הרשמה ל-JoVE נדרשת לצפייה בתוכן זה. התחברו או התחילו בגרסת ניסיון בחינם.

מאמר שיטה

זיהוי של Variant התעתיק נדיר CDH1 ברקמות מוקפאות סרטן קיבה על ידי מבוססי שבב דיגיטלי PCR

5.7K צפיות

⸱

DOI:

10.3791/57066

⸱

5 בפברואר 2018

 ,  ,  ,  ,  , 
1Biosciences Laboratory, Istituto Scientifico Romagnolo per lo Studio e la Cura dei Tumori (IRST) IRCCS, 2Department of Biology and Biotechnology, University of Pavia

במאמר זה

סיכום

כתב היד מתאר מבוססי שבב דיגיטלי PCR assay לזהות נדיר CDH1 התעתיק variant (CDH1a) רגילה מוקפאות ורקמות הגידול המתקבל בחולים עם סרטן קיבה.

תקציר

CDH1a, תעתיק קאנונית של הגן CDH1 , נמצאה לבוא לידי ביטוי כמה שורות תאים של סרטן קיבה (GC), ואילו זה נעדר ב רירית קיבה נורמלית. לאחרונה, הבחנו variant תעתיק CDH1a ברקמות הגידול מוקפאות המתקבל חולים עם GC. הביטוי של זה וריאנט של דגימות רקמה נחקר על ידי מבוססי שבב דיגיטלי PCR (dPCR) הגישה המובאת כאן. dPCR מציע את הפוטנציאל מדידה מדויקת, חזקים, רגישה מאוד של חומצות גרעין, הוא מנוצל יותר ויותר עבור יישומים רבים בתחומים שונים. dPCR הוא מסוגל גילוי מטרות נדיר; בנוסף, dPCR מציע את האפשרות על כימות מוחלטת ומדויק של חומצות גרעין ללא צורך כיילים ועיקולים סטנדרטי. למעשה, התגובה למחיצות מעשיר את המטרה מהרקע, אשר משפר את עמידות בפני מעכבי ויעילות הגברה. תכונות אלה להפוך dPCR כלי אופטימלית עבור זיהוי בתמליל נדירים CDH1a .

מבוא

הגן CDH1 מקודד עבור E-קדהרין, גורם מפתח מעורב קיומם של האפיתל קיבה רגיל באמצעות ויסות תא אדהזיה, הישרדות, הפצה, העברה1. איבוד חלבון E-קדהרין כתוצאה germline ברישול או שינויים סומאטית של CDH1 היה קשור עם התפתחות GC2,3. Non-קנונית תעתיקים הנובעים אינטרון 2 של הגן יש גם היה שיערו לשחק תפקיד carcinogenesis קיבה4,5. בפרט, אחד תעתיק כזה, CDH1a, הוכח להתבטא שורות תאים GC אבל הוא נעדר מן בקיבה נורמלי4. לאחרונה גילינו CDH1a GC דגימות רקמות מחולים GC משתמש המבוסס על שבב dPCR5. dPCR שימש כדי להעריך, בפעם הראשונה, הנוכחות של בתמליל ג'ין CDH1a GC מעיים, רקמה נורמלית.

השיטה תקן הזהב כדי לקבוע ביטוי גנים היא PCR כמותי בזמן אמת (qPCR). עם זאת, הנתונים המתקבלים לפעמים יכול להיות משתנה, באיכות ירודה, במיוחד כאשר רמת היעד במדגם הוא נמוך. ההשתנות יכולה להיגרם על ידי מזהמים, ומפריעים פולימראז פעילות של פריימר חישול, המוביל שאינם ספציפיים הגברה צידו התחרותי תגובות6.

העקרונות הבסיסיים הביוכימי של dPCR אמנם דומים לאלה של qPCR, dPCR מראה כמה יתרונות, מתן אפשרות עבור מדידות מדויקות מאוד של דנ א גנומי (gDNA) / משלימים במולקולות דנ א (cDNA). אכן, dPCR הוא לתגובה מובילים המסתמך על מכוילת חלוקת מדגם לאלפי וולס, כך שכל אחד טוב מכיל אפס או מולקולה יעד בודד. הגברה ואז מתרחשת רק אצל הבארות המכיל עותק של המטרה, הוא הצביע על ידי אות ניאון. המספר המוחלט של היעד מולקולות במדגם המקורי ואז יכול להיות מחושב על-ידי קביעת יחס חיובי הכולל מחיצות באמצעות פואסון בינומי סטטיסטיקה7.

בנוסף, הטכניקה dPCR מבטל את הצורך להפעיל עיקול רגיל ומכאן הטיה המשויך ולשינויים, המאפשרות כימות ישירה של מטרות8,9; הוא מייצר תוצאות מדויקות יותר לשחזור ללא תלות מזהמים ויעילות בשל שלה עמידות גבוהה בפני מעכבי10; זה הוא רגיש יותר ספציפית יותר qPCR, והוא לכן שיטה אמינה עבור זיהוי מטרה נדיר. לבסוף, חלוקת המדגם לתוך תגובות מרובות מפחיתה את התחרות עם רקע מולקולות ומשפר את הגבול של גילוי מטרה, כך הגברה מאפשר והקלה הגילוי של מולקולות יחיד של gDNA/cDNA6 . זיהוי, כימות של חומצות גרעין על ידי מבוססי שבב dPCR יותר ויותר הוחל להעתיק מספר וריאציות, כימות של ה-DNA שברים, וניתוחים מוטציה11,12,13, נתן דיוק של החומר נמוכה קלט דרישה של השיטה. בנוסף, dPCR לאחרונה שולב הניתוח של שני מיקרו Rna14 וג'ין תעתיקים5,15.

הגישה מוגבלת. התחברו או התחילו תקופת ניסיון כדי לצפות בתוכן זה.

פרוטוקול

הפרוטוקול עוקב אחר הקווים המנחים של ועדת האתיקה IRST מחקר אנושי.

הערה: הליך זה היא תוכננה במיוחד עבור זיהוי מספר נמוך של cDNA מולקולות ברקמות אנושיות מוקפאות. הסעיפים רקמות צומצמו בקרח יבש, בעוד עדיין קפוא, הגידול המאומת בעבר נגזר החולה קיבה או דגימות רקמה נורמלית.

1. RNA בידוד וטיהור

  1. החילוץ-RNA
    הערה: בידוד RNA מתבצע מתחת למכסה המנוע באמצעות מוצר מסוים (ראה טבלה של חומרים). עם זאת, מגוון רחב של אלייזה זמינים מסחרית.
    1. Homogenize 50-100 מ"ג של דגימת הרקמות קפוא טרי חתוך דק צינור 1.5 מ עם 1 מ"ל של RNA בידוד ריאגנט ו מערבולת נמרצות עבור Incubate ס' 15 הצינורות ב-80 מעלות צלזיוס למשך הלילה.
    2. דגירה של שפופרת המכילה את הדגימה בטמפרטורת החדר במשך 5 דקות, מערבבים על-ידי vortexing עבור 15 s.
    3. לשמור את הצינורית על קרח, להוסיף 200 µL של כלורופורם, מערבולת נמרצות במשך 15 s.
    4. דגירה של הצינורות בטמפרטורת החדר במשך 60 s, צנטריפוגה ב 12,000 x g למשך 15 דקות ב 4 º C.
    5. להעביר את השלב מימית צינור 1.5 מ"ל ולהוסיף 20 µg של גליקוגן.
      הערה: חשוב להימנע בקפידה העברת לאטמוספרה או שכבה אורגני כדי לצמצם זיהום.
    6. להוסיף 500 µL של אלכוהול איזופרופיל, היפוך את הצינור כדי לערבב, דגירה על קרח למשך 10 דקות.
    7. Centrifuge את הצינור ב g x 12,000 למשך 15 דקות ב 4 ° C, כדי לזרז את ה-RNA.
      הערה: RNA יהיה נוכח גלולה דמוי ג'ל בצד ולמטה של הרכבת התחתית, לעתים קרובות בלתי נראה לאחר צנטריפוגה.
    8. הסר את תגובת שיקוע מבלי להפריע את התמיסה, לשטוף אותו עם 1 מ"ל של 75% אתנול על-ידי pipetting.
    9. Centrifuge את הצינור ב 7,500 g x עבור 5 דקות ב 4 ° C ולהסיר את תגובת שיקוע מבלי להפריע בגדר.
    10. תן בגדר יבש עד התמיסה הופכת לשקופה, לפזר זאת בתוך µL 50 RNase ללא מים.
    11. להקפיא את הדגימות ב-80 מעלות צלזיוס לפחות ללילה לפני כמת.
  2. חיסול דנ א גנומי וטיהור RNA
    הערה: צעד עיכול DNase, ואחריו טיהור RNA מבוססי עמודה, מומלצת עבור ניתוחים של מטרות נמוך-שפע כדי לעכל דנ משחיתה.
    1. להמיס את DNase lyophilized אני (1,500 קוניץ יחידות) ב 550 µL של נטול RNase מים באמצעות מזרק, לערבב בעדינות על-ידי היפוך המבחנה, ולא לחלק את הפתרון מניות משוקם aliquots.
    2. העברת צינור 1.5 mL הנפח מחושב של הדגימה עם 15 µg של RNA µL 10 DNase העיכול מאגר הערכה (הרשומים בטבלה של חומרים), 2.5 µL של DNase אני הפתרון מניות, נטולת RNase למים ל 100 µL. Incubate בטמפרטורת החדר במשך 10 דקות.
    3. להוסיף 350 µL מאגר פירוק רקמת (הערכה, ראה טבלה של חומרים) על ידי pipetting.
    4. להוסיף 250 µL של 100% אתנול וביו -מיקס על ידי pipetting.
    5. להעביר את כל אמצעי האחסון (700 µL) לתוך עמודה חדשה ספין צנטריפוגה ב 12,000 x g 15 s.
    6. להעביר את המסנן לתוך צינור אוסף חדש, להוסיף 500 µL של 80% כוהל העמודה ואת צנטריפוגה ב 12,000 x g למשך 2 דקות.
    7. פותחים את המכסה של עמודה ספין, צנטריפוגה ב 12,000 x g עבור 5 דקות עם צינור אוסף חדש כדי לייבש את המסנן; ואז להעביר את המסנן צינור 1.5 מ.
    8. להוסיף µL 14 של מים נטולי RNase ישירות סינון העמודה ואילו צנטריפוגה ב 12,000 x g עבור 1 דקות.
    9. שומרים את הדגימות על הקרח להמשיך כימות באמצעות 2 µL של המדגם על ספקטרופוטומטרים ספסל-העליון או לאחסן את הרנ א ב-80 מעלות צלזיוס עד השימוש.

2. cDNA סינתזה

  1. במקום 1,000 ng של RNA, µL 4 של מיקס מאסטר, µL 1 של רוורס טרנסקריפטאז ומים ללא RNase לאמצעי הסופי של 20 µL בשפופרת PCR סטרילי. לערבב בעדינות, ספין למטה.
  2. דגירה המיקס התגובה ב הצנטרפוגה תרמי, החלת התנאים הבאים: 5 דקות 25 ° c, 30 דקות ב- 42 ° C, 5 דקות ב 85 מעלות צלזיוס.
  3. Centrifuge הצינורות בקצרה להמשיך dPCR ניתוח או לאחסן ב-20 ° C עד שהוא נדרש.

3. PCR דיגיטלי תגובת להגדיר

  1. התגובה dPCR לערבב, לטעום הכנה
    1. להפשיר את תערובת הבסיס ואת וזמינותו בטמפרטורת החדר במשך לפחות 20 דקות.
    2. לדלל את דגימות cDNA ריכוז של 300 ng ב- 6 µL של מים.
    3. בעדינות מערבולת המאסטר לערבב, להכין את התמהיל בשפופרת סטרילי עם 8.7 µL של מיקס מאסטר, µL 0.87 של CDH1a assay מעוצב מותאם אישית ומהצמיגים 1.83 µL של מים נטולי נוקלאז נפח סופי של 11.4 µL.
      הערה: לקבלת CDH1a assay מעוצב מותאם אישית פריימר פרטים ראה את הטבלה של חומרים.
    4. µL 11.4 של המיקס מוכן להעביר הדגימה cDNA מדולל, מערבבים בעדינות, בקצרה צנטריפוגה.
      הערה: אמצעי אחסון כוללים 20% עודף כדי לפצות על אובדן נפח של pipetting. להכין את התערובת כל דוגמאות ופקד אין תבנית (NTC).
  2. הכנת צ'יפס
    הערה: לקבלת תוצאות אופטימליות לטעון את האסימונים בהקדם האפשרי.
    1. הכנס מטעין שבב והמתן עד שנורית החיווי הופך לירוק.
    2. להסיר את הכובע של המזרק נוזלים טבילה על-ידי בעדינות למשוך בחזרה על הבוכנה 1-2 מ מ, משחררים אותו כדי להקל על שלב זה, ולהחליף אותו עם טיפ.
    3. שבב חדש ואין לרשום הקוד שנכתב על המכסה כדי לשייך אותה המדגם.
    4. להחזיק את המכסה בזהירות על ידי הצד שלו, הקילוף הסרט המגן ולמקם את המכסה עם הפנים נדבקים למעלה לכיוון הנכון.
    5. . ובזהירות לאסוף שבב, מטפל לא לגעת החלק הפנימי, להעמיס אותם על הקן שבב בתנוחה הנכונה על ידי לחיצה הידית כדי לפתוח את המלחציים
    6. לטעון להב הטעינה חדש לתוך מטעין ודחף אותו בעדינות כדי לוודא שהוא מחובר בחוזקה במקום.
    7. העברת µL 14.5 של המיקס תגובה dPCR על גבי הלהב הטעינה מבלי לבצע בועות אוויר הסחה הלהב, לאחר תודה השחור טעינת כפתור כדי להפיץ את עוצמת הקול על השבב.
    8. להשתמש במזרק נוזלים טבילה להעביר כ 20 טיפות על גבי משטח השבב מקפיד לא לעלות על פני השטח עם הקצה.
      הערה: חשוב לכסות את השטח כולו מבלי לשפוך נוזל פינות.
    9. לסובב את הזרוע מטעין כדי להפוך את המכסה לבוא במגע עם השבב ולחץ מטה עבור 15 s.
    10. לחץ על לחצן המכסה כדי לשחרר את השבב ולחזור הזרוע את מיקומו.
    11. להחזיק את השבב שהורכב בזווית של 45° בקפידה לוותר על הנוזל טבילה עם המזרק דרך היציאה מילוי, לסובב מעט את השבב, ודא כי קיימים אין בועות אוויר ו להסיר את כל הנוזלים העודפים עם מגבון סטרילי.
    12. לאטום את התיק שבב על ידי בעדינות פילינג משם את התווית על גבי שבב פנים העיתונות מעל הנמל למלא לפחות 5 s.
    13. לאחסן את השבב בחושך עד מוכן לטעון הצנטרפוגה תרמי.
      הערה: צ'יפס מוכן אמור לשמש בתוך שעתיים.
  3. תגובה dPCR
    1. פותחים את המכסה, להתקין מתאמי של שני בלוקים, אפילו כאשר בלוק יחיד משמש.
    2. מניחים את הז'יטונים על הרחוב דגימה בתנוחה הנכונה.
      הערה: הנמל המילוי חייב להיות מכוון לכיוון החלק הקדמי של הצנטרפוגה תרמי במיקום גבוה כדי לאפשר בועות אוויר כדי לצוף למעלה מבלי להפריע את החלון של השבב. השתמש שבבי ריק כדי לאזן את שני רחובות.
    3. שכב משטח תרמי על הרחוב דגימה לכסות לגמרי את האסימונים.
    4. סגור את המכסה. ולהתחיל את PCR לרוץ, החלת התנאים הבאים: להחזיק ב 96 מעלות צלזיוס למשך 10 דקות; 45 מחזורים של 60 מעלות צלזיוס למשך 2 דקות ו- 98 ° C ל 30 s; להחזיק ב 60 מעלות צלזיוס למשך 2 דקות; . תחזיק על 4 מעלות צלזיוס. כבה הצנטרפוגה תרמי ואת להפשיר את האסימונים בטמפרטורת החדר במשך לפחות 10 דקות.
      הערה: ניתוח שבב חייב להתבצע בתוך שעה אחת.
  4. ניתוח צ'יפ
    1. פתח את המכסה של הכלי, להסיר את רפידות תרמי ולאחר מכן להסיר את האסימונים המתאמים.
      הערה: אחסן את האסימונים במיקום כהה, נקי עד הניתוח.
    2. לנקות את השטח שבב עם אלכוהול איזופרופיל ולנגב סטרילי.
      הערה: לבדוק כל שבב נזילות או בעיות פוטנציאליות.
    3. הכנס ה-USB לתוך מערכת גלאי כדי לשמור את הנתונים.
    4. פתח את מגש שבב של מערכת גלאי, לטעון את השבב הפנים כלפי מעלה בתנוחה הנכונה ולאחר מכן סגור את המגש.
    5. המתן 30 s לעיבוד, ואז להסיר את השבב והכנס הבא.
    6. מחכים ניתוח להשלים עבור כל האסימונים מעובד ואז להוסיף את ה-USB למחשב. כדי להעביר את הקבצים.
      הערה: הזמן הכולל לניתוח הוא בסביבות 2 דקות 3/שבב.

4. נתוני ניתוח ופרשנות

  1. להתחבר פלטפורמת תוכנה מבוססי ענן הדרושים לביצוע כל הבדיקות במורד הזרם.
  2. יצירת פרוייקט, לייבא את כל קבצי הנתונים של האסימונים של עניין.
  3. הזן את השם מדגם; בחר את צבען ואת וזמינותו להשתמש בכרטיסיה "להגדיר צ'יפס".
  4. לקבוע אם השבב הוא מקובל דמיין זאת בכרטיסיה "סקירת נתונים", בודק איך ביסודיות המדגם היה טעון על גבי השבב, כמה נקודות הנתונים הן להערכה.
    הערה: דוחים צ'יפס עם פחות מ-13,000 נקודות נתונים להערכה.
  5. לעבור העלילה פיזור של השבב שנבחר בצד ימין של המסך. להחיל את הסף של 6,000 עבור אותות צבע (ציר y) כתב amidite (FAM) fluorescein על כל האסימונים.
    הערה: הסף להגדיר עשויים להשתנות על בסיס מבחני בשימוש.
  6. הסרה של סימנים חיוביים מפוקפק כדי למנוע תוצאות חיוביות שגויות על-ידי בחירת המקום היחסי על הפיזור מגרש באמצעות הכלי לאסו והקשה על "לא ידוע". כל נקודות חיוביות הנותרים את נוכחותם cDNA עותקים של המטרה נדיר מנותח.

הגישה מוגבלת. התחברו או התחילו תקופת ניסיון כדי לצפות בתוכן זה.

תוצאות

באמצעות ההליך המובאת כאן, בדקנו עבור הביטוי של variant התעתיק נדיר CDH1a ברקמות מוקפאות קיבה. ניתוח הנתונים על-ידי dPCR היה הופיעה על 21-זוגי רגיל וסרטן דגימות רקמה 11 דגימות הגידול נוספים. CDH1a היה לזיהוי גידולים 15 מתוך 32 (47%), ואילו דגימות רקמה נורמלית לא הראה הנוכחות של התעתיק נדיר זה5. בניתוח שלנו, נדחו צ'יפס עם פחות מ-13,000 נקודות נתונים, כמו צ'יפס עם טעינת אי-הומוגניות. איור 1 מראה לאסימון בדוגמאות עבור להע...

הגישה מוגבלת. התחברו או התחילו תקופת ניסיון כדי לצפות בתוכן זה.

דיון

dPCR פותחה במקור עבור ה-DNA מדידות מולקולרית10,11,12,13 , בזמן שטכנולוגיה זו הותאמה עבור כימות של מיקרו Rna ו- RNA תעתיקים5, 14,15. ב פרוטוקול זה הרחבנו את רשימת יישומים לכלול גילוי של תעתיקים נדירים נגזר דגימות רקמה מוקפאות. . למטרה הזאת אנחנו מנוצל כמות גבוהה למדי של cDNA (300 ng). למרות כמות זו אינ...

הגישה מוגבלת. התחברו או התחילו תקופת ניסיון כדי לצפות בתוכן זה.

גילויים

המחברים מדווחים שאין ניגודי אינטרסים לעבודה זו.

תודות

המחברים רוצים להודות Gráinne טירני לסיוע העריכה.

הגישה מוגבלת. התחברו או התחילו תקופת ניסיון כדי לצפות בתוכן זה.

חומרים

רשימת החומרים שנעשה בהם שימוש במאמר זה
שםחברהמספר קטלוגהערות
TRIazol ReagentThermo Fisher Scientific15596018
גליקוגן 20 מ"ג/מ"לROCHE10901393001
RNeasy MinElute ערכת ניקויQIAGEN74204
iScript cDNA ערכת סינתזהBioRad1708891
QuantStudio 3D Digital PCR Master Mix v2Thermo Fisher ScientificA26358
CDH1a IDT מבחן בעיצוב מותאם אישיתDNA משולבות (IDT)NAF) GCTGCAGTTTCACTTTTAGTG
(R) ACTTTGAATCGGGTGTCGAG
(P)/FAM/CGGTCGACAAAGGACAGCCTATT/TAMRA/
[ריכוזי בדיקה אופטימליים של dPCR: 900 ננומטר (F),              900 ננומטר (R), 250 ננומטר (P)]
ערכת שבבים QuantStudio 3D Digital PCR 20K v2Thermo Fisher ScientificA26316
Heraeus Biofuge FrescoThermo  Scientific75002402
Thermocycler (Labcycler)Sensoquest011-103
GeneAmp PCR System 9700Thermo Fisher ScientificN805-0200
Dual Flat Block Sample ModuleThermo Fisher Scientific4425757
QuantStudio 3D Tilt Base for Dual Flat Block GeneAmp PCR System 9700Thermo Fisher Scientific4486414
ערכת מתאם שבב PCR דיגיטלי QuantStudio 3D עבור בלוק שטוח Thermal CyclerThermo Fisher Scientific4485513
QuantStudio 3D Digital PCR מעמיס שבביםThermo Fisher Scientific4482592
QuantStudio 3D Digital PCR מכשיר עם כבל חשמלThermo Fisher Scientific4489084
טכנולוגיות

מקורות

  1. van Roy, F., Berx, G. The cell-cell adhesion molecule E-cadherin. Cell Mol Life Sci. 65 (23), 3756-3788 (2008).
  2. Carneiro, P., et al. E-cadherin dysfunction in gastric cancer: cellular consequences, clinical applications and open questions. FEBS Lett. 586 (18), 2981-2989 (2012).
  3. Corso, G., et al. Somatic mutations and deletions of the E-cadherin gene predict poor survival of patients with gastric cancer. J Clin Oncol. 31 (7), 868-875 (2013).
  4. Pinheiro, H., et al. Transcription initiation arising from E-cadherin/CDH1 intron2: a novel protein isoform that increases gastric cancer cell invasion and angiogenesis. Hum Mol Genet. 21 (19), 4253-4269 (2012).
  5. Abou Khouzam, R., et al. Digital PCR identifies changes in CDH1 (E-cadherin) transcription pattern in intestinal-type gastric cancer. Oncotarget. 8 (12), 18811-18820 (2017).
  6. Taylor, S. C., Laperriere, G., Germain, H. Droplet Digital PCR versus qPCR for gene expression analysis with low abundant targets: from variable nonsense to publication quality data. Sci Rep. 7 (1), (2017).
  7. Basu, A. S. Digital Assays Part I: Partitioning statistics and digital PCR. SLAS Technol. 22 (4), 369-386 (2017).
  8. Huggett, J. F., Whale, A. Digital PCR as a novel technology and its potential implications for molecular diagnostics. Clin Chem. 59 (12), 1691-1693 (2013).
  9. Alikian, M., et al. RT-qPCR and RT-Digital PCR: A comparison of different platforms for the evaluation of residual disease in chronic myeloid leukemia. Clin Chem. 63 (2), 525-531 (2017).
  10. Hoshino, T., Inagaki, F. Molecular quantification of environmental DNA using microfluidics and digital PCR. Syst Appl Microbiol. 35 (6), 390-395 (2012).
  11. Salvi, S., et al. Circulating AR copy number and outcome to enzalutamide in docetaxel-treated metastatic castration-resistant prostate cancer. Oncotarget. 7 (25), 37839-37845 (2016).
  12. Tessitore, M. V., et al. Detection of newly produced T and B lymphocytes by digital PCR in blood stored dry on nylon flocked swabs. J.Transl.Med. 15 (1), (2017).
  13. Sho, S., et al. Digital PCR Improves mutation analysis in pancreas fine needle aspiration biopsy specimens. PLoS One. 12 (1), e0170897(2017).
  14. Conte, D., et al. Novel method to detect microRNAs using chip-based QuantStudio 3D digital PCR. BMC Genomics. 16, 849(2015).
  15. Sanders, R., Mason, D. J., Foy, C. A., Huggett, J. F. Evaluation of digital PCR for absolute RNA quantification. PLoS One. 8 (9), e75296(2013).

הגישה מוגבלת. התחברו או התחילו תקופת ניסיון כדי לצפות בתוכן זה.

הדפסות חוזרות והרשאות

תגיות

CDH1aUSB
זיהוי של Variant התעתיק נדיר CDH1 ברקמות מוקפאות סרטן קיבה על ידי מבוססי שבב דיגיטלי PCR
צרו קשר
המליצו לספרייה

פרטיות

תנאי שימוש

מדיניות

זכויות יוצרים © 2026 MyJoVE Corporation. כל הזכויות שמורות.