מאמר שיטה

השרשה כרונית של מערך שלם-קורטיקליים Electrocorticographic ב המרמוסט נפוצות

DOI:

10.3791/58980

⸱

1 בפברואר 2019

 ,  ,  , 
1Laboratory for Molecular Analysis of Higher Brain Function, RIKEN Center for Brain Science, 2Laboratory for Marmoset Neural Architecture, RIKEN Center for Brain Science, 3Department of Physiology, Keio University School of Medicine, 4Department of Ultrastructural Research, National Center of Neurology and Psychiatry

במאמר זה

סיכום

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

פיתחנו מערך שלם-קורטיקליים electrocorticographic עבור המרמוסט נפוצות שמכסה כמעט לרוחב השטח של קליפת המוח, מן המוט העורפית כדי הזמני הפולנים פרונטלי ללא הרף. פרוטוקול זה מתאר הליך ההשתלה כרונית של המערך בחלל אפידורלי של המוח מרמוסט.

תקציר

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Electrocorticography (ECoG) מאפשר בקרה של השדה החשמלי פוטנציאל מ קליפת עם רזולוציה גבוהה ייתכן. התפתחות של אלקטרודות ECoG רזה, גמיש אפשרה הולכה של הקלטות יציבה של פעילות קורטיקלית בקנה מידה גדול. פיתחנו מערך שלם-קורטיקלית ECoG עבור המרמוסט נפוצות. המערך ברציפות מכסה כמעט לרוחב השטח של האונה בקליפת המוח, מן המוט העורפית כדי הזמני הפולנים חזיתית, היא לוכדת כל-קורטיקלית פעילות עצבית במכה אחת. פרוטוקול זה מתאר הליך ההשתלה כרונית של המערך בחלל אפידורלי של המוח מרמוסט. מרמוסטיים יש שני יתרונות ביחס ECoG הקלטות, אחד להיות ארגון הומולוגיים של מבנים אנטומיים בני האדם, קופי מקוק, כולל מתחמי חזיתית, הקודקוד ואת זמני. היתרון השני הוא כי המוח מרמוסט lissencephalic והוא מכיל מספר רב של קומפלקסים, אשר קשה יותר לגשת בקופי מקוק עם ECoG, הנחשפות על פני השטח של המוח. תכונות אלה מאפשרות גישה ישירה אל אזורים קורטיקליים רוב מתחת לפני השטח של המוח. מערכת זו מספקת הזדמנות לחקור מידע בקליפת המוח הגלובלי עיבוד עם רזולוציות גבוהות ב סדר משנה מילי-שניות זמן וסדר מילימטר בחלל.

מבוא

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

קוגניציה דורש התיאום של הרכבים עצבית ברשתות המוח נפוצה, במיוחד קליפת מפותח אצל בני אדם, האמין להיות מעורבים בהתנהגויות קוגניטיבית גבוהה יותר. עם זאת, איך קליפת משיגה את התנהגות קוגניטיבית זו היא בעיה לא פתורה בתחום מדעי המוח. התפתחות של אלקטרודות electrocorticographic רזה, גמיש (ECoG) מאפשרת הולכה של הקלטות יציב בין פעילות קורטיקלית בקנה מידה גדול1. Fujii ועמיתיו פיתחו מערך שלם-קורטיקלית ECoG עבור2,קופי מקוק3. המערך ברציפות מכסה כמעט את כל לרוחב cortex, מהקוטב העורפית לקטבים הטמפורלי, חזיתית, ו לוכדת כל-קורטיקלית פעילות עצבית במכה אחת. בהמשך פיתחנו מערכת זו עבור יישומים נפוצים מרמוסט4,5, קוף קטן, העולם החדש עם6,manipulability גנטית7. חיה זו יש מספר יתרונות בהשוואה למינים אחרים. חזותי, שמיעתי, המגע, מנוע, ואזורים בקליפת המוח חזיתית של מין זה יש כבר בעבר ממופה ודיווח חייב הארגון הומולוגי הבסיסי בין אותם אזורים של בני האדם, קופי מקוק8,9, 10 , 11 , 12 , 13 , 14 , 15 , 16. במוחם החלקה, ביותר לרוחב אזורים קורטיקליים נחשפים השטח של קליפת המוח, אשר קשה לגשת עם ECoG ב קופי מקוק. על סמך תכונות אלה, המרמוסט מתאים ללימודי electrocorticographic. יתר על כן, מרמוסטיים שהפגינו התנהגויות חברתיות, הוצעו כדי לשמש מודל המועמד של התנהגויות חברתיות האדם17.

פרוטוקול זה מתאר הליך ההשתלה אפידורל של המערך ECoG על פני כל לרוחב של קליפת בקוף נפוצות. היא מספקת הזדמנות לעקוב אחר פעילות קורטיקלית בקנה מידה גדול עבור neuroscience בקליפת המוח בקופים, כולל חושית, מוטוריים, תחומים קוגניטיבי וחברתי גבוה יותר.

הגישה מוגבלת. התחברו או התחילו תקופת ניסיון כדי לצפות בתוכן זה.

פרוטוקול

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

פרוטוקול זה בוצע מרמוסטיים נפוצות 6 (4 זכרים, 2 נקבות; משקל הגוף = g 320-470; גיל = 14-53 חודשים). כל ההליכים בוצעו בהתאם להמלצות של מוסדות לאומיים של בריאות הנחיות טיפול, שימוש של חיות מעבדה. הפרוטוקול שאושר על ידי הוועדה האתית RIKEN (מס ' H28-2-221(3)). כל הניתוחים בוצעו בהרדמה, כל המאמצים נעשו כדי לצמצם את מספר בעלי החיים שבהם משתמשים כמו גם את חוסר הנוחות שלהם.

1. הכנה

  1. להשיג את תמונת מבניים תהודה מגנטית (MRI) של כל המוח בודדים. זה ישמש כדי לזהות עמדות אלקטרודה דרך רישום מרמוסט המוח אטלס והמחשב טומוגרפיה ממוחשבת (CT).
  2. הכנה של המערך ECoG: להכין מערך ECoG רב-ערוצי מותאם אישית (איור 1 א'). מערך ECoG 96ch מורכב שני גיליונות עם אלקטרודות 32 ו 64. כדי להתאים את הערכות להבדלים בודדים בגודל המוח, המערך ECoG יש זרוע גמישה. הזרוע יכולה לכסות הקוטב הטמפורלי, בהתאם המוח בודדים צורה. מקם את האלקטרודות הפניה מול מול האלקטרודות ECoG ואלקטרודות הקרקע פונות לאותו הכיוון.
    1. להרכיב את המערך ECoG עם תיק מחבר (איור 1B), לסגור פערים של מחבר (איור 1C) באמצעות דבק אקרילי כדי למנוע בתנאיי נוזלים במהלך הניתוח. לחטא את המערך בגז אתילן אוקסיד.
  3. להכין ולחטא כלים.
    הערה: כל הכלים נעשה שימוש מפורטים בטבלה של חומרים.

2. השרשת ECoG מערך

הערה: תיסוג בליעה של מזון ונוזלים גדול מ- 4 שעות לפני הניתוח. לבצע את כל הצעדים כירורגית עם הטכניקה aseptic באמצעות כפפות סטיריליים וכלי נגינה.

  1. השתל טרום הליכים
    1. לגרום הרדמה ב המרמוסט בזריקה תוך שרירית (i.m.) של קטמין (15 מ"ג/ק"ג) 5 דקות לאחר הזרקת אטרופין (0.08 מ"ג/ק"ג) i.m..
    2. עזים ומתנגד ולשמור על הרדמה באמצעות איזופלוריין (1-3% מדולל עם תערובת של תחמוצות החנקן/חמצן) בהתאם למצב פיזיולוגי של החיה, אשר צריך להיות ברציפות לפקח. להבטיח את קצב הלב 130-180 טמפרטורת הגוף BPM וצג רווית חמצן בדם (SpO2) ללא הרף כדי לשפוט המצב של החיה.
    3. לגלח בראש של החיה עם קוצץ, מסיר שיער. מלא לשטוף קרם להסרת שיער את העור עם גזה רטוב, או זה יגרום נזק לעור.
    4. לנהל אנטיביוטיקה (cefovecin; 16 מ"ג/ק"ג ספורטינג), נוגדות יתר לחץ דם (פורוסמיד (משתן); i.m. 2.0 מ"ג/ק"ג), ו- antihemorrhagic (carbazochrome סולפונאט נתרן הידרוקסיד; i.m. 0.2 מ"ג/ק"ג).
    5. במקום החיה על מסגרת stereotaxic. בשלב זה, החלים ג'לי לידוקאין 2% על האוזן-ברים אופטלמולוגיות משחה לעיניים למניעת יובש וכאב לאחר הניתוח.
    6. לחטא את האזור הכירורגי עם יוד פתרון, לכסות אותו. עם וילונות מעוקר. ג'לי לידוקאין 2% חלות על המקום של החתך בעור.
  2. השרשת נהלי
    1. פצעים וחתכים בעור כ- 4 ס מ דרך האמצע של הקרקפת עם אזמל. ניתוק בשריר הטמפורלי של הגולגולת עם מגרד עד כל השטח כירורגי חשוף. לנקות רקמות על פני הגולגולת ולעצור את הדימום לחלוטין עם הלחץ hemostasis, ועם שעווה לאיטום, במידת הצורך. לעטוף את הקצה של העור והשרירים עם גזה בטעימת. שמור את הגזה לחלח במהלך הניתוח.
    2. מניחים בקצה המערך על הקצה של המוט חזיתית חזיתית. סימון אזור המתוכנן גולגולת, חריצים וחורים על הגולגולת עם עיפרון סטרילי. המיקום גולגולת יהיה תלוי בעיצוב של המערך (איור 2).
    3. תרגיל את הניתוח לאורך סימן 1, כפי שמוצג באיור2. בזמן קידוח העצם, לנשוף אוויר בחוד החנית כדי לשמור על תצוגה ברורה של המנתח. הבא, חותכים את העצם סביב כל סימן 2, כמו פיסת עצם עדיין יהיה קשור דורא במרכז. . תרים את החלק בעדינות מקצה אחד, קילוף השכבה הקשה של המוח עם מרית. תהליך זה חייב להתנהל באיטיות ובזהירות, או זה יקרע את דורא בקלות.
      1. להסיר את קצות העצם פיסת עצם, לעטוף את החתיכה עם גזה בטעימת, כמו קטע זה יוחזר לאחר השתלת המערך.
    4. לבצע גולגולת 3 ו- 4 כפי שמוצג באיור2. אלה מאפשרים החדרת אלקטרודות לתוך orbitofrontal ואת אזורי עורף, בהתאמה.
    5. תרגיל חרכי בסימן 5 כמוצג באיור2. החריצים האלו מאפשרים בחינת המערך על מנת להבטיח כי זה הוכנס כהלכה.
    6. עכשיו תהיה חשוף השכבה הקשה של המוח. לשטוף את האזור עם תמיסת מלח ולעצור את הדימום ועם הלחץ hemostasis בספוג ג'לטין, במידת הצורך. הקצה של גולגולת ייתכן שיהיה עליך לנקות עם rongeur מגרד או עצם.
    7. להפוך את החריצים (מסומן ב- 6 באיור2) אשר ממוקמים האלקטרודות הפניה. הצב האלקטרודות הפניה בחלל אפידורלי ב האזורים sensorimotor ו העורפית קונטרה-צדדי. המיקום צריך להיקבע על פי הצרכים הספציפיים ניסיוני.
    8. התרגיל חורי הברגים ב- 4 נקודות מסביב לכל גזע של המחבר עם בורג 1.0 מ מ (צלבים באיור2). כדי למנוע נזק לנושא דורא, הכנס מרית מתחת לגולגולת. את החורים האלו צריך להיות אורתוגונלית לגולגולת. לאחר מכן, התקן הצצה ברגים (1.4 x 2.5 מ מ) כעוגן לתקן את מחבר הגולגולת.
    9. הכנס את המערך ECoG לחלל אפידורל. שימוש קיפון מלקחיים להחזיק את המערך.
      הערה: המערך צריך להיות מוכנס בלי להתכופף. אם המערך כפופה, ליצור חלל המתאים על-ידי הוספת מרית בין הגולגולת דורא. אם נגרם הכיפוף בגודל קטן יחסית של המוח, לחתוך חלק האלקטרודות.
    10. לתקן את האלקטרודות הפניה ועל קרקעי עם אקריליק שיניים. מקם את הפניה אלקטרודות בחלל אפידורלי ואת הקרקע אלקטרודות על פני הגולגולת. שני אנשי הקשר צריך להתמודד עם הגולגולת.
    11. להחזיר את פיסת עצם ולתקן את ההודעה המחבר ואת הראש בגולגולת עם שיניים אקריליק על הברגים.
    12. תפר את העור עם ניילון 6-0 על המצח ועל הראש האחורי, לתקן את העור בצדדים של המחבר באמצעות סגר העור.
  3. הליכים שלאחר ההשתלה
    1. הסר את החיה המסגרת stereotaxic. ודא כי החיה נשמרת שסופקו עם חמצן וחמים במהלך השלבים הבאים.
    2. מיד לאחר הניתוח, להחדיר את החיה meloxicam (i.m. 0.3 מ"ג/ק"ג) כדי להקטין את הכאב לאחר הניתוח. ניהול של הסטרואידים אנטי דלקתי (דקסאמתאזון; i.m. 2.0 מ"ג/ק"ג), עירוי תת-עורי (תמיסת הרטמן; 5.0 mL), לרבות לסי (0.5 מ"ג/ק"ג) כמו gastroprotectant.
      הערה: שימוש בו-זמני של NSAIDs עם סטרואידים יש פוטנציאל לתופעות לוואי במערכת העיכול.
    3. לאחר שיחזר לחיה (אשר על-ידי קצב הלב, SpO2), להסיר את סימן חיוני ניטור ולהעביר את החיה לטיפול נמרץ במשך 2-3 ימים.

3. לאחר הניתוח טיפול

הערה: זה בדרך כלל לוקח 5 ימים לבעלי להתאושש לחלוטין הניתוח.

  1. כדי למנוע נפיחות במוח, לנהל את דקסמתזון הסטרואידים אנטי דלקתי (2.0 mg/kg) פעמיים ביום ביום הראשון לאחר הניתוח. לאחר מכן, להפחית את המינון ל- 1.5 mg/kg פעמיים ביום בימים השני והשלישי, ו 1 מ"ג/ק"ג פעמיים ביום ביום הרביעי.
  2. לנהל לשיכוך כאבים (meloxicam; 0.1 מ"ג/ק"ג דרך הפה פעם ביום), של antihemorrhagic (סולפונאט carbazochrome נתרן הידרוקסיד; i.m. 0.2 מ ג/ק ג; פעמיים ביום) במשך 5 ימים לאחר הניתוח.
    הערה: במקרה שלנו, 1-2 ימים לאחר הניתוח, קצת מרמוסטיים (3 מתוך 6) הפך פחות פעיל הקיא. עלול להיגרם על ידי לחץ תוך-גולגולתי מוגבר עקב קריש דם. כאשר מרמוסטיים הציג הסימפטומים הללו, אנחנו נפתח מחדש את הראש והוציאו את הקריש בהרדמה כללית (alfaxalone). אם היה אין כיפוף של המערך ECoG במהלך ההשתלה, קריש הדם היה סביר במרחב בין המערך, איפה פיסת עצם הוחזרה. במקרה זה, קריש הדם יכול לרחוץ משם על ידי הפעלת מלוחים לחלל באמצעות קטטר. הליך זה בדרך כלל מוביל השחזור של החיה.
  3. זיהוי של מיקומים אלקטרודה
    1. בסביבות 1 שבוע לאחר הניתוח, לבצע סריקת טומוגרפיה ממוחשבת (CT) המחשב של ראשה.
      הערה: זה הזדמנות טובה לבדוק אם אותות ניתן להקליט כראוי. פתח את האירוע מחבר ולהסיר כל קרישי דם אם הן קיימות.
    2. יישר משוקלל T2 MRI כדי קואורדינטות stereotaxic באמצעות דפנה אבן תרשיש תוכנה18 (https://afni.nimh.nih.gov) (איור 3 א). ליישר את התמונה CT לתמונות משוקלל T2 תהודה מגנטית אנטומי עם דפנה אבן תרשיש (איור 3B). רישום של אטלס המוח מרמוסט ל MRI (איור 3C) עם דפנה אבן תרשיש ונמלים19.

הגישה מוגבלת. התחברו או התחילו תקופת ניסיון כדי לצפות בתוכן זה.

תוצאות

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

המערך כולו-קורטיקלית ECoG יכול ללכוד בו זמנית פעילות. עצבית של מכלול של האונה. איור 4 מציג דוגמאות של רופא בכיר (AEPs) מרובות באזורים מרמוסט ערה השמיעה. הקלטות ECoG נערכו בתנאי האזנה פסיבי. כל מרמוסט נחשף לגירויים שמיעתיים, שכללה גוונים טהור אקראי עם 20 סוגים של תדר. לאחר מכן, אנחנו מחושב AEPs על ידי חישוב ממוצע ECoGs מיושר עם onsets של הצלילים. טפסים שונים גל נצפו מן התחתונה ומעלה השמיעה אזורים, אשר מציין כי הרזולוציה המרחבית של מערך ECoG שלנו יכול ללכוד מיד...

הגישה מוגבלת. התחברו או התחילו תקופת ניסיון כדי לצפות בתוכן זה.

דיון

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

עבור השתלה מוצלחת, חיות צריך להינתן עם תזונה נאותה לפני ואחרי הניתוח. קיצור משך הפעולה חשוב גם לייעל את השחזור של החיה. ההכנות להסתיים לפחות יום אחד לפני הניתוח. כדי לצמצם את זמן הפעולה, מומלץ הכשרה קודמת גולגולת עם אלקטרודה מערך הכניסה שהופסקו בבעלי חיים למטרות ניסוי אחר. טבלה 1 מציגה דוגמה של מסלול הזמן עבור פרוטוקול זה.

שינינו את הליך הרדמה וטיפול שלאחר הניתוח על בסיס מקרה לגופו. ב פרוטוקול וידאו זה, החיות היו מרדימים ומתוחזק בעזרת תערובת של איזופלוריין וחמצן גאל באמצעות צנ...

הגישה מוגבלת. התחברו או התחילו תקופת ניסיון כדי לצפות בתוכן זה.

גילויים

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

ח"כ בקשה פטנט על כל-קורטיקלית מערך ECoG היא להשתמש בפרוטוקול זה (מס '. 2018-210975).

תודות

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

אנו מודים יורי Shinomoto על מתן טיפול בבעלי חיים, אימון, הקלטות ער. מערכי ECoG של יוצרו על ידי Cir-טק (www.cir-tech.co.jp). יתר על כן, ברצוננו להודות Editage (www.editage.jp) עבור עריכה בשפה האנגלית. עבודה זו נתמך על ידי מיפוי מוח על-ידי Neurotechnologies משולב ללימודי המחלה (המוח/מחשבות), הסוכנות יפן מחקר רפואי ופיתוח (AMED) (JP18dm0207001), פרויקט המדע המוח המרכז (רומן מדע יוזמות CNSI), המכונים הלאומיים של מדעי הטבע (NINS) (BS291004, מ. ק), ועל ידי האגודה יפן לקידום המדע (JSPS) KAKENHI (JP17H06034, מ. ק).

הגישה מוגבלת. התחברו או התחילו תקופת ניסיון כדי לצפות בתוכן זה.

חומרים

רשימת החומרים שנעשה בהם שימוש במאמר זה
שםחברהמספר קטלוגהערות
(100 סמ"ק)Outocrave
צמר גפן כדורOutocrave
משולשי ספיגהFine Science Tools Inc.18105-03Outocrave
עם קצה עדיןClean Cross Co., Ltd.HUBY340 BB-013Outocrave
גזהOutocrave
מלקחייםOutocrave
ידיתOutocrave
מחזיקOutocrave
איריס מספרייםOutocrave
מיקרו-יתושיםOutocrave Outocrave
Adson, 1x2 שינייםOutocrave
Bone CuretteOutocrave
Micro spaturaFine Science Tools Inc.10091-12Outocrave
, 12.5 ס"מ, לסתות מעוקלות וחלקות WorldPrecision Instruments14132Outocrave
Vessel Dilator, 12 ס"מ, קצה 0.1 מ"מFine Science Tools Inc.18131-12מרחיב כלי Outocrave
, 12 ס"מ, קצה 0.2 מ"מFine Science Tools Inc.18132-12Outocrave
Fine-tiped rongeurFine Science Tools Inc.16221-14מניפורטור Outocrave
של מסגרתעיקור גז
למניפורטורעיקור גז
מתקן בעבודת יד למחברעיקור גז
סיליקון לאקרילעיקור גז
סיליקון הלדרגז עיקור
מברשתצבע
עיקור גז עיפרוןעיקור גז
מיקרו בורג, 1.4 מ"מ x 2.0 מ"מNippon Chemical Screw Co., Ltd.PEEK/MPH-M1.4-L2עיקור גז
למיקרו בורגעיקור גז
ידית מיקרו-מנוע של מקדחהעיקור גז
קוץ נירוסטה, 1.4 מ"מעיקור גז
בור נירוסטה, 1.0 מ"מעיקור גז
, 1.2 מ"מעיקור גז
מפוחעיקור גז
ספוגית כותנה מגבת אזמל מחט מלקחיים מחזיקי מחט סטריאוטקסית מפתח שיניים מברג מקדח אוויר גומי

מקורות

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,
  1. Fukushima, M., Chao, Z. C., Fujii, N. Studying brain functions with mesoscopic measurements: Advances in electrocorticography for non-human primates. Current Opinion in Neurobiology. 32, 124-131 (2015).
  2. Nagasaka, Y., Shimoda, K., Fujii, N. Multidimensional recording (MDR) and data sharing: an ecological open research and educational platform for neuroscience. PLoS One. 6 (7), e22561(2011).
  3. Fukushima, M., et al. An electrocorticographic electrode array for simultaneous recording from medial, lateral, and intrasulcal surface of the cortex in macaque monkeys. Journal of Neuroscience Methods. 233, 155-165 (2014).
  4. Komatsu, M., Sugano, E., Tomita, H., Fujii, N. A Chronically Implantable Bidirectional Neural Interface for Non-human Primates. Frontiers in Neuroscience. 11, 514(2017).
  5. Komatsu, M., Takaura, K., Fujii, N. Mismatch negativity in common marmosets: Whole-cortical recordings with multi-channel electrocorticograms. Scientific Reports. 5, 15006(2015).
  6. Sasaki, E., et al. Generation of transgenic non-human primates with germline transmission. Nature. 459 (7246), 523-527 (2009).
  7. Okano, H., et al. Brain/MINDS: A Japanese National Brain Project for Marmoset Neuroscience. Neuron. 92 (3), 582-590 (2016).
  8. de la Mothe, L. A., Blumell, S., Kajikawa, Y., Hackett, T. A. Cortical connections of auditory cortex in marmoset monkeys: lateral belt and parabelt regions. Anatomical Record. 295 (5), 800-821 (2012).
  9. Kaas, J. H., Hackett, T. A. Subdivisions of auditory cortex and processing streams in primates. Proceedings of National Academy of Sciences of the United States of America. 97 (22), 11793-11799 (2000).
  10. Ghahremani, M., Hutchison, R. M., Menon, R. S., Everling, S. Frontoparietal Functional Connectivity in the Common Marmoset. Cerebral Cortex. , (2016).
  11. Belcher, A. M., et al. Functional Connectivity Hubs and Networks in the Awake Marmoset Brain. Frontiers in Integrative Neuroscience. 10, 9(2016).
  12. Mitchell, J. F., Leopold, D. A. The marmoset monkey as a model for visual neuroscience. Neuroscience Research. 93, 20-46 (2015).
  13. Solomon, S. G., Rosa, M. G. A simpler primate brain: the visual system of the marmoset monkey. Frontiers in Neural Circuits. 8, 96(2014).
  14. Burman, K. J., Palmer, S. M., Gamberini, M., Rosa, M. G. Cytoarchitectonic subdivisions of the dorsolateral frontal cortex of the marmoset monkey (Callithrix jacchus), and their projections to dorsal visual areas. Journals of Comparative Neurology. 495 (2), 149-172 (2006).
  15. Bakola, S., Burman, K. J., Rosa, M. G. The cortical motor system of the marmoset monkey (Callithrix jacchus). Neuroscience Research. 93, 72-81 (2015).
  16. Krubitzer, L. A., Kaas, J. H. The organization and connections of somatosensory cortex in marmosets. Journal of Neuroscience. 10 (3), 952-974 (1990).
  17. Miller, C. T., et al. Marmosets: A Neuroscientific Model of Human Social Behavior. Neuron. 90 (2), 219-233 (2016).
  18. Cox, R. W. AFNI: software for analysis and visualization of functional magnetic resonance neuroimages. Computers and Biomedical Research. 29 (3), 162-173 (1996).
  19. Avants, B. B., et al. A reproducible evaluation of ANTs similarity metric performance in brain image registration. Neuroimage. 54 (3), 2033-2044 (2011).
  20. Hashikawa, T., Nakatomi, R., Iriki, A. Current models of the marmoset brain. Neuroscience Research. 93, 116-127 (2015).

הגישה מוגבלת. התחברו או התחילו תקופת ניסיון כדי לצפות בתוכן זה.

הדפסות חוזרות והרשאות

בקש הרשאה לשימוש חוזר בטקסט או באיורים של מאמר JoVE זה

בקש הרשאה

תגיות

ECoG

מאמרים קשורים