מאמר שיטה

חזירי כמו מודול אימון עבור שחזור Microvascular הראש והצוואר

DOI:

10.3791/58104

29 בספטמבר 2018

* These authors contributed equally

במאמר זה

סיכום

Loading...
$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

כאן אנו מציגים פרוטוקול עבור השימוש הכריכה מנקב עורק הצפק סופריור חזיר כמו מודול למידה עבור שחזור microvascular הראש והצוואר.

תקציר

Loading...
$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

מודלים חיים המזכירים תנאי כירורגי של בני אדם יש צורך הדרכה-פלאפ קציר, השקה. מודלים בעלי חיים למטרות אימונים כבר זמין במשך שנים בתחומים רבים כירורגי. השתמשנו הנקבה (כי הם קלים לשימוש עבור ההליך) יורקשייר חזירים את שיקומה הראש והצוואר בבציר מנקב את העורק הצפק עמוק נחות או הכנף מנקב עורק הצפק מעולה. האתר השקה (בצוואר מום או פגם קיר בקנה הנשימה) הוכנה באמצעות ניתוח של עורק תרדמני, הפנימי, ווריד הצוואר, אשר × 3.5 זכוכית מגדלת ההגדלה שימשה השקה כפי שאנו משתמשים במקרים אנושי בחיים האמיתיים. הליך זה מדגים שיטת אימון חדשה באמצעות מודל של למידה אמין ומספק אנטומיה מפורטת בתרחיש בשידור חי. אנחנו התמקדנו זמן איסכמיה, קציר, כלי ההשקה, ועיצוב הכנף כדי להתאים את האתר פגם. מודל זה משפר את הטיפול ברקמה, עם שימוש בכלים נכונה יכולה להיות פעמים רבות כך המנתח הוא בטוח לחלוטין לפני תחילת הניתוח על בני אדם.

מבוא

Loading...
$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

שיקום לאחר ניתוח למחלות ממאירות הראש והצוואר הוא הליך קשה הקשורים עם תחלואה משמעותית. שיקום-פלאפ microvascular הוכח גם כמו הגישה תקן לבנייה מחדש של מעל 20 שנה1,2,3. -פלאפ העברה ממלאת תפקיד משמעותי בשיפור ניהול הראש והצוואר בחולי סרטן, פציעות פוסט-טראומטי ובכך לדחוף את הגבולות של כריתה כירורגית של המחלה מעבר טכניקות הקודם, וכתוצאה מכך החולה גדולה יותר איכות חיים והישרדות עוד שיעורי1,2,3. המשק השונים עבור שחזור כוללות המסתובבת להשתיל, ללא כנפיים.

התפקיד של מדפים חינם בשחזור ראש וצוואר התרחב. זה הכריכה הקשה ביותר לעבוד עם, הדורשים טיפול רגיש ומיומן. דש כשל הוא אירוע קטסטרופלי, עם תחלואה משמעותית4,5. לפיכך, שעבר הסמכה זמן נדרש כדי לפתח את הדיוק הכרחי עבור תוצאות ניתוח מוצלח3,4,5,6,7,8, 9. עקומת למידה תלולה המשויך ניתוח כזה יכול להשפיע על התוצאות עבור חולים ומשפיעים על טיפול וניהול3,4,5,6,7, 8,9. כדי להפחית את זמן ההכשרה עקומת למידה עבור כירורגים חדשים, מודל אימון יש צורך מחקה הביולוגיה האנושית ומספק דומה לתחום הכירורגי תנאים8.

מטרתו של מחקר זה היא להציג את התצוגה של Porcine כמו מודול אימון טוב עבור הראש והצוואר שחזור microvascular הדומה המקרה האנושי עם שיפור מיומנויות בצורה פעילה.

מחקר זה חקר השימוש של מודל חזירי עבור אימון עמיתים חדשים בבניה הראש והצוואר microvascular להעברה-פלאפ לספק חסכונית ופחות מלחיץ שמשלימה באימון קליניים שדה עם אמינה דומה תכונות להליכי-פלאפ. חזירים שימשו למחקרים רבים וכן מלמד מודלים שחזורים כירורגיים שונים, למשל, שחזור שד; 5 . אולם, חזירים מעולם לא שימשו שחזור הראש והצוואר מלבד במחקר שלנו עבור שחזור בקנה הנשימה עקב היצרות בקנה הנשימה10.

הרעיון היה החלה לאחר פרדריק בודין7, אשר מתארים את דש דומה עבור שחזור שד. היתרון העיקרי לצורך המחקר על המודול השני של ההכשרה microvascular הוא המודול livening פעיל עם תוצאה מיידית אמיתי של ההליך.

הגישה מוגבלת. התחברו או התחילו תקופת ניסיון כדי לצפות בתוכן זה.

פרוטוקול

Loading...
$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

מחקר זה היה מודרך ואושרו על-ידי המחלקה של מעבדה חיה משאבים, Yonsei ביו מכון המחקר, Yonsei הספר לרפואה של אוניברסיטת, מוכרת על ידי האגודה הערכת ולדאוג הסמכה של מעבדה חיה הבינלאומי. מחקר זה בעקבות ההנחיות טיפול, שימוש של חיות מעבדה של המכון של מעבדה חיה משאבים הנציבות על המועצה הלאומית למחקר מדעי החיים. כל החזירים היו שאמבטיה למשך שבוע לפני הניתוח.

1. הכנה

  1. שמור את החזירים ללא מזון במשך למעלה מ- 12 שעות לפני הרדמה כללית עם גישה חופשית למים.
    הערה: שישה חזירות יורקשייר שימשו במשקל של 25-30 ק ג כל אחד.
  2. שימוש במחט מד 16 אורך 1 ס מ כדי להזריק intramuscularly alfaxan (1 מ"ג/ק"ג), חריגות השירותים הווטרינריים (2 מ"ג/ק"ג), azaperone (2 מ"ג/ק"ג) מאחורי האוזן ליזום הרדמה ומתחת.
  3. לגלח האמצע הקדמי של הצוואר לבין קיר הבטן של החזיר באמצעות של גילוח הסרת שיער כירורגי.
  4. אבטח נתיב (IV) תוך ורידי דרך וריד מרכזי או שולי אוזן בצד האחורי של auricle עם מחט 22-G. מזריקים Ketorolac (1 מ ג/ק ג) דרך קו הרביעי.
  5. להזריק אטרופין (0.04 מ"ג/ק"ג) intramuscularly כמתואר ב- 1.2. מזריקים intramuscularly כמתואר ב- 1.2 צפאזולין (30 מ"ג/ק"ג).
  6. לשים את החזיר בשכיבה במצב פרקדן על השולחן חדר הניתוח.
  7. לאפשר את החזיר את הנשימה 2 ל' של חמצן עם 5% של איזופלוריין באמצעות הרדמה החזירים מסיכה באופן ספונטני.
  8. לחשוף את מיתרי הקול דרך הפה על-ידי שימוש של laryngoscope, לרסס אותם עם שני חטיפי של פתרון מקומי של לידוקאין 2% למניעת צנרור-induced עווית בית הקול.
  9. לצנרר עם צינור 6.5 מ מ, לנפח שהקפל צינור עם 3-5 מ של האוויר באמצעות מזרק ללא מחט מצורף.
    הערה: בצע capnometry על מנת להבטיח כי הצינור בקנה הנשימה, המהווה חלק של מכונת ההרדמה, נמצא במצב תקין ואין CO2 בחזרה למכונה כאינדיקציה חמצון נאות.
  10. לשמור על ההרדמה לאחר צנרור עם 2% איזופלוריין.
  11. תשתמשי במשחה וטרינרית על העיניים של החזיר אותו וסגור עם רטייה כיסוי.

2. הליך: הקבלה באתר

  1. לחטא את הצוואר לקיר הבטן עם פילינג המבוסס על יוד פתרון 1%.
  2. התחל חתך אנכי קו האמצע בצוואר הקדמי באמצעות להב מס 23 עד עצם החזה.
  3. לנתח את השרירים רצועה ומשכו אותו רוחבית באמצעות מספריים רקמה קלי ו Lahey המדחק.
  4. חושפים את קנה הנשימה של הצלצול הראשון לים בית החזה.
  5. לאחר מכן, לחשוף את עורק תרדמני הפנימי, ווריד הצוואר עבור ההשקה.
  6. ליצור חלון השני או השלישי והכו אותי הסחוס, ~ 1 ס"מ רוחב באמצעות להב מס 11.
  7. לחפש את הצינור אנדוטרכאליות דרך הנשימה הפגם שנוצר, וודא ממשיכה לערבב דרך הצינורית באמצעות ההנשמה ללא דליפה.

3. הליך: מקישים באתר

הערה: הקציר דש מנקב (SEAP) בעורק הצפק סופריור יכול להתבצע, על פי השיטה המתוארת על ידי פרדריק בודין7.

  1. עיצוב כנף על הבטן העליונה על ידי עט מרקר כירורגי (איור 1 א').
  2. ליצור חתך בעור אליפטית 4 x 3 ס מ באמצעות איזמל מס 23 כדי נדן הקדמי של קיר הבטן בצד המדיאלי של הכנף מצוירות (איור 1B).
  3. להעלות את רמת מעטפת (פיל) הכנף של שריר הבטן הישרים מחפש את מנקבי הולך קפל העור תוך החזקת fascia על ידי ששרד.
  4. לבצע את הקרע שרירית ובצע את מנקבי לכלי הצפק סופריור (איור 1B)
  5. עכשיו לבצע את החתך לרוחב העור על הכנף מעוצבת (איור 1 א') באמצעות איזמל מס 23 (איור 1C)
  6. מהדק את כלי הצפק מעולה ואת וריד comitantes עם עוצר דימום עליונית ולהשתמש קלי רקמות מספריים לחתוך מתחת עוצר דימום, מאתרים ומפסיקים את הכלי מעל עוצר דימום על ידי תפירה 3-0. תוריד את עוצר דימום.

4. השקה, סגירת מעגל

  1. לשים על זכוכית מגדלת כירורגי.
  2. תהדק את התרדמה באמצעות שני ועוצרי דימום עם 1-2 ס מ מרחק ביניהם.
  3. השימוש מיקרו-מספריים כדי לחתוך העורק הראשי בין החלק עליון על ידי תפירה כפולה להבטיח לא נוזלת.
  4. השתמש את המלחציים זוגי ללא המסגרת בין התרדמני עורק דש.
  5. הפעל השקה באמצעות 10-0 בתפר פשוט מלא עובי לפרש.
  6. המקום הראשון שני התפרים בנפרד על ההיקף של הספינה, ולאחר מכן בין מקום 2-3 תפרים כ- 120 מעלות.
  7. לשחרר את המלחציים אם יש דם נוטף לעשות את התפר דומה באתר וזב.
  8. חפשו מזרימה חוזרת ורידים של וריד comitantes.
  9. מבצע השקה כפי שמתואר בשלב 4.1 ל 4.7 עבור הפנימי, ווריד הצוואר ו comitantes וריד (איור 1D).
  10. השתמש בגודל מחט מזרק 18 כדי לדקור את העור כדי להבטיח דש הכדאיות על-ידי רואה טיפה דם.
  11. סגור את חלון והכו אותי ואת בתפר זה fascia שרירים של SEAP דש באמצעות תפירה 3-0.
  12. Exteriorize, תפר משוט העור של רצועת העור SEAP על החתך בעור קו האמצע צוואר הרחם (איור 2 א).
  13. סגירת החתך בעור בטן (איור 2B).

5. לאחר הניתוח טיפול

  1. תפוס את החזיר בחזרה לתוך בשכיבה.
  2. עוצרים את איזופלוריין, לגמול את החזיר של ההנשמה.
  3. לאפשר חזיר כדי לשחזר בכלוב החיות ולנטר אותה מקרוב כדי להבטיח את ההתאוששות חלקה.
  4. חפשו הכנף-אתר השחזור לאחר ריפוי (איור 2C).
  5. תסתכל באתר התורם החיה לאחר ריפוי (איור דו-ממדי).
  6. מתחיל לקטט רינגר בשיעור של 150 מ/h עד החלמה מלאה ולפקח 0.3 mg. הבופרנורפין על שיכוך כאבים.
  7. בעקבות extubation, לפקח על החזיר מקרוב עד שהכרתו מספיק כדי לשמור על מיקום ונשימה יוכל לשתות באופן ספונטני.
  8. לשמור את החזירים לאחר הניתוח במקום מופרדים אין חיות המופעלים.
  9. התחל אמוקסיצילין שרירית – clavulanate (14 מ"ג/ק"ג) במשך שבוע.
  10. להתחיל Meloxicam תוך שרירית (0.2 מ ג/ק ג) במשך שבוע.

6. המתת חסד

  1. להתחיל הרדמה לחזיר באמצעות הזרקת propofol דרך העירוי (5-10 מ ל), לשמור על זה עם איזופלוריין 5%.
  2. לצנרר את החזיר כפי שמתואר בשלב (1.1, 1.2, 1.6-1.10).
  3. לגרום לדום מאת ורידיות 40 mmol אשלגן כלורי.

הגישה מוגבלת. התחברו או התחילו תקופת ניסיון כדי לצפות בתוכן זה.

תוצאות

Loading...
$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

ביצענו את ההליך על ששת החזירים: שחזור העור הצווארי פגם על שני חזירים, שחזור והכו אותי על שני חזירים, ועל דש חינם לבדוק התקן השקה וסקולרית שני חזירים. החזירים היו במעקב במשך 3 חודשים ולא היה שום סימן נוירולוגי קליני.

זמן ממוצע של איסכמיה היה 50 min (טווח, 35-80 דקות); הזמן ירד כמו ההליך חזר על עצמו. בתקופת הקציר אכזרי של החזירים שש היה 55 דקות. יש תחלואה לא יקרה באזור התורם במודול שלנו. Pedicle רעים לגודל המשק היה 10 ס מ, הדומה ב...

הגישה מוגבלת. התחברו או התחילו תקופת ניסיון כדי לצפות בתוכן זה.

דיון

Loading...
$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

תחלואה משמעותית, פגמים יכול להתרחש בתוך הראש, צוואר ממאירות המטופלים במהלך ניהול כירורגי. העברת רקמות חינם microvascular הפך חיוני עבור שחזור ברוב המקרים. הכדאיות של הכנף הוא נושא קריטי, הדורשים יציבות, מדויק טיפול של pedicle, תחושות מישוש, יכולת visuospatial, זרימה סוכן מצוין המנתח8. לפתח מיומנויות אלה, צריך תרגול מקיף עם הכשרה מודל3,4,5,6,7...

הגישה מוגבלת. התחברו או התחילו תקופת ניסיון כדי לצפות בתוכן זה.

גילויים

Loading...
$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

המחברים אין לחשוף.

תודות

Loading...
$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

עבודה זו הייתה במימון, נתמך על-ידי התוכנית מחקר מדעי בסיסי דרך לאומי מחקר קרן של קוריאה (ב- NRF) במימון של משרד המדע, ICT ותכנון העתיד (2015R1C1A1A01051907). עבודה זו נתמכה גם על-ידי התוכנית מחקר מדעי בסיסי דרך לאומי מחקר קרן של קוריאה (ב- NRF) במימון של משרד המדע, ICT ותכנון העתיד (ה-NRF-2016M3A9E9941746).

הגישה מוגבלת. התחברו או התחילו תקופת ניסיון כדי לצפות בתוכן זה.

חומרים

רשימת החומרים שנעשה בהם שימוש במאמר זה
שםחברהמספר קטלוגהערות
Pigs XP Bio, סיאול, דרום קוריאה
מכונת גילוח כירורגית להסרת שיער3M
22 קטטרB.BRAUN
מזרק עם גודל מחט 18Jung Rim רפואי
תוך שרירי alfaxanCareside10ml/VAL
IntramuscularxylazineBayer
אזאפרון תוך שריריסיגמא-אולדריץ'34223
אטרופין תוך שריריDaewon0.5 מ"ג/A
צפזולין תוך שרירייוהאן1 גרם
תוך ורידי KetorolacHana Pharm30 מ"ג
מסכת אנסתזיה חזיריםDRE1392
צינור שרוול אנדוטרכיאלי 6.5 מ"מSMITH רפואי100/150/065
מכונת אנסתזיהDrä PRIMUS IE
2% לידוקאין תמיסה מקומיתTaejoon
משחה וטרינריתפייזרטרמיצין figure-materials-1
מדבקת כיסוי עינייםInnomedS-universal010S
betadine solution 1%.קוריאה פארמה
גזה 4*4פירסט מדיקל22*30 ס"מ 320S
להב מס' 23פרגון23
מפסק לייהיV.MuellerSU3960
קלי רקמות מספרייםSOLCO05-1990
להב מס' 11פרגון11
עט סימון כירורגיאספן כירורגירגיל #2750
allisV.MuellerSU4055
תפר עניבהCovideinללא מחט
3.5 ופעמים; זכוכית מגדלת כירורגיתzeisseyemag מהדק כפול חכם
ללא מסגרתV.MuellerCH7155
מיקרו-מספרייםAESCULAPFD038R
לקטט של רינגרדאהאן500 מ"ל/1 שקית
אמוקסיצילין– קלבולנטאילסונג0.6 גרם/V
מלוקסיקםסמיל7.5 מ"ג
פרופופולדונג קוק120 מ"ג/V
תמיסת KCl תוך ורידיתDaehan20ml/50P
יתוש מעוקלSOLCO013-0111
יתוש ישרSOLCO05-1050
אתילון 10-0 תפראתיקון10/0W1756
ויקריל 3-0.אתיקון3/0W9890
בופרנורפיןHanlim0.3 מ"ג
ger

מקורות

Loading...
$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,
  1. Chen, C. L., Zenga, J., Roland, L. T., Pipkorn, P. Complications of double free flap and free flap combined with locoregional flap in head and neck reconstruction: A systematic review. Head & Neck journal of the Science and Specialties of the Head and Neck. 40 (3), 632-646 (2018).
  2. Smith, R. K., Wykes, J., Martin, D. T., Niles, N. Perforator variability in the anterolateral thigh free flap: a systematic review. Surgical and Radiologic Anatomy. 39 (7), 779-789 (2017).
  3. Bauer, F., Koerdt, S., Hölzle, F., Mitchell, D. A., Wolff, K. D. Eight free flaps in 24 hours: a training concept for postgraduate teaching of how to raise microvascular free flaps. British Journal of Oral and Maxillofacial. 54 (1), 35-39 (2016).
  4. Schoeff, S., Hernandez, B., Robinson, D. J., Jameson, M. J., Shonka, D. C. Jr Microvascular Anastomosis Simulation Using a Chicken Thigh Model: Interval Versus Massed Training. The Laryngoscope. 127 (11), 2490-2494 (2017).
  5. Bodin, F., Diana, M., Koutsomanis, A., Robert, E., Marescaux, J., Bruant-Rodier, C. Porcine model for free-flap breast reconstruction training. Plastic and Reconstructive Surgery Journal. 68 (10), 1402-1409 (2015).
  6. Rodriguez, J. R., Yañez, R., Cifuentes, I., Varas, J., Dagnino, B. Microsurgery Workout: A Novel Simulation Training Curriculum Based on Nonliving Models. Plastic and Reconstructive Surgery Journal. 138 (4), 739e-747e (2016).
  7. Carey, J. N., et al. Simulation of plastic surgery and microvascular procedures using perfused fresh human cadavers. Plastic and Reconstructive Surgery journal. 67 (2), e42-e48 (2014).
  8. Chan, W., Niranjan, N., Ramakrishnan, V. Structured assessment of microsurgery skills in the clinical setting. Plastic and Reconstructive Surgery Journal. 63 (8), 1329-1334 (2010).
  9. Matsumura, N. A newly designed training tool for microvascular anastomosis techniques: Microvascular Practice Card. Surgical Neurology Journal. 71 (5), 616-620 (2010).
  10. Kim, W. S., et al. Tracheal reconstruction with a free vascularized myofascial flap: preclinical investigation in a porcine model to human clinical application. Scientific Reports. 7 (1), 10022(2017).

הגישה מוגבלת. התחברו או התחילו תקופת ניסיון כדי לצפות בתוכן זה.

הדפסות חוזרות והרשאות

בקש הרשאה לשימוש חוזר בטקסט או באיורים של מאמר JoVE זה

בקש הרשאה

תגיות

מאמרים קשורים