$$\rightleftharpoonup{xx}$$
$$\longleftharp{xx}$$,
$$\longrightharp{xx}$$,
ניתוח אמין של משקל מולקולרי (MW) של חלבונים בפתרון חיוני למחקר ביוקולקולרי1,2,3,4. ה-MW ניתוח מודיע למדען אם החלבון הנכון הופק ואם הוא מתאים לשימוש בניסויים נוספים5,6. כפי שמתואר באתרי האינטרנט של רשתות מחקר חלבונים P4EU7 ו arbre-Mobieu8, בקרת איכות חלבון חייב לאפיין לא רק את הטוהר של המוצר הסופי, אלא גם המדינה oligomeric שלה, הומוגניות, הזהות, הקונפורמציה, מבנה, שינויים שלאחר תרגום ותכונות אחרות.
MW מדידה בפתרון בלתי מסונכרן מזהה את צורת החלבון הקיים בסביבה ימית, אם monomeric או oligomeric. בעוד חלבונים רבים המטרה היא לייצר את הטופס monomeric, עבור אחרים מקומי מסוים אוליגומר הוא המפתח לפעילות ביולוגית9,10,11,12. Oligomers אחרים ואגרגטים שאינם מקומיים הם בלתי רצויים ויובילו פגמים בקביעת מבנית על ידי קריסטלוגרפיה, תהודה מגנטית גרעינית (nmr) או קטן זווית רנטגן פיזור, כמו גם חפצים או אי-דיוקים בבחני פונקציונלי ל כריכת כריכה על ידי איזותרמי טיטור calorimetry או פני השטח תהודה2,13.
במקרה של biotherapeutics כגון נוגדנים חד-שבטיים (mAbs), ניתוח MW מבוסס פתרון משמש מטרה דומה של בקרת איכות ואפיון המוצר. אגרגטים מופרזים ושברים מצביעים על מוצר לא יציב שאינו מתאים לשימוש אנושי. סוכנויות רגולטוריות דורשות אפיון קפדני, לא רק של המולקולה הטיפולית אלא גם degradants פוטנציאלי שעשוי להיות נוכח במוצר הסופי14,15,16,17.
כמה מהשיטות הנפוצות ביותר לניתוח מגוואט חלבונים הם נתרן dodecyl סולפט פוליאקרילמיד ג'ל לג (SDS-PAGE), אלקטרופורזה קפילר (לסה נ), עמוד יליד, ספקטרומטר מסה (MS), גודל כרומטוגרפיה (שניות) ואנליטי (אוק). אלה, SDS-PAGE, CE ו-MS אינם מתבצעים במצב מקורי ובדרך כלל להוביל לדיסוציאציה של oligomers ואגרגטים, ומכאן הם לא מתאימים לקביעת oligיומר יליד או כימות האגרגטים. למרות עמוד יליד, תיאורטית, לשמור על מדינה מקורית, בניסיון שלנו זה קשה למטב עבור חלבונים רבים, ותוצאות אינן אמינות מאוד. אוק, בין אם על ידי מהירות המשקעים או שיווי משקל, הוא כמותי והוא יכול לקבוע MW מן העקרונות הראשונים, אבל זה די מסורבל, המחייב עבודה ידנית רבה ומומחיות משמעותית בפענוח נתונים, זמן ניסוי ארוך ו כלי מאוד יקר.
אנליטי SEC הוא שיטה כמותית וחזקה יחסית, המפרידה בין קרו במהלך הזרימה בטור ארוז. העקרונות והיישומים של שניות מוצגים היטב במספר ביקורות18,19,20 ובמדריך "גודל כרומטוגרפיה: עקרונות ושיטות"21. ההבדלים בשמירה נובע מכמויות שונות של זמן שהושקע בפיזור והחוצה של הנקבוביות בשלב הנייח לפני שהתחמק מסוף הטור. ההבדלים נובעים (באופן כלשהו) מן הגדלים היחסיים ומקדמי דיפוזיה של המולקולות22. עקומת כיול בנויה באמצעות סדרה של מולקולות התייחסות, הנוגעים MW של המולקולה לנפח הימנעות. עבור חלבונים, מולקולות הייחוס הם בדרך כלל מתנהגים היטב, חלבונים כדורי שאינם מתקשרים עם העמודה באמצעות המטען או שאריות פני המים הידרופובי. נפח החומקת נמדד בגלאי ספיגה אולטרה-סגול (UV). אם מקדם הכחדה UV ידוע מחושב לעתים קרובות מתוך הרצף-החלבון שיא המסה הכוללת עשויה להיות גם כימות.
בעיקר, הניתוח של MW על ידי שניה מסתמך על שתי הנחות מרכזיות לגבי החלבונים שיש לאפיין: 1) הם חולקים עם תקני הייחוס את אותו החיבור ואמצעי האחסון הספציפי (במילים אחרות, אותו קשר בין מאפייני דיפוזיה ו MW) ו-2) כמו תקני הייחוס, הם אינם מתקשרים עם הטור למעט מאפייני אפקט סטרי-הם אינם מקפידים על הטור הארוז באמצעות מטען או אינטראקציות הידרופוביות. סטיות מהנחות אלה מפסול את עקומת הכיול ומובילות לדטרמינציות שגויות של MW. זהו המקרה עבור חלבונים בלתי מובנים מבחינה מיסודה, כי יש רדיקי סטוקס גדול בשל האזורים הנרחבים שלהם מובנה23,24 או שאינם כדוריים/ליניארי מכלולים oligomeric10. חלבונים גליססיללי בדרך כלל יש רדיוס של סטוקס גדול יותר מאשר הטופס הלא גליססילנטי, גם כאשר מסת הפחמימות שנוספו נלקח בחשבון19. אבקת ממברנה מסיסות חלבונים elute באופן שונה מאשר כיול חלבונים כי שלהם הימנעות מ-SEC תלוי בגודל הכולל של הקומפלקס polypeptide-אבקת שומנים ולא המדינה oligomeric ומיסה טוחנת של החלבון25 ,26. כימיה עמודה, pH ומצבי מלח כולם משפיעים על כמויות של חלבונים עם שאריות משטח טעון או הידרופובי27,28.
שניות הופך הרבה יותר תכליתי ואמין עבור קביעת MW כאשר בשילוב עם פיזור אור מרובה זווית (דוליטל) ואינדקס השבירה הדיפרנציאלי (dRI) גלאי3,4,11,29, .30,31,32 גלאי dRI קובע את הריכוז על בסיס השינוי במדד השבירה פתרון עקב נוכחות של האנליטה. גלאי דוליטל מודד את הפרופורציה של אור מפוזר על ידי אנליטה לזוויות מרובות ביחס קרן לייזר האירוע. מכשור זה, המכונה שניה-דוליטל, קובע כי ה-MW אינו תלוי בזמן הימנעות, מכיוון ש-MW ניתן לחישוב ישירות מהעקרונות הראשונים באמצעות משוואה 1,
1
כאשר M הוא המשקל המולקולרי של האנליטה, R (0) היחס ריילי מופחת (כלומר, כמות האור הפזורים על ידי האנליטה ביחס לעוצמת הלייזר) נקבע על ידי גלאי דוליטל ולאחר זווית אפס, c ה ריכוז משקל נקבע על-ידי הגלאי UV או dRI, dn/dc הדרגה מדד השבירה של האנליטה (ביסודו של דבר ההבדל בין מדד השבירה של אנליטה ואת המאגר), ו K קבוע אופטי התלוי ב מאפייני מערכת כגון אורך הגל ואת מדד השבירה הממס29.
ב-SEC-דוליטל, העמודה SEC משמשת אך ורק להפרדת המינים השונים בתמיסה, כך שייכנסו לתאים הדוליטל וגלאי הריכוז בנפרד. לזמן ההחזקה בפועל אין משמעות לניתוח למעט עד כמה הוא פותר את מיני החלבון. הכלים מכוילים בנפרד מהעמודה ואינם נשענים על תקני ייחוס. לפיכך, SEC-דוליטל נחשב שיטת ' מוחלטים ' לקביעת MW של משוואות פיזיות בסיסיות. אם המדגם הוא הטרוגנית ולא מופרדים לחלוטין על ידי העמודה, אז את הערך המסופק על כל אמצעי האחסון משקל יהיה ממוצע המשקל של המולקולות בכל אמצעי אחסון מופרסים הזורם דרך תא הזרימה לכל פרוסת זמן, כ 75 μL.
על ידי ניתוח של וריאציה זוויתי של עוצמת פיזור, דוליטל יכול גם לקבוע את גודל (השורש-ממוצע רדיוס, Rg) של קרו ו חלקיקים עם רדיוס גיאומטרי גדול יותר מאשר 12.5 ננומטר29. עבור מינים קטנים יותר כגון חלבונים monomeric ו oligomers, פיזור אור דינמי (DLS) מודול ניתן להוסיף למכשיר דוליטל כדי למדוד רדיודינמיקה הידרודינמית מ 0.5 ננומטר ומעלה33.
בעוד או UV או בניתוח הריכוז dRI עשוי לספק את הערך של c ב Eq .1, השימוש dri הוא המועדף על שתי סיבות: 1) dRI הוא גלאי ריכוז אוניברסלי, מתאים ניתוח מולקולות כגון סוכרים או פוליסכרידים שאינם מכילים UV כרומפור34; ו 2) את תגובת הריכוז dn/dc של כמעט כל החלבונים טהור במאגר מימית הוא זהה בתוך אחד או שניים אחוזים (0.185 mL/g)35, כך שאין צורך לדעת את מקדם הכחדה UV.
השימוש ב-SEC-דוליטל בחקר החלבונים הוא נרחב למדי. בהרבה היישומים הנפוצים ביותר הם לבסס אם חלבון מטוהר הוא monomeric או oligomeric ואת מידת oligomeriזציה, והערכת אגרגטים3,10,11,17, 31,36,37,38. את היכולת לעשות זאת עבור חלבונים ממברנה הקרום מסיסות, כי לא ניתן לאפיין את האמצעים המסורתיים הוא היקר במיוחד, ופרוטוקולים מפורטים עבור זה פורסמו31,39,40 , 41 , 42 , 43. יישומים נפוצים אחרים כוללים את מידת השינוי הפוסט-טרנסליטיות והפולידיזטיות של גליקופרוטאין, ליפופרוטאינים ושערי מעלה דומים4,31,44 , 45 , 46 , 47; היווצרות (או העדר) ו סטויכיומטריה מוחלטים (בניגוד ליחס סטויכולמטרי) של הטרוקומפלקסי כולל חלבון חלבון, חלבון-גרעין חומצות וחלבון-מתחמים רב-סוכר24,46, 48,49,50,51,52; קביעת שיווי האיזון של המונומר-דימר קבוע49,53,54; והערכת מערך חלבון55,56. מעבר חלבונים, SEC-דוליטל הוא רב ערך לאפיון של פפטידים57,58, פולימרים טבעיים הטרוגנית בהרחבה כגון heparins59 ו chitosans60,61, קטן וירוסים62 ורוב סוגי פולימרים סינתטיים או מעובד63,64,65,66. ניתן למצוא ביבליוגרפיה נרחבת בספרות67 ובאינטרנט (ב-http://www.wyatt.com/bibliography).
כאן, אנו מציגים פרוטוקול סטנדרטי להפעלה וניתוח של ניסוי של SEC-דוליטל. סרום (BSA) מוצג כדוגמה להפרדה ולאפיון של מונומרים ואולימרים חלבון. פרוטוקול BSA קובע קבועי מערכת מסוימים המשמשים כבסיס לניתוח נוסף של שניה-דוליטל, כולל אלה של מכלולי מערכות, גליקורופונים וחלבונים ממברנות מאוגדים.
אנו מודעים לכך ש-SEC-דוליטל עשוי להתבצע באמצעות כרומטוגרפיה נוזלית בעלת ביצועים גבוהים (בדיקות) או מהירות כרומטוגרפיה נוזלית של חלבון (FPLC) מספקים רבים. פרוטוקול זה מתאר את השימוש במערכת FPLC הנפוצה במעבדות היוצרות חלבונים למחקר ופיתוח (ראו טבלת חומרים). לפני הפעלת הפרוטוקול, מערכת FPLC, דוליטל ו-dRI גלאי צריך להיות מותקן, יחד עם חבילות תוכנה בהתאמה שלהם עבור שליטה, רכישת נתונים וניתוח לכל הוראות היצרנים וכל קבועי כיול המחויבים או הגדרות אחרות שהוזנו לתוכנה. מסנן מוטבע צריך להיות ממוקם בין המשאבה ומזרק עם הידרופיפילית, ממברנה הנקבוביות 0.1 יקרומטר מותקן.