מאמר שיטה

סגר אבי העורקים מלאה או חלקית לטיפול של הלם Hemorrhagic בחזיר

10K צפיות

⸱

DOI:

10.3791/58284

⸱

24 באוגוסט 2018

 ,  ,  ,  ,  ,  ,  ,  ,  ,  ,  ,  ,  ,  ,  ,  ,  , 
1Department of Surgery, University of Michigan, 2Hays Innovations

* These authors contributed equally

במאמר זה

סיכום

כאן, אנו מציגים פרוטוקול הוכחת כמודל הלם hemorrhagic החזירים המשתמשת סגר אבי העורקים כגשר סופית טיפול בטראומה. מודל זה כולל יישום בדיקות מגוון רחב של אסטרטגיות טיפוליות כירורגיות תרופתי.

תקציר

דימום נשאר הגורם המוביל של מקרי מוות למניעה בטראומה. Endovascular ניהול של פלג הגוף העליון שאינה דחוסה דימום כבר בחוד החנית של טראומה טיפול בשנים האחרונות. מאז סגר אבי העורקים מלאה מציג חששות, הרעיון של חלקי סגר אבי העורקים צבר של תשומת לב גוברת. כאן, אנו מציגים מודל בעלי חיים גדולים של הלם hemorrhagic כדי לחקור את ההשפעות של קטטר סגר הרומן בלון אבי העורקים חלקית ולהשוות אותם עם קטטר זה עובד על העקרונות של סגר מוחלט של אבי העורקים. החזירים הם מרדימים מספקים על מנת לנהל מבוקרת בנפח קבוע דימום ו מנוטרים פרמטרי והמודינמיקה ופיזיולוגיים. בעקבות דימום, אבי העורקים סגר קטטרים וזונדים מוכנס, מנופח באבי העורקים supraceliac עבור 60 דקות, במהלכן החיות מקבלים החייאה דם כמו 20% נפח הדם הכולל (TBV). בעקבות בלון דפלציה, החיות מנוטרים באווירה לטיפול נמרץ במשך 4 שעות, במהלכן הם מקבלים vasopressors ומטפלים נוזלים כנדרש. חסימה חלקית בלון אבי העורקים הפגינו שיפור דיסטלי רשע עורקי לחצים (מפות) בתקופת האינפלציה בלון, ירד סמנים של איסכמיה, ירד החייאה נוזל ושימוש vasopressor עוצמה. כמו חזיר פיזיולוגיה ותגובות homeostatic בעקבות דימום היו מתועדים היטב הם כאלה בבני אדם, חזיר hemorrhagic הלם מודל ניתן לבחון אסטרטגיות טיפול שונים. בנוסף מטפלים דימום, אבי העורקים סגר קטטרים וזונדים הפך פופולרי על התפקיד שמילאו לדום לב וכלי ניתוח, בסיכון גבוה בחירה ניתוחים אחרים.

מבוא

דימום ממשיכה להיות הגורם הדומיננטי של מקרי מוות למניעה בקרב חולים שעברו אירועים טראומטיים, הנהלת חשבונות עבור 90% של מקרי מוות הקשורים לטראומה בהגדרת צבאי ו- 40% של מקרי מוות פוסט טראומטית בקרב האוכלוסייה האזרחית של1, 2. למרות לחץ ישיר יכול להתייחס דימום דחוסה, דימום שאינה דחוסה פלג הגוף העליון נשאר קשה לטיפול, יכול להיות קטלני ללא שליטה hemostatic בקש. הגישה ההיסטורית של ניקור חזה resuscitative או פתיחת בטן עם אבי העורקים קרוס-מחבר חובק למעקה הוכיח את עצמו מאוד פולשנית3,4. התערבות זו דורש גם באלגוריתם בחירה מורכב כדי לקבוע את מועמדותם של חולים שעברו טראומה עלבונות5.

בשנים האחרונות, חלה תחייתו של עניין בגישה שתואר לעיל — resuscitative endovascular סגר בלון של אבי העורקים (REBOA)6,7,8. למרות REBOA העניקו לו היתרונות הישרדות לטווח קצר של דימום, סגר מוחלט ממושך של אבי העורקים במהלך בלון האינפלציה מהווה חששות הכוללים סוף בלתי הפיך-איבר איסכמיה9,10. בניסיון להתגבר על תחלואה פוטנציאלית זו, הם להיות המציאו endovascular חלופי אסטרטגיות לניהול דימום. אסטרטגיה אחת כזו שראתה תשומת לב גוברת הוא סגר חלקית אבי העורקים11,12. הרעיון של הבלון אבי העורקים חלקית סגר מעניק את זלוף דיסטלי לאתר של סגר, משופרת הפיזיולוגיות מפות אבי העורקים הפרוקסימלית ו צמצום afterload הדרגתית בעקבות דפלציה בלון את כלי הדם מיטות. אלה שינויים בפרמטרים הם השינויים הרצויים מאפיינים פיזיולוגיים של חיה מדמם. לפני התרגום של שיטה זו על בני אדם, להשלים, חלקית אבי העורקים סגר קטטרים וזונדים נבדקו בכבדות החזירים דגמים של הלם hemorrhagic11,12,13.

החזירים השתמשו במחקרים פרוגרמה הלם hemorrhagic במשך שנים רבות. רוב של הבנת הפתופיזיולוגיה של הלם hemorrhagic הנוכחי נגזר מחקרים נעזרו מודלים בבעלי חיים, כולל החזירים. שלהם פיזיולוגיה ותגובות homeostatic בסביבה של דלדול פיפטות אמצעי האחסון הבאים לדימום מוחי, במיוחד אלה הנוגעים תגובות קרישת דם, לב וכלי דם דם, היו מתועדים היטב, כמו אלה בני14. החזירים מודלים של הלם hemorrhagic גם לספק הזדמנויות לחקור אסטרטגיות טיפול הלם hemorrhagic ופציעות טראומטיות אחרות.

במחקר זה, נדגים מודל ריאליסטי קלינית של הלם hemorrhagic ב החזירים כדי להעריך את אסטרטגיות טיפול endovascular, לרבות חסימה מלאה או חלקית בלון אבי העורקים. אנו משערים כי חסימה חלקית של אבי העורקים גורמת כדאי הפיזיולוגיות, מעבדה פרופיל בהשוואה סגר מוחלט של אבי העורקים של החזירים שעברו דימום תת-בנפח קבוע מבוקרת.

כיוונו כדי להשוות את ההשפעות הפיזיולוגיות של סגר אבי העורקים חלקית לטיפול הלם hemorrhagic במודל של החזירים. סגר אבי העורקים חלקי הושג באמצעות סגר בלון אבי העורקים סלקטיבי של טראומה (SABOT) קטטר (איור 1). הקטטר SABOT היא מערכת שני-בלון המאפשרת זרימת דם אינטרה-luminal, ובכך מספק זרם אבי העורקים חלקית כדי דיסטלי כדי סגר המיטות כלי הדם. סגר אבי העורקים מלאה הושג באמצעות קטטר חד-בלון סגר אבי העורקים (למשל,CODA) (איור 1). קבוצות הטיפול חולקו באופן אקראי לעבור סגר אבי העורקים resuscitative עם מלאה או עם חלקי אבי העורקים סגר קטטרים וזונדים (n = 2/קבוצה).

הצעדים העיקריים של המודל כוללים את תנאי הגיוס של צנרור והרדמה, שמירה על הרדמה, מכשור, דימום TBV 35% (סה כ 20 דקות; חצי מעל הראשון 7 דקות, וחצי מעל שאר 13 דקות), בלון ותיני סגר, החייאה דם (60 דקות של סגר; 20% החייאה דם במהלך 20 דקות האחרונות של סגר), טיפול קריטיים ניטור (240 דקות) עם תצפית והמודינמיקה, המתת חסד עם רקמת קציר. איור 2 מדגים את המודל מנוצל בניסוי זה.

הגישה מוגבלת. התחברו או התחילו תקופת ניסיון כדי לצפות בתוכן זה.

פרוטוקול

בעריכת תחקירים באמצעות בעלי חיים, החוקרים דבקה לתקנות חוק רווחת בעלי חיים, חוקים פדרליים אחרים הנוגעים חיות וניסויים המערבות בעלי חיים ואת העקרונות שנקבעו בגירסה הנוכחית של המדריך לשימוש טיפול של חיות מעבדה של המועצה הלאומית למחקר. פרוטוקול מחקר זה אושרה על ידי אוניברסיטת מישיגן אכפת חיה מוסדיים ועל שימוש הוועדה (IACUC). הניסויים נערכו בהתאם כל תקנות והנחיות בנושא רווחת בעלי חיים במחקר.

1. בעלי חיים מבחר, להתאקלמות

  1. שימוש הנשי יורקשייר-צמחי תרבות מסורתיים crossbred החזירים (n = 2/קבוצה, טווח גילאים: 5-6 חודשים, משקל טווח: 40-60 ק ג) לניסוי.
  2. לאחר הגעתם במתקן, בית החיות בנפרד בכלובים אבל לוודא כי יש בשפע האינטראקציה בין החיות שכנות כלובים.
  3. בית החיות לפחות 5 d כך הם הם לגמרי שאמבטיה לפני ביצוע הניסוי. במהלך תקופה זו, להאכיל את בעלי החיים עם תזונה רגילה ולבחון אותם כדי לוודא שהם במצב טוב לבריאות.
  4. לשמור את בעלי החיים לאכול ולשתות אחרי חצות לפני הניתוח כדי למנוע את הסיכון של השאיפה במהלך צנרור.

2. והרדמה צנרור

  1. לסמם את החיה עם 5 מ"ג/ק"ג tiletamine/zolazepam נתן intramuscularly (IM) לתוך שריר העכוז בעוד החיה נמצאת באזור מגורים. במקביל, לתת אטרופין 0.05 מ"ג/ק"ג IM כסוכן אנטיכולינרגיות כדי למזער את הפרשות במהלך צנרור.
  2. להעביר את החיה מן האזור דיור לחדר הניתוח ולמקם אותו במצב פרקדן על שולחן הניתוחים.
  3. השתמש איזופלוריין בשאיפה (2% - 5%) כדי לגרום הרדמה. השתמש 21% חמצן (0.4 L/min) מעורבת עם האוויר (4 L/דקה) כמו גזים הספק לספק גז הרדמה נשאפים.
  4. בזמן להיות מושגת העומק הרצוי של הרדמה, למקם 20 גרם היקפיים תוך ורידי (IV) צנתר בווריד האוזן המנהל הרביעי של נוזלים, תרופות או הרדמה, לפי הצורך.
  5. כמו החיה רוכשת את העומק הרצוי של הרדמה, לשטוף בעדינות את כל פסולת, פסולת מן האתרים פעיל, כולל את האזורים מפשעי ישר ושמאלה, השמאלי והימני של הצוואר, והבטן. השתמש קוצץ שיער חשמלי כדי להסיר את כל השיער מן האתרים פעיל. להעריך את עומק ההרדמה צובט את האיבר האחוריות של בעל החיים, התבוננות תגובתה (חוסר).
  6. אבטח את החיה לשולחן הניתוחים באמצעות חבלים כותנה כירורגי סביב כל הגפיים, לפני צנרור.
  7. השתמש חתיכת חבל כותנה כירורגי קצר כדי להרים את הלסת התחתונה יחד עם הלשון כדי לפתוח את פתח הפה. השתמש עוד פיסת צמר גפן חבל למשוך את הלסת העליונה כלפי מטה. למקרה הרפיה הלסת אינה מספיקה או שפתות הקול מכווצות, להעלות את רמת איזופלוריין בקצרה, חזור על שלב זה.
  8. השתמש היד האחרת לאחוז בידית של laryngoscope המקובלת מצויד עם 12 בבלייד מילר מואר. עוברים את קצה הלהב מילר ללוע התחתון. תרגלו בזהירות כדי לשמר את השיניים ואת האוראלית תוך תמרון הלהב בחלל הפה. באיטיות, את קצה הלהב עד הגרון ניתן לאבחן בבירור ולהתקדם מעבר לים בגרון. בעזרת כף היד, הרם את הלהב, מעליות האפיגלוטיס, כך מתקבל תצוגה ברורה של הגרון.
  9. לפני 6.5 Fr או 7 Fr אנדוטרכאליות ברכבת התחתית (ETT) עם stylet בין שפתות הקול לתוך קנה הנשימה. במקרה של עווית בית הקול עקב גירוי ברירית האף, לידוקאין 2% למרוח את שפתות הקול ואת השדה glosso-epiglottic החציוני, להעריך מחדש.
  10. הסר את stylet לפני במלואו לקידום הצינור למטה קנה הנשימה תוך שמירה על אחיזה חזקה על המרקע. לנפח את השרוול בלון עם 10-15 ס מ3 אוויר כדי למנוע כל דליפת אוויר סביב שהקפל ושאיפה של תוכן קיבה.
  11. לחבר את ETT שמכונת ההנשמה דרך פילטר נשימה (מחליף חום ולחות). אבטח את ETT על ידי קשירת בקלטת כותנה סביב החוטם (הלסת העליונה).
  12. במקרה צנרור שנכשלו, תן את oxygenate בעלי חיים ותאוורר בקצרה לפני כל ניסיונות נוספים.
  13. להבטיח את ההגדרות המתאימות שמכונת ההנשמה: תערובת של 21% חמצן ואוויר; נפח ענק של 7-10 מ"ל/ק"ג משקל גוף; קצב הנשימה של 10-15 נשימות לדקה כדי לשמור על קצה-גאות pCO2 מ מ כספית ± 2 מ מ כספית 40.
  14. במקום אוקסימטר על האוזן, הלשון, או זנב כדי למדוד את חמצון הדם ואת קצב הלב. מראש בדיקה רקטלית דרך כגדולים אנאלי לניטור רציף טמפרטורה.
    הערה: הטמפרטורה של החיה הוא להישמר בין 38 ° C עד 40 מעלות צלסיוס באמצעות שולחן הניתוחים מוסדר טמפרטורה מחוממת, השטיח חום, או חימום שמיכה.
  15. השתמש איזופלוריין (1% - 3%) לשם קיום הרדמה לאורך כל ההליך. במהלך תקופה זו, להעריך את עומק הרדמה על ידי בדיקת רפלקסים כאב באמצעות צביטה הגפיים האחוריות. בנוסף, לנטר את קצב הנשימה על ההנשמה כדי לראות אם הוא תואם את קצב ההנשמה מתוכנתים.
    הערה: נשימה יתר מציינת את עומק לקוי של הרדמה.

3. באתר ניתוחי עיקור (הכנה, כורכת)

  1. הכינו את האתרים החתך, כמו גם על שטח נרחב הסובבים אותם ההליכים ניסיוני. האתרים החתך לניסוי כוללים אזורים מפשעי דו צדדיים, בצוואר דו צדדיים בבטן התחתונה. לחטא את האתרים פעיל על-ידי לקרצף אותם עם כמות שופע של povidone יוד במשך 5 דקות.
  2. להשתמש גזה יבשה, סטרילי כדי להסיר את הסבון povidone יוד מן העור.
  3. במקום מגבות כירורגי סטרילי סביב האתרים פעיל כדי לשמר את השדות כירורגי סטרילי. להשתמש מלקחיים מגבת כדי לאבטח את המגבות במקום. מכסים את החיה עם תלוי סטרילי כדי למנוע כל זיהום של האתרים כירורגי.

4. תעלות

  1. עורק הירך ואת הווריד תעלות
    הערה: מבוצע על תעלות של עורק, הירך הימני, עורק הירך השמאלי, וריד הירך השמאלית. עורק הירך הנכון הוא לצינוריות באמצעות נדן 14 Fr ההכנסה להכנסה קטטר סגר הבלון אבי העורקים. עורק הירך השמאלי הוא לצינוריות באמצעות צנתר Fr 5 לניטור מפה דיסטלי. קטטר Fr 8 מונחת בווריד הירך השמאלי להסגתם המינהל ודם נוזל. הטכניקה Seldinger פתוח הוא מועסק כדי לגשת לכלי הדם cannulations כל15.
    1. לפני ביצוע החתך, להעריך את עומק הרדמה על ידי צובט את האיבר האחוריות של החיה.
    2. באמצעות אזמל מצויד עם להב כירורגי סטרילי מספר 10, לעשות חתך אנכי 8 ס מ המתאים אשכים 4 ס מ מעל ו- 4 ס מ מתחת הקמט נכון במפשעה.
    3. לנתח דרך עורית שריר ולהשתמש רטרקטורים Weitlaner שני להשגת חשיפה נכונה. להשתמש את המדחק צבאית של הכחשה נוספת במידת הצורך.
    4. השתמש Mixter מאונכים מלקחיים electrocautery לנתח דרך רקמות החיבור עד נחשף בבירור הצרור נוירו-וסקולריים.
    5. בזהירות לנתח את העורק. לשמר את העצב, המהווה מבנה רוחבי ביותר.
    6. בזהירות לנתח את הווריד, הנמצא ביותר medially, הרחק העורק.
    7. להשיג שליטה הפרוקסימלית ואת הדיסטלי של העורק באמצעות קשרים משי 2-0.
    8. שימוש במחט introducer בזווית 20 גרם ניקוב העורק. להבטיח עמדה ראויה ב לומן כלי השיט על ידי התבוננות על פועמת דם זורם דרך הקצה השני של המחט.
    9. מראש של 0.35 לסיבוב משופעת ב guidewire דרך לומן של המחט בזווית.
    10. לשלוף את המחט מעל guidewire. ודא אין העברה של guidewire על-ידי החזקת את זה במקום.
    11. העבר מרחיב Fr 10 guidewire להתרחב הפתח בעורק. הסר את מרחיב Fr 10. הכנס נדן ההכנסה Fr 14 מעל guidewire.
    12. הסר בזהירות את מרחיב מהנדן הכניסה יחד עם guidewire, שומר את הצינורית בתוך העורק.
    13. ריקון נדן ההכנסה כדי להבטיח את מיקומו בתוך כלי לומן.
    14. הבטיחו לסוף המשפט מקום suture polyglactin 3-0.
    15. להשתמש בתפר ניילון 3-0 כדי לבצע סגר פועל זמנית של העור שמעליה.
    16. חזור על השלבים הנ ל תעלות עורק הירך השמאלי באמצעות צנתר Fr 5 (לא ראשוני). לבודד את וריד הירך השמאלי באופן דומה, נקרר אותו באמצעות קטטר 8 של Fr. להשתמש בתפר ניילון 3-0 כדי לבצע סגר פועל זמנית של העור שמעליה.
  2. . העורק הראשי, תעלות עורק הצוואר
    הערה: מבוצע על תעלות של דו-צדדי לורידים וריד הצוואר חיצוני, עורק תרדמני השמאלי. צנתר Fr 5 ימוקם את השמאלי עורק תרדמני לניטור מפה הפרוקסימלית ו של קטטר Fr 8 ב שמאלי חיצוני ומוחלף על גישה ורידי מרכזי נוספות עבור ניהול נוזלים, אינפוזיה vasopressor עוצמה. צנתר Fr 9 ימוקם ומוחלף על נכון חיצוני עבור צנתור עורק הריאה עם עורק הריאה (למשל, ברבור-גנץ) קטטר, בזמן בדיקה הזרימה בעורק הראש ממוקמת סביב העורק תרדמני ממש נפוץ עבור קצב הזרימה בעורק הראש ניטור. הגישה Seldinger משמש כדי לגשת לכלי הדם עבור כל cannulations.
    1. באמצעות אזמל, פסיכולוגית, לבצע חתך אנכי 6 ס מ בערך 2 ס מ לרוחב האמצע בצד שמאל של הצוואר.
    2. השתמש electrocautery לנתח דרך עורית עד שריר שריר הצוואר (SCM) חשוף.
    3. רטרקטורים המקום Weitlaner על ההיבטים הפרוקסימלית ו דיסטלי של חתך הכחשה מלאה.
    4. לנתח לאורך הגבול הלטראלי של שריר SCM לחשוף ומוחלף חיצוני על שמאל.
    5. תעלות כלי יכולה להיות מושגת על ידי ביצוע שלבים 4.1.8 - 4.1.14. להוסיף, להוריד, מאובטחים הצנתר Fr 8 את תקחי.
    6. לחשיפה השמאלי נפוץ העורק הראשי, לנתח את הקצה המדיאלי של שריר SCM. במקום מפסק Weitlaner כדי לשפר את החשיפה.
    7. לנתח דרך רקמת החיבור longitudinally לאורך הגבול הלטראלי של חוליות הצוואר. לשמר את בלוטות התימוס אם הם הם נתקלו.
    8. חושפים את המשולש העורק, אשר מכיל את העורק הפנימי, ווריד הצוואר, התועה. ימשש את עורק תרדמני כדי לקבוע את המסלול שלו.
    9. בזהירות לנתח את עורק תרדמני מן הווריד של העצב.
    10. לבצע את תעלות העורק על ידי ביצוע שלבים 4.1.8 - 4.1.14. להוסיף, להוריד, ולאבטח צנתר Fr 5 בעורק כפי שתואר לעיל.
    11. חזור על שלבים 4.1. עבור ניתוח ובידוד של ממש חיצוני ומוחלף, נכון עורק תרדמני.
    12. במקום בדיקה זרימה העורק 4 מ מ סביב עורק תרדמני ממש. החל מתמר ג'ל בין החללית זרימת כלי הקיבול. של זרימה אופטימלי איתות, ללכוד.
    13. בעקבות 4.1.8-4.1.14 צעדים, נקרר ומוחלף על נכון חיצוני באמצעות נדן introducer Fr 9. ועצירה של מאובטחים הצנתר במקום. להשתמש בתפר ניילון 3-0 כדי לבצע סגר פועל זמנית של העור שמעליה.

5. הרשות הפלסטינית קטטר ההכנסה

  1. ריקון הנמל הזרקת הנמל צינתור, הנמל דיסטלי של הקטטר עם תמיסת מלח (NS) ולקשר אותם אל הצנרת מתמר. הנמל דיסטלי מיועדת כמו הנמל עורק הריאה (PA), בעוד הנמל proximal מיועדת כמו הנמל לחץ ורידי מרכזי (CVP).
  2. בדוק לעקיבה החפץ על המסך על-ידי העברת הצנתר. זה נעשה כדי לוודא כי הצנתר פועלת.
  3. מראש הרשות קטטר דרך השרוול סטרילי.
  4. באמצעות מזרק3 3 ס מ, לנפח את הבלון של הקטטר הרשות הפלסטינית עם יותר מ- 1.5 ס מ3 אוויר כדי לבדוק את האינפלציה. השטחת קצה הבלון כדי להוסיף את הצנתר נדן ההכנסה.
  5. הכנס את הצנתר הרשות הפלסטינית דרך נדן ההכנסה Fr 9. ברגע הקטטר הרשות הפלסטינית מוכנס לפחות 18 ס מ, לנפח את הבלון עם יותר מ- 1.5 ס מ3 של אוויר.
  6. לאט לאט לקדם הקטטר הרשות הפלסטינית, בדוק את המוניטור עבור הפרעות בקצב הלב במהלך ההוספה. במקרה של חריגה בפעילות חדרית בלוטת התריס, לנפח, השטחת קצה את הבלון כדי למנוע התקדמות. אם ההכנסה הופכת קשה בדרך כלשהי, הבלון צריך להיות מנוכה המחירים, הקטטר צריך להיות מההצעה והכנסת.
  7. לבחון את הצג כדי להעריך את המעבר מהפרוזדור הימני (RA) החדר הימני (RV) לרשות הפלסטינית כדי הלחץ טריז עורק הריאה (PWP).
  8. השטחת קצה הבלון ואשר עקבות הרשות הפלסטינית מחזירה לצג.
    הערה: האורך המתאים של הקטטר מהאתר ההכנסה ומוחלף נכון חיצוני על הוא כ 45-55 ס מ.
  9. חבר את הקצה של השרוול סטרילי נדן ההכנסה כדי להבטיח את המיקום של הצנתר בתוך הרשות הפלסטינית
  10. להתחבר היציאות ההכנסה של הקטטר הרשות היחידה הלכידה כדי להשיג את תפוקת הלב (CO) ורוויה של ורידים חמצן (סקאבו2).
  11. כיילו את הצנתר הרשות מערכת ניטור. באמצעות אורך הגוף משקל של החיה, התנהגות של כיול ויוו של הקטטר הרשות הפלסטינית ניטור המערכת לבעל החיים. השתמש גזים בדם ורידי כיול נוסף באמצעות רוויית החמצן ורמות המוגלובין.

6. cystostomy צינור השמה

  1. לבצע חתך בבטן התחתונה של 5 ס מ האמצע באמצעות אזמל להב 10.
  2. באמצעות electrocautery, לנתח דרך עורית, את linea alba. דמיינו כל שכבה במהלך ניתוח.
  3. Extracorporealize על שלפוחית השתן.
  4. עם שני דה-בייקי מלקחיים, לאחוז את שלפוחית השתן על פני השטח הגחון מן הפתחים ureteral.
  5. באמצעות electrocautery, לעשות חור קטן שלפוחית השתן, חשיפת לומן הפנימי.
  6. השתמש שאיבה כדי להסיר כל לשתן בתוך לומן שלפוחית השתן. ספוגים כירורגי יכול לשמש עבור כל זליגת בהיסח הדעת של שתן מחוץ לשלפוחית השתן.
  7. להשתמש בתפר פוליפרופילן 4-0 כדי לבצע סגר התיק הזמני-מחרוזת של שלפוחית השתן.
  8. המקום של צנתר פולי Fr 18 בתוך שלפוחית השתן לומן ולהשתמש מזרק3 10 ס מ כדי לנפח את הבלון. להתחבר שקית ניקוז השתן הקטטר פולי ואבטח אותו לצד של שולחן הניתוחים.
  9. לקשור את התפר פוליפרופילן 4-0 כדי לאבטח את צנתר פולי ב לומן שלפוחית השתן.
  10. להשתמש בתפר ניילון 3-0 כדי לבצע סגר פועל זמנית של העור שמעליה קיר הבטן.

7. מלאה או חלקית בלון אבי העורקים קטטר ההכנסה

  1. אקראי בעלי חיים כדי לקבל גם את מלאה או חלקית של אבי העורקים סגר קטטרים.
  2. הכנס של 0.035, 260 ס מ Amplatz Guidewire נוקשה דרך ההוספה Fr 14 נדן בעורק הירך נכון, ומדריך אותו לתוך העורקים supraceliac (Zone 1) באמצעות בדיקת אולטרה סאונד של אבי העורקים בבטן, בית החזה.
  3. הכנס את הצנתר סגר בלון מעל guidewire 1 אזור של אבי העורקים כדי לבצע את סגר בעקבות דימום.
  4. לאשר את המיקום הסופי של הקטטר סגר אבי העורקים בלון לתוך אזור 1 של אבי העורקים עם בדיקת אולטרה סאונד.

8. פוסט ניתוחית והמודינמיקה וניטור מעבדה

  1. ודא את החיבור של קטטרים פולשנית למערכת ניטור באמצעות צינורות, מתמרים, אבובים למסכים בגרימת. מערכות ניטור פולשני צריך להיות 'מאופסים' ברמה של הלב של בעל החיים כדי להבטיח ניטור מדויק.
  2. נתוני הרשומה הפיזיולוגיות לאורך כל הניסוי, כולל את הפרוקסימלית ואת המפה דיסטלי, קצב הלב (HR), CVP את, הדו חמצני, הלחץ הרשות הפלסטינית, סקאבו2, סוף-גאות CO2ו וטמפרטורת הגוף.
  3. הקלט משתנים אלה, כל 5 דקות במהלך שטף הדם, בלון האינפלציה שלב, גם כפי שכל 15 דקות במהלך שאר הניסוי.
  4. לאסוף דגימות דם בנקודות זמן 4: בסיסית (BL), שלאחר הלם (PS), לאחר החייאה (PR), ובסופו של דבר (E) של הניסוי. 10 מ"ל של דם נאסף לניתוח פלזמה והן בסרום בכל נקודה בזמן.
  5. לבצע דיגום גז (אסתי) בדם על ידי איסוף עד 1 מ"ל של דם במזרק אסתי. לבצע דגימה אסתי בכל אחד נקודות הזמן הנ ל, וגם בעת הצורך במהלך הניסוי. השתמש מנתח גז דם לניתוח.
    הערה: כל מדגם צריך להיות מנותח בתוך 10 דקות של ציור בדם בגלל עיכובים יותר מ 10 דקות יכול להפחית את היעילות של תוצאות ה-16.

9. דימום

  1. לחשב את TBV.
    TBV ב מ ל = משקל בסול × 0.06 + 0.77
  2. דימום 35% TBV באמצעות משאבת אוטומטית על פני תקופה של לפחות 20 הסר חצי מעל הראשונה 7 דקות, ואת החצי השני מעל הבא 13 דקות.
  3. לאסוף את הדם בתוך שקיות איסוף דם רגילה. לאחסן אותם ב 4 ° C, בציפייה עירוי בעתיד.
  4. אם המפה יורדת מתחת 30 מ מ כספית, לעצור את שטף הדם, לבטל את איזופלוריין, לנהל 50-100 מ"ל בולוסים של NS.
  5. הפעל מחדש את שטף הדם כאשר המפה חוזר אל 30 מ מ כספית.

10. אבי העורקים בלון סגר קטטר האינפלציה, החייאה דם

  1. מנפח את הצנתר סגר בלון ותיני עם 9-12 ס מ3 אוויר או עד עוד ירידה הבאות מפה דיסטלי שהאינפלציה בלון נוסף הוא ציין.
  2. הסר את החוט של הקטטר סגר בלון אבי העורקים חלקית כדי להקל על זרימת אבי העורקים הדיסטלי, תוך השארת אותו על הצנתר סגר מלא בלון אבי העורקים. לאשר את המיקום של הקטטר סגר אבי העורקים בלון 1 אזור באמצעות בדיקת אולטרה סאונד כדי לשלול את הקטטר ההעברה.
  3. מאובטחים הצנתר על העור באמצעות תפר ניילון של קטע 3-0.
  4. לאחר 40 דקות של סגר אבי העורקים, להחיות את החיה עם דם שווה בכרך ל- 20% של TBV דרך הקטטר וריד הירך השמאלי במשך 20 דקות באמצעות המשאבה אוטומטית. השתמש דם חם על עירוי, מיקוד יש חום של 40 מעלות צלזיוס.
  5. לאחר החייאה, השטחת קצה את הבלון מצטבר מעל 5 דקות.
  6. הסר את הצנתר סגר אבי העורקים בלון מהנדן ההכנסה Fr 14.
  7. נטר את ספיקת הדם מקרוב במהלך תקופה זו, נתנו את הסיכון לפציעות איסכמיה-פגיעה reperfusion עם תת המשויך הידוע.

11. טיפול קריטיים, התבוננות ושחזור

  1. להתבונן החיות במשך 4 שעות עם ניטור רציף של פרמטרים פיזיולוגיים והמעבדה שלהם.
  2. מספקים תחזוקה עירוי נוזלים (עירוי NS-50 מ ל/h).
  3. המטרה CVP של 6 מ מ כספית על ידי מתן 30 מ"ל/ק"ג בולוסים של NS ואחריו בולוסים 20 מ"ל/ק"ג כאשר CVP יורד מתחת המטרה. להעריך את התגובתיות נוזלים מדי שעה.
  4. יעד מפה של 60 מ מ כספית באמצעות אינפוזיה של נוראדרנלין (0.024 mg/ml).
  5. לשמור על הפיזיולוגיות לטמפרטורה של 38-40 ° C באמצעות שמיכת חימום.
  6. בסוף תקופת 4 שעות, המתת חסד החיות עם זריקת סודיום פנטוברביטל (100 מ ג/ק ג).

12. necropsy

  1. הסר כל קווים חיוניים וצינורות החיה.
  2. להכין מיכל עם קרח רגיל והצב אותה ליד שולחן הניתוחים להקפיא את רקמות איברים מיד לאחר הסרת מן הגוף.
  3. להשתמש באזמל לעשות חתך אנכי ארוך 6 ס מ לאורך הגבול השמאלי בחזה ובצלעות, לנתח דרך העור, הרקמות, השרירים pectoralis, costal הסחוסים. הזן את חלל בית החזה כדי לחשוף את הריאות והלב.
  4. הסר את קרום הלב מכל הלב על-ידי ביצוע חתך עם האזמל ולתפוס השיא של הלב באמצעות מלקחיים. השימוש באזמל לחתוך קטע 5 x 5 ס מ של הלב-השיא.
  5. להשתמש במספריים לחתוך קטע 5 x 5 ס מ של הריאה מן הגבול הקדמי של הבסיס של הריאה.
  6. להרחיב את החתך ניקור חזה לתוך הקו הקדמי האמצעי של הבטן, חשיפת הקרביים של הבטן.
  7. להשתמש מלקחיים כדי להחזיק את האונה השמאלית של הכבד לגזור מקטע 5 x 5 ס מ.
  8. חזור על התהליך אותו מקבלים דגימות של הטחול.
  9. השתמש יד ימין כדי ליצור חלון כדי להזין את מקבץ השמאלי כדי לתפוס את הכליה. לאחר parenchyma כליות היא גייסה, transect של עורק הכליה ווריד, שופכן. הסר את הקפסולה כליות.
  10. בעדינות לסחוט צואה מן קטע ארוך 5 ס מ של המעי הגס קטן, להשתמש במספריים לחתוך קטע ארוך 5 ס מ של המעי מ מצע המעי.
  11. השימוש את האזמל לחתוך קטע ארוך 5 ס מ של שריר הארבע ראשי של הירך.
  12. לעבד את הדוגמיות הללו עוד יותר על ידי חיתוך אותם למקטעים קטנים ניתן להניח צינורות microcentrifuge. הקפאה אלו דגימות רקמה על ידי הנחת הצינורות לתוך קרח יבש או חנקן נוזלי.
  13. השתמש 50 מ ל צינורות חרוט המכיל פתרון פורמלין כדי לתקן 3 ס מ, סבכות רקמה עבור הערכה היסטולוגית.

הגישה מוגבלת. התחברו או התחילו תקופת ניסיון כדי לצפות בתוכן זה.

תוצאות

פרמטרי והמודינמיקה ופיזיולוגיים:

המפה ירד מיד לאחר דימום (3A דמויות - 3D). במהלך שלב האינפלציה בלון, חיות בקבוצה סגר מוחלט חוו מפת proximal גבוה יותר לעומת בעלי החיים בקבוצה סגר חלקית (דמויות 3A ו- 3B). המפה דיסטלי הממוצע במהלך האינפלציה הבלון היה גבוה יותר בקבוצה סגר חלקית לעומת הקבוצה סגר מוחלט (מפה דיסטלי הממוצע, שלב האינפלציה בלון; חלקית: 31 ± 2.9 מ מ כספית, מל...

הגישה מוגבלת. התחברו או התחילו תקופת ניסיון כדי לצפות בתוכן זה.

דיון

ב פרוטוקול זה, סימנו כמודל הלם hemorrhagic החזירים. מודל זה הוכח להיות גם אמין וגם לשחזור16,17,18,19. יש כבר מועסקים מודלים דומה לזה במספר מחקרים מדעיים חוקרת את ההשפעות של הלם hemorrhagic על פיזיולוגיה של בעלי חיים16,20. יתר על כן, מודל זה שימש גם לבדיקה שני התערבויות טיפול תרופתי וכירורגי הלם hemorrhagic עם הצלחה מסומן

הגישה מוגבלת. התחברו או התחילו תקופת ניסיון כדי לצפות בתוכן זה.

גילויים

עבודה זו נתמכת על ידי הצבא לנו מחקר רפואי פיקוד תחת חוזה מס W81XWH-16-C-0102. נוף, חוות דעת ו/או ממצאים הכלולים בדו ח זה הם אלה של והמלצה, לא יפורש כמו מחלקת הרשמי של עמדת הצבא, מדיניות, או ההחלטה אלא אם כן מטמאים על-ידי תיעוד אחר.

תודות

ברצוננו להודות רחל או'קונל, ולי ג'סיקה לסיוע שלהם עם המחקרים בבעלי חיים. אנחנו גם רוצים להכיר האלוף הרולד Timboe, MD, MPH, צבא ארה ב (מיל'), מי שהיה יועץ ומורה עבור פרוייקט זה.

הגישה מוגבלת. התחברו או התחילו תקופת ניסיון כדי לצפות בתוכן זה.

חומרים

רשימת החומרים שנעשה בהם שימוש במאמר זה
שםחברהמספר קטלוגהערות
של אוניברסיטת יורקשייר-לנדרייסמישיגן סטייט הרדמה
: טלזולפייזרמינון: 2-8 מ"ג/ק"ג; IM
אנטי כולינרגי: אטרופיןפייזרמינון: 1 מ"ג, IM
הרדמה: איזופלורןבקסטרמינון: 1-5%, INH
בטדיןהומקו
אלכוהול 70%HumcoNDC 0395-4202-28
מכונת הרדמה Datex-AespireGE Healthcare7900
צינור אנדוטרכיאליDEE 20170518 וטרינריגודל מתאים לבעלי חיים (6.5 או 7.0F)
לרינגוסקופמילר85-0045
StyletHudson RCI5-151--1
Jelco 20G IV קטטרסמיתס רפואי4054
מוניטור חדר ניתוח (מוניטור סימנים חיוניים)SurgiVet AdvisorV9201עשוי לדרוש לפחות 2
חלוקים כירורגייםקימברלי קלארק90142השתמש בגודל מתאים למנתח.
כפפות כירורגיות סטריליותCardinal Health (נאמנות)22537-570השתמש בגודל מתאים למנתח.
עיפרון קוטריMedlineESPB 2000
צינורות יניקהMedlineDYND50251
טיפ שמש: YankauerMedlineDYND50130
Bovie Aaron 1250 יחידת צריבה חשמליתBovie Medical Co. FLBOV-A1250U
להב Salpel - גודל #10בריאות קרדינל (נאמנות)32295-010
אזמל ידיתמרטין10-295-11
Debakey מלקחייםRobozRS-7562
Weitlander RetractorRobozRS-8612
מאיו מספרייםRobozRS-76870SC
צבא-חיל הים מפסקטלפלקס164715
מיקסטר זווית ישרה מלקחייםטלפלקס175073
5F (1.7 מ"מ) 11 ס"מ נדן הכנסה עם 0.35 אינץ' GuidewireBoston Scientific16035-05B
8F (2.7 מ"מ) 11 ס"מ נדן הכנסה עם 0.35 אינץ' GuidewireBoston Scientific16035-08B
20G זוויתיחץמבוא AK-09903-S
14F (4.78 מ"מ) 13 ס"מ נדן הכנסה עם מרחיב 10FCook MedicalG08024
2-0 משי 18 אינץ' 45 ס"מEthiconA185H
3-0 Vicryl 36 אינץ' 90 ס"מEthiconJ344H
3-0 ניילון 18 אינץ' 45 ס"מEthicon663G
4-0 Prolene 30'' 75 ס"מEthicon8831H
20 מ"ל מזרקMetronic/Covidien8881512878
3 מ"לMetronic/ מזרק Covidien1180300555
6 מ"לMetronic/Covidien1180600777
1000 מ"ל 0.9% מי מלחבקסטר2B1324X
קטטר פולי (18F 30 סמ"ק)Bard0166V18S
שקית ניקוז שתןBard154002
9F 10 ס"מ חץ נדן החדרהAK-09903-S
קטטר עורק ריאה Swan-Ganz (8F)Edwards Lifesciences co. CA746F8
Carotid Flow Probe SystemTransonic, Ithaca, NY3, 4 או 6 מ"מ בדיקות
SABOT צנתרHayes Inc.
צנתר בלון CODAקוק8379144
רפואי אולטרסאונד, M-TurboSonoSite
Amplatz חוט מנחה נוקשה (0.035 אינץ', 260 ס"מ)קוק רפואיG03460
מזרקי גז דם עורקיסמיתס רפואי4041-2
מנתח גזי דם עורקינובה ביוכימיABL800
מאסטרפלקס משאבתקול פאלמרHV-77921-75
שקיות איסוף דםTerumo1BBD606A
סט טפטוף מאקרו IVHospira12672-28
פנטוברביטלפייזרמינון: 100 מ"ג/ק"ג; IV
Eppendorf TubesSorenson11590
50 סמ"ק צינורות חרוטייםFalcon352097
FormalinFisherbrand431121
Bair Hugger Normothermia SystemArizant Healthcare, Inc.
חווה וטרינרית מחט

מקורות

  1. Kauvar, D. S., Lefering, R., Wade, C. E. Impact of hemorrhage on trauma outcome: an overview of epidemiology, clinical presentations, and therapeutic considerations. The Journal of Trauma: Injury, Infection and Critical. 60, S3-S11 (2006).
  2. Kauvar, D. S., Wade, C. E. The epidemiology and modern management of traumatic hemorrhage: US and international perspectives. Critical Care. 9, S1-S9 (2005).
  3. Mattox, K. L., Allen, M. K., Feliciano, D. V. Laparotomy in the emergency department. Journal of the American College of Emergency Physicians. 8 (5), 180-183 (1979).
  4. Pust, G. D., Namias, N. Resuscitative thoracotomy. International Journal of Surgery. 33 (Pt B), 202-208 (2016).
  5. Burlew, C. C., et al. Trauma Association critical decisions in trauma: resuscitative thoracotomy. Journal of Trauma and Acute Care Surgery. 73 (6), 1359-1363 (2012).
  6. DuBose, J. J., et al. The AAST prospective Aortic Occlusion for Resuscitation in Trauma and Acute Care Surgery (AORTA) registry: Data on contemporary utilization and outcomes of aortic occlusion and resuscitative balloon occlusion of the aorta (REBOA). Journal of Trauma and Acute Care Surgery. 81 (3), 409-419 (2016).
  7. Biffl, W. L., Fox, C. J., Moore, E. E. The role of REBOA in the control of exsanguinating torso hemorrhage. Journal of Trauma and Acute Care Surgery. 78 (5), 1054-1058 (2015).
  8. Manzano Nunez, R., et al. A meta-analysis of resuscitative endovascular balloon occlusion of the aorta (REBOA) or open aortic cross-clamping by resuscitative thoracotomy in non-compressible torso hemorrhage patients. World Journal of Emergency Surgery. 12, 30(2017).
  9. Gupta, B. K., et al. The role of intra-aortic balloon occlusion in penetrating abdominal trauma. Journal of Trauma. 29 (6), 861-865 (1989).
  10. Inoue, J., et al. Resuscitative endovascular balloon occlusion of the aorta might be dangerous in patients with severe torso trauma: A propensity score analysis. Journal of Trauma and Acute Care Surgery. 80 (4), discussion 378-380 559-566 (2016).
  11. Russo, R. M., et al. Extending the golden hour: Partial resuscitative endovascular balloon occlusion of the aorta in a highly lethal swine liver injury model. Journal of Trauma and Acute Care Surgery. 80 (3), 378-380 (2016).
  12. Russo, R. M., et al. Partial Resuscitative Endovascular Balloon Occlusion of the Aorta in Swine Model of Hemorrhagic Shock. Journal of the American College of Surgeons. 223 (2), 359-368 (2016).
  13. Williams, T. K., et al. Extending resuscitative endovascular balloon occlusion of the aorta: Endovascular variable aortic control in a lethal model of hemorrhagic shock. The Journal of Trauma and Acute Care Surgery. 81 (2), 294-301 (2016).
  14. Hannon, J. P. Hemorrhage and hemorrhagic-shock in swine: A review. Swine as Models in Biomedical Research. Swindle, M. M. , Iowa State University Press. Ames, IA. 197-245 (1992).
  15. Garry, B. P., Bivens, H. E. The Seldinger technique. Journal of Cardiothorac Anesthesia. 2 (3), 403(1988).
  16. Halaweish, I., et al. Addition of low-dose valproic acid to saline resuscitation provides neuroprotection and improves long-term outcomes in a large animal model of combined traumatic brain injury and hemorrhagic shock. The Journal of Trauma and Acute Care Surgery. 79 (6), 911-919 (2015).
  17. Alam, H. B., et al. Surviving blood loss without blood transfusion in a swine poly-trauma model. Surgery. 146 (2), 325-333 (2009).
  18. Jin, G., et al. Traumatic brain injury and hemorrhagic shock: evaluation of different resuscitation strategies in a large animal model of combined insults. Shock. 38 (1), Augusta, GA. 49-56 (2012).
  19. Nikolian, V. C., et al. Valproic acid decreases brain lesion size and improves neurologic recovery in swine subjected to traumatic brain injury, hemorrhagic shock, and polytrauma. The Journal of Trauma and Acute Care Surgery. 83 (6), 1066-1073 (2017).
  20. Langeland, H., Lyng, O., Aadahl, P., Skjaervold, N. K. The coherence of macrocirculation, microcirculation, and tissue metabolic response during nontraumatic hemorrhagic shock in swine. Physiological Reports. 5 (7), (2017).
  21. Johnson, M. A., et al. The effect of resuscitative endovascular balloon occlusion of the aorta, partial aortic occlusion and aggressive blood transfusion on traumatic brain injury in a swine multiple injuries model. Journal of Trauma Acute Care Surgery. 83 (1), 61-70 (2017).
  22. Theisen, M. M., et al. Ventral recumbency is crucial for fast and safe orotracheal intubation in laboratory swine. Laboratory Animals. 43 (1), 96-101 (2009).
  23. Li, Y., Alam, H. B. Modulation of acetylation: creating a pro-survival and anti-inflammatory phenotype in lethal hemorrhagic and septic shock. Journal of Biomedicine and Biotechnology. 2011, 523481(2011).
  24. Nikolian, V. C., et al. Valproic acid decreases brain lesion size and improves neurologic recovery in swine subjected to traumatic brain injury, hemorrhagic shock, and polytrauma. The Journal of Trauma and Acute Care Surgery. 83 (6), 1066-1073 (2017).
  25. Dekker, S. E., et al. Normal saline influences coagulation and endothelial function after traumatic brain injury and hemorrhagic shock in pigs. Surgery. 156 (3), 556-563 (2014).
  26. Causey, M. W., McVay, D. P., Miller, S., Beekley, A., Martin, M. The efficacy of Combat Gauze in extreme physiologic conditions. The Journal of Surgical Research. 177 (2), 301-305 (2012).
  27. Frankel, D. A., et al. Physiologic response to hemorrhagic shock depends on rate and means of hemorrhage. The Journal of Surgical Research. 143 (2), 276-280 (2007).
  28. Morrison, J. J., et al. The inflammatory sequelae of aortic balloon occlusion in hemorrhagic shock. The Journal of Surgical Research. 191 (2), 423-431 (2014).
  29. White, J. M., et al. A porcine model for evaluating the management of noncompressible torso hemorrhage. Journal of Trauma. 71, S131-S138 (2011).
  30. Alam, H. B., et al. Putting life on hold-for how long? Profound hypothermic cardiopulmonary bypass in a Swine model of complex vascular injuries. Journal of Trauma. 64 (4), 912-922 (2008).
  31. Bebarta, V. S., Daheshia, M., Ross, J. D. The significance of splenectomy in experimental swine models of controlled hemorrhagic shock. The Journal of Trauma and Acute Care Surgery. 75 (5), 920(2013).
  32. Georgoff, P. E., et al. Alterations in the human proteome following administration of valproic acid. Journal of Trauma and Acute Care Surgery. 81 (6), 1020-1027 (2016).
  33. Dekker, S. E., et al. Different resuscitation strategies and novel pharmacologic treatment with valproic acid in traumatic brain injury. Journal of Neuroscience Research. 96 (4), 711-719 (2017).
  34. Georgoff, P. E., et al. Safety and Tolerability of Intravenous Valproic Acid in Healthy Subjects: A Phase I Dose-Escalation Trial. Clinical Pharmacokinetics. 57 (2), 209-219 (2017).

הגישה מוגבלת. התחברו או התחילו תקופת ניסיון כדי לצפות בתוכן זה.

הדפסות חוזרות והרשאות

בקש הרשאה לשימוש חוזר בטקסט או באיורים של מאמר JoVE זה

בקש הרשאה

תגיות

מאמרים קשורים