הרשמה ל-JoVE נדרשת לצפייה בתוכן זה. התחברו או התחילו בגרסת ניסיון בחינם.

מאמר שיטה

מגן היעילות ריאתי החיסונית בתגובה תת עורי ואת אפי BCG מינהל עכברים

10K צפיות

⸱

DOI:

10.3791/54440

⸱

19 בספטמבר 2016

 ,  ,  , 
1Department of Microbiology, University of Zaragoza

במאמר זה

סיכום

אנו מפרטים כאן את המתודולוגיה שננקטה כדי להשוות את יעילות ההגנה והתגובה החיסונית של הריאות הנגרמת על ידי חיסון תוך-אף ותת עורי עם BCG במודל עכבר. התוצאות שלנו מראות את היתרונות של חיסון ריאתי ומצביעות על תפקיד לתגובה בתיווך IL17 בהגנה הנגרמת על ידי חיסון.

תקציר

למרות הכיסוי העולמי של חיסון BCG תוך עורי, שחפת נותרה אחת המחלות הזיהומיות הנפוצות ביותר בעולם. נתונים פרה-קליניים עודדו חיסונים נגד שחפת ריאתית כאסטרטגיה מבטיחה למניעת מחלת ריאות, האחראית להעברה. בעבודה זו, אנו מתארים את המתודולוגיה ששימשה להדגמת מודל העכבר את היתרונות של חיסון BCG תוך-אף בהשוואה לתת-עורית. הנתונים שלנו חשפו יעילות הגנה גדולה יותר לאחר מתן BCG תוך-אף. בנוסף, התוצאות שלנו מצביעות על כך שחיסון ריאתי מעורר תגובה חיסונית גבוהה יותר בריאות, כולל תגובות Th1 ו-Th17, כמו גם עלייה בריכוז האימונוגלובולין A (IgA) בדרכי הנשימה. הנתונים שלנו מראים מתאם בין יעילות ההגנה לנוכחות תאים המייצרים IL17 בריאות לאחר אתגר מיקובקטריום טוברקולוזיס, מה שמרמז על תפקיד לציטוקין זה בתגובת ההגנה שמעניק חיסון ריאתי. לבסוף, אנו מפרטים את זרימת העבודה הגלובלית שפיתחנו כדי לחקור חיסון נשימתי במודל העכברים, שניתן להסיק על חיסוני שחפת אחרים, מלבד BCG, המכוונים לתגובה הרירית או דרכי מתן ריאתיות אחרות כגון תוך-קנה הנשימה או אירוסול.

מבוא

שחפת (TB) היא אחת המחלות הזיהומיות המובילים בגרימת מותם מזוהה יותר HIV בעולם בשילוב עם העלייה הגואה של זנים עמידים multidrug גורם שחפת בעיה בריאותית עולמית מדאיגה 1. כלי אבחון חדשים, תרופות יעילות יותר ופחות רעילות, וחיסוני TB בטוחים ויעילים חדשים הם צורך דחוף, במיוחד במדינות המתפתחות.

לחיות Bacille Calmette-גרן מוחלשים (BCG) היא כיום חיסון מורשה רק נגד שחפת, אשר כבר מנוהל intradermally בלידה מאז 1970 ברחבי העולם. BCG נחשב יעיל במניעת צורות חמורות של המחלה (דלקת קרום המוח שחפת miliary) בילדים, אך הראה יעילות עולה בקנה אחד נגד שחפת ריאתית אחראית של העברת מחלות 2.

חיסון ריאתי, אשר מחק מסלול טבעי של זיהום שחפת, מייצג גישה אטרקטיבית עבור תחול תגובה מקומי חיסון של פונדקאיים. בהקשר זה, יצירות פרה-קליניים שונים במודלים של בעלי חיים TB רלוונטיים שונים הוכיחו יעילות החיסון יותר בעקבות חיסון ריאתי כפי בהשוואה לתוואי תת עורית או תוך-3-6. עם זאת, מנגנוני ההגנה מופעלים על ידי חיסון ריאתי אינם מובנים היטב. בשנים האחרונות, כמה יצירות הצביעו לעבר בתגובה בתיווך IL17 כגורם חשוב של תגובה חיסונית ברירית ספציפית TB, כמו במודלים של עכברים לוקים עבור יעילות מגן עקב חיסון רירי IL17 נפגע 7,8.

לאחרונה הראינו לראשונה כי אפי ממשל BCG מוגן DBA / 2 עכברים, זן עכבר מאופיין בהיעדר הגנה לאחר תת עורית BCG חיסון 9. תוצאות אלו הראו כי חיסון TB נשימה יכול להיות יעיל יותר בהפחתת שיעור השחפת במדינות אנדמיות, שבו BCG תוך-עורית נחשב יעיל נגד pulmonTB האר"י.

הגישה מוגבלת. התחברו או התחילו תקופת ניסיון כדי לצפות בתוכן זה.

פרוטוקול

כל העכברים הוחזקו בתנאים מבוקרים וצופים לכל סימן של מחלה. עבודה ניסויית נערכת הסכם עם הדירקטיבות אירופאיות ולאומיות להגנה של חיות ניסוי ועם אישור ועדת האתיקה המקומית המוסמכת.

1. הכנת מניות לכמת גליצרול של דנית BCG ושחפת Mycobacterium H37Rv

הערה: כל הפרוטוקולים המתוארים בוצעו בתנאי BSL3.

  1. מניות גליצרול קפוא להפשיר של דנית BCG או זנים H37Rv לחסן 100 μl ב 10 מ"ל של 7H9 10 בינוני השלימו עם Tween-80 0.05% (v / v) ו- ADC (אלבומין, דקסטרוז, Catalase) 10% (V / V).
  2. דגירה בתנאים סטטי במשך שבוע אחד בכל 37 ° C עד התרבות נמצאת בצמיחת יומן פאזיים.
  3. בהיקף של עד תרבית החיידקים על ידי העברת התרבות של 10 מ"ל ל -200 מ"ל של מדיום חדש. דגירה של 20 נוספיםימים בתנאים סטטיים.
  4. העברה-מ"ל 50 צינורות צנטריפוגות צנטריפוגות במשך 15 דקות ב 2500 x גרם.
  5. בטל supernatants ו resuspend גלולה חיידקים בהיקף שיורית. הוסף כל חרוזי זכוכית צינור 3 מ"מ קוטר סטרילי (10 - 15 לכל צינור).
  6. וורטקס במרץ במהלך 1 דק 'על מנת לנתק גושים חיידקי. Resuspend כל גלולה ב 10 מ"ל של PBS עם Tween-80 0.05% (v / v).
  7. השאר צינורות במשך 10 דקות ומאפשרות המצרפים החיידקים הגדולים וחרוזי זכוכית להתיישב.
  8. שחזור 9.5 מ"ל של supernatant מכל אחת 4 צינורות המכילים גושים קטנים וחיידקים יחיד ואמצעי אחסון והעברת צינור צנטריפוגות יחיד טרי 50 מ"ל (נפח התאושש הסופי 38 מ"ל). צנטריפוגה במשך 10 דקות ב g 400 x.
  9. שחזור 35 מ"ל של supernatant (המכיל חיידקים יחיד בעיקר) בצינור יחיד טרי 50 מ"ל צנטריפוגות ולהוסיף 15 מ"ל של PBS עם גליצרול 50% (v / v), קבלת ריכוז גליצרול הסופי של 15% (V / V).
  10. מערבבים בעדינותולהפיץ ב aliquots 1 מיליליטר צינורות מתאימים להקפאה. חנות ב -80 ° C (הרבה אחד מספק כ -50 aliquots מלאי גליצרול).
  11. כדי לכמת מניות גליצרול, להפשיר גליצרול היום לאחר הקפאה ולבצע שבע דילולים סדרתי של פי עשרה 1.5 מ"ל צינורות נפרדים המכיל 900 μl של PBS.
  12. פלייט 100 μl של דילול כל ב 7H10 בינוני מוצק אגר 10 בתוספת 10% ADC (v / v) מוכן בצלחות פטרי בקוטר 55 מ"מ.
  13. בזהירות להוסיף 3 חרוזי זכוכית מ"מ בקוטר (כ. 10 לכל צלחת) ובעדינות לנער צלחת להפיץ פחות נפח על צלחת אגר. בטל חרוזים ולאטום צלחת אגר עם parafilm.
  14. דגירה במשך 21 ימים ב 37 מעלות צלזיוס ולקבוע ריכוז חיידקי ספירת יחידות מושבת יוצרים (CFU) של הדילולים שם מושבות אחת ניתן להבחין במדויק.

2. עכבר חיסון

  1. הפשרה גליצרול BCG מראש לכמת לדלל אותו ב PBS prepשתי השעיות. חישוב נפח סופי בהתחשב במינון לכל חיה הוא 100 μl עבור להזרקה (10 7 CFU לכל מיליליטר עבור חיסון תת עורית) ו -40 μl עבור ממשל אפי (2.5 x 10 7 CFU לחיסון אפים).
  2. השתמש תחנת עבודת הרדמה מיוחדת מכרסמים להרדים עכברים בתערובת של isoflurane וחמצן. השתמש isoflurane 5% כדי לגרום הרדמה ו -2% כדי לשמור על עכברים בתא הרדמה. (שיטת הרדמת מקובלים אחרת יכולה לשמש).
  3. עבור מתן החיסון תת עורית למלא מזרק 1 מ"ל עם מחט 26 G עם 1 מ"ל של ההשעיה חיידקי (10 7 CFU / ml). הסר בועות אוויר.
  4. מניחים עכבר הרדים על גבי משטח ישר אפרקדן בתוך מכסה המנוע זרימה למינרית ולחסן תת עורי 100 μl (10 6 CFU / מנה) של חיסון בתוך האגף של העכבר בחזרה. החזר את העכבר לכלוב ולנטר אותו כדי לוודא שהוא properly מתאושש מן ההרדמה.
  5. שנה את מחט המזרק בין כל ממשל עכבר. הוסר בועות אוויר כמתואר לעיל.
  6. עבור ממשל אפי, למקם עכבר הרדים במצב שכיבה בתוך מכסה המנוע.
  7. עם micropipette לקחת 20 μl של ההשעיה עם 2.5 x 10 7 CFU / ml. מניחים את טיפה אחר טיפה הבידוד בין שני הנחיריים עד נפח כולו הופקד, עוזב הזמן בין הטיפות כדי לאפשר העכבר לנשום את עוצמת הקול הערה:. עכברים יכולים לסבול ממצוקה נשימתית במהלך הליך זה ולכן הם צריכים להיות משמאל להטמיע כל טיפה לפני לנהל את אחד ליד למנוע אותה ככל האפשר.
  8. למלא מחדש את micropipette עם עוד 20 μl וחזור על הפעולה. אם העכבר מתחיל להתעורר מן ההרדמה לאחר החיסון הראשון, למקם אותו בתא ההרדמה לפני השנייה אחת. החזר את העכבר לכלוב ולהבטיח כי זה כמו שצריך משחזרמן ההרדמה.

3. אתגר intranasal עכבר עם זני H37Rv

  1. פשרת גליצרול H37Rv מראש לכמת לדלל אותו ב- PBS להכין השעית חיידקים של 2,500 CFU לכל מיליליטר. חישוב נפח סופי בהתחשב במינון לכל חיה הוא 40 μl.
  2. H37Rv הוא מחוסן intranasally כמתואר 2.5 - 2.7. מינון האתגר הסופי לכל עכבר הוא 10 2 CFU / 40 μl.

4. ניתוח של התגובה החיסונית מושרה בריאות

  1. השעיה הסלולר ריאות
    הערה: הערכת התגובה חיסונית אדפטיבית-induced חיסון ריאות דורשת הדור של השעית תא בודדת. לשם כך, אנו משתמשים Dissociator רקמות כגון gentleMACS.
    1. להקריב את העכבר על ידי נקע בצוואר הרחם (או מתודולוגיה אנושי מקובלות אחרות) ולהבטיח העכבר מת נגיעה גלגל העין כדי לאשר הנעדר של רפלקס מצמוץ.
    2. בתוך מכסה מנוע זרימה למינרית, לחלץ את lungs באמצעות מספריים מלקחיים סטריליות ומניחים אותם על משטח נקי. ריאות נקיות הסרת קנה נשימה ורקמות חיבור, ולהעביר את הריאות אל צינור 1.5 מיליליטר עם PBS (לשמור על קרח עד עיבוד).
    3. כדי ליצור ההשעיה הסלולר, למקם הריאות בתוך שפופרת ראוי דיסוציאציה איבר (צינור C-Dissociator) המכיל 5 מ"ל של 10 מ"מ HEPES-NaOH pH 7.4, 150 מ"מ NaCl, 5 מ"מ KCl, 1 מ"מ MgCl 2 ו -1.8 מ"מ CaCl 2 בַּלָם.
    4. הוספת 100 μl של Collagenase D 100 מ"ג / מ"ל ​​(2 מ"ג / מ"ל ​​ריכוז סופי), ו -40 μl של DNAse אני 20,000 IU / ml (160 IU / הריכוז הסופי מ"ל.
      הערה: פתרונות המניות של Collagenase D או DNaseI ערוכים המסת אנזימים lyophilized ב PBS או גליצרול 50% (v / v), 20 mM Tris-HCl pH 7.5 y MgCl 2 1 מ"מ, בהתאמה.
    5. מניח את הצינור ב Dissociator הרקמות ולהשתמש m_lung_01 התכנית המוגדר מראש עבור פיצול ריאות. דגירת הצינור ב 37 מעלות צלזיוס באמבט מים למשך 30 דקות.
    6. ה מקוםצינור הדואר ב Dissociator ולהשתמש m_lung_02 התכנית המוגדר מראש עבור המגון ריאות שלם לתוך השעיה הסלולר יחידה.
    7. לעבור את ההשעיה הסלולר דרך מסננת תא ניילון 70 מיקרומטר מצויד לצינור צנטריפוגות 50 מ"ל. שטפו את מסננת עם 10 מ"ל של מדיום RPMI 1640.
    8. תאי צנטריפוגה במשך 5 דקות ב 400 XG וזורקים supernatant.
    9. הוסף 1 מ"ל של אריתרוציטים lysing חיץ, ומערבבים על ידי vortexing ו דגירה של 1 דקות בטמפרטורת החדר.
    10. הוסף 10 מ"ל של תאים צנטריפוגות בינוני RPMI 1640 במשך 5 דקות ב 400 x ז.
    11. תאים Resuspend ב 0.5 מ"ל של מדיום שלם RPMI 1640 בתוספת 10% מומת חום עוברי עגל סרום (FCS), 2 מ"מ L- Glutamin, 100 מיקרוגרם / מ"ל ​​סטרפטומיצין, 100 IU / ml פניצילין 50 מיקרומטר 2-mercaptoethanol.
      הערה: FCS הוא מובטל ידי דגירה על 56 מעלות צלזיוס במשך 30 דקות.
    12. ספירת תאים ולהוסיף שלם RPMI 1640 בינוני להגיע צפיפות הסלולר סופי של 10 7 תאים / מ"ל.
      הערה: לקבלת ספירת תאים, אנו משתמשים דלפק התא האוטומטי.
    13. הפיצו 100 μl של השעיה הסלולר בצלחת סטרילית 96-היטב U-תחתונה (10 6 תאים / טוב).
    14. הוסף 50 μl / טוב של מדיום RPMI להשלים 1640 עם 15 מיקרוגרם / מיליליטר של נגזרי חלבון המסחרי H37Rv המטוהר (PPD) (5 מיקרוגרם / ריכוז סופי מיליליטר).
  2. אוסף Supernatant לקביעת ציטוקינים על ידי ELISA
    1. דגירת צלחת מ 4.1.14 למשך 48 שעות ב 37 מעלות צלזיוס, 5% CO 2.
    2. צלחת צנטריפוגה במשך 5 דקות ב 400 XG ולשחזר 100 μl של supernatant.
    3. חנות ב -80 מעלות צלזיוס.
    4. לדלל supernatants 1/10 ו 1/2 חיץ assay עבור IFNγ ונחישות IL17A, בהתאמה. לקבוע ריכוזים ציטוקינים עם ערכות מסחריות ELISA, בהתאם להוראות היצרן (ערכות פיתוח ELISA).
  3. מכתים תאי עבור קביעת ציטוקינים-producing תאי CD4 + על ידי cytometry זרימה
    1. דגירת צלחת מ 4.1.14 במשך 18 שעות ב 37 מעלות צלזיוס, 5% CO 2.
    2. הוסף 1.5 μl של Brefeldin A 1 מ"ג / מ"ל ​​(המניות מומס DMSO) לכל (הריכוז הסופי 10 מיקרוגרם / מ"ל) היטב דגירה במשך שש שעות נוספות.
    3. צנטריפוגה צלחת מ 4.3.2 דקות 1 XG ב 3200 וזורקים supernatant.
    4. תאים Resuspend ב 50 μl של אנטי עכבר CD4-FITC מדולל RPMI 1640 עם 10% FCS (1/500) דגירה במשך 10 דקות ב 4 °.
    5. צנטריפוגה צלחת מ 4.3.4 עבור 1 דקות ב 3,200 XG, להשליך supernatant ולהוסיף 100 μl / טוב של פתרון קיבעון. דגירה על 4 מעלות צלזיוס למשך 20 דקות.
    6. פעמיים שטפו תאים עם 150 μl / לשטוף של פתרון permeabilization.
      הערה: 10x המניות מרוכז הוא מדולל במים deionized להכין פתרון העבודה 1x.
    7. תאים Resuspend ב 50 μl של העכבר אנטי IFNγ-APC ואנטי עכבר IL17A-APC.Cy7 מדולל permeabilפתרון ization (1/250 הוא נוגדנים).
    8. דגירה במשך שעה 1 ב RT.
    9. פעמיים שטפו תאים עם 150 μl / לשטוף של פתרון permeabilization.
    10. תאים Resuspend ב 200 μl של PBS לרכישת cytometry הזרימה.

5. ניתוח של אימונוגלובולינים ב שטיפה ברונכואלוואולרית (BAL)

  1. הקניית דגימות BAL
    1. להקריב את העכבר על ידי נקע בצוואר הרחם (או מתודולוגיה אנושי מקובלות אחרות) ולהבטיח העכבר מת נגיעה גלגל העין כדי לאשר הנעדר של רפלקס מצמוץ.
    2. לחשוף את קנה הנשימה באמצעות מלקחיים סטריליות דיוק נאות ומספריים ולבצע חתך קטן קנה הנשימה, כדי לוודא שלא להעיף אותו לחלוטין. יש להיזהר שלא לגרום לדימום שיכול לזהם מדגם BAL.
    3. הציגו לתוך קנה הנשימה צינורית מחובר מזרק 1 מ"ל סטרילי עם 800 μl של PBS קר כקרח.
    4. לחסן לאט את PBS לריאות ואז rנפח אקובר BAL שהפיל הבוכנה של המזרק באיטיות רבה כדי למנוע קריסת ריאות.
      הערה: שחזור של 500 עד 600 μl הוא משביע רצון.
    5. העבר נפח BAL לתוך צינור 1.5 מ"ל ולאשר BAL נשאר לא צבוע, המציין כי אינו מזוהם עם דם (לשמור על הקרח עד עיבוד).
    6. צנטריפוגה BAL דגימות במשך 5 דקות ב 400 XG, והעברת supernatant לצינור חדש.
    7. supernatants חנות ב -80 מעלות צלזיוס.
  2. קביעת IgA ב supernatants BAL
    הערה: כל חומרים כימיים המשמשים הן ב RT.
    1. מעייל עתיר חלבון מחייב קלקר שטוח תחתון 96-גם צלחות עם 100 μl של PPD מדוללים PBS (10 מיקרוגרם / מיליליטר) עבור M. שחפת נחישות IgA -specific, או עם 100 μl של supernatant BAL מדולל 10 פעמים PBS לקביעת IgA הכולל.
    2. דגירת הלילה ב 4 מעלות צלזיוס.
    3. בטל supernatant והקש את הצלחת על מגבת נייר כדי דר"י. לשטוף עם 200 μl / גם של PBS.
    4. חסום עם 200 μl / גם של אלבומין בסרום שור (BSA) 1% (w / v) ב- PBS-Tween-80 0.05% (v / v) (חיץ חסימה).
    5. דגירה שעה 1 ב RT.
    6. שטפי פעם עם 200 μl / היטב (חיץ כביסה) 0.05% PBS-Tween-80 (V / V).
    7. הוספת 100 μl של supernatant BAL חי בבארות המצופות PPD. דגירת שעות בטמפרטורת חדר.
      הערה: אם קביעת IgA הכולל נעשית במקביל IgA PPD ספציפי, להשאיר בארות IgA הכולל עם 100 μl חיץ כביסה במהלך הדגירה זה.
    8. לשטוף שלוש פעמים עם 200 μl / טוב של כביסה buffer.0170004
    9. הוספת 100 μl של peroxidase חזרת (HRP), מצומדות אנטי עכבר IgA מדולל חסימת חיץ (1 / 10,000).
    10. דגירה RT שעה 1.
    11. חמש פעמים לשטוף עם 200 μl / היטב חיץ כביסה.
    12. הוספת 100 μl / טוב של 3,3 ', 5,5'-Tetramethylbenzidine (TMB). דגירה 20 דקות בטמפרטורת החדר ב tהוא כהה.
    13. הוספת 100 μl / טוב של H 2 SO 0.5N 4. קראו את הצלחת ספקטרופוטומטר באורך גל של 450 ננומטר.

6. קביעת עומס חיידקי בריאות

  1. המגון ציפוי ריאות
    1. ארבעה שבועות לאחר אתגר, להקריב את העכבר על ידי נקע בצוואר הרחם (או מתודולוגיה אנושי מקובלות אחרות) ולהבטיח העכבר מת נגיעה גלגל העין כדי לאשר הנעדר של רפלקס מצמוץ.
    2. מניח את העכבר במצב שכיבה קבוע על משטח שטוח ולחטא בתוך מכסה מנוע זרימה למינרית.
    3. עושים חתך ולהסיר את העור מאזור החזה לעזוב גלוי באזור החזה.
    4. חותכים את הצלעות לקצור את הריאות והלב באמצעות מספריים מלקחיים סטרילית. מניחים איברים על משטח נקי.
    5. יש לנקות את הריאות על ידי הסרת הלב, קנה הנשימה ורקמות החיבור ולהעביר את הריאות אל צינור 1.5 מ"ל עם 1 מ"ל של מים ללא יונים(לשמור על הקרח עד עיבוד).
    6. שימוש במלקחיים סטרילי להעביר את הריאות של כל עכבר לתוך צינור הולם המגון איבר (M - צינור Dissociator), המכילה 1 מ"ל של מים ללא יונים.
    7. מניחים את הצינור ב Dissociator רקמות ולהשתמש RNA_1 תוכנית מוגדרת מראש כדי homogenise הריאות.
    8. הפוך חמישה דילולים סדרתי של פי עשרה צינורות 1.5 מ"ל, החל עם 100 μl של homogenate ריאות מדולל 900 μl.
    9. דילולים פלייט כמתואר 1.11-1.14.
  2. בידול בין BCG ו H37Rv ידי PCR
    הערה: את הצלחות מן 6.1.6 המתאים לקבוצה חוסנה עם BCG ידי תוואי אפים, נתחנו מספר מייצג של מושבות על ידי PCR הבחנה בין BCG ו H37Rv מנת להבטיח כי CFU נחשב להעריך יעילות מגן-נתונות חיסון תואמת באופן ייחודי H37Rv. הגברת מטרות PCR זה של RD9, אזור גנומי שונה BCG ומ 'tuberculosis, נותן שבר של 2618 נ"ב עבור H37Rv, ו 465 נ"ב עבור BCG 11.
    1. הכינו מלאי מיקס מאסטר עבור כל הדגימות עם כרכים לדגימה כמצוין, ולאחר מכן להפיץ צינורות PCR (9 μl / מדגם).
      הערה: הצפת 5x: 2 μl. פריימר קדימה 25 מיקרומטר (GTGTAGGTCAGCCCCATCC): 0.32 μl, הפוך פריימר 25 מיקרומטר (GCCCAACAGCTCGACATC): 0.32 μl, פולימראז תקי 5 יחידות / μl: 0.04 μl, Deionized H 2 O: 6.32 μl.
    2. גע מושבה עם קיסם סטרילי לטבול את הקיסם עם המדגם בצינור PCR המכיל מיקס מאסטר.
    3. הפעל את ה- PCR עם התוכנית הבאה: 10 דק '95 ° C (שלב זה היא לעורר הפרעה בקטריאלי), 10 דק' 95 ° C (שלב זה היא לעורר הפרעה בקטריאלי), 35 מחזורים (30 שניות על 95 מעלות צלזיוס, 1 דקות ב -58 ° C ו 4 דק 'ב 72 מעלות צלזיוס).
    4. טען את דגימות ה- PCR בתוך ג'ל agarose 1% עם דגימות ברומיד ethidium וברח לדמיין את שברי.

הגישה מוגבלת. התחברו או התחילו תקופת ניסיון כדי לצפות בתוכן זה.

תוצאות

עבודה זו מתארת ​​את ההשוואה של שני מסלולים של ממשל של BCG: תת עורי אף. מסלול תת עורי ניתן להשוות את intradermal, המהווה את הציר הקליני הנוכחי עבור BCG ברחבי העולם. מסלול אפי חיסון שואף לחקות את הקו הטבעי של זיהום של M. שחפת, במטרה להשרות תגובה חיסונית ישירות לריאות, איבר היעד העיקרי של הפתוגן.

איור 1 מתאר את זרימת העבודה א...

הגישה מוגבלת. התחברו או התחילו תקופת ניסיון כדי לצפות בתוכן זה.

דיון

למרות שהחיסון הנוכחי נגד שחפת, BCG, הוא החיסון הנפוץ ביותר בהיסטוריה, שחפת נותרה אחד הגורמים המובילים למוות ותחלואה ממחלות זיהומיות ברחבי העולם. פרדוקס זה מוסבר על ידי היעדר ההגנה של חיסון זה מפני שחפת ריאתית, צורת ההדבקה האחראית. יש צורך דחוף בגישות חיסון חדשות היעילות נגד צורות ריאתיות של המחלה, מכיוון שתהיה להן ההשפעה הגדולה ביותר על העברת המחלה ברחבי העולם.

הנתונים שלנו מראים בבירור ששינוי בדרך מתן BCG כדי לחקות את המסלול הטבעי של ההדבקה יכול להיות אסטרטגיה מוצלחת למניעת שחפת ריאתית. התוצא...

הגישה מוגבלת. התחברו או התחילו תקופת ניסיון כדי לצפות בתוכן זה.

גילויים

למחברים אין מה לחשוף.

תודות

עבודה זו נתמכה על ידי "משרד הכלכלה והתחרותיות הספרדי" [מספר מענק BIO2014-5258P], "הנציבות האירופית" על ידי תוכניות H2020 [מספרי מענק TBVAC2020 643381].

הגישה מוגבלת. התחברו או התחילו תקופת ניסיון כדי לצפות בתוכן זה.

חומרים

רשימת החומרים שנעשה בהם שימוש במאמר זה
שםחברהמספר קטלוגהערות
מרק מידלברוק 7H9 BD271310
מידלברוק ADC העשרהBD211887
Tween 80ScharlauTW00800250
חרוזי זכוכית בקוטר 3 מ"מScharlau038-138003
Middlebrook 7H10 AgarBD262710
מזרק 1 מ"ל 26GA 0.45 x 10 מ"מBD301358
דיסוציאטור GentleMACSMiltenyi Biotec130-093-235
צינורות CMiltenyi Biotec130-093-237
M צינורותMiltenyi Biotec130-093-236
קולגנאז DRoche11088882001
DNaseIApplichemA3778,0100
Falcon 70 µ m מסננת תאיםקורנינג352350
RPMI 1640SigmaR0883
מאגר ליסינג תאי דם אדומיםSigmaR7757
תוסף GlutaMAXGibco35050-061100x
תמיסת פניצילין-סטרפטומיציןSigmaP4333100x מרוכז
סרום עגל עובריביולוגי תעשיות04-001-1A
2-MercaptoethanolSigmaM3148-25ML
שרביט 2.0 כף יד אוטומטי מונה תאיםMilliporePHCC20040
חיישני מונה תאי שרביט, 40 ומיקרו; mMilliporePHCC40050
Mycobacterium Tuberculosis - Tuberculin PPDStatens Serum Institut (SSI)2390
Mouse IFN-γ ערכת פיתוח ELISA ערכת פיתוח עכבר Mabtech3321-1H
IL17A ELISA Mabtech3521-1H
Brefeldin ASigmaB7651
FITC חולדה נגד עכבר CD4BD553047
BD ציטופיקס/ערכת ציטופרםBD555028
APC-Cy7 חולדה נגד עכבר IL-17ABD560821
APC עכבר נגד עכבר IFNgBD554413
LACHRYMAL OLIVE LUER LOCK 0.60 x 30 מ"מ. 23G x 1 1/4 אינץ'UNIMED27.134משמש כצינורית קנה הנשימה עבור
פוליסטירן קושר חלבון גבוה BAL צלחות שטוחות עם תחתית שטוחה 96 בארות MAXISORPNUNC430341
אלבומין, מסרום בקרSigmaA4503
עז אנטי-עכבר IgA (&אלפא ספציפי לשרשרת) ומינוס; נוגדן פרוקסידאזSigmaA4789
3,3′,5,5′-Tetramethylbenzidine (TMB) SigmaT0440
MyTaq DNA פולימראזביולייןBIO-21107הערכה כוללת מאגר 5x
מרוכזת

מקורות

  1. Zumla, A., et al. The WHO 2014 global tuberculosis report--further to go. Lancet Glob Health. 3 (1), e10-e12 (2015).
  2. Mangtani, P., et al. Protection by BCG vaccine against tuberculosis: a systematic review of randomized controlled trials. Clin Infect Dis. 58 (4), 470-480 (2014).
  3. Aguilo, N., et al. Pulmonary Mycobacterium bovis BCG vaccination confers dose-dependent superior protection compared to that of subcutaneous vaccination. Clin Vaccine Immunol. 21 (4), 594-597 (2014).
  4. Chen, L., Wang, J., Zganiacz, A., Xing, Z. Single intranasal mucosal Mycobacterium bovis BCG vaccination confers improved protection compared to subcutaneous vaccination against pulmonary tuberculosis. Infect Immun. 72 (1), 238-246 (2004).
  5. Giri, P. K., Verma, I., Khuller, G. K. Protective efficacy of intranasal vaccination with Mycobacterium bovis BCG against airway Mycobacterium tuberculosis challenge in mice. J Infect. 53 (5), 350-356 (2006).
  6. Lagranderie, M., et al. BCG-induced protection in guinea pigs vaccinated and challenged via the respiratory route. Tuber Lung Dis. 74 (1), 38-46 (1993).
  7. Gopal, R., et al. Interleukin-17-dependent CXCL13 mediates mucosal vaccine-induced immunity against tuberculosis. Mucosal Immunol. 6 (5), 972-984 (2013).
  8. Khader, S. A., et al. IL-23 and IL-17 in the establishment of protective pulmonary CD4+ T cell responses after vaccination and during Mycobacterium tuberculosis challenge. Nat Immunol. 8 (4), 369-377 (2007).
  9. Aguilo, N., et al. Pulmonary but Not Subcutaneous Delivery of BCG Vaccine Confers Protection to Tuberculosis-Susceptible Mice by an Interleukin 17-Dependent Mechanism. J Infect Dis. , (2015).
  10. Middlebrook, G., Cohn, M. L. Bacteriology of tuberculosis: laboratory methods. Am J Public Health Nations Health. 48 (7), 844-853 (1958).
  11. Brosch, R., et al. A new evolutionary scenario for the Mycobacterium tuberculosis complex. Proc Natl Acad Sci U S A. 99 (6), 3684-3689 (2002).
  12. Kaushal, D., et al. Mucosal vaccination with attenuated Mycobacterium tuberculosis induces strong central memory responses and protects against tuberculosis. Nat Commun. 6, 8533(2015).
  13. Lochhead, J. J., Thorne, R. G. Intranasal delivery of biologics to the central nervous system. Adv Drug Deliv Rev. 64 (7), 614-628 (2012).
  14. Lochhead, J. J., Wolak, D. J., Pizzo, M. E., Thorne, R. G. Rapid transport within cerebral perivascular spaces underlies widespread tracer distribution in the brain after intranasal administration. J Cereb Blood Flow Metab. 35 (3), 371-381 (2015).
  15. Griffiths, K. L., et al. Cholera toxin enhances vaccine-induced protection against Mycobacterium tuberculosis challenge in mice. PLoS One. 8 (10), e78312(2013).
  16. Hirota, K., et al. Plasticity of Th17 cells in Peyer's patches is responsible for the induction of T cell-dependent IgA responses. Nat Immunol. 14 (4), 372-379 (2013).
  17. Jaffar, Z., Ferrini, M. E., Herritt, L. A., Roberts, K. Cutting edge: lung mucosal Th17-mediated responses induce polymeric Ig receptor expression by the airway epithelium and elevate secretory IgA levels. J Immunol. 182 (8), 4507-4511 (2009).

הגישה מוגבלת. התחברו או התחילו תקופת ניסיון כדי לצפות בתוכן זה.

הדפסות חוזרות והרשאות

תגיות

BCGBCGIL17IgAH37Rv
מגן היעילות ריאתי החיסונית בתגובה תת עורי ואת אפי BCG מינהל עכברים
צור קשר
המלצה לספרייה

פרטיות

תנאי שימוש

מדיניות

2026 © זכויות יוצרים MyJoVE Corporation. כל הזכויות שמורות.