human embryonic stem cells. Nature Communications. 4 (1335), (2013).
  14. Medine, C. N., et al. Developing high-fidelity hepatotoxicity models from pluripotent stem cells. Stem Cells Translational Medicine. 2 (7), 505-509 (2013).
  15. Hay, D. C., et al. Unbiased screening of polymer libraries to define novel substrates for functional hepatocytes with inducible drug metabolism. Stem Cell Research. 6 (2), 92-102 (2011).
  16. Lucendo-Villarin, B., Khan, F., Pernagallo, S., Bradley, M., Iredale, J. P., Hay, D. C. Maintaining hepatic stem cell gene expression on biological and synthetic substrata. BioResearch Open Access. 1 (1), 50-53 (2012).
  17. Hay, D. C., et al. Highly efficient differentiation of hESCs to functional hepatic endoderm requires ActivinA and Wnt3a signaling. Proceedings of the National Academy of Sciences. 105 (34), 12301-12306 (2008).
  18. Szkolnicka, D., Zhou, W., Lucendo-Villarin, B., Hay, D. C. Pluripotent Stem Cell–Derived Hepatocytes: Potential and Challenges in Pharmacology. Annu Rev Pharmecol Toxicol. 53, 147-149 (2013).
  19. Szkolnicka, D., et al. Accurate prediction of drug-induced liver injury using stem cell-derived populations. Stem Cells Translational Medicine. 3 (2), 141-148 (2014).
  20. Medine, C. N., Lucendo-Villarin, B., Zhou, W., West, C. C., Hay, D. C. Robust Generation of Hepatocyte-like Cells from Human Embryonic Stem Cell Populations. Journal of Visualized Experiments. (56), (2011).
  21. Freed, L. E., Vunjak-Novakovic, G. Culture of organized cell communities. Advanced Drug Delivery Reviews. 33 (1-2), 15-30 (1998).
  22. Braam, S. R., et al. Recombinant Vitronectin Is a Functionally Defined Substrate That Supports Human Embryonic Stem Cell Self-Renewal via αVβ5 Integrin. Stem Cells. 26 (9), 2257-2265 (2008).
  23. Rodin, S., et al. Clonal culturing of human embryonic stem cells on laminin-521/E-cadherin matrix in defined and xeno-free environment. Nature Communications. 5 (3195), (2014).
  24. Thaburet, J. -F. O., Mizomoto, H., Bradley, M. High-Throughput Evaluation of the Wettability of Polymer Libraries. Macromolecular Rapid Communication. 25 (1), 336-370 (2003).
  25. Lim, J. Y., Donahue, H. J. Cell Sensing and Response to Micro- and Nanostructured Surfaces Produced by Chemical and Topographic Patterning. Tissue Engineering. 13 (8), 1879-1891 (2007).
  26. Teixeira, A. I., Abrams, G. A., Bertics, P. J., Murphy, C. J., Nealey, P. F. Epithelial contact guidance on well-defined micro- and nanostructured substrates. Journal of Cell Science. 116 (10), 1881-1892 (2003).
  27. Biggs, M. J. P., Richards, R. G., Wilkinson, C. D. W., Dalby, M. J. Focal adhesion interactions with topographical structures: a novel method for immuno-SEM labelling of focal adhesions in S-phase cells. Journal of Microscopy. 231 (1), 28-37 (2008).
  28. Karuri, N. W., Porri, T. J., Albrecht, R. M., Murphy, C. J., Nealey, P. F. Nano- and microscale holes modulate cell-substrate adhesion, cytoskeletal organization, and -beta1 integrin localization in SV40 human corneal epithelial cells. IEEE Transactions on Nanobioscience. 5 (4), 273-280 (2006).
  29. Hamilton, D. W., Brunette, D. M. The effect of substratum topography on osteoblast adhesion mediated signal transduction and phosphorylation. Biomaterials. 28 (1), 1806-1819 (2007).
  30. Engler, A. J., Sen, S., Sweeney, H. L., Discher, D. E. Matrix elasticity directs stem cell lineage specification. Cell. 126 (4), 677-689 (2006).
  31. Dang, J. M., Leong, K. W. Myogenic Induction of Aligned Mesenchymal Stem Cell Sheets by Culture on Thermally Responsive Electrospun Nanofibers. Advanced Materials. 19 (19), 2775-2779 (2007).
  32. Azevedo, E. C., Nascimento, E. M., Chierice, G. O. UV and gamma irradiation effects on surface properties of polyurethane derivate from castor oil. Polímeros. 23 (3), 305-311 (2013).
  33. Rosu, L., Cascaval, C. N., Ciobanu, C., Rosu, D. Effect of UV radiation on the semi-interpenetrating polymer networks based on polyurethane and epoxy maleate of bisphenol A. Journal of Photochemistry and Photobilogy A: Chemistry. 169 (2), 177-185 (2005).
  34. Yang, X. F., Tallman, D. E., Bierwagen, G. P., Croll, S. G. Blistering and degradation of polyurethane coatings under different accelerated weathering tests. Polymer Degradation and Stability. 77 (1), 103-109 (2002).

Access restricted. Please log in or start a trial to view this content.

Reprints and Permissions

Request permission to reuse the text or figures of this JoVE article

Request Permission

Tags

Hepatocyte PhenotypeSynthetic SurfacesPolyurethane CoatingSpin CoatingSterilization ProcedureScanning Electron MicroscopyAtomic Force MicroscopyDrug Metabolism AssaysStem Cell Derived HepatocytesGamma Irradiation

Related Articles