הרשמה ל-JoVE נדרשת לצפייה בתוכן זה. התחברו או התחילו בגרסת ניסיון בחינם.

מאמר שיטה

כוויות חמורות פציעה במודל החזירים להערכה קלינית ההלבשה

9.6K צפיות

⸱

DOI:

10.3791/57942

⸱

6 בנובמבר 2018

 ,  ,  ,  ,  ,  ,  ,  , 
1Graduate Institute of Medical Sciences, National Defense Medical Center, 2Department and Graduate Institute of Biology and Anatomy, National Defense Medical Center, 3Department of Gerontological Health Care, National Taipei University of Nursing and Health Sciences, 4Division of Rheumatology/Immunology/Allergy, Department of Internal Medicine, Tri-Service General Hospital, National Defense Medical Center, 5Department of Plastic and Reconstructive Surgery, Tri-Service General Hospital, 6Department of Nursing, Yuanpei University, 7Department of Physiology and Biophysics; Graduate Institute of Physiology, National Defense Medical Center, 8Division of Urology, Department of Surgery, Tri-Service General Hospital, National Defense Medical Center

במאמר זה

סיכום

כדי מקרוב מחקים המצב של פציעות לשרוף מחייבת יחסי הגומלין בין תצפיות קליניות מחקרים בבעלי חיים. במחקר זה, מודל החזירים של פציעה חמורה צריבה הוקמה כדי להעריך ההלבשה ניסיוני ב הגדרות פיזיולוגיים הקשורים pathophysiological.

תקציר

ריפוי הפצע הוא תהליך דינמי תיקון והוא תהליך ביולוגי המורכבים ביותר בחיי האדם. בתגובה לשרוף פציעה, שינויים מסלולים ביולוגיים לפגום התגובה דלקת, וכתוצאה מכך ריפוי הפצע מושהית. ריפוי פצעים לקוי לעתים קרובות מתרחשת בחולים עם סוכרת מובילה לתוצאות שלילי כגון קטיעה. לפיכך, רטבים יש השפעה מיטיבה בקידום לצרוב את הפצע תיקון נחוצים. עם זאת, מחקרים על צריבה בפצע טיפול מוגבלות בשל חוסר מודלים בעלי חיים נאותה. המחקר הקודם שלנו הפגינו ביצועים ריפוי פצע במודלים עכברים וחזירים בטכניקה כירורגית פולשנית. מחקר זה נועד להדגים מודל החזירים של פציעה חמורה צריבה המבטל את הפצע התכווצות, יותר מקרוב קירוב התהליכים האנושיים של epithelialization מחדש, היווצרות רקמה חדשה. פרוטוקול זה מספק הליך מפורט עבור יצירת פצעים כוויות עקבי ובודקים את הביצועים, ריפוי פצע תחת הטיפול ההלבשה ניסיוני במודל של החזירים. פצעים כוויות שישה נוצרו באופן סימטרי dorsum, אשר היו מכוסים קליניים ההלבשה המורכבת של ארבע שכבות: שכבת הקשר הפנימית של חומרים ניסיוניים, שכבת ביניים הפנימי של הסרט עמיד למים, ביניים שכבה חיצונית של גזה שכבה חיצונית של טיח דבק. עם השלמת הניסויים, נבחנו סגירת הפצע אזור הפצע, ונקובר הצלקת סרגל ניקוד. הדגימות של העור resected מההקרבה שלאחר כל בעלי חיים הוכנו בהיסטולוגיה, צבעונית באמצעות hematoxylin אאוזין מכתים. אנטיבקטריאלי של כל ההלבשה בהקשר של ריפוי הפצע גם נבדק. היישום של הרוטב קליניים לפציעות במודל החזירים מחקה את התהליכים הביולוגיים של ריפוי לגבי התהליכים של epithelialization, התפשטות הסלולר אנגיוגנזה הפצע האנושי. לכן, מודל חזיר זה מספק שיטה קל ללמוד, חסכונית, וחזק כדי להעריך את ההשפעה של רטבים קליניים בפציעה חמורה צריבה.

מבוא

פגיעה צריבה יוזם תהליך דלקתי ומשרה מורכב אפקטים פתולוגיים, אשר משפיעים על תפקודי גוף רבים מיד לאחר תאונה, וכתוצאה מכך השפעה שלילית על איכות החיים של המטופלים. ריפוי פצעים לקוי גורם משמעותי התחלואה והתמותה בקרב חולים עם סוכרת1,2. רוב החולים עם פציעות לשרוף לחוות כאב במהלך הצריבה הפצע הטריה, הידוע בשם תהליך התופת למרות השימוש של משככי כאבים אופיואידים חזק3.

בניגוד יונקים אחרים, החזירים לשתף מספר מאפיינים אנטומיים, הפיזיולוגיות עם בני האדם לגבי התהליך של epithelialization, התפשטות הסלולר אנגיוגנזה. זה גורם החזירים מודל פוטנציאלי טוב יותר עבור פרוצדורות של מחקרים מסוימים, הם משמשים לעתים קרובות מחקרים מאוחרים יותר הראו תוצאות מבטיחות בעכברים. תכונות אלה הובילו השימוש הגובר החזירים כמינים העיקריים בבדיקות פרה. לאחרונה, עלייה מהירה המחקר הביו-רפואי עם כבוד אל הלב וכלי הדם, השתן, הכסות, מערכות העיכול נצפתה4,5,6. מחקר זה נועד להמחיש מודל החזירים של פציעה כוויות חמורות מבטלת את הפצע התכווצות ומספק הערכה קרובה יותר של תהליכי ריפוי הפצע האנושי ואת היווצרות רקמה חדשה. פצעים כוויות שישה נוצרו באופן סימטרי על dorsum, שלוש בכל צד של עמוד השדרה של החזירים. בשלב הבא, הלבשה anexperimental נבדקה במודל החזירים של פגיעה כוויות חמורות, אשר ניתן להתאים כדי לשכפל ריפוי הפצע האנושי (איור 1). הפצעים היו מכוסים ההלבשה קליני, המורכב משילוב של ארבע שכבות: שכבת הקשר הפנימית של חומרים ניסיוניים, שכבת ביניים הפנימי של הסרט עמיד למים, ביניים שכבה חיצונית של גזה, שכבה חיצונית של טיח דבק. סרט עמיד למים שומר על הסביבה הפצע לח תוך מניעת זיהום חיידקי ומאפשר גזים לחלחל את הרוטב. השכבה החיצונית ביניים של גזה היה מוחל על הסרטים עמיד למים, מאובטח על ידי שכבה חיצונית של טיח דבק. בתום הניסויים, נבחנו סגירת הפצע אזור הפצע, ציון גודל הצלקת ונקובר (VSS). הדגימות של העור resected מההקרבה שלאחר כל בעלי חיים הוכנו בהיסטולוגיה והמוכתמות באמצעות hematoxylin מכתים אאוזין (הוא). אנטיבקטריאלי של כל ההלבשה בהקשר של ריפוי הפצע נבדק גם במודל זה. המחקר הקודם שלנו הוכיחה ריפוי פצע ביצועים במודל עכברים וחזירים באמצעות טכניקה כירורגית פולשנית7. היות שלא היו שש לשרוף פצעים על dorsum בתוך כל החזירים, כל ההלבשה ניסיוני היה נבדק, מוערכות כל העמדות כדי למזער את הטיית הקשורים פצע את תהליך הריפוי במקומות שונים על dorsum החזירים. לכן, הדגם החזירים של פציעה כוויות חמורות הוקמה במחקר זה מספק גישה חדשה על ההערכה של רטבים קליניים ואסטמה ומקילה על ההתפתחות של טיפול הרומן על הפגיעה צריבה. מחקר זה מספק כלי חיוני לחשוף הפתופיזיולוגיה של כוויות ריפוי הפצע.

הגישה מוגבלת. התחברו או התחילו תקופת ניסיון כדי לצפות בתוכן זה.

פרוטוקול

הליכים הכוללים נושאים בעלי חיים אושרו על ידי ועדת אכפת לי חיה-המרכז הרפואי של הביטחון הלאומי, טייוואן (R.O.C). מחקר זה נערך במרכז חיות מעבדה במרכז הרפואי הביטחון הלאומי. חזיר במשקל בין 20 ל 25 ק ג יש כבר בהצלחה שעברו אינסטרומנטציה באמצעות פרוטוקול זה.

1. עיבוד של החיות לטיפול אנושי

  1. לאחר ההגעה במתקן, בית החיות solitarily אבל לתת להם לתקשר אחד עם השני.
  2. לספק החיות גישה ad libitum מזון ומים.
  3. חבל החזירים טיפול אנושי, תחבורה מהמתקן חיות למעבדה ניסיונית ע י טיפול החיה לפחות פעם ביום במשך שבוע אחד.
  4. מהר החיה לפחות 12 שעות לפני ניתוח למניעת בחילות והקאות, השאיפה של נוזלים בבטן.

2. הרגעה

  1. לפני הבריאה צריבה פצע, תרופת הרגעה לבעלי חיים באמצעות זריקה תוך ורידי עם Zoletil 50 (25 מ ג/ק ג).

3. צנרור ואוורור

  1. במקום החיה על השולחן ו/או עגלה בעמדה בחזה ובצלעות.
  2. פתח את הפה של החיה עם מפזר דרך הפה.
  3. במקרה של הרפיה לא מספיקות של הלסתות או נוכחות של בליעת רפלקסים, אשר לעכב צנרור, המסכה החזיר עם איזופלוריין לזירוז הרגעה.
  4. לפקח על לחץ הדם, קצב הלב, טמפרטורת הגוף על-ידי צג אותות פיזיולוגיים במהלך הניתוח כדי למנוע סיבוכים פוטנציאליים.

4. הרדמה

  1. זירוז ולשמור על הרדמה; רצוי עזים ומתנגד החיה באמצעות זריקה תוך שרירית של tiletamine ו- zolazepam (25 מ ג / ק ג + 25 מ"ג / ק"ג).
  2. לצנרר את החיה עם הצינור אנדוטרכאליות בעת הרפיית שרירים, מאופיין על ידי אובדן של הלסת הטון, palpebral reflexed, נצפתה.
  3. לשמור על כולכם חזירים במצב הרדמה בקביעה מכשיר אידוי של 0.5-2.5% (v/v) איזופלוריין עד הסוף של הניתוח.
  4. לבחון את העומק של הרדמה על ידי בדיקות רפלקסים כאב עם קמצוץ הבוהן רגל לפני הניתוח. כאשר יש צורך, להוסיף הרדמה נוספים או לחכות כמה דקות. בדוק רפלקסים כאב באופן קבוע לאורך כל הניתוח.

5. עיקור של האתר כירורגית

  1. לגלח, לנקות את העור של החיה על פני שטח של-25 ס מ רוחב עמודה השדרה כל הדרך עד השחי משני הצדדים.
  2. לשפשף את העור לחות עם povidone יוד סקראב (75 מ"ג/מ"ל) במשך כ 5 דקות.
  3. הסר את הסבון povidone יוד העור בעזרת פדים סטרילית רטובה.
  4. לחטא את העור עם povidone-תמיסת היוד (100 מ"ג/מ"ל).
  5. מכסים את החיה עם וילונות כירורגי סטרילי כדי לצמצם העברת חיידקים וזיהום עוקבות של האתר כירורגית.

6. לצרוב את הפצע הבריאה

  1. השתמש בעט סימון כירורגי לסמן את המרכז של שישה פצעים כוויות באופן סימטרי על dorsum של החזיר. ודא כי המרחק בין כל פצע כוויה לפחות גדול מהרדיוס של הפצע (איור 1 א').
  2. למלא במלחם ששונה 50 מ של גליצרין, להכניס אותו כדי לנטר את הטמפרטורה של מד טמפרטורה אלקטרונית. הברזל חם הנו אזור שטוח של 9 ס מ2 (איור 1B).
  3. לחמם את הברזל עד 137-139 ° C עם צלחת חמה (איור 1C).
  4. ליצור פצעים כוויות אחיד 6 על-ידי הצבת את המגהץ על האזור המסומן מבלי להחיל כל כוח למשך 30 שניות (איור 1C).
  5. לשטוף את פצעי כוויה עם 0.9% תמיסת מלח (איור 1D).
  6. למדוד את ממדי הפצע ולהקליט את הפצע על ידי photomicrography (איור 1E).

7. הכנת רטבים

  1. לכסות את הפצע כל השכבה הקשר הפנימית של ארבע-שכבה ההלבשה קליניים באמצעות מגע ישיר. שכבה זו, להשתמש כמוסות המכילות ההלבשה או חומרים חלופיים (איור 1F).
  2. להחיל סרט עמיד למים על גבי הרוטב קליניים כדי לשמש מחסום נגד חיידקי חדירה (איור 1F).
  3. לכסות את כל הפצע עם גזה (0.5 ס מ עבה) ותקן עם קלטת נייר כדי לשמש שכבת אמצע של הרוטב (איור 1 ג'י).
  4. אבטח את הגזה עם שכבה חיצונית של טיח דבק. הרחבת שכבה זו כדי הטורסו להימנע העקירה של הרוטב (איור 1 H-1J).

8. פוסט-לצרוב טיפול ומדידה

  1. להחדיר את החזיר. הבופרנורפין (0.1 מ"ג/ק"ג, IM) לניהול כאב עבור כל ה' 8-12, החל לפני ההתאוששות מן ההרדמה, שבוע אחד להפחית את הכאב פוטנציאליים.
  2. לאפשר גישה חופשית חזיר להאכיל ולהשקות.
  3. לשנות את הכתמים קליני כל יומיים עבור 10 הימים הראשונים ואז פעמיים בשבוע למשך 6-השבוע ללמוד.
  4. לנקות ולמדוד את הפצעים לפני החלת רטבים קליניים. לניהול חומרי הרדמה במהלך שינויים ההלבשה.
  5. להקליט את הפצע על ידי photomicrography להשוואה של שיעור ריפוי הפצע כל יומיים עבור 10 הימים הראשונים ואז פעמיים בשבוע למשך 6-השבוע ללמוד.
  6. לחשב את הפצע מחדש epithelialization או התכווצות כאחוז מגודל הפצע המקורי לפי שיטה שתואר לעיל. הניתוח של סגירת הפצע נערך באופן פעמיים עיוור.
  7. למדוד את הצלקת צריבה באמצעות VSS, אשר מורכב של ארבעה משתנים: vascularity, גובה (עובי), גמישות, פיגמנטציה בימים שלאחר צריבה 0, 7, 21, ו- 42. כל משתנה יש ציונים אפשריים ארבע עד שש. סה כ ניקוד נעה בין 0 ל 14, לפיה ציון 0 משקף עור רגיל.

9. התפתחות חיידקים ניסויים של רקמות לאחר הצריבה

  1. לנקות את הפצע לבדיקת אנטיבקטריאלי בימים שלאחר צריבה 0, 7, 21, ו- 42.
  2. למקם את הספוגית 100 מ של תמיסת סטרילית 0.9% ובעדינות מערבולת כדי להשיג השעיה הומוגנית.
  3. באופן סדרתי לדלל את homogenate (10− 1–10−5), צלחת 100 μL של כל דילול בתקשורת סלקטיבית, nonselective, בהתאמה.
  4. תקופת דגירה דילולים כל בתנאים אירוביים ב 37 מעלות צלזיוס של 24-72 שעות.
  5. צלחת aliquots triplicate של μL 10 בכל מכל כל דילולים על גבי צלחת אגר דם בתוספת דם כבשים 5% כדי לבודד אורגניזמים גראם חיוביים אירובית.
  6. דגירה המדגם על ידי הפצת או לשפוך את הדגימה בצורה אחידה על פני צלחת אגר בן לילה לקביעת מספר המושבה יוצרי יחידות (CFUs).
  7. קרא את הצלחות לאחר דגירה בין לילה. היפוך צלחת אגר דם של כבשים, לחלק התחתון של המנה ארבעת הרבעים שווים באמצעות סמן סרגל קטן.
  8. מקם את הצלחת לבמה של מיקרוסקופ לנתיחה ולספור את המושבות על כל צלחת. לפי ההגדרה, מושבה חייב להיות מינימום של 300 CFU כדי ניתן לבצע ספירה.
  9. לספור מושבות חיידקים בכל אחד משכפל שלוש. חישוב שהערך הממוצע של שלושת משכפל. לקבוע את CFU לכל צלחת על-ידי הכפלת הערך הממוצע הגורם הסופי דילול.

10. המתת חסד, קיבוע הרקמה

  1. מזריקים לווריד ממנת יתר של סודיום פנטוברביטל המתת חסד פתרון (80-120 מ"ג/ק"ג).
  2. En bloc לבצע כריתה של צריבה רקמת הפצע כדי לכלול את מערכת השרירים המשמשים כבסיס unwounded הרקמה שמסביב.
  3. לתקן את הרקמות עם 10% פורמלין במאגר נייטרלי.
    1. לערבב 10 מ"ל של פורמלדהיד (37%) ב- 90 מ של פתרון פוספט buffered (PBS) וחנות 4 ° C.
    2. העברת רקמות מקבע ו מערבולת המיכל על מנת להבטיח שלכל רקמות שקועים לחלוטין לשבועיים. היקף מקבע חייב להיות 30 פעמים האחסון רקמות.
    3. את רקמות בן לילה-הלעפה תרוטרפמט 4.
  4. מייבשים רקמות עם אתנול, להטביע לגושי פרפין. בצע את הפעולות הבאות ב- 4 הלעפה תרוטרפמט מטרף.
    1. לשטוף פעמיים עם PBS במשך 30 דקות.
    2. מייבשים רקמות עם אתנול 70% עבור 8 שעות, 80% אתנול בן לילה, 95% אתנול במשך 8 שעות, ולאחר מכן ב- 100% אתנול בן לילה.
    3. דגירה רקמות אתנול 100% 8 שעות נוספות.
    4. דגירה רקמות שלושה שינויים של קסילן כל 30 דקות.
    5. החלף את קסילן שעווה מומסת טרי (52 ° C), דגירה ב 52 ° C בתנור במשך שעה.
    6. להחליף השעווה שעווה טריים דגירה ב 52 ° C בתנור במשך 3 שעות, להחליף עוד פעם ואז דגירה ב 52 ° C בלילה.
    7. דגירה רקמות עם שני שינויים נוספים של שעווה בכל למשך שעה, ולאחר מכן להטביע את הרקמה ולאחסן ב 4 º C.
  5. לחתוך כתם הסעיפים פרפין-מוטבע עם הוא, ואתה באופן חזותי באמצעות מיקרוסקופ אור עם 100× ההגדלה.
    1. ליצור מקטעים הפרפין באמצעות של מיקרוטום רוטרי.
    2. Dewax מקטעים עם שלושה שינויים של קסילן כל 3 דקות.
    3. נוזלים ברקמות עם 100%, 95%, 80%-70% אתנול כל 3 דקות ולאחר מכן לטבול במים מזוקקים.
    4. כתם עם hematoxylin למשך 10 דקות ולאחר מכן לשטוף במים ברז זורמים.
    5. להבדיל עם 0.1% חומצה הידרוכלורית אתנול למשך 5 דקות, לשטוף במי ברז.
    6. כתם עם 0.5% אאוזין במשך דקה אחת.
    7. מייבשים רקמות עם 70%, 80%, 95% ו 100% אתנול כל 2 דקות.
    8. נקה ההכתמה עם קסילן, ויבש בשכונה fume.

הגישה מוגבלת. התחברו או התחילו תקופת ניסיון כדי לצפות בתוכן זה.

תוצאות

צריבה משך 30 שניות על ידי ברזל חמה הביא את הפצעים שהיו עגול עם שוליים מוגדרים היטב וחיוור בצורה אחידה עם שפה של אריתמה (איור 1D). בתוך כל בעל חיים, היו שישה פצעי כוויה על dorsum. הסידור של פצעים כוויות תוארה באיור1 K. פצעים כוויות היו מכוסים ברוטב כמוסות המכילות לחלוטין, להשתמש כדי להעריך את העומק של היווצרות צלקת בימים שלאחר צריבה 0, 7, 21, ו 42, epithelialization מחדש, כפי שנקבע על-ידי גרוס פיקוח. צריבה הפצעים היו epithelialize...

הגישה מוגבלת. התחברו או התחילו תקופת ניסיון כדי לצפות בתוכן זה.

דיון

המחקר הנוכחי הקימה מודל החזירים של פגיעה חמורה צריבה ובחן את הדגם בעזרת כמוסות המכילות ההלבשה. התוצאות שלנו מראים כי מודל זה חזיר יכול לשמש למעקב אחר ביצועי קליני של רטבים ניסיוני, כולל מאפיין בקטריאלי. ריפוי קצב סגירת הפצע, אנטיבקטריאלי הפצע נותחו גם באמצעות מבחן מוכתמים, ואנטי -בקטריאלי VSS, H & E. השימוש של דגמים בעלי חיים צריבה פותחה ככלי חשוב כדי לסקור את הפתופיזיולוגיה של צריבה פציעה. ישנם יתרונות ביולוגי מסוים של שימוש חולדות נושאים ניסיוני, כולל המספר הגבוה של ריאגנטים ספציפיים עכברוש, בהיבטים של קבלת העכברים הטר...

הגישה מוגבלת. התחברו או התחילו תקופת ניסיון כדי לצפות בתוכן זה.

גילויים

המחברים אין לחשוף.

תודות

מחקר זה נתמך על ידי מענק של החולים הכללי Tri-שירות; המרכז הרפואי של הביטחון הלאומי, טייוואן (TSGH-C107-042); משרד המדע, הטכנולוגיה, טייוואן (רוב-014 106-2314-B-016); ואת המרכז הרפואי הביטחון הלאומי (MAB-106-055; MAB-106-010; MAB-107-064).

הגישה מוגבלת. התחברו או התחילו תקופת ניסיון כדי לצפות בתוכן זה.

חומרים

רשימת החומרים שנעשה בהם שימוש במאמר זה
שםחברהמספר קטלוגהערות
<חזק>הרגעה:
קטמיןמריאל2528 ESP10 מ"ל בקבוקון
אזפרוןסין כימיקלים ותרופות47W406100 מ"ל בקבוקון
אטרופין עבודות כימיות מזרחיותIN120802בקבוקון 1 מ"ל
<חזק>הרדמה: < / חזק>
טילטמין + זולאזפםVirbacBC91בקבוקון 5 מ"ל
איזופלורןבקסטרN002A225100 מ"ל בקבוקון
<חזק>ניתוח: < / חזק>
קוצץ שיערMoser--
תמיסת קרצוף יוד פובידוןכוכב אי פעםHA1612024 ליטר
חבית ברזל שונה---
0.9% תמיסת מלחCHI SHENGKC130500 מ"ל בקבוקון
גזהמרכז חבישות כירורגיות בסיןMO1590008010 x10 ס"מ
CAPSCoreLeader Biotech Co., Ltd, טאיפיי, טייוואן--
נייר סרט3MNDC-8333-1530-012.5 ס"מ x 9.1 מ'
סרט עמיד למים3MNDC-8333-1600-4010 ס"מ x 10 מ'
טיח דבקBH1426015כימי צעיר10 ס"מ x 10 מ
<חזק>דיסקציה: < / חזק >
זוג מספריים ישרים חדים / קהים סטנדרטיים (14 ס"מ)מכשירי ShinetecST-S114-
הלסטד-מוסקיטו (12.5 ס"מ)מכשירי ShinetecST-H012-ידית
(# 4)מכשירי ShinetecST-H004-להב
כירורגי(#21)מכשירי ShinetecST-B021-
<חזק>לאחר קיבוע & אחסון:
50 מ"ל צינור צנטריפוגה מפלסטיק Falcon352070-10
% פורמלין ניטרלי חומציLeica3800604EG-
<ניסויי גידול חיידקים חזקים>
צלחת אגר דם (BAP) (TSA עם 5% דם כבשים) CMP-90מ"מ מונו

מקורות

  1. Sen, C. K., et al. Human skin wounds: a major and snowballing threat to public health and the economy. Wound Repair Regeneration. 17, 763-771 (2009).
  2. Sen, C. K. Wound healing essentials: let there be oxygen. Wound Repair Regeneration. 17, 1-18 (2009).
  3. Verhaegen, P. D., et al. Differences in collagen architecture between keloid, hypertrophic scar, normotrophic scar, and normal skin: an objective histopathological analysis. Wound Repair Regeneration. 17, 649-656 (2009).
  4. Experimental Surgery and Physiology: Induced Animal Models of Human Disease. Swindle, M. M., Adams, R. J. , Williams and Wilkins. Baltimore. (1988).
  5. Swindle, M. M., Smith, A. C. Swine as Models in Biomedical Research. , Iowa State University Press. Ames. (1992).
  6. Advances in Swine in Biomedical Research. Vols 1-2. Tumbleson, M. E., Schook, L. B. , Plenum Press. New York. (1996).
  7. Wang, C. H., et al. Enhanced wound-healing performance of a phyto-polysaccharide-enriched dressing - a preclinical small and large animal study. International Wound Journal. 14, 1359-1369 (2017).
  8. Rowan, M. P., Cancio, L. C., Elster, E. A., Burmeister, D. M., Rose, L. F., Natesan, S., Chan, R. K., Christy, R. J., Chung, K. K. Burn wound healing and treatment: review and advancements. Journal of Critical Care. 19, 243(2015).
  9. Wong, V. W., Sorkin, M., Glotzbach, J. P., Longaker, M. T., Gurtner, G. C. Surgical approaches to create murine models of human wound healing. Journal of Biomedicine and Biotechnology. 969618, 8(2011).
  10. Gaines, C., Poranki, D., Du, W., Clark, R. A., Van Dyke, M. Development of a porcine deep partial thickness burn model. Burns. 39, 311-319 (2013).
  11. Gnyawali, S. C., Barki, K. G., Mathew-Steiner, S. S., Dixith, S., Vanzant, D., Kim, J., Dickerson, J. L., Datta, S., Powell, H., Roy, S., Bergdall, V., Sen, C. K. High-resolution harmonics ultrasound imaging for non-invasive characterization of wound healing in a pre-clinical swine model. PLoS One. 10 (3), e0122327(2015).
  12. Eaglstein, W. H., Mertz, P. M. New methods for assessing epidermal wound healing: the effects of triamcinolone acetonide and polyethelene film occlusion. Journal of Investigative Dermatology. 71, 332-384 (1978).
  13. Swindle, M. M., Smith, A. C. Comparative anatomy and physiology of the pig. Scandinavian Journal of Laboratory Animal Sciences. 25, 1-10 (1998).
  14. Swindle, M. M. Swine in the Laboratory: Surgery, Anesthesia, Imaging and Experimental Techniques. , 2nd ed, CRC Press. Boca Raton. (2007).
  15. Mertz, P. M., et al. IL-1 as a potent inducer of wound re-epithelization. Progress in Clinical and Biological Research. 365, 473-480 (1991).
  16. Eming, S. A., Martin, P., Tomic-Canic, M. Wound repair and regeneration: mechanisms, signaling, and translation. Science Translation Medicine. 6, 265-266 (2014).
  17. Aryza, M. J., Baryza, G. A. The Vancouver Scar Scale: an administration tool and its interrater reliability. The Journal of Burn & Rehabilitation. 16, 535-538 (1995).
  18. Bystrom, A., Claesson, R., Sundqvist, G. The antibacterial effect of camphorated paramonochlorophenol, camphorated phenol and calcium hydroxide in the treatment of infected root canals. Endodontics & Dental Traumatology. 1, 170-175 (1985).
  19. Reig, A., Tejerina, C., Codina, J., Hidalgo, J., Mirabet, V. Application of a new cicatrization dressing in treating second-degree burns and donor sites. Annals of Burn and Fire Disasters. 4, 174(1991).
  20. Hindy, A. Comparative study between sodium carboxymethyl-cellulose silver, moist exposed burn ointment, and saline-soaked dressing for treatment of facial burns. Annals of Burn and Fire Disasters. 22, 131-137 (2009).
  21. Galiano, R. D., et al. Topical vascular endothelial growth factor accelerates diabetic wound healing through increased angiogenesis and by mobilizing and recruiting bone marrow-derived cells. The American Journal of Pathology. 164, 1935-1947 (2004).
  22. Thangarajah, H., et al. The molecular basis for impaired hypoxia-induced VEGF expression in diabetic tissues. Proceedings of the National Academy of Sciences of the United States of America. , 13505-13510 (2009).

הגישה מוגבלת. התחברו או התחילו תקופת ניסיון כדי לצפות בתוכן זה.

הדפסות חוזרות והרשאות

גלה מאמרים נוספים

מודל כוויות בחזיריםריפוי פצעי כוויותמדידת סגירת פצעיםסולם ונקובר לצלקותבדיקה היסטולוגיתאנליזה של תרבית חיידקיתברזל מחומם בגליצריןתמיסות מלח סטריליותתחבושת פלסטר דביקה
כוויות חמורות פציעה במודל החזירים להערכה קלינית ההלבשה
צרו קשר
המליצו לספרייה

פרטיות

תנאי שימוש

מדיניות

זכויות יוצרים © 2026 MyJoVE Corporation. כל הזכויות שמורות.