מאמר שיטה

לטווח ארוך In Vivo מעקב של תאים דלקתיים הדינמיקה בתוך דרוזופילה הגלמים

12.5K צפיות

⸱

DOI:

10.3791/57871

⸱

14 ביוני 2018

 ,  ,  , 
1School of Biochemistry, Biomedical Sciences, University of Bristol, 2School of Cellular and Molecular Medicine, Biomedical Sciences, University of Bristol, 3MRC Centre for Inflammation Research, University of Edinburgh, Queens Medical Research Institute, 4School of Physiology, Pharmacology, and Neuroscience, Biomedical Sciences, University of Bristol

במאמר זה

סיכום

כאן אנו מציגים פרוטוקול עבור הדמיה לחיות הפצע ותיקון ההיענות דלקתיות המשויך ברזולוציה גבוהה-עתיים ויוו. שיטה זו משתמשת השלב הגולמי של פיתוח דרוזופילה כדי לאפשר לטווח ארוך הדמיה ומעקב של אוכלוסיות תאים מסוים לאורך זמן והוא תואם עם איון יעיל מציאה RNAi בתיווך גנים.

תקציר

במהלך לתגובה דלקתית מהירה כדי נזק לרקמות, תאים של מערכת החיסון המולדת מגויסים במהירות כדי פגיעה באתר. פעם לפצע, תאים חיסוניים מולדת לבצע מספר רב של פונקציות חיוניות, כמו להילחם זיהום, ניקוי פסולת נמק ועירור מטריקס התצהיר. כדי להבין באופן מלא את מגוון אירועים איתות המסדירים את התגובה החיסונית, חשוב לבחון את התנהגויות מורכבות של (ואת האינטראקציות המתרחשות בין) מרובות תא שושלות ויוו, ואת בזמן אמת, עם הערך הגבוה רזולוציה-עתיים. את המוגבהת אופטי, את ללקוחות שלנו גנטי של עוברי דרוזופילה הקמנו דרוזופילה כמודל שלא יסולא בפז על תמונת-לחיות, לנתח את ההיבטים הבסיסיים של תאים דלקתיים התנהגות, כולל מנגנוני פיזור התפתחותית, סיווג של גופות מוות ו/או חיידקים פתוגנים, גיוס לפצעים. עם זאת, עבודה עדכנית עכשיו הוכיחה כי העסקת שלב יותר מאוחר יותר במחזור דרוזופילה – הגולם דרוזופילה – מציע מספר יתרונות ברורים, לרבות יעילות RNAi משופרת, יותר הדמיה תקופות, ו באופן משמעותי תא החיסון במספרים גדולים. כאן נתאר פרוטוקול לתיקון הפצע הדמיה ואת התגובה דלקתיות המשויך ברזולוציה גבוהה-עתיים ב הגלמים דרוזופילה בשידור חי. כדי לבצע את הדינמיקה של epithelialization מחדש ודלקת, אנו משתמשים מספר של מסוים ויוו פלורסנט סמנים עבור אפיתל והן תאים חיסוניים מולדת. אנחנו גם להוכיח את היעילות של fluorophores צילום-להמרה, כגון קאךה, אחרי תת-קבוצות תאים חיסוניים מסוים, כדי לעקוב אחר אופן הפעולה שלהם הם נודדים, נחישות מהאתר, פציעה.

מבוא

לתגובה דלקתית יעילה הוא מרכזי עבור כל האורגניזם להילחם בזיהום, לנקות פסולת שננהל את התיקון של רקמות פצועים1. אמנם תגובה זו התוצאה הבלתי נמנעת של רוב נזק לרקמות, דלקת דורש רגולציה קפדנית כי נמצא קשור לתגובה דלקתית לא הולם למגוון רחב של מחלות אנושיות שונות (כולל כרונית ללא ריפוי פצעים, הצטלקות יתר, נטייה לסרטן)1,2,3. נתון זה הרלוונטיות הקלינית, זה הכרחי כדי להשיג הבנה מפורטת יותר של המנגנונים המולקולריים הסלולר נהיגה את התגובה דלקתית כדי לפתח אינדיקטורים prognostic חדשה ואסטרטגיות לטיפול מגוון כרונית דלקתית תנאים, אשר עשויים להגן על רקמות תיקון מפני דלקת ממושכת ומיותר.

בשנים האחרונות הפך דרוזופילה מערכת מודל ומבוססת ובעל ערך לנתח תכונות יסוד של תגובת דלקתית והתפאורה מפני חרקים האנושי4,5. בזמן הנוכחי, דרוזופילה מציע ללקוחות שלנו גנטי גדול בהרבה ממה שאפשרי כיום במודלים ניסויים אחרים (כגון עכברים או דג זברה), המתיר מדויק מניפולציה גנטית-עתיים ויוו (כדי להשבית או יתר אקספרס לכל הגן עניין בתוך סוגי תאים ספציפיים בנקודה מוגדרת התפתחותית זמן-) ואת הקלות של הגנום כולו מסכי6,7. באופן מסורתי, רוב המחקרים הדמיה חיה של ריפוי הפצע, דלקת דרוזופילה בוצעו בשלבים עובריים, העוברים הם משותק (בניגוד דרוזופילה הזחלים או מבוגרים), שקוף אופטית המאפשרת ברזולוציה גבוהה ללא תחרות ויוו הדמיה8. זה איפשר לחוקרים להמחיש את גיוס מהיר וחזק דרוזופילה תאים חיסוניים מולדת (hemocytes) לאתר הפצע בתגובה לפגיעה מכנית או לייזר המושרה האפיתל מתחלקים9, 10 , 11 , 12 , 13 , 14. על ידי שילוב של מחקרים אלו הדמיה לחיות עם מניפולציה גנטית, לימודי עוברי דרוזופילה חשף הרבה חלבונים תא החיסון חשוב לשלוט תאים דלקתיים התנהגות בתוך vivo. לדוגמה, זוהתה homolog סיד-1 דרייפר (ITAM מחשבים המכילים חלבון) כמו חשוב "לפגוע קולטן' זה שמתווכת תאים חיסוניים דרוזופילה גיוס2O H2-תלוי באופן לאתרים של נזק15. רמות דרייפר בתוך תאים חיסוניים בתורו מווסתות על ידי סידן-induced JNK איתות גבוהות במורד הזרם של מוות גופה ספיגת12. Hemocyte תנועתיות נוסף דורש שינויים cytoskeletal מורכבים לתאם את ההעברה מכוונת כלפי הפצע וזה תלוי פעילות הרגולטורים cytoskeletal כגון ה bundling אקטין חלבון תמונה מרתקת-16 ומשפחת רו קטן GTPases Rac, רו9.

דרוזופילה הוא חרק holometabolous זה עובר שלבים זחל, הגולמי נוספים בעקבות מופרה, לפני שהגיע לבגרות17. הגולם דרוזופילה פותחה כמודל נוספים עבור פולשני לחיות-הדמיה של מגוון רחב של אירועים הסלולר דינמיים, כולל תא התפתחותי העברה18, חלוקת התא19, התא צמיחה20שריר התכווצות21. לאחרונה, זה כבר נקבעה כמודל רומן שבו ללמוד את הדינמיקה של הפצע תיקון ודלקת ויוו22,23.

בדיוק כמו העובריים, דרוזופילה הגלמים הם משותק שטיחות שקוף, לאחר ניתוח זהיר מ שלהם מקרים הגולמי אטום18. על ידי ניצול זה שקיפות אופטית, אחד יכול לעקוב אחר ההתנהגות ויוו של תאים חיסוניים מולדת (hemocytes) בתגובה הנזק רקמות בתוך רקמות הגולמי דרוזופילה , כגון כנף הגולמי22. האגף הגולמי קיים מבנה bilayered פשוטים, המורכב שני גיליונות אפיתל שטוח גדול המחוברים ברחבי הפריפריה כנף; חוץ-תאית הרווח בין שתי שכבות אלה אפיתל מתמלא hemolymph (דם חרקים), מספר גדול של תאי hemocytes24. בדיוק כמו עוברי, פגיעה מכנית או לייזר המושרה האפיתל האגף מפעיל גיוס מהירה של hemocytes האתר של פציעה23. עם זאת, בשלב זה הגולמי מציע כמה יתרונות חשובים עבור הדמיה מעל קודם העובריים. הגלמים פצוע יכול לדימות במשך זמן רב ובתקופות זמן (לפחות 5 שעות), אזור הרקמה יותר זמין עבור ההפרעות ניסיוני (כגון דור של פציעות מרובות), ישנם מספרים גדול משמעותית של hemocytes נוכח (בשלב הזה מתן מסלולים תא יותר ממרחק נוסף עבור עוצמה סטטיסטית משופרת במהלך הניתוח המתמטית). יתר על כן, היעילות של איון מציאה RNAi בתיווך גנים באופן ניכר שיפור בשלבים הגולמי, ומאפשר גנים רבים להיות 'הפיל למטה' טישו או באופן ספציפי זמן לעומת הגישה כל המוטציות מסורתיות יותר של העוברים.

על מנת לבצע את הדינמיקה של הפצע מחדש epithelialization ואת התגובה דלקתי המלווה בתוך המודל הגולמי החדש, יש ליצור שתי אוכלוסיות תאים שונים: האפיתל הגולמי של תאים חיסוניים מולדת (דרוזופילה hemocytes). מספר סמנים שונים (טבלה של חומרים) זמינים עבור תווית אלה שתי האוכלוסיות תאים שונים - הבחירה של סמן תלוי תהליך מסוים שילמדו. כדי לסמן את אפיתל הגולמי, קווים דרוזופילה המכיל גם ubiquitously ביטוי מתויג GFP E-קדהרין (שמתייג צמתי adherens) מנוצלים באופן שגרתי כדי לציין את העמדות של השוליים בתא, או לחלופין, על ה-GFP מתויג תחום אקטין-איגוד של Moesin (שמתייג את שלד התא אקטין) כדי להמחיש את הפצע-קצה אקטין כויץ הטבעת של מתקדמים בליטות. כדי לתייג את דרוזופילה hemocytes, hemocyte ספציפיים קמעונאי-Gal425 לביטוי נסיעה של RFP גרעינית (לצורך מעקב הגרעין), cytoplasmic GFP או מתויג GFP Moesin (כדי לתייג את שלד התא את הציטופלסמה או אקטין, בהתאמה). photoconvertible fluorophore (כגון קאךה) משמשים. למעשה, לעתים קרובות כדאי להשתמש מספר סמני תא החיסון בשילוב, כדי לאפשר ניתוח בו זמנית של תנועת גרעיני ושל המורפולוגיה תא (ראה תוצאות נציג). עם זאת, מכיוון פרוטוקול זה כרוך השימוש דרוזופילה הגלמים, רק שילובים של סמנים גנטיים כי הם קיימא עד אמצע-הגולמי שלבים יכול להיות מנוצל. כמו כן, עובריים מניות קטלני לא יהיה מתאים. . זה לא צפוי להיות בעיה כאשר הדמיה שליטה (או פראי-סוג) גלמי אבל חשוב לקחת בחשבון בעת גנים הם לנוק או overexpressed, כדי להעריך את ההשפעה שלהם על סגירת הפצע או דלקת. במקרה של lethality מוקדם נגרמת על ידי ג'ין נוקאאוט (או ביטוי) Gal80ts הבונה יכול לשמש כדי לעודד את נוקאאוט מונחה Gal4 בהמשך פיתוח (ראה דיון).

במחקרים האחרונים שלנו, נעה לתוך השלב הגולמי איפשר לנו לאסוף מספיק נתונים מסלול תא החיסון כדי לנתח את התנהגות דלקתיות באמצעות מודלים מתמטיים מתוחכם, אשר בתורו אפשרה לנו להסיק פרטי הרומן של הפצע attractant דלקתיות אותות23. לדוגמה, גישה זו חשף כי chemoattractant הפצע מתפשט באיטיות דרך הרקמה מודלק ב 200 μm2/min, קצב איטי מאשר קודם לכן הציע מולקולות קטנות המועמד כגון ATP או H2O2 מדווחים טשטוש26,27,28,29; מולקולות קטנות "נזק" אלה נוטים במקום לשמש אותות מתירניות. יתר על כן, על-ידי ביצוע הפעולה ארוכת טווח של תאים חיסוניים מולדת כפי שהם לפתור מן פצע ראשוני נחשפים שנייה (עשוי ב timepoints שונים לאחר הראשונה), שחשפנו תקופה זמנית 'הקהיה' במהלך אילו תאים חיסוניים עיוורים פציעות עוקבות23. על ידי ניצול הפוטנציאל הדמיה לטווח ארוך של המודל הגולמי, יחד עם דרוזופילה גנטי ללקוחות שלנו, אחד לא יכול לנהוג את אופן הפעולה של אוכלוסיות תאים חיסוניים מסוים (כגון רק אלה תאים חיסוניים גייס לאתר הפצע) ב תגובה עלבונות עוקבות, באמצעות fluorophore photoconvertible30 אשר יכול לבוא לידי ביטוי אך ורק בתוך שושלת היוחסין תא החיסון23.

כאן נתאר פרוטוקול להמחיש את הדינמיקה של הפצע ותיקון את התגובה דלקתית המשויך ברזולוציה-עתיים גבוהה באמצעות מגורים הגלמים דרוזופילה . אנו מספקים מתודולוגיה מפורט כדי לכסות את השלבים הנחוצים לביצוע ההכנה הראשונית גלמי (דיסקציה, הרכבה) עוקבות בתיווך לייזר ובפציעתם ואת ההדמיה זמן לשגות. אנו מתארים גם את השימוש צילום-להמרה fluorophores להתיר תיוג של תאים חיסוניים מסוים קבוצות משנה ויוו. לטווח הארוך, נוכל לדמות כי המודל הגולמי דרוזופילה החדש יפתח אפשרויות מרגשות ניקוד הדינמיקות איתות מורכבים שבבסיס התגובה דלקתיים ברקמות. על-ידי החלת ניתוחים סטטיסטיים מתוחכמים יותר אחד עשויות לחשוף את התכונות של תגובת שאמורים להיות נגיש ניסיוניים, בעוד יעילות משופרת RNAi יכול להלוות עצמה ליישום של הגנום כולו ההקרנה בתוך תאים חיסוניים ויוו לזהות שחקנים הרומן ויסות התנהגות תא החיסון.

פרוטוקול

פרוטוקול זה כולל ארבעה שלבים רציפים הראשי: (1) הכנת דרוזופילה מניות ו הזמני של דרוזופילה הגלמים, דיסקציה הגולמי (2), הרכבה, ופצעו הגולמי (3), (4) אין ויוו זמן לשגות קונאפוקלית הדמיה.

1. הכנת דרוזופילה מניות ואגרות הזמני של הגלמים

  1. להשיג את המניות דרוזופילה המתאים (ראה מבוא ו לטבלה של חומרים).
  2. לאסוף את הזבוב הבוגר בריא צעיר של גנוטיפ המתאים.
    1. בחר מבוגר זבובים באמצעות רפידות גז פחמן דו-חמצני כדי בקצרה עזים ומתנגד הזבובים, במכחול בסדר להעביר טיסות של גנוטיפ המתאים או מגדר בקבוקון אוסף.
    2. להוסיף 20 בתול נקבות וזכרים 20 כל בקבוקון המכיל אוכל לטוס סטנדרטיים מדיה (תערובת קמח תירס-מולסה-אגר, ראה טבלה של חומרים) בתוספת שמרים.
  3. לדור הגולמי אופטימלית, עצה הזבובים הבוגרים בכל יום על גבי אוכל חדש ב הבקבוקונים טריים, שמירה על כל הבקבוקונים ב 25 º C.
    הערה: אם נעשה שימוש במערכת Gal4-UAS31 לנהוג ביטוי גנים ספציפיים שושלת היוחסין, כל הצעדים צריכה להתבצע 25 ° c או מעל, כמו מערכת Gal4-UAS הוא רגיש לטמפרטורה.
  4. 18 h לפני הדיון הדמיה מתוזמנת, בחר לפחות 10 שהוקם לבן קדם גלמי (איור 1 א') הבקבוקונים (כלומר 0 h לאחר היווצרות puparium, APF) באמצעות מלקחיים או במכחול בסדר מכך גלמים ממשטח המבחנה פנים ו העברת הגלמים בקפידה לצד של בקבוקון פלסטיק ריק ונקי.
    הערה: נודד 3rd לחלל הזחלים לזחול כלפי מעלה מהדרך אוכל לעבור להתגלמות; prepupae לבן שהוקם מזוהים בקלות כמו שהם מחזיקים everted spiracles הקדמי הם נייחים (בניגוד הזחלים 3rd לחלל). הקוטיקולה הופכת 'puparium' (המקרה הגולמי) אשר בתחילה רכים ולבנים17. יש לנקוט כדי למנוע נזק הגלמים, כמו זה יכול להוביל לא רק כדי לא רצויים הנוצרות על-ידי פגיעה דלקתית תשובה, אלא גם על עיכוב התפתחותי משמעותי.
  5. גיל הגלמים הנבחרת לשלב ההתפתחותי המתאים (18 h APF ייתן תוצאות אופטימליות) בבקבוקון ב 25 º C.
    הערה: כאשר הגלמים מתפתחים, המקרה הגולמי יהפכו בהדרגתיות לחשוכים ופריך יותר.
  6. היכונו אחרים השלב הבא מבעוד מועד. כדי להפוך את heptane ב דבק, לשלב באורך 20 ס מ של סרט דו צדדי מגולגל למעלה עם heptane ב 20 מ בשפופרת צנטרפוגה 50 מ ל, חותם עם הסרט פרפין, רוק בטמפרטורת החדר למשך הלילה על הספסל.

2. ניתוח דרוזופילה הגלמים והכנה

  1. להעביר את הגלמים דרוזופילה בשלבים נייר-דבק דביק דו-צדדי רכוב על משטח זכוכית. מקם את הגלמים כך הצד הבטני דבוק על הסרט ועל הצד הגבי פונה כלפי מעלה (איור 1B).
    הערה: החלק הפנימי. של הגולם תהיה לזיהוי מ שני spiracles בולטות מהקצה הקדמי של המארז הגולמי.
  2. הסר בזהירות את הגלמים מ שלהם מעטפת מגן puparium תחת מיקרוסקופ דיסקציה brightfield באמצעות מלקחיים ומספריים מיקרו (איור 1B-D).
    1. בתחילה, לעשות חתך באזור הקדמי ביותר puparium עם המלקחיים (איור 1B). ודא כי המקרה הגולמי באזור זה הוא חלול ונטול רקמות הגולמי כי הגלמים התכווצו בתוך התיק במהלך התפתחות מוקדמת הגולמי.
    2. אחרי החתך הראשוני, בזהירות לקרוע או לפתוח את התיק הגולמי בקדמי אחורי כיוון בעזרת מלקחיים או microscissors (איור 1C) עד הגולם היא חופשית לחלוטין של חום מעטפת אטומה שביר (איור 1D).
      הערה: גלמי בשלב זה הם מאוד שבירים ו יש לנקוט כדי להימנע ניקב פני הגולמי; ניקב ברור כפי hemolymph במהירות ידלוף החוצה מן החדירה. הגלמים עם דקירות, קטן ככל שיהיה, צריך להיות מושלך.
  3. הר הגלמים בצלחת עם תחתית זכוכית באמצעות דבק heptane.
    1. השתמש טיפ פיפטה 20 מ"ל כדי למקם טיפת דבק מוכן מראש heptane ב (ראו סעיף 1.6 לעיל) 10 מ ל קו על המנה עם תחתית זכוכית.
    2. לאפשר הדבק לייבוש על 5 s לפני העברת הגלמים גזור בקפידה על גבי הדבק heptane ב באמצעות מלקחיים (איור 1E).
    3. על מנת להקל על ופצעו והדמיה, בשורה הגלמים ברציפות; כ 5 הגלמים הם הציעו אבל יותר יהיה לניהול עם ניסיון.
      הערה: שימוש בדבק heptane ב זו מומלצת לשימוש בעת שימוש במערכות הדמיה זקוף אך אין צורך בעת באמצעות מערכת הפוכה. אם הדבק יוצר אופטי שיבושים במהלך הגלמים הדמיה, ניתן להניח ישירות על coverglass במקום – הדבקה טבעית בין רקמות הגולמי זכוכית יהיה מספיק ברוב המקרים עבור הדמיה יציבה, כל עוד הטיפול נלקח בעת העברת ההדמיה מגישים בין מיקרוסקופים.
  4. לקבלת תוצאות מיטביות, הר הגלמים כך האגף הוא שטוח על coverglass עם רוב השטח כנף במגע ישיר עם coverglass (איור 1F). לגלגל את הגלמים באמצעות מלקחיים כדי לשנות את המיקום שלהם על מנת להבטיח שהכנף, מותקן כראוי.
  5. כדי למנוע התייבשות מדגם במהלך תקופת הדמיה, הוסף פיסת נייר סינון סופג ספוג במים מזוקקים לצד המנה תת בסוף הרכבה, נזהר שלא להפריע הגלמים (איור 1E). מכסים את הכלי עם מכסה.
    הערה: הגלמים הם עכשיו מוכן ופצעו והדמיה.

3. לייזר המושרה ופצעו כנפיים הגולמי דרוזופילה

  1. להעביר את המנה עם תחתית זכוכית המכיל את הגלמים הנטען כדי מיקרוסקופ שדה רחב מצויד עם מערכת אבלציה לייזר tunable.
    1. השתמש לייזר פעמו-UV אוויר מקורר חנקן-שאוב אבלציה למכוניתך 435 nm-ראה טבלה של חומרים עבור פרטים11; אורך הגל מדויק של האור בשימוש לתאורת נבחרה על-ידי המשתמש באמצעות תא צבע המתאים.
  2. שימוש brightfield אופטיקה, התאם את בקרי הבמה מיקרוסקופ כדי לאתר האגף הגולמי של הגולם הראשון להיות פצועים (איור 1F).
  3. לקבלת תוצאות מיטביות, לשימוש של העדשה המטרה של טבילה 40 X או 63 X שמן בשני ההדמיה, לייזר אבלציה; ודא טבילה הנוזל בשימוש (שמן או גליצרול) עקבי בין אבלציה מערכות הדמיה. להתאים את המיקרוסקופ להתמקד על המטוס של האפיתל כנף הגולמי הקרוב ביותר coverslip זכוכית (קרי פוקוס על האזור של האפיתל כדי להיות פצועים) באמצעות את כפתור בקרת להתמקד בסדר גמור.
  4. באמצעות התאמות הבמה מיקרוסקופ, מקם את האגף הגולמי כך האזור כדי להיות פצועים מיושר ישירות עם אזור המטרה ידועה אבלציה לייזר.
  5. להשתמש שקופית מחליש צפיפות האנרגיה אל המיקרוסקופ להתאים ידנית על רמת צריכת החשמל של האור אבלציה.
    הערה: המחוון מחליש כולל תחנות לחץ ופסקי דין כדי לזהות את הרמה היחסית של הנחתה ולהתיר את השימוש בהגדרות לשחזור.
  6. משתמש בפקד ידנית חיצוני המפעיל , להפעיל את הלייזר אבלציה באמצעות בלחיצה קצרה של הגורם המפעיל כדי להפוך פצע. בדוק המראה של בועת האוויר ארעי באתר אבלציה מאחר ופצע בדרך כלל ילווה אותו. בדוק אם ובפציעתם לייזר המושרה הוכתרה בהצלחה באמצעות את המסננים המתאימים פלורסנט להמחיש האפיתל הגולמי.
    הערה: לטפל כדי למנוע חשיפה מקרית קרני לייזר ההשתקפויות קרן יכול לגרום עין חמורה או העור נזק.
  7. אם ופצעו אינה מצליחה, משתנים המטוס מוקד (להעביר את המוקד מיקרוסקופ מעט מעל או מתחת לרמת מוקד הנוכחי) וחזור בלחיצה אחת על ההדק אבלציה. לחלופין, להגדיל בהדרגה את עוצמת הלייזר באמצעות השקופית מחליש עד גודל הפצע הרצויה מושגת.
  8. כדי להשתנות אבלציה לייזר חזרה הדופק, השתמש את כפתור חזרה שער בלוח הבקרה אחורי (אשר משתנה הקצב הדופק לשנייה פחות מ- 1 עד 60 הרץ). ופצעו אופטימלית, להגדיר את קצב החזרה של הדופק עד 40 הרץ.
  9. כדי ליצור פצעים בגדלים שונים, להשתמש השקופית מחליש צפיפות אנרגיה כדי להתאים ידנית על רמת צריכת החשמל של האור אבלציה.
  10. להימנע ופצעו את כל הנטען הגלמים ולהשתמש הגלמים האלה שאינם ablated כפקדי unwounded.
  11. עבור תוצאות עקביות, באופן קבוע ליישר מחדש את מערכת אבלציה (באמצעות מדריכי הפעלה הרלוונטיים). כמו כן, לנקות, ממלאים את התא מהוד צבע ששולט הגל פלט לייזר.

4. in Vivo זמן לשגות קונאפוקלית הדמיה

  1. במהירות להעביר את המנה עם תחתית זכוכית מיקרוסקופ המתאים עבור הדמיה בצילום מואץ.
    הערה: לקבלת תוצאות מיטביות, השתמש קונאפוקלית מפרט גבוה או מיקרוסקופ דיסק ספינינג המצויד גלאי רגיש שיכול לזהות GFP והן mCherry fluorophores.
  2. כדי דמות בכל האגף הגולמי, השתמש בעדשה המטרה הגדלה נמוכה (למשל 20 X) (איור 2 א). סדר התגובה דלקתי המלווה עם רזולוציה מרחבית גבוהה ותיקון תמונות פצע, להשתמש טבילת שמן 40 X (NA 1.3) או 63 X (NA 1.4) המטרה עדשות (ראה תמונות נציג ב איור 2B-D).
  3. פתח את התוכנה לכידת התמונה המשויך המיקרוסקופ.
  4. באמצעות התוכנה לכידת התמונה, הפעל את לייזרים המתאים למשל 488 ננומטר ואת לייזרים nm 561 להמחיש GFP, mCherry fluorophores, בהתאמה (על-ידי לחיצה על התיבות הרלוונטיות), להתאים את עוצמת הלייזר, רווח/אופסט הגדרות לתת מספקת אות ניאון תוך הימנעות פיקסל רוויה; להשתמש את עוצמת הלייזר אפשרי הנמוך (טווח של 5-20%) כדי למזער את photobleaching ואת phototoxicity.
  5. כדי ללכוד שתי תיקון את אפיתל והגיוס תאים דלקתיים, להגדיר המיקרוסקופ להקליט z-מחסנית באמצעות ידיות התאמת את המוקד בסדר בלוח הבקרה; לקבלת תוצאות מיטביות, להגדיר את התוכנה (באמצעות לחיצות כפתור ידני) z-פרוסות הרשומה באמצעות האגף הגולמי (מינימום כל 3 מ מ), מהחלק העליון של האפיתל פצועים דרך למרחב חוץ-תאית מתחת (מכיל hemocytes נודדים) כדי להשיג גדול z-מחסנית (בטווח של 50-100 מ מ).
  6. עבור הדמיה בצילום מואץ, להקליט את z-במחסן במרווחי זמן קבועים (מינימום 30 כל s) לפחות 1 h שלאחר ופצעו.
    הערה: מרווח הזמן המדויק בין z-ערימות נבחר מייצג פשרה בין ללכוד את הדינמיקה התא המשתנים והימנעות הלבנת לצילום של הדגימות.
  7. לשיקוף בו זמנית מרובים גלמי (כולל שאינם ablated פקדים unwounded), להשתמש במה ממונע (מצורף המיקרוסקופ) התכונה רב בעמדה רכישה זמינה בתוך התוכנה הדמיה. להגדיר באופן ידני את המיקום של כל גולם בודדים בתוך התוכנה באמצעות ידיות שליטה על הבמה עמדה ולאחר מכן הגדר ידנית את מגבלות z המתאים-מחסנית (העליון והתחתון) עבור כל גולם בודדים.
  8. דמיינו הדימויים בצילום מואץ במהלך לכידת התמונה או מאוחר יותר עם מומחה התמונה ניתוח תוכנה (כגון ImageJ32) באמצעות הקרנות z-מחסנית או עיבוד תלת-ממדי. לדוגמה, כדי לעקוב אחר תנועות hemocytes בודדים (כמו 2C איור' ו- D'), גרעינים hemocyte המסלול באמצעות גישה פתוחה ImageJ plug-in "TrackMate" או "מדריך מעקב" (שיטות לאור 33, 34).
  9. השתמש הבדיקות photoconvertible (כגון קאךה30) כדי photoconvert באופן סלקטיבי, תווית תת-קבוצה של תאי אפיתל או המערכת החיסונית במהלך דימות.
    1. פתח את המודולים המתאימים בתוך התוכנה הדמיה כדי לבצע את photoconversion (כגון FRAP, קרינה פלואורסצנטית התאוששות לאחר הלבנת-צילום מודול) ולהפעיל את 405nm לייזר (על-ידי לחיצה על תיבת בתוכנות הרלוונטיות)35.
    2. בחר בתאים כדי להיות photoconverted בתוך התוכנה FRAP באמצעות הכלי בחירה מרובע, עגול או ביד חופשית. בתוך התוכנה FRAP, להגדיר את הזמן-קורס photoconversion (Bleaching) מסגרת/איטרציה אחת והגדר את 405 ננומטר לייזר בעוצמה 20% לייזר. באופן ידני, לחץ להתחיל את הניסוי כדי לבצע photoconversion.
    3. לצאת המודול FRAP (לחץ על סגור) ולחזור למסך הדמיה המקורית בתוך התוכנה; שימוש 488 ננומטר, לייזרים nm 561 תמונה את אופן הפעולה של תאים photoconverted ושאינם-photoconverted על-ידי הגדרת z-מחסנית והקלטה בצילום מואץ כאמור לעיל.
      הערה: Photoconverted הגששים נותרים יציבים במשך שעות רבות לאחר photoconversion הראשוני, המאפשר את אופן הפעולה של התאים photoconverted להיות אחריו לאורך זמן (לפחות 5 שעות). לדוגמה, דלקתיות התאים בתוך הפצע יכול להיות סלקטיבי photoconverted (איור 2F), את התנהגותם בעקבות כפי הם פותרים מאתר פגיעה (איור 2G ו- H).

תוצאות

פרוטוקול זה מתאר את הכנת דרוזופילה הגלמים עבור הדמיה בצילום מואץ בשידור חי של הפצע תיקון ודלקת ויוו. באמצעות שיטה זו, זה צריך להיות ניתן לייצר מספר סרטים ברזולוציה גבוהה של סגירת הפצע הגולמי והגיוס תאים דלקתיים בקלות תמונה הגלמים עבור פרקי זמן ארוך (לפחות 5 שעות) שלאחר ופצעו ללא photobleaching משמעותית.

ערכת כללי להכנה גולם דרוזופילה

איור 1 מדגימה שיטת אופטימלית עבור הכנת דרוזופילה הגלמים ויוו הדמיה. דרוזופילה לבן 'prepupae' נאספים ב- '0 h' לאחר היווצרות puparium (APF), ככל החרקים זוחלים חדל תנועתיות ולאמץ את הצורה הגולמי סטריאוטיפי עם everted נשימה תוספות (spiracles) גלוי בקצהו הקדמי ביותר שלהם ( איור 1A). ה 0 לבן APF prepupae מותר לפתח עבור 18 h ב- 25 ° C, שבו זמן הפך puparium בראון (איור 1B) והם מכן גזור באמצעות מלקחיים בסדר ו/או microscissors (איור 1C, כדי להסיר את המקרה הגולמי מגן) כדי לחשוף גולם שקוף אופטית בתוך (איור 1D). בעקבות ניתוח, הכנפיים הגולמי יהיה גלוי על הצדדים לרוחב של בית החזה הגולמי (במיתאר כחול, איור 1C-D). בשלב זה, שאר חלקי הגוף הגולמי גם הם בקלות ניכרת, לרבות עיניים, הרגליים, הבטן (המסומנות ב- 1D איור). הרגליים גם הם מתאימים ללימודי דלקת בפצע, יכולים להיות פצועים באמצעות שיטת לייזר זהה המתואר לעיל. מספר 18 h APF הגלמים יכול להיות מותקן בו זמנית בתוך המנה הדמיה (איור 1E, באמצעות heptane ב דבק נייר סינון ספוגי מים כדי למזער את התייבשות) עם חלק שטוח ביותר של האגף (עם מיתאר כחול) בקשר עם coverslip ( איור 1F); זהו יתרון מיוחד אם המיקרוסקופ הדמיה מצויד שלב ממונע כדי לאפשר מספר הגלמים שיירשמו בתקופה הדמיה בודד אחד. צריכים להיות מושלך מכל הגלמים אשר נפגעו במהלך ניתוח או הרכבה (למשל הגולם ממוקם שלישי ברצף, חץ איור 1E). חלקי גוף אחרים (למשל עיניים, רגליים, ורוד עם מיתאר) ניתן גם לפנות את coverslip והם זמינים עבור ופצעו ובעקבות הדמיה (איור 1F). לניסויים לומד פצעים יחיד, לייזר המושרה נזקים הם בדרך כלל בצורה הטובה ביותר שנגרם מרכזי באגף (כוכבית, איור 1F), למרות מיקומים אחרים עשוי לשמש אם פציעות מרובות שילמדו.

ופצעו סטרילי מפעילה תגובה דלקתית חזקה באגף הגולמי דרוזופילה

לעקוב הפצע ותיקון של המלווה תגובה דלקתית ויוו, כנפי 18שע APF דרוזופילה הגלמים הפצועים היו עם תמונה באמצעות מיקרוסקופיה קונפוקלית בצילום מואץ (איור 2 א-H). בשלב זה הגולמי, epithelia אגף הם לוחות שטוחים פשוטה של תאים (הנקראת כאן באמצעות E-קדהרין מתויג GFP כדי לסמן גבולות תא בודד, אגף שוליים שמתואר באיור 2A). אפילו באגפים unwounded (נמוך ההגדלה, דמויות 2A ו- 2A'), מספרים גדולים של נדידת תאים חיסוניים מולדת (hemocytes, הנקרא באמצעות קמעונאי-Gal4 מונע cytoplasmic GFP, ירוק, ו- RFP גרעינית, מגנטה) ניתן למצוא במרחק (hemolymph דם חרקים) כובש את החלל חוץ-תאית להתערב (איור 2 א ו 2A'). לייזר המושרה לפגיעה האפיתל כנף הגולמי (שולי הפצע המתוארים לבן, איור 2B-D) מעוררת העברה מהירה של hemocytes לאתר הפצע (איור 2B-D ו תא החיסון גרעינים ב איור 2B '-D'). תיוג של hemocytes עם שני גרעיני (למשל RFP גרעיני 'אדום-עוקץ') בשילוב עם סמן cytoplasmic או cytoskeletal (למשל cytoplasmic GFP או Moesin מתויג GFP) זה שטר יתרון מיוחד שכן היא מאפשרת מעקב בו זמנית של גרעינים hemocyte (לניתוח אוטומטי של hemocyte ההתנהגות למשל העברת מהירות, כיוון), הפריט החזותי של מורפולוגיה hemocyte. זו האחרונה היא חשובה שכן היא מאפשרת לנו לקבוע אם hemocytes הן phagocytosing פסולת נמק (איור 2C, הזחה) קצוות הפצע (או חיידקים במקרה של זיהום)12,23 , גם מאפשר לנו לעקוב אחר התנהגותם protrusive כפי שהם להאריך filopodia בסדר או lamellipodia בקצה המוביל שלהם כפי הם נודדים לקראת או הרחק את הפצע.

פשוט מעקב של מסלולים גרעיני hemocyte באמצעות ניתוח תמונות המתאימות תוכנה32 (טבלה של חומרים) מדגים את הדינמיקה-עתיים מורכבים לתגובה דלקתית, דומה לזה שדווחו בעבר עבור פצועים עוברי9,36 (רצועות צבעוניות, איור 2C' ו D'). במרחק רק 30 דקות של ופצעו, hemocytes ממוקם קרוב אל אתר פגיעה להתחיל ההעברה מכוונת כלפי הפצע (איור 2C"). עם זאת, עם הגדלת זמן לאחר פציעה, hemocytes ממוקם בהדרגה עוד יותר מן האתר פגיעה גם להתחיל ההעברה מכוונת כלפי הפצע (איור דו-ממדי'). בדרך זו, 'גל' של תגובתיות תא החיסון שמתפשט מסובבת כלפי חוץ מהקצה הפצע הוא ציין, שאנו מדמיינים כדי לשקף פעפוע של chemoattractant הפצע מן האתר פציעה. הדינמיקות האלה תא החיסון-עתיים סיפק נקודת התחלה שימושית עבור שלנו במחקר עדכני שהפעיל מתוחכמים דוגמנות ("היסק בייסיאנית") אנליזה מתמטית להסיק מאפיינים הרומן של האות attractant הפצע (שיטות מפורט פורסם ב23.) על ידי כיול המודלים שלנו חישובית (זה מקושר המילוי ההדרגתי attractant הפצע hemocyte bias) כדי להתאים שנצפה ויוו מסלולים המערכת החיסונית, אחד יכול לחלץ מפורט מאפייני attractant פצע המסלול שלנו hemocyte נתונים (כגון קצב פעפוע אות המקור, את משך הייצור אות)23.

יתר על כן, על ידי נהיגה הביטוי של fluorophore photoconvertible קאךה בתוך שושלת היוחסין תא החיסון באמצעות קמעונאי-Gal4 (ירוק, איור 2E) גם היינו יכולים לתייג באופן סלקטיבי subpopulation של אלה hemocytes כנף הנדידה (כגון אלה גייסו לאתר הפצע; E, לפני UV-induced photoconversion ו- F, פוסט-photoconversion). אז שנמשיך את אופן הפעולה של hemocytes האלה לאורך זמן (מגנטה, איור 2G-H) כפי שהם לפתור מן האתר הפצע (חיצים, איור 2G ו- H) ולהשוות איך ההתנהגות שלהם שונה האלה הלא-photoconverted התאים לא מגיעים לאתר פציעה. השתמשנו זה ויוו תיוג טכניקה כדי להדגים כי hemocytes מגויס ראשוני לפצוע באופן זמני רגישות לפצע השנייה שנוצר 90 דקות מאוחר יותר23, למרות טכניקה זו תיוג דיפרנציאלי יכול גם יש הרבה שימושים תובנה אחרים בעתיד (ראה דיון).

באמצעות גישה זו, נוכל גם בעת ובעונה אחת לעקוב אחר הדינמיקה-עתיים של הפצע תיקון או אתה-epithelialisation' (איור 2B-D). כאן ubiquitously לידי ביטוי מתויג GFP E-קדהרין מתייג את צמתי adherens הסלולר ברחבי האפיתל כנף ומאפשר את הצורות של תאים אפיתל בודדים להיות אחריו לאורך זמן. קצה הפצע מזוהה בקלות בצומת שבין תאי אפיתל GFP שכותרתו שלם ופסולת ללא תווית (לבן קו מקווקו, איור 2B-D). עבור רוב הפצעים, הפצע מתחיל מחדש epithelialize בתוך h 1 של פציעה, פנימה מקדמות את קצה הפצע (איור דו-ממדי); הפצעים של גודל זה ירפא בדרך כלל בתוך 2-3 h של פציעה23. סגירת הפצע עוברי והן הגלמים הוא מונע על ידי כבל כויץ actomyosin יחד עם הקצה המוביל אקטין-עשיר filopodia23,37; הדינמיקות האלה cytoskeletal ניתן לאבחן באופן ישיר במהלך תיקון הפצע באמצעות עיתונאים המתאים ויוו , כמו דלעת הספגטי מתויג GFP (צולבות הקישור חוטים שרירן רגולטוריות שרשרת אור) או מתויג GFP מחייב אקטין Moesin23. עבור פצעים גדולים במיוחד, עם זאת, כבל actomyosin ואת הקצה המוביל filopodia אינן נמשכות - הפצעים הללו הופכים "כרונית", אף פעם לא לגמרי מחדש epithelialize23 גם אחרי הרבה תקופות ארוכות יותר (מעל 24 שעות) אין ויוו הדמיה. מעניין, התגובה דלקתית המשויך הפצעים הללו-הילינג הוא שונה במידה ניכרת מן משויכים עם פצעים אקוטי נורמלי23 רומז כי התנהגות חריגה תא החיסון יכול להיות סמן prognostic שימושי במרפאה . בעתיד, בהמשך ויוו ניתוח של פצעים כרוניים באמצעות הדמיה ארוכת טווח (מעל 24 שעות) במודל הגולמי עשוי לספק תובנה מכניסטית חשוב המתיש הזה.

figure-results-1
איור 1: דרוזופילה גולם הכנה ופצעו, הדמיה לחיות. (א) דרוזופילה prepupae לבן שייאסף הו APF, עם הקצה הקדמי שצוין על-ידי everted נושם תוספות (spiracles). (B) לאחר שהקים prepupae APF לבן h 0 עבור 18 h ב- 25 ° C, puparium מופיע חום. ניתוח המקרה הגולמי לתדר האזור הקדמי ביותר (חץ), שמציין את spiracles everted כמו הגולם נאות נעדר זה באזור, ואת מלקחיים בסדר ו/או microscissors להשתמש כדי להסיר המקרה הגולמי מגן (C). הכנפיים הגולמי יהיה גלוי על הצדדים לרוחב של בית החזה הגולמי (קווי מתאר כחול). התיק הגולמי (D) הוסרו לחלוטין מ- 18 h APF גולם, כאן הגולם התגלגל 90 ° כדי להראות את הצד הלטראלי, עם האגף לדימות במיתאר כחול. (E-F) חמש 18שע APF הגלמים רכוב על זכוכית coverslip בתוך הדמיה מאכל באמצעות דבק heptane ב, עם ספוג מים נייר סינון כדי למזער את התייבשות (E). גולם ממוקם שלישי ברצף (חץ) צריכים להיות מושלך כפי נזק שקרה במהלך ההכנה. הגלמים הם רכובים עם החלק שטוח ביותר של האגף (עם מיתאר כחול) בקשר עם coverslip (F) ו לייזר המושרה פצעים נוצרים מרכזי באגף (כוכבית, F), למרות מיקומים אחרים עשוי לשמש אם פציעות מרובות שילמדו. התמונה ב- (D) הותאם באישור. et al., 2016 האורגים23. אנא לחץ כאן כדי להציג גירסה גדולה יותר של הדמות הזאת.

figure-results-2
איור 2: דינמי ויוו ניתוח של התגובה דלקתיים ברקמות. הגלמים גזור מן המקרים הגולמי מגן, רכוב על זכוכית coverslip (א) נפצעו, לאחר מכן עם תמונה באמצעות מיקרוסקופיה קונפוקלית בצילום מואץ (בה). נמוכה הגדלה תצוגה של האגף הגולמי unwounded (A, אגף שוליים המתוארים בלבן) המכיל מספר גדול של hemocytes נודדות (א'). לייזר המושרה לפגיעה האפיתל כנף הגולמי (B-D, תא לגבולות התא הנקרא באמצעות מתויג GFP דרוזופילה E-קדהרין; פצע שוליים המתוארים בלבן) מפעילה תגובה דלקתית מהירה עם ההעברה של מספר hemocytes ( קמעונאי-Gal4 המונעת על ידי ביטוי של RFP גרעינית, מגנטה, cytoplasmic GFP, ירוק) לכיוון האתר הפצע (B-D; מסגרות נציג מסרט זמן לשגות בו כל מסגרת היא תחזית של 25 פרוסות 3 μm). מעקב ידני של מסלולים hemocyte (רצועות צבעוניות, ג ' ו- D') מציינים את הדינמיקה-עתיים מורכבים לתגובה דלקתית, דומה שדיווח על עוברי פצועים. Hemocytes phagocytose גם עם נמק הסלולר פסולת באתר הפצע (חץ, C גם כניסה). הביטוי של fluorophore photoconvertible קאךה בשושלת תא החיסון (ירוק, E, באמצעות קמעונאי-Gal4) מאפשר גייס הפצע hemocytes (חץ, E) באופן שונה עם התווית (מגנטה, F), אחריו במשך הזמן כפי הם פותרים מאתר פגיעה (חיצים, G ו- H). אחרים הגולמי הבאים נוצלו: (י-ם) w1118; ubi-דה-cad-GFP, קמעונאי-Gal4 > UAS-GFP(II); UAS-nRFP(III) ו- (E-H) w1118; srp-Gal4(II); UAS-Kaede(III). תמונות הותאם באישור. et al., 2016 האורגים23. אנא לחץ כאן כדי להציג גירסה גדולה יותר של הדמות הזאת.

דיון

תגובת דלקתית חריפה נזק לרקמות הוא תהליך מורכב, דינמי מאוד חיוני שננהל את התיקון של רקמות פצוע, לרבות פינוי של פסולת נמק ומאבק נגד זיהום. מלא להבין, לפענח את ההיבטים הבסיסיים של תגובה זו, זה קריטי כי מחקרים הם שבוצעו ויוו על דגימות חיים תלת-ממדי כדי הפעולה המדויקת, האינטראקציות השונות תא שושלות מעורב להיות אחריו באופן מדויק לאורך זמן. ניתוח בזמן אמת של הדינמיקות האלה תא מאפשרת אפיון מפורט יותר של פנוטיפים מוטציה מאשר סטטי יחיד בזמן נקודות מדגימות קבוע באמצעות טכניקות אימונוהיסטוכימיה קלאסי. באופן מסורתי, רוב המחקרים הדמיה לחיות באמצעות מודל דרוזופילה גנטית צייתן השתמשו עובריים לשלב ההתפתחות fruitfly בשל המוגבהת האופטי שלה נייחות לעומת שלבים התפתחותיים מאוחר יותר4 , 5. עם זאת, לאחרונה הקבוצה שלנו ואחרים פיתחו הגולם דרוזופילה כמודל הרומן לבצע ברזולוציה גבוהה לטווח ארוך הדמיה של הפצע תיקון ודלקת בו-זמנית ויוו8,22 ,23. גישה זו המתעוררים מציע פוטנציאל לטווח ארוך מרגש של היבטים יסודיים unraveling אופן הפעולה של תאים דלקתיים, ניתן להתאים נוסף כדי לחקור את התנהגות דינמית של שושלות תאים אחרים (כגון דרוזופילה adipocytes 38) בעקבות פגיעה ברקמות.

ישנם מספר גורמים קריטיים במהלך ההכנה, הדמיה של הפצועים הגלמים דרוזופילה שיקבע את איכות התוצאות הדמיה שתוארו לעיל. ניתן לטעון השלב הקשה ביותר של הפרוטוקול המתואר היא ניתוח זהיר של מיקום מדויק של הגלמים לפני ופצעו והדמיה. הגלמים בשלב התפתחותי זה הם רגישים במיוחד, אפילו מינורי נזק בשוגג הגלמים הכנה בשלבים יפגום באופן משמעותי את הניסוי; כל הגלמים ייתכן שקיימו נזק מכוון חייב להיות מושלך מהניסוי מאז נזק זה יכול להפעיל משלו תגובה דלקתית, אשר עשוי להוביל עוד השלכות פרושות לרווחה (או אפילו מערכתית) על תאים דלקתיים התנהגות במקומות אחרים הגולם. עקב הפיתוח המתמשך של הגלמים מנוצל בניסויים אלה (אשר עוברים rearrangements לרקמות משמעותי להתכונן לבגרות רקמות), לעיתים הגלמים יעברו במהלך דימות. מתגלגל הגולמי הוא, לעומת זאת, עשויה להתרחש אם גלמי יש לא היה רכוב כראוי עם משטח שטוח ביותר של האגף (או רקמות אחרות לדימות) בקשר ישיר עם coverglass; שימוש בדבק heptane ב לייצב את הגלמים על הזכוכית המכסה צריך למזער תנועה זו לא רצויים. מסיבה זו, זהירות רבה יש לקחת גם להימנע הם מוציאים את הגלמים עמדותיהם מסודרים בקפידה בעת העברת הדגימות בין מיקרוסקופים; באופן אידיאלי, הלייזר wounding יצורפו המיקרוסקופ אותו כדי לשמש עבור הדמיה בצילום מואץ עוקבות, צילום-המרה.

בנוסף מיומנות של דיסקציה הגולמי, הרכבה צעדים, גנוטיפ המדויק של הגלמים דרוזופילה בשימוש תהיה השפעה משמעותית על איכות הנתונים הדמיה שנוצר. לדוגמה, מספר העותקים של הנהג Gal4 ושל מבנים UAS (למשל UAS-GFP או קאךה UAS) במרחק גנוטיפ הגולמי בודדים יקבע את יחס אות לרעש במהלך דימות עוקבות. ככלל, עותקים רבים יותר של Gal4 או UAS לבנות הנוכחי, יגדל הרמה הכוללת של חלבון פלואורסצנטי (למשל GFP או קאךה) בתוך הרקמה. הרמה האופטימלית של חלבון פלואורסצנטי, עם זאת, יהיה איזון זהיר בין זריחה רקמות והתעלות מספיק כדי לאפשר באיכות גבוהה הדמיה (ומאפשר שימוש כוחות לייזר נמוכה, ירידה photobleaching הדמיה לאורך זמן ממושך תקופות) אבל מבלי לגרום fluorophore-induced רעילות הסלולר; המספר האופטימלי של המבנים Gal4 ו UAS ניסוי ישתנו בהתאם מנהלי התקן מסוים fluorophores בשימוש. צריך לקחת כדי לגייס את הגלמים 25 ° c (או לעיל, עד 29 ° C) כי מערכת Gal4-UAS טמפרטורה רגיש ולא יהיו יעילות על טמפרטורות נמוכות31. על מנת להשיג רמות נוספות של שליטה על הרקמה או זמן-יחודיות של Gal4 -מונע הביטוי, Gal4-UAS מערכת מדכא. שבולם Gal80 יכול גם להיות כלולה גנוטיפ הגולמי39. Gal80 יכול לשמש גם כדי לדכא פעילות Gal4 בתוך רקמה מסוימת (באמצעות Gal80 של רקמות ספציפיות) או בזמן מסוים (באמצעות חום Gal80 רגיש). מערכת Gal4-UAS יכול להיות משולב עם עוד מערכות בינאריות עצמאיות אחרות (כגון לקסה -lexAop ומערכות QF -QUAS ) כדי ליצור דרוזופילה שבו יש מספר מבנים (למשל fluorophores, קווים RNAi או מבנים גנטיים אחרים) הביע בו זמנית במגוון של רקמות שונות39.

השימוש המודל הגולמי דרוזופילה החדש מציע מספר יתרונות על פני הגישה המסורתית יותר העובר. בהשוואה ההדמיה לטווח קצר (עד 3 h) הזמינים ב שלב 15 עוברי (השלב שבו ביותר עובריים ופצעו מחקרים מבוצעים) גלמי יכול לדימות לאורך תקופות ארוכות יותר באופן משמעותי בזמן (בתוך המנהל עד לבגרות לאחר 96 שעות התפתחות הגולמי ). יתר על כן, מספר גדול בהרבה של hemocytes (דרוזופילה מולדת תאים חיסוניים) הם מתנה בתוך רקמות הגולמי (ו זמין עבור הדמיה) לעומת מספר מוגבל יותר מתנה בתוך העובר, זה מה שאיפשר לנו לאסוף יותר באופן משמעותי הדמיה נתונים על התנהגות hemocyte באמצעות המספר הכולל זהה של דגימות. ויותר חשוב, זה, בתורו, איפשר לנו להחיל מודלים מתימטיים מתוחכמים יותר לנתח את התנהגות hemocytes ולחלץ תכונות הרומן של הפצע attractants, תגובה דלקתית אחרת נותרו ניסיוניים לא נגיש23. יתרון נוסף של המודל הגולמי נמצא זה נוקאאוט מציאה RNAi בתיווך גנים באופן משמעותי יעיל יותר מוקדם העובריים, המאפשר ניתוח משופרת של רקמות או גנים ספציפיים זמן איון באמצעות מערכות בינאריות כגון מערכת Gal4-UAS 39. היעילות של RNAi בשלב זה ובכך נפתח את היכולת לבצע בקנה מידה גדול (או אפילו מוטים הגנום כולו) RNAi מסכי כדי לחפש רומן השחקנים המעורבים הפצע. לתקן או בהתנהגות התא דלקתיות.

עם זאת, דרוזופילה הגלמים בבירור לא ניתן להשתמש כדי ללמוד על הפנוטיפים הנובעים מוטציות גנטיות אשר הם מתחלקים קטלני; מחקרים הדמיה לחיות פונקציונלי של גנים חיוניים התפתחות ולכן עדיין יתבצע בו עוברי, אלא אם כן מציאה RNAi בתיווך גנים נוקאאוט זמן או רקמות ספציפיות באופן מאפשר פיתוח להתרחש דרך בשלבים הגולמי. העובר נשאר גם בדגם הבחירה ללמוד לחיות-התמונה תכונות מסוימות של התנהגות תא החיסון, לרבות פיזור התפתחותית של התאים החיסוניים מ מוצאם, קשר-עיכוב של גפיים, phagocytosis בגופות אפופטוטיים להיפגע שנוצר במהלך התפתחותי רקמות פיסול5,8 אשר לא נצפו עוד דגמים הגולמי. למרות מחקרים דרוזופילה הזחלים ומבוגרים סיפקו תובנה חשובה המנגנונים בפצע דלקת ותיקון40,41,42,43, 44 הדמיה לחיות מחקרים בשלבים אלה הוכיחו קשה בשל אופיו ניידים מיסודו של הדגימות. בעוד הזחלים. יכול להיות מורדם כדי לאפשר תקופות קצרות של הדמיה לחיות, בשל אופיו הזמני של ההרדמה, לתקן רק קצר תמונות של הפצע בשידור חי או תגובה דלקתית יכול להיות מטמיעים45. מחקר שנערך לאחרונה פיתחה כעת פרוטוקול משופרת המאפשרת הדמיה וקהילותיהם של ריפוי46, הפצע זחל למרות הכנה והדמיה עדיין נשארים מאתגרת יותר במידה ניכרת מאשר עוברי או הגלמים. לטווח הארוך, נוכל לדמות את זה על-ידי ניצול השלב ההתפתחותי המתאים ביותר לתת מענה לכל שאלה ספציפית, מחקרים כל ארבעת השלבים האלה דרוזופילה שונות - מן העוברים דרך ותקופות זחל הגולמי לבגרות (כל אחד עם משלהם יתרונות ייחודיים, מגבלות) - תספק משלימים תובנות המנגנון המולקולרי וסלולריות נהיגה הפצע תיקון ודלקת.

בעתיד, פרוטוקול זה עבור ופצעו והדימות לטווח ארוך של הגלמים דרוזופילה ניתן להתאים בקלות ללמוד מגוון של תופעות הקשורות דלקת ויש לו פוטנציאל מרחיק לכת עבור חשיפת הרומן תכונות של התגובה פצע דלקתי. השילוב של הדמיה לטווח ארוך, יחד עם היישום של photoconvertible fluorophores (כגון קאךה), הן בעלות ערך רב להבנת הדינמיקה של התנהגות מולדת תא החיסון והבנתי בפרט, הרחוק פחות שלב ברזולוציה של התגובה דלקתית של הפצע. על-ידי תיוג ספציפית או הפרט או subpopulations של תאים חיסוניים (כגון אלה מגויס לפצע) ניתן יהיה לנתח כיצד חשיפה אחת cue סביבתיים (כגון גופה או פציעה) משפיע על הבאים בתגובה המערכת החיסונית של התא יותר מאוחר תהיה מוכן. ניתן לשנות את התנהגות דלקתיות דרוזופילה hemocytes על ידי התנסויות קודמות - לדוגמה, הם אינם בשלה להגיב לפגיעה ברקמות מאת phagocytosis מוקדמת בגופות אפופטוטיים להיפגע במהלך פיתוח12 אבל זה נותר לראות אם רמזים סביבתיים אחרים לגרום לקרקע אירועים דומים. למרות מחקרים של פצעים הגולמי עד כה התמקדו תגובה דלקתית הטבועה, המודל כנף הגולמי מספקת הזדמנות אידיאלית שתי תמונות לחיות גם ומנתחים המנגנונים לתיקון הפצע אפיתל. יתר על כן, שיטת הדמיה הגולמי הזה יכול להתאים גם לחקור את התנהגות דינמית של אחר שושלות תאים בתגובה רקמת נזק38, האגף הגולמי עצמו או רקמות אחרות הגולמי נגיש בקלות (כגון עיניים, הרגליים או בית החזה). בסופו של דבר, על ידי שילוב של ללקוחות שלנו גנטי של דרוזופילה יחד עם הקלות של הדמיה הגולמי לטווח ארוך, תיקון אפיתל הרומן או דלקתיים הרגולטורים יכול שלא נחשפו באמצעות היישום של הגנום כולו דפיקה למטה לא משוחד גישות.

גילויים

המחברים מצהירים שיש להם אין מתחרים התנגשויות אינטרסים.

תודות

ברצוננו להודות לחברי של מרטין, Nobes, ריצ'רדסון, מעבדות עץ לדיון מועיל. אנו מודים גם המתקן Bioimaging וולפסון (אוניברסיטת בריסטול, אנגליה), בלומינגטון מניות מרכז (אוניברסיטת אינדיאנה, ארה ב), וינה דרוזופילה מרכז המשאבים ( דרוזופילה מניות), Flybase (עבור מעודכנים דרוזופילה ג'ין ביאור). עבודה זו נתמכה על ידי מענק פרוייקט MRC בערב ווו (מר/J002577/1), Wellcome אמון בכיר מלגת וו ו Wellcome אמון החוקר פרס עד אחה"צ.

חומרים

רשימת החומרים שנעשה בהם שימוש במאמר זה
שםחברהמספר קטלוגהערות
Drosophila stocks
בכל מקום GFP-tagged E-cadherin
; Ubi-p63E-shg.GFP; (chrII)		Stock Center, DGRC#109007רצפי מקדם Ubi-p63E מניעים ביטוי של Drosophila E-cadherin (shotgun) המתויג בקצה מסוף C עם GFP.
בכל מקום GFP-tagged E-cadherin
;; Ubi-p63E-shg.GFP (III)		Bloomington Drosophila Stock Centre (אוניברסיטת אינדיאנה)#58742רצפי מקדם Ubi-p63E מניעים ביטוי של Drosophila E-cadherin (shotgun) המתויג בקצה מסוף C עם GFP.
ubiquitous GFP-tagged Moesin
P{sGMCA}3.1Bloomington		Drosophila Stock Centre (Indiana University)#59023המקדם/משפר sqh המבוטא בכל מקום מניע ביטוי של קטע של Moesin (הכולל את רצפי קשירת האקטין) המתויג ב-GFPS65T.
hemocyte ספציפי לנחש - נהג Gal4
; srp-Gal4; 		נוצר על ידי קטיה ברוקנרנוצר על ידי קטיה ברוקנרביטוי של Scer\GAL4 התמזג לזנב polyA נמצא בשליטה של 2 רצפים גנומיים ממעלה הזרם של נחש Drosophila. Ref: Brü ckner, K., Kockel, L., Duchek, P., Luque, C.M., Rø rth, פ., פרימון, נ. קולטן PDGF/VEGF שולט בהישרדות תאי הדם בדרוזופילה. תא פיתוח. 7 (1), 73– 84, doi: 10.1016/j.devcel.2004.06.007 (2004).
UAS-nuclearRFP
w1118;; P{UAS-RedStinger}6		Bloomington Drosophila Stock Centre (אוניברסיטת אינדיאנה)#8545 או #8547רצפים רגולטוריים של כטב"מים מניעים ביטוי של צורת DsRed.T4 של RFP המתויג בקצה מסוף C עם אות לוקליזציה גרעינית
UAS-cytoplasmicGFP
;; P{UAS-GFP. S65T}		Bloomington Drosophila Stock Centre (אוניברסיטת אינדיאנה)מלאי מרובה זמין (למשל #1522)ביטוי של גרסת S65T של GFP על ידי רצפים רגולטוריים של מל"טים; גרסת S65T מציגה בהירות מוגברת.
UAS-photoconvertibleKaede
w1118;; P{UAS-Kaede.A}3Bloomington		Drosophila Stock Centre (Indiana University)#26161חלבון Kaede פולט פלואורסצנציה ירוקה בהירה לאחר הסינתזה, אך משתנה ביעילות לפלואורסצנציה אדומה יציבה בהירה בהקרנה עם UV.
GFP-tagged spaghetti squash
w1118;; P{sqh-GFP.RLC}Bloomington		Drosophila Stock Centre (אוניברסיטת אינדיאנה)#57145אזור הקידוד sqh, המתויג בקצה מסוף C עם תג T:Avic\GFPS65T, מתבטא בשליטת מקדם ה-sqh הטבעי.
NameCompanyCatalog NumberComments
Ingredients for Fly food mediaFly food media/strongFly מיוצר על פי נהלים סטנדרטיים (ראה Greenspan, R. 1997. דחיפת זבובים: התיאוריה והפרקטיקה של גנטיקה של דרוזופילה. הוצאת קולד ספרינג הארבור. 1-191 עמ')
תירסשיבולת שועל בר, בריסטול, בריטניה (או ספק שווה ערך)צור קשר עם הספק ישירות
קמח סויהשיבולת שועל בר, בריסטול, בריטניה (או ספק שווה ערך)צור קשר עם הספק ישירות
תמצית לתתשיבולת שועל בר, בריסטול, בריטניה (או ספק שווה ערך)צור קשר עם הספק ישירות
מולסה אורגניתשיבולת שועל בר, בריסטול, בריטניה (או ספק שווה ערך)צור קשר ספקישיר אורגני
Difco agarBD Biosciences, Fisher ScientificDF0142-15-2להכנת מזון זבובים
חומצה פרופיוניתSigma402907להכנת מזון זבובים
NipagenSigma79721להכנת מזון זבובים
שמרי אפייה מיובשיםRedstar, Dutscher Scientific, UK LTDRedstar, Dutscher Scientific, UK LTDלהכנת מזון זבובים
שםCompanyCatalog NumberComments
הכנת דוגמאות והרכבה
פרפילםSigmaP7793-1EAלהכנת דבק הפטן
סייבל עדין מברשתצבע Daler-Rowney (או שווה ערך)#0 או 1
מלקחייםפישר סיינטיפיק (או Fine Science Tools)NC9404145Dumont #5
כלים עם תחתית זכוכית להדמיהMatTekP35G-0-10-Cאנו מציעים להשתמש בצלחות פטרי 35 מ"מ, עם זכוכית כיסוי של 10 מ"מ לפחות, 0.085-0.13 מ"מ, לא מצופה. צלחות עם מיקרו-בארות גדולות יותר יאפשרו להרכיב ולצלם מספר הולך וגדל של גלמים בניסוי יחיד.
הפטןסיגמא51730-5MLלהכנת דבק הפטן
סרט דביק דו צדדי (למשל סקוטש)Agar ScientificAGG263להכנת דבק הפטן
צינור 50 מ"ל (לדבק הפטן)צינורות פלקון מפישר סיינטיפיק14-432-22להכנת דבק הפטן
שקופיות מיקרוסקופ זכוכיתAgar ScientificAGL4244לדיסקציה של Drosophila pupae
ניתוח מיקרוסקופ סטריאו עם שדה בהירLeica (או שווה ערך)M50לדיסקציה של Drosophila מספריים
מיקרו-מספרייםג'ון וייס הבינלאומי103123מספריים למחקר מיניאטורי (ישר)
<חזק>שם<חזק>חברה<חזק> מספר קטלוגי<חזק>הערות
<חזק>אבלציה בלייזר והדמיה
ניטוגן לייזר אבלציהספקטרה-פיזיקה (או שווה ערך לאנדור)דגם VSL-337ND-Sלפציעה, יש לחבר זאת למערכת הדמיה בשדה רחב
מיקרוסקופ סריקת לייזר קונפוקלי מולטי-לייזר (CLSM)Leica (או שווה ערך)TCS AOBS SP8 או SP5-II מחובר למיקרוסקופ אפיפלואורסצנטי הפוך של Leica DMi8 (או שווה ערך)באופן אידיאלי כולל במה ממונעת לסריקה מרובת אתרים ו'פסיפס', בתוספת ' היברידי' גלאי GaAsP (המציעים רגישות והגברה הרבה יותר גדולה של אות נמוך)
בתא סביבתי(או שווה ערך)"מערכת בקרת טמפרטורה של מיקרוסקופ"מחובר למיקרוסקופ קונפוקלי לבקרת טמפרטורה במהלך הדמיה
<חזק>שם<חזק>חברה<חזק>מספר קטלוגי<חזק> הערות
תוכנת ניתוח תמונה
FRAP מודול תוכנהLeica (או שווה ערך)מודול תוכנת CLSM FRAPלביצוע המרה פוטו-המרה של פלואורופורים הניתנים להמרה כגון Kaede
ImageJ (תוכנת ניתוח תמונה)המכונים הלאומיים לבריאות (NIH)https://imagej.nih.gov/ij/שניידר, C.A., Rasband, W.S., Eliceiri, K.W. "NIH Image to ImageJ: 25 שנים של ניתוח תמונה". שיטות טבע 9, 671-675, 2012.
תוסף ImageJ "מעקב ידני"המכונים הלאומיים לבריאות (NIH)https://imagej.net/Manual_Tracking
תוסף ImageJ "TrackMate"ImageJ, NIHhttps://imagej.net/TrackMateTinevez, JY.; פרי, נ '& שינדלין, ג'יי ואחרים (2016), "TrackMate: פלטפורמה פתוחה וניתנת להרחבה למעקב אחר חלקיק בודד.", שיטות 115: 80-90, PMID 27713081
Volocity (תוכנת הדמיה תלת מימדית בעלת ביצועים גבוהים)Perkin ElmerVolocity 6.3לניתוח תמונה
IMARIS (תוכנת ניתוח תמונה)BitplaneIMARIS לביולוגים של תאיםלניתוח תמונה
Kyoto אורגני אורגני שירותי הדמיית חיים

מקורות

  1. Eming, S. A., Wynn, T. A., Martin, P. Inflammation and metabolism in tissue repair and regeneration. Science. 356 (6342), 1026-1030 (2017).
  2. Crusz, S. M., Balkwill, F. R. Inflammation and cancer: advances and new agents. Nature Reviews Clinical Oncology. 12 (10), 584-596 (2015).
  3. Martin, P., Nunan, R. Cellular and molecular mechanisms of repair in acute and chronic wound healing. British Journal of Dermatology. 173 (2), 370-378 (2015).
  4. Razzell, W., Wood, W., Martin, P. Swatting flies: modelling wound healing and inflammation in Drosophila. Disease Model and Mechanism. 4 (5), 569-574 (2011).
  5. Wood, W., Martin, P. Macrophage Functions in Tissue Patterning and Disease: New Insights from the Fly. Development Cell. 40 (3), 221-233 (2017).
  6. Mohr, S. E., Smith, J. A., Shamu, C. E., Neumüller, R. A., Perrimon, N. RNAi screening comes of age: improved techniques and complementary approaches. Nature Reviews Molecular Cell Biology. 15 (9), 591-600 (2014).
  7. Muñoz-Soriano, V., López-Domenech, S., Paricio, N. Why mammalian wound-healing researchers may wish to turn to Drosophila as a model. Experimental Dermatology. 23 (8), 538-542 (2014).
  8. Weavers, H., Wood, W. Creating a Buzz about Macrophages: The Fly as an In Vivo Model for Studying Immune Cell Behavior. Developmental Cell. 38 (2), 129-132 (2016).
  9. Stramer, B., et al. Live imaging of wound inflammation in Drosophila embryos reveals key roles for small GTPases during in vivo cell migration. Journal of Cell Biology. 168 (4), 567-573 (2005).
  10. Wood, W., Faria, C., Jacinto, A. Distinct mechanisms regulate hemocyte chemotaxis during development and wound healing in Drosophila melanogaster. Journal of Cell Biolog. 173 (3), 405-416 (2006).
  11. Razzell, W., Evans, I. R., Martin, P., Wood, W. Calcium flashes orchestrate the wound inflammatory response through DUOX activation and hydrogen peroxide release. Current Biology. 23 (5), 424-429 (2013).
  12. Weavers, H., Evans, I. R., Martin, P., Wood, W. Corpse Engulfment Generates a Molecular Memory that Primes the Macrophage Inflammatory Response. Cell. , (2016).
  13. Stramer, B., Winfield, M., Shaw, T., Millard, T. H., Woolner, S., Martin, P. Gene induction following wounding of wild-type versus macrophage-deficient Drosophila embryos. EMBO Reports. 9 (5), 465-471 (2008).
  14. Matsubayashi, Y., Coulson-Gilmer, C., Millard, T. H. Endocytosis-dependent coordination of multiple actin regulators is required for wound healing. Journal of Cell Bioliogy. 210 (3), 419-433 (2015).
  15. Evans, I. R., Rodrigues, F. S. L. M., Armitage, E. L., Wood, W. Draper/CED-1 Mediates an Ancient Damage Response to Control Inflammatory Blood Cell Migration In Vivo. Current Biology. 25 (12), 1606-1612 (2015).
  16. Zanet, J., Stramer, B., Millard, T., Martin, P., Payre, F., Plaza, S. Fascin is required for blood cell migration during Drosophila embryogenesis. Development. 136 (15), 2557-2565 (2009).
  17. Bainbridge, S. P., Bownes, M. Staging the metamorphosis of Drosophila melanogaster. Journal of Embryology and Experimental Morphology. 66, 57-80 (1981).
  18. Ninov, N., Martín-Blanco, E. Live imaging of epidermal morphogenesis during the development of the adult abdominal epidermis of Drosophila. Nature Protocols. 2 (12), 3074-3080 (2007).
  19. Gho, M., Bellaïche, Y., Schweisguth, F. Revisiting the Drosophila microchaete lineage: a novel intrinsically asymmetric cell division generates a glial cell. Development. 126 (16), 3573-3584 (1999).
  20. Puah, W. C., Wasser, M. Live imaging of muscles in Drosophila metamorphosis: Towards high-throughput gene identification and function analysis. Methods. 96, 103-117 (2016).
  21. Berh, D., Scherzinger, A., Otto, N., Jiang, X., Klämbt, C., Risse, B. Automatic non-invasive heartbeat quantification of Drosophila pupae. Computers in Biology and Medicine. 93, 189-199 (2018).
  22. Sander, M., Squarr, A. J., Risse, B., Jiang, X., Bogdan, S. Drosophila pupal macrophages--a versatile tool for combined ex vivo and in vivo imaging of actin dynamics at high resolution. European Journal of Cell Biology. 92 (10-11), 349-354 (2013).
  23. Weavers, H., Liepe, J., Sim, A., Wood, W., Martin, P., Stumpf, M. P. H. Systems Analysis of the Dynamic Inflammatory Response to Tissue Damage Reveals Spatiotemporal Properties of the Wound Attractant Gradient. Current Biology. 26 (15), 1975-1989 (2016).
  24. Fristrom, D., Wilcox, M., Fristrom, J. The distribution of PS integrins, laminin A and F-actin during key stages in Drosophila wing development. Development. 117 (2), (1993).
  25. Brückner, K., Kockel, L., Duchek, P., Luque, C. M., Rørth, P., Perrimon, N. The PDGF/VEGF receptor controls blood cell survival in Drosophila. Development Cell. 7 (1), 73-84 (2004).
  26. Berg, H. Random Walks in Biology. , Princeton University Press. Available from: http://press.princeton.edu/titles/112.html (1993).
  27. Diehl, H., Ihlefield, H., Schwegler, H. Physik fur Biologen. , Springer-Verlag. (1991).
  28. Stewart, P. S., McFeters, G. A., Huang, C. T. Biofilm control by antimicrobial agents. Biofilms II Process Analysis and Application. , 373-405 (2000).
  29. Milo, R., Phillips, R. Cell Biology by the Numbers. , Garland Science. Available from: https://books.google.com/books?id=9NPRCgAAQBAJ&pgis=1 (2015).
  30. Ando, R., Hama, H., Yamamoto-Hino, M., Mizuno, H., Miyawaki, A. An optical marker based on the UV-induced green-to-red photoconversion of a fluorescent protein. Proceeding of National Academy of Science U S A. 99 (20), 12651-12656 (2002).
  31. Brand, A. H., Perrimon, N. Targeted gene expression as a means of altering cell fates and generating dominant phenotypes. Development. 118 (2), 401-415 (1993).
  32. Schneider, C. A., Rasband, W. S., Eliceiri, K. W. NIH Image to ImageJ: 25 years of image analysis. Nature Methods. 9 (7), 671-675 (2012).
  33. Cordelières, F. Manual tracking. National Institutes of Health. , Available from: http://rsbweb.nih.gov/ij/plugins/track/Manual%20Tracking%20plugin.pdf (2015).
  34. Tinevez, J. -Y., et al. TrackMate: An open and extensible platform for single-particle tracking. Methods. 115, 80-90 (2017).
  35. Grueber, W., et al. Projections of Drosophila multidendritic neurons in the central nervous system: links with peripheral dendrite morphology. Development. 134 (1), 55-64 (2007).
  36. Wood, W., Faria, C., Jacinto, A. Distinct mechanisms regulate hemocyte chemotaxis during development and wound healing in Drosophila melanogaster. Journal of Cell Biology. 173 (3), 405-416 (2006).
  37. Wood, W., et al. Wound healing recapitulates morphogenesis in Drosophila embryos. Nature Cell Biology. 4 (11), 907-912 (2002).
  38. Franz, A., Wood, W., Martin, P. Fat Body Cells Are Motile and Actively Migrate to Wounds to Drive Repair and Prevent Infection. Developmetal Cell. 44 (4), 460-470 (2018).
  39. del Valle Rodríguez, A., Didiano, D., Desplan, C. Power tools for gene expression and clonal analysis in Drosophila. Nature Methods. 9 (1), 47-55 (2012).
  40. Losick, V. P., Fox, D. T., Spradling, A. C. Polyploidization and Cell Fusion Contribute to Wound Healing in the Adult Drosophila Epithelium. Current Biology. 23 (22), 2224-2232 (2013).
  41. Babcock, D. T., et al. Circulating blood cells function as a surveillance system for damaged tissue in Drosophila larvae. Proceedings of National Academy of Science U S A. 105 (29), 10017-10022 (2008).
  42. Galko, M. J., et al. Cellular and Genetic Analysis of Wound Healing in Drosophila Larvae. PLoS Biology. 2 (8), e239(2004).
  43. Brock, A. R., et al. Transcriptional regulation of Profilin during wound closure in Drosophila larvae. Journal of Cell Science. 125 (23), (2013).
  44. Wu, Y., Brock, A. R., Wang, Y., Fujitani, K., Ueda, R., Galko, M. J. A blood-borne PDGF/VEGF-like ligand initiates wound-induced epidermal cell migration in Drosophila larvae. Current Biology. 19 (17), 1473-1477 (2009).
  45. Burra, S., Wang, Y., Brock, A. R., Galko, M. J. Using Drosophila Larvae to Study Epidermal Wound Closure and Inflammation. Methods in Molecular Biology. 1037, 449-461 (2013).
  46. Kakanj, P., et al. Insulin and TOR signal in parallel through FOXO and S6K to promote epithelial wound healing. Nature Communications. 7, 12972(2016).

הדפסות חוזרות והרשאות

בקש הרשאה לשימוש חוזר בטקסט או באיורים של מאמר JoVE זה

בקש הרשאה

תגיות

Confocal Time LapseRNAi

מאמרים קשורים