מאמר שיטה

הפרדת immunomagnetic של שומן דיפו ספציפי Sca1

DOI:

10.3791/53890

11 באוגוסט 2016

במאמר זה

סיכום

Loading...
$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

אנו מציגים את הטכניקות הנדרשות לבידוד מקטע כלי הדם הסטרומלי (SVF) ממאגרי רקמות שומן מפשעתיים (תת עוריים) ופריגונדלים (קרביים) של עכברים כדי להעריך את ביטוי הגנים והפעילות הקולגנוליטית שלהם. שיטה זו כוללת העשרה של תאי גזעשמקורם בשומן גבוה Sca1 (ASCs) באמצעות הפרדת תאים אימונומגנטיים.

תקציר

Loading...
$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

בידוד תאי גזע שמקורם בשומן (ASCs) הוא שיטה חשובה בתחום הביולוגיה של רקמת השומן, אדיפוגנזה ושיפוץ מטריצה חוץ-תאית (ECM). in vivo, סביבה עשירה ב-ECM המורכבת מקולגנים פיברילריים מספקת תמיכה מבנית לרקמות השומן במהלך התקדמות ורגרסיה של השמנת יתר. שיפוץ ECM פיזיולוגי בתיווך מטריצות מטאלופרוטאינאזות (MMPs) ממלא תפקיד מרכזי בוויסות גודל ותפקוד רקמת השומן1,2. אובדן שיפוץ ECM קולגנוליטי פיזיולוגי עלול להוביל להצטברות מוגזמת של קולגן (פיברוזיס רקמות), חדירת מקרופאגים, ובסופו של דבר, אובדן הומאוסטזיס מטבולי כולל עמידות לאינסולין3,4. כאשר נצפה שינוי פנוטיפי של רקמת השומן במודלים של עכברים ממוקדי גנים, בידוד ASCs ראשוניים ממאגרי שומן למחקרי מבחנה הוא גישה יעילה להגדרת תפקידו של הגן הספציפי בוויסות תפקודם של ASCs. בהמשך, אנו מגדירים הפרדה אימונומגנטית של ASCsגבוהים Sca1.

מבוא

Loading...
$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

תאי גזע אנטיגן 1 (Sca1, או Ly6A / E) זוהה לראשונה כסמן פני התא הביע על ידי תאים hematopoietic ו גזע mesenchymal 5,6. השבר וסקולרית סטרומה (SVF) של רקמת שומן המתקבלת מאגרי שומן עכבר הוא אוכלוסייה הטרוגנית של תאים הכוללים פיברובלסטים, מקרופאגים, תאי אנדותל של כלי דם, תאים עצביים, ועל ובתאים adipocyte 7. ובתאי adipocyte, או תאי גזע שמקורם שומן (ASCs) הם תאים שאינם שומנים-לאדן כי מתגוררים מטריקס perivascular עשיר קולגן (ECM) 8. כ -50% של SVF מורכב ASCs, המאופיינים שלילי השושלת (לין -) ו CD29 +: CD34 +: Sca1 + 9. רוב של תאים אלה הם Sca1 +: CD24 - אבות adipocyte, המסוגלים בידול adipocyte במבחנה; עם זאת, רק חלק קטן של תאים (0.08% של SVF) מהווה Sca1 +: CD24 + תאים המסוגלים מלא של מתרבים ומבדל לתוך adipocytes בתנאים vivo ב 9. למרות הסייגים הפוטנציאל של שימוש Sca1 + SVF ללא אפלית CD24 + תאי CD24 - תאים, לבודד Sca1 + ASCs מן מחסני שומן באמצעות פרדת תא immunomagnetic היא גישה יעילה ומעשית כדי לקבוע את הפנוטיפ-אוטונומי תא של ובתאים adipocyte העיקרי.

בתחום השמנת יתר וסוכרת, סיסטיק לרקמות ודלקת לשחק תפקיד קריטי בפיתוח ותחזוקה של סוכרת מסוג 2 3. לאחרונה, Tokunaga et al. הראה כי תאי גבוה Sca1 המבודד מפשעתי (או תת עורית, SQ) ו perigonadal (או קרבי, VIS) מאגרי שומן C57BL6 / J להפגין חתימות גנטיות שונות שיפוץ ECM במבחנה 10. MMP14 (MT1-MMP), חבר אבטיפוס של-t הממברנהמטלו מטריקס ype (MMP) המשפחה מתווכת בפיתוח שומן לבן (WAT) דרך פעילותה collagenolytic 1.

דוגמאות של ניסויים שעלולים להתנהל עם התאים מבודדים והעשירו באמצעות הפרוטוקול הבא כוללות תרבות תלת ממדים, מחקרי בידול, מבחני שפלת קולגן, ו- RNA רצף 10,11. מבחני שפלה צריכים להתנהל עם קולגן חומצת חילוץ כדי להבטיח את השימור של telopeptide 11,12. הפרוטוקול הבא יהיה להדגים את השיטות לבודדות תאי סטרומה וסקולרית ראשית ממנהל מאגרי שומן שונים ולהעשיר ובתאי adipocyte באמצעות פרדת תא immunomagnetic. תוקפו של מיון התא יוערכו עם זרימת cytometry ובאמצעות באמצעות עכברים Sca1-GFP המבטאים GFP ב Sca1 + תאים, מונע על ידי האמרגן Sca1 13.

הגישה מוגבלת. התחברו או התחילו תקופת ניסיון כדי לצפות בתוכן זה.

פרוטוקול

Loading...
$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

משפט ואתיקה: אוניברסיטת מישיגן ועדת על השימוש והטיפול של בעלי חיים (UCUCA) ואישר את כל שיטות ופרוטוקולים בהתאם מדריך לטיפול ושימוש בחיות מעבדה (המכון מעבדה בבעלי חיים למחקר, המועצה הלאומית למחקר). עכברים נשמרות ביבר אוניברסיטת מישיגן מקבלים גישה חופשית למזון ומים ושמר על מחזור 12 שעות חושך / אור.

1. הכנות

  1. כן תקשורת התרבות העיקרית עם DMEM, 10% FBS, 1x P / S / G ו- 1x אנטיביוטיקה / antifungals. זה ישמש כדי לשמור רקמות לעיכול לפני. מניח מניות aliquot באמבט מים 37 ºC.
  2. כן חמישה מיליליטר של תמיסת collagenase Type III ב 5 מג / מיליליטר מומס HBSS (+ Ca, Mg +) עבור כל סוג של כרית שומן מבודדת, עד חמישה עכברים. לדוגמה, כאשר לבודד SQ ו VIS מ גנוטיפ יחיד, לעשות 10 מ"ל, אם סוג-בר SQ מוטנטים VIS, לעשות 20 מ"ל. התאם ל- pH 7.4 ו STEלהרגיז מסנן. Aliquot לתוך צינורות 50 מ"ל. מניחים בצד הרחק מאור.
  3. השתמש 70% אתנול לחיטוי בתחום כירורגית. נגב ולכסות עם כרית כחולה. לרסס קצת אתנול על כרית כחולה.
  4. השתמש 22 מחטי G כדי להצמיד כרית ספיגה ללוח הקלקר לקצץ במספריים. תרסיס כרית עם אתנול ולאחר מכן להגדיר את הלוח על כרית כחולה ומכסים כרית כחולה אחרת עד תחילת לנתיחה.
  5. מלאו שני צינורות 50 מ"ל עם אתנול ומניחים עמדה סמוך בתחום כירורגית. מניח את מספרי מלקחיים של אתנול.
  6. מלאו אחר צינור 50 מ"ל עם PBS בתוספת 1x אנטי-אנטי לשטיפה אתנול מחוץ כלים כירורגיים.
  7. ב למכסה המנוע, מנות התווית 60 מ"מ לכל סוג רקמה ולמלא עם התקשורת והתרבות חימם עד 37 ºC. מניח את הצלחות סמוכות לאזור כירורגית.

בידוד 2. של תת עורי (SQ) רפידות שומן

  1. להרדים עכבר עם ממנת יתר של isoflurane ו pneumothorax.
  2. בעדינותלרסס עכבר עם 70% אתנול ושכב פרקדן. הצמד את הכפות אל קאפה עם 22 מחטים G.
  3. ביצוע חתך קטן בעור של הבטן התחתונה. החזקת החלק העליון של החתך עם מלקחיים, לקחת את המספריים ולהפריד את העור מפני הצפק.
  4. לאחר העור מופרד הצפק מן הבטן אל החזה, לשקף את העור הרחק הצפק לכיוון הראש על ידי ביצוע חתכים לרוחב בעור לאורך צדי הגוף.
  5. לשקף את העור שנותר מחזיק את השומן מפשעתי מהגוף להצמיד ללוח עם 22 מחטים G.
  6. Switch to מספרי מלקחיים בסדר. תפוס את כרית השומן מפשעתי עם מלקחיים בראשית הצירים ליד הצפק לגזוז בין עור ושומן מפשעתי התקדמות לקראת במפשעה הימנעות זיהום SQ עם העור.
  7. מניחים את כרית השומן מפשעתי insolated בצלחת שכותרתו 60 מ"מ.

3. בידוד של הקרביים (VIS) רפידות שומן

  1. באופן דומה לשלב 2.5, לחתוך הצפק פתוח לחשוף את רפידות ובמעיים שומן הקרביים.
  2. הזז את הבטן משם לכיוון בית החזה.
  3. תפוס את כרית השומן VIS בקצה הדיסטלי ולמשוך בעדינות. לנתח את כרית שומן VIS תוך הקפדה שלא לכלול epididymal (או רחם, אם באמצעות נקבת עכברים) רקמות.
  4. מקום בצלחת שכותרתו וחזור על שלב 3.3 עבור כרית VIS הנותרים.

4. עיכול Collagenase של רפידות שומן

  1. הזז 60 מ"מ צלחות למכסה המנוע בתרבית רקמה ו לשאוב את התקשורת.
  2. לרכך את רפידות שומן עם מספריים מעוקל מכן להוסיף לפתרון collagenase. הקפידו לשטוף את המספריים מלקחיים בין סוגי רקמות עם אתנול PBS.
  3. Shake ב 300 סל"ד ו -37 ºC עבור 10-20 דקות עד רקמות מתעכלות. מקובל אם כמה חתיכות של SQ עדיין גלויות. זה יטופל בשלב מאוחר יותר.
  4. הוסף 25 מ"ל של התקשורת בתרבות לפתרון collagenase לעצור את collagטיפול enase, ו פיפטה למעלה ולמטה 10 פעמים עם טפטף סרולוגיות 10 מיליליטר לפזר את הרקמות המעוכלות.
  5. תאי זנים באמצעות מסננת תא 100 מיקרומטר. צנטריפוגה במשך 10 דקות ב g 300 x.
  6. בזהירות למזוג את התקשורת לא להפריע גלולה ולהוסיף 5 מ"ל של מים סטריליים כדי גלולה ו פיפטה בעדינות להשעות תאים. חכה 2 דקות כדי lyse אריתרוציטים.
  7. הוסף 25 מ"ל של התקשורת עם תאים FBS ומתח 10% דרך מסננת תא חדש 100 מיקרומטר.
  8. צנטריפוגה במשך 10 דקות ב g 300 x. התקשורת למזוג ו resuspend גלולה ב 1 מ"ל של התקשורת והתרבות.
  9. ספירת תאים עם hemocytometer באמצעות 1: 1 trypan כחול.
  10. פלייט 1 x 10 6 תאים היטב אחד על צלחת 6 באר.

5. הפרדת Cell מגנטית

  1. לאחר כ -4 עד 6 שעות של הידבקות התא, לשטוף תאים פעמיים עם HBSS (-Ca, -Mg). לנתק תאים חסידים באמצעות טריפסין 0.05%. לדלל השעית תא טריפסין חיץ הפרדה 1 מיליליטר ספין עבור5 דקות ב g 300 x.
  2. לשאוב supernatant. תאי Resuspend במאגר 500 μl. הסרת aliquot 10 μl ולספור תאים באמצעות hemocytometer.
  3. ספין תאים למשך 5 דקות ב 300 x גרם.
  4. לשאוב supernatant לחלוטין. תאי Resuspend ב 90 חיץ μl. הוסף 10 μl נוגדן ראשוני נגד Sca1-FITC. מערבבים היטב דגירה במשך 10 דקות ב 4 מעלות צלזיוס בחושך.
  5. שטפו תאים עם 1 מ"ל חיץ תאים צנטריפוגות במשך 5 דקות ב g 300 x. הסר supernatant לחלוטין.
  6. תאי Resuspend ב 80 חיץ μl. הוסף 20 μl microbeads אנטי FITC. מערבבים היטב דגירה במשך 15 דקות ב 4 מעלות צלזיוס בחושך.
  7. שטפו תאים עם 1 מ"ל חיץ תאים צנטריפוגות במשך 5 דקות ב g 300 x.
  8. הסר supernatant ו resuspend גלולה במאגר 500 μl.
  9. מקום עמודה בעל מגנטית ולשטוף טור עם 500 חיץ μl.
  10. הוסף השעית תא לעמודה. הימנע בועות תוך pipetting.
  11. אסוף את Sca1 ללא תווית - </ Sup> תאים ולשטוף פעמים בטור 3 עם 500 חיץ μl. רק להוסיף למאגר חדש כאשר המאגר ריק. הימנע בועות תוך pipetting.
  12. הסר עמודה מבעל מגנטי ומקום לתוך צינור חרוטי 15 מ"ל.
  13. הוסף 1 מ"ל חיץ לעמודה ו elute Sca1 + על ידי דחיפת הבוכנה המסופק באמצעות המאגר טור.
  14. ספין למטה שברי תא במשך 5 דקות ב 300 x ז. תאים Resuspend בתקשורת תרבות 1 מ"ל.
  15. הסרת aliquot 10 μl מן השברים שכותרתו ללא תווית ולספור תאים באמצעות hemocytometer.
  16. פלייט כל שבריר תא 1 גם צלחת 6 באר.

6. אימות של הפרדת immunomagnetic של ACSs Sca1 הגבוה עם cytometry הזרימה

  1. יש לשטוף את התאים פעמיים עם HBSS (-Ca, -Mg) ו לנתק תאים באמצעות טריפסין 0.05%.
  2. תאי צנטריפוגה XG ב 300 במשך 5 דקות. תאים Resuspend בתקשורת תרבות 1 מ"ל ולספור באמצעות hemocytometer.
  3. השג> 10 6 תאים 1 מ"ל התקשורת בתרבות צנטריפוגות ב XG 300 במשך 5 דקות.
  4. הסר צעד supernatant וחזור 6.3 פעמיים נוספות.
  5. תאים Resuspend עם 1 מ"ל של סרום עיזים 2% + 2% BSA ולחסום במשך 30 דקות ב RT.
  6. תאי צנטריפוגה XG ב 300 במשך 5 דקות.
  7. הסר חסימת פתרון.
  8. להוסיף עכברוש IgG2a אלקסה פלואוריד 647 (0.25 מיקרוגרם, 1: 400) או אנטי-Sca1 אלקסה פלואוריד 647 (0.25 מיקרוגרם, 1: 400), ב 100 μl של PBS עם 2% נסיוב עז ו -2% BSA + PBS ב 4 ° C במשך 30 דקות בחושך.
  9. הוסף 1 מ"ל של קר PBS לתאים. צנטריפוגה XG 300 במשך 5 דקות ב 4 ° C.
  10. הסר צעד supernatant וחזור 6.9 פעמיים נוספות.
  11. תאים Resuspend ב 1 מ"ל PBS. Pass השעיות התא דרך מסננת התא 100 מיקרומטר כהכנה ניתוח תזרים cytometric.

הגישה מוגבלת. התחברו או התחילו תקופת ניסיון כדי לצפות בתוכן זה.

תוצאות

Loading...
$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

העשרה של ASCs הגבוהה Sca1 מ רפידות שומן שונות.

תאי סטרומה וסקולרית המבודדים תצוגת שומן SQ פיברובלסטים דמויים, נמתחו צורת תא ללא קשר לרמת ביטוי Sca1 (איור 1 א). מצד השני, VIS (eWAT נגזרת) תאי נמוך Sca1 גבוה Sca1 להדגים הבדל מובהק בצורת התא שלהם. כמו SQ (iWAT נגזרת) תאים גבוהים Sca1, VIS (e...

הגישה מוגבלת. התחברו או התחילו תקופת ניסיון כדי לצפות בתוכן זה.

דיון

Loading...
$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

בזאת אנו מדגימים את הבידוד והפרדה תא immunomagnetic של ASCs בעכברים מ רפידות שומן שונים והשימוש בהם לניסויים במבחנה. השיטה המוצגת היא יעילה עבור הבידוד המהיר של מספר רב של ASCs Sca1 החיובי, המהווה יתרון על FACS בתיווך מורכב ויקר טכניים הבידוד של ASCs 9,14. בניגוד FACS, הפרדת תא immunomagnetic אינה מאפשרת את השימוש של אנטיגן המרובה לאיתור אוכלוסיית תא המטרה. אף על פי כן, אם אנטיגן השטח היטב מאופיין, שימוש פרדת immunomagnetic מגדיל את מספר התאים להיות מנותח ללא ה...

הגישה מוגבלת. התחברו או התחילו תקופת ניסיון כדי לצפות בתוכן זה.

גילויים

Loading...
$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

החוקרים אין לי מה לחשוף.

תודות

Loading...
$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

עבודה זו נתמכת על ידי NIH DK095137 (עד THC). אנו מודים לחברי המעבדה בהווה ובעבר אשר תרמו להתפתחות והתחכום של השיטות שתוארו.

הגישה מוגבלת. התחברו או התחילו תקופת ניסיון כדי לצפות בתוכן זה.

חומרים

רשימת החומרים שנעשה בהם שימוש במאמר זה
שםחברהמספר קטלוגהערות
סוג 3 קולגנאזוורת'ינגטון ביוכימיLS004182 עיכול רקמות
DMEMGibco11965-092תרבית גלוקוז גבוהה
בינוני עט/סטרפטוקוקוקוק/גלוטמין (100x)Gibco10378-016אנטיביוטיקה מדיה
אנטי אנטי (100x)Gibco15240-062מדיה אנטי פטרייתית
FBSGibco16000-044
PBS (1x, pH 7.4)Gibco10010-023
טריפסין (0.05%)Gibco25300-054
מסננת תאיםBD Bioscience352360100-μ m מסננת תאים
60 מ"מ צלחותBD Falcon353004
מספרייםFST14001-12
מספריים גדולותFST14091-11קצה עדין ומעוקל
מלקחיים גדוליםFST11000-12
מלקחיים עדיניםכל ספק
25 גרם 5/8 אינץ' מחטיםBD305122
מחטים 22 גרם 1.5 אינץ'BD305159
צינורות חרוטיים 15 מ"לBD Falcon352097
צינורות חרוטיים 50 מ"לBD Falcon352098
MACS עמודות הפרדהMiltenyi Biotec130-042-201
ערכת מיקרו-חרוזים Anti-Sca1 (FITC)Miltenyi Biotec130-092-529FITC-anti-Sca1 1º מיקרו-חרוזים בטן ואנטי FITC 2º Ab
AutoMACS מאגר ריצהMiltenyi Biotec130-091-221
מפריד MiniMACSMiltenyi Biotec130-042-102
MACS MultiStandMiltenyi Biotec130-042-303
רפידות צ'וקס כחולותפישר276-12424
רפידות סופגותפישר19-165-621
לוח קלקרהשתמש משפופרות 50 מ"ל
70% אתנול
איזופלורןכל ספק
עכברוש IgG2a Alexa Fluor 647InvitrogenR2a21
עכברוש IgG2a נגד עכבר Sca1 Alexa Fluor 647InvitrogenMSCA21
R-PEInvitrogenR2a04
Rat IgG2a נגד עכבר F4/80 R-PEInvitrogenMF48004
צינור תחתון עגולBD Falcon352058
HBSS (– Ca, – Mg)Gibco14175-095
HBSS (+Ca, +Mg)Gibco14025-092לתמיסת קולגנאז
קולגן מסוג I (2.7 מ"ג/מ"ל בחומצה אצטית 37 מ"מהכנה בבית12
10x MEMGibco11430-030
1 M HEPESGibco15630-080
0.34 N NaOHהכנה בבית
פתקי כיסויCorning2870-22
Alexa Fluor 594 חומצה קרבוקסילית, אסתר סוקסינימידיל, איזומרים מעורביםInvitrogenA-20004
0.89 M NaHCOGibco25080-094

מקורות

Loading...
$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,
  1. Chun, T. H., et al. A pericellular collagenase directs the 3-dimensional development of white adipose tissue. Cell. 125 (3), 577-591 (2006).
  2. Chun, T. H., et al. Genetic link between obesity and MMP14-dependent adipogenic collagen turnover. Diabetes. 59 (10), 2484-2494 (2010).
  3. Chun, T. H. Peri-adipocyte ECM remodeling in obesity and adipose tissue fibrosis. Adipocyte. 1 (2), 89-95 (2012).
  4. Sun, K., Tordjman, J., Clement, K., Scherer, P. E. Fibrosis and adipose tissue dysfunction. Cell Metab. 18 (4), 470-477 (2013).
  5. Spangrude, G., Heimfeld, S., Weissman, I. Purification and Characterization of Mouse Hematopoietic Stem Cells. Science. 241, 58-62 (1988).
  6. Welm, B. E., et al. Sca-1(pos) cells in the mouse mammary gland represent an enriched progenitor cell population. Dev Biol. 245 (1), 42-56 (2002).
  7. Gesta, S., Tseng, Y. H., Kahn, C. R. Developmental origin of fat: tracking obesity to its source. Cell. 131 (2), 242-256 (2007).
  8. Tang, W., Zeve, D., Suh, J. M., Bosnakovski, D., Kyba, M., Hammer, R. E., Tallquist, M. D., Graff, J. M. White fat progenitor cells reside in the adipose vasculature. Science. 322, 583-586 (2008).
  9. Rodeheffer, M. S., Birsoy, K., Friedman, J. M. Identification of white adipocyte progenitor cells in vivo. Cell. 135 (2), 240-249 (2008).
  10. Tokunaga, M., et al. Fat depot-specific gene signature and ECM remodeling of Sca1(high) adipose-derived stem cells. Matrix Biol. 36, 28-38 (2014).
  11. Chun, T. H., Inoue, M. 3-D adipocyte differentiation and peri-adipocyte collagen turnover. Methods Enzymol. 538, 15-34 (2014).
  12. Rajan, N., Habermehl, J., Cote, M. F., Doillon, C. J., Mantovani, D. Preparation of ready-to-use, storable and reconstituted type I collagen from rat tail tendon for tissue engineering applications. Nat Protoc. 1 (6), 2753-2758 (2006).
  13. Ma, X., Robin, C., Ottersbach, K., Dzierzak, E. The Ly-6A (Sca-1) GFP Transgene is Expressed in all Adult Mouse Hematopoietic Stem Cells. Stem Cells. 20 (6), 514-521 (2002).
  14. Berry, R., Rodeheffer, M. S. Characterization of the adipocyte cellular lineage in vivo. Nat Cell Biol. 15 (3), 302-308 (2013).
  15. Jeffery, E., Church, C. D., Holtrup, B., Colman, L., Rodeheffer, M. S. Rapid depot-specific activation of adipocyte precursor cells at the onset of obesity. Nat Cell Biol. 17 (4), 376-385 (2015).
  16. Mori, S., Kiuchi, S., Ouchi, A., Hase, T., Murase, T. Characteristic Expression of Extracellular Matrix in Subcutaneous Adipose Tissue Development and Adipogenesis; Comparison with Visceral Adipose Tissue. Int J Biol Sci. 10 (8), 825-833 (2014).
  17. Ong, W. K., et al. Identification of Specific Cell-Surface Markers of Adipose-Derived Stem Cells from Subcutaneous and Visceral Fat Depots. Stem Cell Reports. 2 (2), 171-179 (2014).

הגישה מוגבלת. התחברו או התחילו תקופת ניסיון כדי לצפות בתוכן זה.

הדפסות חוזרות והרשאות

בקש הרשאה לשימוש חוזר בטקסט או באיורים של מאמר JoVE זה

בקש הרשאה

תגיות

Sca1Anti Sca1

מאמרים קשורים