מאמר שיטה

טכניקת טיהור חלבון המאפשרת איתור של Sumoylation וUbiquitination של שמרים להנץ החלבונים קינטוכור Ndc10 וNdc80

DOI:

10.3791/52482

⸱

3 במאי 2015

 ,  , 
1Genetics Branch, Center for Cancer Research, National Cancer Institute, National Institute of Health

במאמר זה

סיכום

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

כתב יד זה מתאר את הגילוי של sumoylation וubiquitination של חלבוני קינטוכור, Ndc10 וNdc80, בcerevisiae Saccharomyces שמרי ניצנים.

תקציר

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

לאחר translational שינויים (PTMs), כגון זרחון, מתילציה, acetylation, ubiquitination, וsumoylation, להסדיר את תפקידם של חלבונים רבים. PTMs של חלבוני קינטוכור שמקשרים עם DNA centromeric לתווך הפרדת כרומוזום נאמן לשמור על יציבות הגנום. גישות ביוכימיות כגון ספקטרומטר מסה וניתוח כתם המערבי הנפוצות ביותר לזיהוי PTMs. הנה, שיטת טיהור חלבון מתוארת המאפשרת זיהוי של שני sumoylation וubiquitination של חלבוני קינטוכור, Ndc10 וNdc80, בSaccharomyces cerevisiae. מתח שמבטא Smt3 מתויג polyhistidine-הדגל (HF-Smt3) וmyc-מתויג Ndc10 או Ndc80 נבנה ומשמש למחקרים שלנו. לגילוי של sumoylation, אנחנו המצאנו פרוטוקול לזיקה לטהר מתויגים חלבוני sumoylated באמצעות חרוזים ניקל ושימוש בניתוח כתם מערבי עם אנטי-Myc נוגדנים לזהות Ndc10 sumoylatedND Ndc80. לגילוי של ubiquitination, אנחנו המצאנו פרוטוקול לimmunoprecipitation של חלבוני myc-מתויגים ושימוש בניתוח כתם מערבי עם נוגדן אנטי-UB להראות שNdc10 וNdc80 הם ubiquitinated. התוצאות שלנו מראות כי epitope מתויג חלבון עניין בו-הדגל מתויג מתח Smt3 מאפשר זיהוי של PTMs מרובה. מחקרים עתידיים צריכים לאפשר ניצול של טכניקה זו כדי לזהות ולאפיין אינטראקציות חלבון שתלויות בPTM ספציפי.

מבוא

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Ubiquitination וsumoylation לאפשר נטיה של היוביקוויטין ומשתנה כמו-יוביקוויטין הקטן (SUMO; Smt3 בcerevisiae ס 1) לחלבון מטרה, בהתאמה. PTMs של חלבוני קינטוכור להשפיע על הרמות הסלולריות שלהם ואינטראקציות בין חלבונים במהלך שלבי מחזור התא שונים על מנת להבטיח הפרדת כרומוזומים נאמן. לדוגמא, רמות סלולריות של Cse4 / CENP-וחלבון קינטוכור החיצוני Dsn1 מוסדרות על ידי proteolysis בתיווך היוביקוויטין להבטחת יציבות הגנום 2-5. יציבות של קבצים מצורפים קינטוכור-microtubule שגויים דורשת B קינאז Ipl1 / אורורה, שphosphorylates מתחמי Dam1 וNdc80 ישירות אינטראקציה עם microtubules 6-8. למרות זיהוי של למעלה משבעים חלבוני קינטוכור, יש מעט מאוד מחקרים שיבדקו את השינויים של חלבונים אלה עם PTMs, למשל, יוביקוויטין וסומו. מגבלה עיקרית היא היכולת לשמור על PTMים במהלך טיהור והמיעוט של נוגדנים מותאמים אישית עבור זיהוי של PTMs כגון sumoylation, זרחון, מתילציה, ואחרים. אפיון של חלבוני קינטוכור sumoylated Ndc10, Cep3, Bir1, וNdc80 מנוצל נוגדן מותאם אישית 9. בנוסף, Ndc10 היה מעורב כמצע לubiquitination 10. האדם Hec1 (Ndc80 בcerevisiae ס) הוא גם מצע עבור ubiquitination, מוסדר על ידי האנזים APC / C-hCdh1 E3 11. לכן, Ndc10 וNdc80 הם מועמדים טובים לאופטימיזציה של הפרוטוקול לזהות שני sumoylation וubiquitination בס cerevisiae.

כדי להקל על זיהוי של sumoylation, בנינו זנים המבטאים HF-Smt3 וNdc10 מתויג Myc או Ndc80. השימוש בתגי epitope (HF: His6-הדגל) ממזער את הרקע בשל תגובה צולבת הנצפה לעתים קרובות בסרום polyclonal הועלה נגד חלבון מועמד. אנחנו המצאנו פרוטוקול לזיקהלטהר conjugates HF-Smt3 ולאחר מכן השתמש באנטי-דגל מסחרי ואנטי-Myc נוגדנים כדי לזהות הנוכחות של Ndc10 sumolyated וNdc80 בהכנת Smt3 מטוהרת. לubiquitination, אנחנו המצאנו פרוטוקול immunoprecipitation שונה המשמר ubiquitination של חלבוני קינטוכור myc-מתויגים וביצעו ניתוח כתם מערבי עם נוגדן אנטי-UB מסחרי כדי לזהות ubiquitination של Ndc10 וNdc80.

הגישה מוגבלת. התחברו או התחילו תקופת ניסיון כדי לצפות בתוכן זה.

פרוטוקול

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

1. צמיחה של תאי שמרים

  1. לחסן שמרי תאים ב 30 מיליליטר של YPD (טבלה 1) בבקבוק קטן. לדגור על 30 מעלות צלזיוס הלילה עם רועד.
  2. לדלל את התאים לצפיפות אופטית של 0.2 ב 600 ננומטר (OD 600 = 0.2) ב -50 מיליליטר של YPD לדגור על 30 מעלות צלזיוס עם רעד.
  3. לגדול התרבות לצפיפות אופטית של 1.0 ב 600 ננומטר (OD 600 = 1.0).
  4. תאי צנטריפוגות במשך 5 דקות XG ב 2000 וזורקים supernatant.
  5. Resuspend התא גלולה במים סטריליים 40 מיליליטר ו צנטריפוגות במשך 5 דקות XG ב 2000 לשטוף את התאים. בטל supernatant ולאחסן את התא גלולה ב -20 ° C.

2. הפקה של חלבונים

  1. תאי Resuspend ב 0.5 מיליליטר של חיץ guanidine קר כקרח (טבלה 1) עבור assay הנפתח באמצעות חרוזים superflow Ni-נת"ע או חיץ (טבלה 1) לimmunoprecipitation. שמור צינורות על קרח בכל העת.
  2. העבר את 2 מ 'צינור כובע בורג l.
  3. להוסיף את אותו הנפח של חרוזי זכוכית (טבלה של חומרים).
  4. חרוזים לנצח את התאים במקצף חרוז מיני (טבלה של חומרים) למשך 2 דקות בטמפרטורת חדר, ואז מניח על קרח במשך 2-3 דקות. חזור על זה שלוש פעמים.
  5. מערבולת במהירות גבוהה ב 4 מעלות צלזיוס במשך 30-60 דקות. בדקו את התאים על ידי הדמיה תחת מיקרוסקופ כדי להבטיח שתאי lysed.
    הערה: תאי lysed יופיעו רוחות כהות וחסרות גבול או צורה מוגדרת. בצורה אופטימלית לפחות 80% מהתאים יש lysed.
  6. לנקב חור בחלק התחתון של הצינור באמצעות סיכת דחיפה ומקום באוסף צינור חרוטי 15 מיליליטר (כובע בורג צריך להיות משוחרר).
  7. צנטריפוגה XG ב 1000 דקות 1 כדי לאסוף את lysate.
  8. העבר את lysate לצינור צנטריפוגות מיקרו.
  9. צנטריפוגה ב 15,000 XG במשך 30 דקות ב 4 ° C כדי לאסוף את החלבונים שחולצו.
  10. למדוד את הריכוז של החלבונים המופקים באמצעות אסא החלבוןערכת y (טבלה של חומרים) ולנרמל את כל התמציות להכיל את אותה הכמות של חלבון. תביא את הנפח הכולל למ"ל 1 עם חיץ מתאים.
    הערה: בסביבות 5 מ"ג של חלבון כולל מתקבל 50 OD 600 תאים.
  11. לחסוך 50 μl (חלבון מיקרוגרם 250 אם החלבון הכולל שחולץ מהצעד 2.10 הוא 5 מ"ג) כתמצית כל תא (WCE). הוסף 50 μl של חיץ 2x Laemmli מדגם (טבלת 1) ולדגור על 100 מעלות צלזיוס בגוש חום במשך 3-5 דקות. עומס 10 μl של כל דגימה בג'ל SDS-עמוד לניתוח מערבי כתם (סעיף 5: ניתוח כתם מערבי).

3. טיהור של HF-Smt3 conjugates

  1. השג את חרוזים Ni-נת"ע superflow (הטבלה של חומרים) נחוצים לניסויים על ידי צנטריפוגה הנמוכה מהירות (800-1,500 XG) דקות 1 (של חרוזים לדגימה 100 μl). הסר את supernatant.
  2. לשטוף חרוזים 5x עם 1 מיליליטר של PBS (טבלה של חומרים): היפוך העליון יתרתחתון עד חרוזים הם resuspended, לאסוף החרוזים על ידי צנטריפוגה במהירות הנמוכה, ולהסיר את supernatant.
  3. להשעות חרוזים ב 1 מיליליטר של חיץ guanidine (טבלה 1) וaliquot אותם למספר הצינורות המתאימים לדגימות להיות מעובד. לאסוף החרוזים על ידי צנטריפוגה במהירות הנמוכה, ולהסיר את supernatant. מערבבים את חרוזים גם על ידי היפוך העליון על חלק תחתון.
    הערה: מערבבים חרוזים גם על ידי היפוך תחתון העליון מעל.
  4. עבור כל דגימה, להוסיף 950 μl של WCE הנותר (משלב 2.11: הפקה של חלבונים) לחרוזי superflow Ni-נת"ע 100 μl.
  5. דגירה על פלטפורמת נדנדה ב 4 מעלות צלזיוס במשך לפחות 4 שעות או למשך הלילה.
  6. צנטריפוגה ב XG 800-1,500 דקות 1 ב 4 מעלות צלזיוס.
  7. לחסוך 50 μl כsupernatant (SUP). הוסף 50 μl של חיץ מדגם Laemmli 2x ולדגור על 100 מעלות צלזיוס בגוש חום במשך 3-5 דקות. עומס 10 μl של כל דגימה בג'ל SDS-עמוד לניתוח מערבי כתם (סעיף 5: אנאלי כתם מערבייסיס).
  8. לשטוף חרוזים פעם עם 1 מיליליטר של חיץ guanidine למשך 5-10 דקות על פלטפורמת נדנדה.
  9. לשטוף חרוזים 5x עם 1 מיליליטר של שבירת חיץ (טבלת 1) למשך 5-10 דקות על פלטפורמת נדנדה.
  10. חרוזים Resuspend ב 90 μl של חיץ מדגם Laemmli 2x.
  11. הוסף 10 μl של imidazole 1 M.
    הערה: Imidazole מסייע לנתק את החלבון שלו מתויג מחרוזי Ni-נת"ע בשל אינטראקציה מתחרה בין imidazole והחרוזים.
  12. לדגור על 100 מעלות צלזיוס בגוש חום במשך 3-5 דקות.
  13. וורטקס, אז צנטריפוגות ב13,000 XG במשך 30 שניות. מעבירים את supernatant לצינור טרי.
  14. μl 10-20 העומס של כל דגימה בג'ל SDS-עמוד לניתוח מערבי כתם (סעיף 5: ניתוח כתם מערבי).
    הערה: 10-20 μl מתאים ל0.5-1.0 מ"ג הקלט, אם 5 מ"ג של WCE משמש.

4. Immunoprecipitation של חלבונים קינטוכור מתויג Myc

  1. להשיג ג'ל אנטי-ג-Myc זיקת agarosetibody (טבלה של חומרים) נחוץ לניסויים (25 μl של שרף לדגימה) על ידי צנטריפוגה הנמוכה מהירות (800-1,500 XG). הסר את supernatant.
  2. 5x השרף לשטוף עם 1 מיליליטר של חיץ: על-תחתון העליונה היפוך עד השרף resuspended, לאסוף שרף על ידי צנטריפוגה במהירות הנמוכה, ולהסיר את supernatant.
  3. להשעות שרף ב 1 מיליליטר של החיץ וaliquot אותם למספר הצינורות המתאימים לדגימות להיות מעובד. לאסוף שרף על ידי צנטריפוגה במהירות הנמוכה, ולהסיר את supernatant.
    הערה: מערבבים את השרף גם על ידי היפוך על-תחתון-עליונה.
  4. להוסיף 950 μl של WCE הנותר (משלב 2.11: הפקה של חלבונים) עד 25 μl של שרף.
  5. דגירה על פלטפורמת נדנדה ב 4 ° C למשך הלילה.
  6. צנטריפוגה ב XG 800-1,500 דקות 1 ב 4 מעלות צלזיוס.
  7. לחסוך 50 μl כsupernatant (SUP). הוסף 50 μl של חיץ מדגם Laemmli 2x ולדגור על 100 מעלות צלזיוס בגוש חום במשך 3-5 דקות. Loמודעה 10 μl של כל דגימה בג'ל SDS-עמוד לניתוח מערבי כתם (סעיף 5: ניתוח כתם מערבי).
  8. 5x השרף לשטוף עם 1 מיליליטר של חיץ: על-תחתון העליונה היפוך עד השרף resuspended, לאסוף שרף על ידי צנטריפוגה במהירות הנמוכה, ולהסיר את supernatant.
  9. Resuspend השרף במדגם של חיץ SUMEB (טבלת 1) 100 μl.
    הערה: מאגר מדגם SUMEB מכיל 8 M אוריאה ו -1% SDS (מצב denaturing חזק).
  10. לדגור על 100 מעלות צלזיוס בגוש חום במשך 3-5 דקות.
  11. וורטקס, אז צנטריפוגות ב13,000 XG במשך 30 שניות. מעבירים את supernatant לצינור טרי.
  12. μl 10-20 העומס של כל דגימה בג'ל SDS-עמוד לניתוח מערבי כתם (סעיף 5: ניתוח כתם מערבי).
    הערה: 10-20 μl מתאים ל0.5-1.0 מ"ג הקלט, אם 5 מ"ג של WCE משמש.

5. ניתוח כתם המערבי

  1. טען את תמציות חלבון על 4-12% Bis-טריס ג'לי (טבלה של חומרים) וPerfאלקטרופורזה ORM ב 120 V 90 דקות (ריצת חיץ: טבלה של חומרים).
  2. העבר את החלבונים מג'ל לקרום nitrocellulose (טבלה של חומרים) באמצעות מנגנון העברה ליום 30 בV עבור 90 דק '(העברת חיץ: טבלה של חומרים).
  3. לחסום את הקרום ב5% חלב / 1x TBST (טבלת 1) במשך שעה 1 בטמפרטורת חדר.
  4. דגירה הממברנה עם נוגדן ראשוני (טבלה של חומרים) 5% חלב / C הלילה ב 4 ° 1x TBST. לנוגדנים עיקריים, השתמש דילול של 1: 1,000 (נוגדנים נגד דגל ואנטי-UB) או 1: 5,000 (נוגדן אנטי-Myc).
  5. לשטוף 3x קרום במשך 10 דקות כל אחד עם 1x TBST.
  6. דגירה קרום עם נוגדנים משני (טבלה של חומרים) 5% חלב / 1x TBST עבור שעה 1 בטמפרטורת חדר. השתמש דילול 1: 5000 של נוגדנים משני.
  7. לשטוף 3x קרום במשך 10 דקות כל אחד עם 1x TBST.
  8. דגירה קרום עם worki ECLפתרון ng (טבלה של חומרים) במשך 5 דקות.
  9. לחשוף את הקרום לסרט X-Ray הכחול רגיש (טבלה של חומרים) ולפתח באמצעות מפתח אוטומטי (טבלה של חומרים).

הגישה מוגבלת. התחברו או התחילו תקופת ניסיון כדי לצפות בתוכן זה.

תוצאות

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

כדי לזהות sumoylation של חלבוני קינטוכור Ndc80 וNdc10, זנים עם HF-Smt3 וחלבונים מתוייגים Myc קינטוכור (Ndc80 או Ndc10) נבנו (טבלה 2), כפי שתוארו בעבר 9,12. conjugates HF-Smt3 היו מטוהר זיקה באמצעות חרוזים Ni-נת"ע. ניתוח מערבי כתם של מטוהר HF-Smt3 עם גילוי אפשר נוגדן אנטי הדגל של צורות sumoylated של מצעי SUMO שנעדרו במתח השליטה ללא HF-Smt3 (איור 1 א ו -1 B, פנל משמאל). כצפוי, צורות רבות של מצעי SUMO אותרו במתח HF-Smt3. א...

הגישה מוגבלת. התחברו או התחילו תקופת ניסיון כדי לצפות בתוכן זה.

דיון

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

תגי epitope כגון HA, Myc, דגל, וGST נמצאים בשימוש נרחב לאנליזה ביוכימית של חלבונים. בנייה של זנים עם HF-Smt3 וחלבוני קינטוכור מתויג Myc, כגון Ndc10 וNdc80, מאפשרת זיהוי של PTMs כגון sumoylation וubiquitination. HF-Smt3 ניתץ assay מאפשר זיהוי של חלבוני קינטוכור sumoylated, Ndc10 וNdc80 (איור 1). פרוטוקול טיהור הזיקה וניתוח כתם המערבי באמצעות נוגדן אנטי הדגל להקים את הספציפיות של אינטראקציה בין HF-Smt3 וחלבוני יעד, כמו חלבונים שונה שלא זוהו בזן השליטה ללא HF-Smt3. ה...

הגישה מוגבלת. התחברו או התחילו תקופת ניסיון כדי לצפות בתוכן זה.

גילויים

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

למחברים אין מה לחשוף.

תודות

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

אנו מודים לד"ר אוליבר קרשר על התמיכה והייעוץ ולחברי מעבדת בסראי על תמיכתם והערותיהם על המאמר. עבודה זו נתמכה על ידי תוכנית המחקר הפנימי של המכונים הלאומיים לבריאות.

הגישה מוגבלת. התחברו או התחילו תקופת ניסיון כדי לצפות בתוכן זה.

חומרים

רשימת החומרים שנעשה בהם שימוש במאמר זה
שםחברהמספר קטלוגהערות
חרוזי זכוכיתBioSpec מוצרים11079105קוטר 0.5 מ"מ
מיני מקצף חרוזיםBioSpec Products#6938 תאים משבש
Ni-NTA superflowQiagen30430100 מ"ל
קוקטייל מעכב פרוטאזSigma-AldrichP82151 מ"ל
Anti-c-Myc agarose affinity gel antbody המיוצר בארנבSigma-AldrichA74701 מ"ל
נוגדן חד-שבטי נגד דגל M2 המיוצר בעכברSigma-AldrichF1804נוגדן ראשוני, דילול 1:1,000
נוגדן c-Myc (A-14)Santa Cruz Biotechnologysc-789נוגדן ראשוני, דילול 1:5,000
נוגדן עכבר מטוהר חד שבטי 9E10CovanceMMS-150Pנוגדן ראשוני, דילול 1:5,000
יוביקוויטין (P4G7) נוגדן חד-שבטיCovanceMMS-258Rנוגדן ראשוני, דילול 1:1,000
ECL Rabbit IgG, נוגדן משני שלם AbGE Healthcare Life SciencesNA934V, דילול 1:5,000
ECL Mouse IgG, Whole AbGE Healthcare Life SciencesNA931Vנוגדן משני, דילול 1:5,000
בדיקת חלבון DCBio-Rad500-0116
ממברנת ניטרוצלולוזהNovexLC20010.45 מ"מ גודל נקבוביות
NuPAGE 4-12% ג'ל חלבון ביס-טריסNovexNP0321BOX1.0 מ"מ, 10 באר
NuPAGE MES SDS מאגר ריצהNovexNP000220x
NuPAGE העברת מאגר NovexNP0006-120x
SuperSignal West Pico Chemiluminescent SubstrateThermo Scientific34078
10x PBS pH7.4GIBCO70011-044
סרט רנטגן רגיש כחולDbioDBOF30003
מפתח אוטומטיKodakM35AX-OMAT
NocodazoleSigma-AldrichM140450 מ"ג
MG-132Selleck ChemicalsS261925 מ"ג
מקושר HRP

מקורות

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,
  1. Johnson, P. R., Hochstrasser, M. SUMO-1: Ubiquitin gains weight. Trends Cell Biol. 7, 408-413 (1997).
  2. Hewawasam, G., et al. Psh1 is an E3 ubiquitin ligase that targets the centromeric histone variant Cse4. Mol Cell. 40, 444-454 (2010).
  3. Ranjitkar, P., et al. An E3 ubiquitin ligase prevents ectopic localization of the centromeric histone H3 variant via the centromere targeting domain. Mol Cell. 40, 455-464 (2010).
  4. Au, W. C., et al. A novel role of the N terminus of budding yeast histone H3 variant Cse4 in ubiquitin-mediated proteolysis. Genetics. 194, 513-518 (2013).
  5. Akiyoshi, B., et al. The Mub1/Ubr2 ubiquitin ligase complex regulates the conserved Dsn1 kinetochore protein. PLoS Genet. 9, e1003216(2013).
  6. Biggins, S., et al. The conserved protein kinase Ipl1 regulates microtubule binding to kinetochores in budding yeast. Genes Dev. 13, 532-544 (1999).
  7. Cheeseman, I. M., et al. Phospho-regulation of kinetochore-microtubule attachments by the Aurora kinase Ipl1p. Cell. 111, 163-172 (2002).
  8. Liu, D., Lampson, M. A. Regulation of kinetochore-microtubule attachments by Aurora B kinase. Biochem Soc Trans. 37, 976-980 (2009).
  9. Montpetit, B., Hazbun, T. R., Fields, S., Hieter, P. Sumoylation of the budding yeast kinetochore protein Ndc10 is required for Ndc10 spindle localization and regulation of anaphase spindle elongation. J Cell Biol. 174, 653-663 (2006).
  10. Furth, N., et al. Exposure of bipartite hydrophobic signal triggers nuclear quality control of Ndc10 at the endoplasmic reticulum/nuclear envelope. Mol Biol Cell. 22, 4726-4739 (2011).
  11. Li, L., et al. Anaphase-promoting complex/cyclosome controls HEC1 stability. Cell Prolif. 44, 1-9 (2011).
  12. Takahashi, Y., Yong-Gonzalez, V., Kikuchi, Y., Strunnikov, A. SIZ1/SIZ2 control of chromosome transmission fidelity is mediated by the sumoylation of topoisomerase II. Genetics. 172, 783-794 (2006).
  13. Liu, C., Apodaca, J., Davis, L. E., Rao, H. Proteasome inhibition in wild-type yeast Saccharomyces cerevisiae cells. Biotechniques. 42, 158(2007).
  14. Kitamura, E., Tanaka, K., Kitamura, Y., Tanaka, T. U. Kinetochore microtubule interaction during S phase in Saccharomyces cerevisiae. Genes Dev. 21, 3319-3330 (2007).
  15. Gascoigne, K. E., Cheeseman, I. M. Kinetochore assembly: if you build it, they will come. Curr Opin Cell Biol. 23, 102-108 (2011).

הגישה מוגבלת. התחברו או התחילו תקופת ניסיון כדי לצפות בתוכן זה.

הדפסות חוזרות והרשאות

בקש הרשאה לשימוש חוזר בטקסט או באיורים של מאמר JoVE זה

בקש הרשאה

תגיות

Ndc10 Ndc80Western BlotSaccharomyces cerevisiae

מאמרים קשורים