הרשמה ל-JoVE נדרשת לצפייה בתוכן זה. התחברו או התחילו בגרסת ניסיון בחינם.

מאמר שיטה

מדידת תגובת האכלה מושרה גלוטתיון בהידרה

10.9K צפיות

DOI:

10.3791/52178

16 בנובמבר 2014

במאמר זה

סיכום

כאן אנו מתארים בדיקה פשוטה לכימות תגובת ההזנה בהידרה הנגרמת על ידי הצורה המופחתת של גלוטתיון. בדיקה זו מסתמכת על מדידת המרחק בין הקצה האפיקלי של הזרוע לפה של ההידרה.

תקציר

הידרה היא בין האורגניזמים הפרימיטיביים ביותר בעלי מערכת עצבים וכימותרפיה לזיהוי גלוטתיון מופחת (GSH) ללכידת הטרף. התנועה של אורגניזמים טרף גורמת לפריקה מכנית-חושית של התאים הצורבים הנקראים נמטוציסטים מהידרה, המוחדרים לטרף. תגובת ההזנה בהידרה, הכוללת סלסול של הזרועות כדי להביא את הטרף לכיוון הפה, פתיחת הפה וכתוצאה מכך בליעת הטרף, מופעלת על ידי GSH הקיים בנוזל המשתחרר מהטרף הפצוע. כדי להיות מסוגל לזהות את המנגנון המולקולרי של תגובת ההזנה בהידרה שאינו ידוע עד כה, יש צורך לקבוע בדיקה למדידת תגובת האכילה. כאן, אנו מתארים שיטה פשוטה לכימות תגובת ההזנה שבה נמדד המרחק בין הקצה האפיקלי של הזרוע לפה של ההידרה ונקבע היחס בין מרחק כזה לפני ואחרי הוספת GSH. היחס, הנקרא התפשטות הזרוע היחסית, נמצא כנותן מדד לתגובת האכלה. בדיקה זו אומתה באמצעות מודל רעב שבו הידרה מורעבת מראה תגובת הזנה משופרת בהשוואה להידרה המוזנת מדי יום.

מבוא

הידרה הוא האורגניזם הפרימיטיבי ביותר בעל מערכת עצבים וכימותרפיה לזיהוי גלוטתיון מופחת (GSH) ללכידת הטרף1. הוא ניזון ממגוון בעלי חיים כגון נמטודות, סרטנים, זחלי חרקים, ראשנים ודגים שזה עתה בקעו1. התנועה של אורגניזמי הטרף האלה גורמת לפריקה מכנית-חושית של הקפסולות הצורבות הנקראות נמטוציסטים מהידרה, המוחדרות לטרף2. GSH הקיים בנוזל המשתחרר מהטרף הפצוע מפעיל לאחר מכן את תגובת ההזנה בהידרה הכוללת סלסול של הזרועות כדי להביא את הטרף לכיוון הפה, פתיחת הפה וכתוצאה מכך בליעת הטרף. מולקולות מרובות, כגון דופמין3, גלוטמט4, GABA, גליצין5, קולטני NMDA6 ואלטוטרופין7, הוכחו כמעורבות בתגובת ההזנה בהידרה. כמו כן, הוכח כי התגובה הכימו-סנסורית הנגרמת על ידי GSH מווסתת על ידי מצב ההזנה של בעל החיים כך שההידרה המורעבת הפגינה תגובת הזנה משופרת1. עלייה כזו ברגישות ל-GSH רלוונטית מבחינה ביולוגית מכיוון שתחת רעב הידרה צריכה למצוא את הטרף שלה ברגישות גבוהה יותר.

למרות שניתן לראות בבירור את תגובת ההזנה הנגרמת על ידי GSH במיקרוסקופ, השיטות המשמשות בדרך כלל למדידת תצפיות תגובת ההזנה אינן כמותיות. ברוב המקרים, הזמן שבו הפה של ההידרה נשאר פתוח נלקח כמדד לתגובת ההזנה8,9; ואילו במקרה אחר, הכימות התבסס על מספר ההידרה מתוך אוכלוסייה המציגה את תגובת ההזנה10. עם זאת, התבוננות בזמן פתיחת הפה של פוליפי ההידרה היא מסורבלת ונתונה לשינויים הנגרמת על ידי פרמטרים בלתי נשלטים כגון כיוון כיוון הפה במהלך תצפיות. באופן דומה, מכיוון שתגובת ההזנה היא פרמטר כמותי, גישות מבוססות אוכלוסייה נתונות לשינויים/שגיאות הנגרמות על ידי דעה או הטיה תצפיתית של הצופה הבודד. כדי לעקוף את הבעיות הללו פיתחנו שיטה לכימות יחסי של תגובת ההזנה בהידרה (Hydra vulgaris Ind-Pune11) המבוססת על המרחק של הקצה האפיקלי של הזרוע מהפה של פוליפ ההידרה.

הגישה מוגבלת. התחברו או התחילו תקופת ניסיון כדי לצפות בתוכן זה.

פרוטוקול

1. הידרה תרבות ומדידה של תגובת ההאכלה

  1. לשמור על פוליפים מפלצת בתרבות על ידי האכלה להם מדי יום עם הארטמיה ולשמור אותם במדיום (חיץ 1 מ"מ טריס-HCl, pH 7.6, 1 מ"מ NaCl, 1 מ"מ CaCl 2, 0.1 מ"מ KCl, ו0.1 מ"מ MgSO 4) הכלולים ב קערת זכוכית על 18 מעלות צלזיוס תחת מחזורים כהים שעות אור-12 12 שעות כפי שתוארה קודם לכן 12.
  2. למדידת תגובת ההאכלה, להעביר את אחד להבשיל פוליפ מפלצת שיש 5 עד 6 זרועות ולבודדות של צלחת 24 גם. הסר את מדיום השייר מהבאר על ידי הטיית אותו, ולאחר מכן להוסיף באופן מיידי 500 μl של מדיום חדש.
  3. הכן פתרון גלוטתיון 9 מיקרומטר במדיום מפלצת. מאז פתרון גלוטתיון הוא נוטה לחמצון, תמיד להשתמש בפתרון גלוטתיון מוכן טרי עבור כל ניסוי.
  4. העבר את הצלחת לפלטפורמת ההדמיה של מיקרוסקופ שיש הפרשות להקלטת תמונה. השתמש ברקע כהה באופן שo ההתנהגותפוליפ מפלצת F ניתן הדמיה בבירור על הרקע המנוגד.
  5. החדר המשמש לצפייה והדמית ההתנהגות חופשית מפלצת מאורות בעוצמות משתנות, זרמי אוויר ורעש. הפרעות כאלה עלולות לגרום גם פוליפ המפלצת להראות התכווצות של זרועות - גם בהיעדרו של גלוטתיון.
  6. לאפשר פוליפ להירגע במשך 5 דקות.
  7. ודא שפוליפ ממוקם לאורך האזור המרכזי של הבאר, כך שההתנהגות ניתן הדמיה ברורה. אם פוליפ הוא בקצה של הבאר, להביא אותה למרכז על ידי שטיפה הבינוני באמצעות פיפטה ושוב לאפשר לו להירגע.
  8. ללכוד תמונה של מפלצת במצב רגוע. זה יהיה תצפית נקודת אפס-הזמן.
  9. להוסיף במהירות 9 מיקרומטר פתרון גלוטתיון להגיע לריכוז סופי של 3 מיקרומטר בבאר. בהתאם לצורך של הניסוי והתגובה מוצג על ידי מפלצת, לבדוק מגוון של ריכוזים שונים של גלוטתיון וChoose הריכוז המתאים הנדרש.
  10. להפעיל את הטיימר מייד לאחר הוספת פתרון גלוטתיון וללכוד תמונות אחרי כל שניות 15-30 ל4-5 דקות. אין לשנות את הגדרות ההגדלה במהלך ההדמיה הזמן לשגות.
  11. מוסיף את פתרון גלוטתיון בעדינות ובזרימה אחידה כך שעמדתו של בעל החיים ובתהיה מוטרדת מינימאלית בשדה הראייה של המיקרוסקופ. עם זאת, אם פוליפ נע בהרחבה לאחר הוספת פתרון גלוטתיון, להזיז את הצלחת בעדינות רבה כדי להביא את פוליפ בשדה הראייה ללכידת תמונה.
  12. בניסוי השליטה, להשתמש במדיום חסר גלוטתיון תוך שמירה על כל הפרמטרים האחרים זהים.
  13. הקפד לבצע את כל שלבי ניסוי מעל במחצית הראשונה של היום - לפני 13:00 להימנע ההשפעה האפשרית של קצב היממה על מידת היענות האכלה.
  14. פתח כל אחת מהתמונות שנתפסו באמצעות תכנית GNU תמונת מניפולציה (GIMP).
  15. השתמש בכלי "מדוד" זמין מתפריט> כלים> למדוד כדי לקבוע את המרחק בין קצה קודקוד של כל אחד מהזרועות וhypostome. אם פתיחת הפה הוא ציין בכל אחת מהתמונות, לקבוע את המרחק בין המרכז של הפה נפתח וסוף הפסגה של הזרוע. עיין במרחק זה כמו התפשטות הזרוע.
  16. לחשב את התפשטות הזרוע הממוצעת לכל פוליפ לפני ואחרי חשיפת גלוטתיון. לחשב את היחס של התפשטות זרוע ממוצעת בנקודת אפס זמן לזה שבכל אחד מנקודתי הזמן שלאחר מכן. יחס זה נקרא התפשטות זרוע היחסית.
  17. חזור על מדידות לפחות 20 פוליפים.

figure-protocol-1
figure-protocol-2

2. שיטת אימות באמצעותדגם רעב

  1. לרעב, להעביר כמה פוליפים הידרה לקערת זכוכית נפרדת ולא להאכיל אותם במשך 5 ימים. להאכיל את קבוצת הביקורת של כמה פוליפים יומיים עם הארטמיה בקערה בגודל דומה. לשנות את המדיום משני ניסויי קערות יומיים, כדי למנוע צמיחת פטרייה במדיום.
  2. ביום של הניסוי, להאכיל את קבוצת הביקורת של מפלצת עם הארטמיה עבור שעה 1 ולהשתמש בהידרה אלה לניסויים הבאים לאחר הסרת כל הארטמיה לא נאכלה ומת מהמדיום.
  3. למדוד את תגובת ההאכלה של המפלצת הרעבה בהשוואה למפלצת מקבוצת ביקורת בשיטה שתוארה קודם לכן בשלב 1. כדי למנוע כל הטיה בשל זמן של התבוננות, להחליף את המידות של כל אחד מרעב ולשלוט פוליפים מפלצת.

הגישה מוגבלת. התחברו או התחילו תקופת ניסיון כדי לצפות בתוכן זה.

תוצאות

גלוטתיון גורם מפלצת להציג סלסול של זרועות לכיוון הפה לצורך שוטף את הטרף. סלסול כזה של זרועות מביא קצות הפסגה של זרועות קרובה יותר לhypostome. התוצאה היא ההפחתה במרווח הזרוע, או את המרחק ליניארי בין סוף הפסגה של הזרוע וhypostome (איור 1). ההתפשטות היחסית הזרוע, או היחס של זרוע ממוצעת להתפשט לפני ואחרי הוספת גלוטתיון, בממוצע על פני פוליפים מרובים מפחיתה לאורך זמן. התפשטות הזרוע היחסית לאחר תוספת של המדיום חסר גלוטתיון, לעומת זאת, מפחיתה רק זמנית ומשיגה ערך יחידה בתו...

הגישה מוגבלת. התחברו או התחילו תקופת ניסיון כדי לצפות בתוכן זה.

דיון

התנהגות אכילה בהידרה מייצגת את אחת ממערכות chemosensory האבות ביותר בmetazoans. למרות הנוכחות של GSH בנוזל הסרטנים שוחרר לאחר לכידת טרף בסיוע nematocyst זוהתה מזמן 1, לא חלבון GSHR ולא את גן הקידוד המשוער / s מתאפיינת ממפלצת עד כה. ניסיונות מעטים שנעשו לאפיין GSH מחייב חלבונים במפלצת 8, 14, 15. עם זאת, זהותם של חלבוני הקולטן המשוערים אלה נשאר רכיבים מעורפלים ומעט מאוד אחרים מולקולריים, אשר עשוי לתרום לתגובת ההאכלה, כבר דיווחו ל תאריך 16, 17. GSHR ה...

הגישה מוגבלת. התחברו או התחילו תקופת ניסיון כדי לצפות בתוכן זה.

גילויים

המחברים מצהירים שאין אינטרסים פיננסיים מתחרים.

תודות

המחברים אסירי תודה ל-K.P. Madhu, Nita Beliappa ולצוות מרכז המדיה של המכון ההודי לחינוך ומחקר מדעי, פונה על עזרתם בהפקת הווידאו. העבודה נתמכה על ידי מימון במסגרת תוכנית מרכז המצוינות של המחלקה לביוטכנולוגיה, ממשלת הודו ל-SG ומלגת פוסט-דוקטורט על ידי המחלקה למדע וטכנולוגיה, ממשלת הודו ל-RK.

הגישה מוגבלת. התחברו או התחילו תקופת ניסיון כדי לצפות בתוכן זה.

חומרים

רשימת החומרים שנעשה בהם שימוש במאמר זה
שםחברהמספר קטלוגהערות
חממה מקוררתPanasonic מיקרוסקופ MIR-254-PE
LeicaS8AP0 
מצלמה למיקרוסקופLeica EC3
גלוטתיון מופחתSigmaG4251מאוחסן בטמפרטורה של 4 מעלות צלזיוס הביאו את הבקבוק לטמפרטורת החדר לפני הפתיחה כדי למנוע חמצון
תוכנית עריכת תמונותGIMPגרסה 2.8

מקורות

  1. Loomis, W. F. Glutathione control of the specific feeding reactions of hydra. Ann. Ny. Acad. Sci. 62, 209-228 (1955).
  2. Beckmann, A., Ozbek, S. The Nematocyst: a molecular map of the Cnidarian stinging organelle. Int. J. Dev. Biol. 56, 577-582 (2012).
  3. Venturini, G., Carolei, A. Dopaminergic receptors in Hydra. Pharmacological and biochemical observations. Comp. Biochem. Phys. C. 102, 39-43 (1992).
  4. Kass-Simon, G., Scappaticci, A. A. Glutamatergic and GABAnergic control in the tentacle effector systems of Hydra vulgaris. Hydrobiologia. 530-531, 67-71 (2004).
  5. Pierobon, P., Tino, A., Minei, R., Marino, G. Different roles of GABA and glycine in the modulation of chemosensory responses in Hydra vulgaris (Cnidaria, Hydrozoa). Hydrobiology. 178, 59-66 (2004).
  6. Pierobon, P., Sogliano, C., Minei, R., Tino, A., Porcu, P., Marino, G., Tortiglione, C., Concas, A. Putative NMDA receptors in Hydra: a biochemical and functional study. Eur. J. Neurosci. 20, 2598-2604 (2004).
  7. Alzugaray, M. E., Adami, M. L., Diambra, L. A., Hernandez-Martinez, S., Damborenea, C., Noriega, F. G., Ronderos, J. R. Allatotropin: An ancestral myotropic neuropeptide involved in feeding. PLoS ONE. 8, (2013).
  8. Bellis, S. L., Laux, D. C., Rhoads, D. E. Affinity purification of Hydra glutathione binding proteins. FEBS Lett. 354, 320-324 (1994).
  9. Lenhoff, H. M. The discovery of the GSH receptor in Hydra and its evolutionary significance. Glutathione in the Nervous System. Shaw, C. A. , Taylor&Francis. Bristol. 25-43 (1998).
  10. Venturini, G. The hydra GSH receptor. Pharmacological and radioligand binding studies. Comp. Biochem. Phys. C. 87, 321-324 (1987).
  11. Reddy, P. C., Barve, A., Ghaskadbi, S. Description and phylogenetic characterization of common hydra from India. Curr. Sci. 101, 736-738 (2011).
  12. Horibata, Y., et al. Unique catabolic pathway of glycosphingolipids in a hydrozoan, Hydra magnipapillata. Involving endoglycoceramidase. J. Biol. Chem. 279, 33379-33389 (2004).
  13. Koizumi, O., Maeda, N. Rise of feeding threshold in satiated Hydra. J. Comp. Physiol. 142, 75-80 (1981).
  14. Bellis, S. L., Kass-Simon, G., Rhoads, D. E. Partial characterization and detergent solubilization of the putative glutathione chemoreceptor from hydra. Biochemistry. 31, 9838-9843 (1992).
  15. Morita, H., Hanai, K. Taste receptor proteins in invertebrates - with special reference to glutathione receptor of hydra. Chem. Senses. 12, 245-250 (1987).
  16. Colasanti, M., Venturini, G., Merante, A., Musci, G., Lauro, G. M. Nitric oxide involvement in Hydra vulgaris very primitive olfactory- like system. Journal of Neurosci. 17, 493-499 (1997).
  17. Kuhn, A., Tsiairis, C. D., Williamson, M., Kalbacher, H., Grimmelikhuijzen, C. J., Holstein, T. W., Gründer, S. Three homologous subunits form a high affinity peptide-gated ion channel in Hydra. J. Biol. Chem. 285, 11958-11965 (2010).
  18. Wang, M., Yao, Y., Kuang, D., Hampson, D. R. Activation of family C G-protein-coupled receptors by the tripeptide glutathione. J. Biol. Chem. 281, 8864-8870 (2006).
  19. Ruggieri, R. D., Pierobon, P., Kass-Simon, G. Pacemaker activity in hydra is modulated by glycine receptor ligands. Comp. Biochem. Phys. C. 138, 193-202 (2004).
  20. Ramazani, R. B., Krishnan, H. R., Bergeson, S. E., Atkinson, N. S. Computer automated movement detection for the analysis of behavior. J. Neurosci. Meth. 162, 171-179 (2007).

הגישה מוגבלת. התחברו או התחילו תקופת ניסיון כדי לצפות בתוכן זה.

הדפסות חוזרות והרשאות

תגיות