מאמר שיטה

דיגיטלי PCR מבוססי אינדקס תחרותי עבור ניתוח תפוקה גבוהה של כושר בסלמונלה

DOI:

10.3791/59630

⸱

13 במאי 2019

 , 
1Department of Medical Microbiology and Immunology, Creighton University School of Medicine

במאמר זה

סיכום

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

זו גישה מולקולרית מבוסס לקביעת כושר חיידקי מאפשר זיהוי מדויק ומדויק של מיקרואורגניזמים באמצעות ברקודים ייחודי DNA גנומית כי הם כימות דרך ה-PCR הדיגיטלי. הפרוטוקול מתאר חישוב המדד תחרותי עבור זני סלמונלה ; עם זאת, הטכנולוגיה ניתנת להתאמה בקלות לפרוטוקולים הדורשים קוונפיקציה מוחלטת של אורגניזם גנטית מחושל.

תקציר

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

אינדקס תחרותי הוא שיטה נפוצה המשמשת להערכת כושר בקטריאלי ו/או התקפה אלימה. השירות של גישה זו הוא לידי ביטוי בקלות שלה לבצע את יכולתה לתקנן את הכושר של זנים רבים לאורגניזם פראי. הטכניקה מוגבלת, עם זאת, על-ידי סמנים פנוטיפי זמינים ומספר זנים שניתן להעריך בו, יצירת הצורך מספר רב של ניסויים לשכפל. במקביל עם מספר רב של ניסויים, עלויות העבודה והחומר לכימות חיידקים המבוססים על סמנים פנוטימית אינם משמעותיים. כדי להתגבר על היבטים שליליים אלה תוך שמירה על היבטים חיוביים, פיתחנו גישה מולקולרית מבוסס לכמת מיקרואורגניזמים ישירות לאחר סמנים גנטיים הנדסה על כרומוזומים חיידקיים. ייחודי, 25 ברקוד DNA צמד ברקודים נוספו בתוך לוקוס מזיק על כרומוזום של מסוג פראי ומוטציה זנים של סלמונלה. ניסויים בתחרויות חוץ-גופית בוצעו. באמצעות אינוימדוזה המורכבת מזנים במאגר בעקבות התחרות, המספרים המוחלט של כל זן היו מקוונטים באמצעות ה-PCR הדיגיטלי והמדדים התחרותיים לכל זן חושבו מערכים אלה. הנתונים שלנו עולה כי גישה זו לכמת סלמונלה הוא רגיש מאוד, מדויק, ומדויק לגילוי הן בשפע מאוד (כושר גבוה) נדיר (כושר נמוך) מיקרואורגניזמים. בנוסף, טכניקה זו ניתנת להתאמה בקלות כמעט כל אורגניזם עם כרומוזומים מסוגל לשנות, כמו גם עיצובים ניסיוניים שונים הדורשים קוונפיקציה מוחלטת של מיקרואורגניזמים.

מבוא

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

הערכת כושר והתקפה של אורגניזמים פתוגניים הוא היבט בסיסי של מחקר המיקרוביולוגיה. היא מאפשרת השוואות להתבצע בין זנים או בין אורגניזמים מוטציה, אשר מאפשר לחוקרים לקבוע את החשיבות של גנים מסוימים בתנאים ספציפיים. באופן מסורתי, הערכה אלימה משתמשת במודל החי של זיהום באמצעות זנים חיידקיים שונים והתבוננות בתוצאה של החיה הנגועה (למשל מינון זיהומיות50, מינון קטלני50, זמן למוות, חומרת הסימפטום, חוסר סימפטומים וכו '). הליך זה מספק תיאורים יקרי ערך של התקפה אלימה, אבל זה דורש זנים כדי לגרום הבדלים ניכרים בתוצאות כדי לזהות וריאציות מסוג פראי. יתר על כן, התוצאות הן חצי כמותית, כי בעוד התקדמות המחלה ואת חומרת הסימפטום יכול להיות סובייקטיבי לאורך זמן, פרשנות של התקפה אלימה בהשוואה לסוג פראי הוא האיכותי יותר (כלומר, יותר, פחות, או המוני באותה מידה). חלופה מקובלת לביצוע בעלי חיים הנגועים הוא ליצור מדדים תחרותיים (CIs), ערכים השווים ישירות כושר או התקפה אלימה של זן לעמיתו מסוג פראי בזיהום מעורב1. לטכניקה זו יש יתרונות רבים לעומת מודל בעלי חיים מסורתי של זיהום באמצעות סטנדרטיזציה של התקפה אלימה למתח מסוג פראי וקביעת ערך כולל כדי לשקף את מידת ההנחתה. טכניקה זו יכולה גם להיות מותאמת לניתוח אינטראקציות גנים בחיידקים על ידי קביעת אינדקס תחרותי בוטלה (COI)2. חישוב COI עבור קבוצה של אורגניזמים מוטציה מאפשר לחוקרים לקבוע אם שני גנים באופן עצמאי לתרום פתוגנזה או אם הם מעורבים מסלול התקפה אלימה ותלויים זה בזה. בנוסף, חישוב CI דורש ספירה של חיידקים אשר יכולים לספק תובנות יקרות לתוך הפתוגנזה של אורגניזמים. CIs ו COIs גם לאפשר לחוקרים הישבנים avirulent זנים שאינם גורמים למחלות קליניות אבל עדיין יש הבדלים בכושר. טכניקה זו מוגבלת על ידי שימוש של סמנים מסורתיים עמידות לאנטיביוטיקה כדי לזהות זנים, ובכך להגביל את מספר זני קלט רק אחד או שניים בכל פעם. בשל מגבלה זו, נדרשים מספר רב של קבוצות ומשכפל ניסויים, שבנוסף להוספת העבודה ועלויות החומר, מגביר גם הזדמנויות לשונות בתנאים ניסיוניים ותוצאות לא מדויקות. (לסקירה יסודית של היתרונות והיישומים של שימוש בזיהומים מעורבים לחקר התקפה אלימה, כושר ואינטראקציות גנים, ראה C.R. Beuzón ו D.W. הולדן 1)

ניסיונות נעשו כדי להתגבר על מגבלה זו, כגון שימוש בתאים fluorescently המסומנים באופן כימות דרך זרם cy,3,4,5. טכניקה זו מכמת את התאים באחד משני הצדדים המסומנים בנוגדנים לסמנים או 2) המיוצרים באופן שורש חלבונים פלורסצאריים. לשימוש בנוגדנים עם תוויות יש מגבלה של גילוי של 1,000 תאים/mL, ולכן דורש מספר גבוה של תאים כדי לנתח3. תאים המבטאים חלבונים פלורסנט יש פיזיולוגיה שונה והם רגישים לשינויי כושר וכתוצאה מביטוי חלבון גבוה6. שתי השיטות מוגבלות על ידי מספר סמני פלורסנט הנמצא באמצעות הזרימה cy, try. התקדמות בקוונפיקציה מולקולרית הושגה באמצעות פיתוח של טכניקה microarray שזיהה החליש ב 120 זנים מזיהום ראשוני מעורב של מעל 1,000 זנים במודל murine7. טכניקה זו מנוצל ניתוח microarray של RNA מ זנים מוטציה, אשר להוביל לשונות ניכרת בתוצאה.  אף על פי כן, היא הקימה כי בריכות גדולות של זיהומים מעורבים יכול להיות כלי שימושי, כי על ידי ניצול טכניקות זיהוי רגיש, הבדלים התקפה אלימה חיידקים ניתן לזהות. עם פיתוח של רצף הדור הבא, Tn-seq הרחיב את כלי השירות של טרנספסון מוטציות, המאפשר שיטה רבת עוצמה עבור חיידקים שהיו מוטציה באקראי8,9,10, . בסדר, 11 פרוטוקול חלופי פותחה לאחרונה כי מבטלת את הצורך בטרנספסונים ובמקום זאת משתמשת ברקודים DNA כדי לזהות בקלות רבה יותר ולעקוב אחר שינויים גנומית ואת השפעתם על כושר12. טכנולוגיה זו היא התקדמות גדולה, אבל החדרת ברקודים גנומית הוא עדיין תהליך אקראי. כדי להתגבר על אקראיות של ניסויים קודמים, יון ואח ' פיתחה שיטה כדי לחשב את החבר של העמים סלמונלה זנים באמצעות ברקודים DNA ייחודי מוכנס במיקומים מדויקים על הכרומוזומים של חיידקים13. זנים ברקודים ייחודיים זוהו באמצעות שיטה מבוססת qPCR עם SYBR ירוק ומיוחד התחל כל ברקוד ייחודי. הטכניקה הוגבלה על-ידי אילוצים שהוטלו על-ידי qPCR, כולל הבדלים ביעילות תחל ורגישות נמוכה, המעידים על הצורך בקינון-PCR לפני qPCR. אף על פי כן, גישה זו הוכיחה כי שינויים ממוקדות גנומית יכול להיות מנוצלת לאיתור ופוטנציאל לכמת בריכות של זנים חיידקיים מרובים.

בפרוטוקול הבא, אנו מתארים מתודולוגיה הרומן לבצע ניסויים בתחרות חיידקים עם בריכות גדולות של מעורבות מעורב ואחריו כימות מדויקת באמצעות טכניקה דיגיטלית רגישה מאוד. הפרוטוקול כרוך גנטית-תיוג זנים חיידקיים עם ברקוד DNA ייחודי מוכנס על אזור לא מזיק של הכרומוזום. שינוי זה מאפשר לזנים להיות במהירות ובאופן מדויק בקוונט באמצעות טכנולוגיה מולקולרית מודרנית במקום מדלל סדרתי מסורתי, ציפוי משוכפל, ו ספירה המושבה היוצרים יחידות המסתמכים על סמנים פנוטימית (כלומר עמידות לאנטיביוטיקה ). השינויים מאפשרים הערכה בו של זנים רבים במאגר יחיד, הפחתת באופן משמעותי את האפשרות של השתנות ניסיוני כי כל הזנים חשופים לאותם תנאים בדיוק. יתר על כן, בעוד טכניקה זו פותחה ב סלמונלה enterica Serovmuריום, זה מאוד להתאמה לכל אורגניזם מחושל גנטית כמעט כל עיצוב ניסיוני שבו ספירות חיידקים מדויקים נדרשים, מתן חדש כדי להגדיל את הדיוק והתפוקה במעבדות המיקרוביולוגיה ללא האילוצים המוטלים על-ידי שיטות קודמות.

הגישה מוגבלת. התחברו או התחילו תקופת ניסיון כדי לצפות בתוכן זה.

פרוטוקול

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

1. לשלב ברקודים DNA ייחודי על פלאמיד המכיל את הרכיבים הנחוצים עבור Allelic Exchange

הערה: חדש פלמיד, בשם pSKAP, עם מספר עותק גבוה ויעילות שינוי מוגבר לעומת הקיים pKD13 allelic exchange באמצע נוצר. הדבר מתואר בשלבים 1.1-1.12 (איור 1). הפלמידים הסופיים המכילים ברקודים ורכיבי DNA ייחודיים עבור allelic exchange זמינים באמצעות מאגר פלמאני (לוח חומרים).

  1. באמצעות מסחרי הפלסטיק בערכה מסחרית ערכת, לטהר את pKD1314 ו Ppcr סקריפט Cam SK+ מתוך תרבויות חיידקי לילה גדל ב לוריא-ברגאני (LB) ציר שיושלם עם 50 μg/ml kanamycin או 25 μg/ml כלוראמאנקול (עבור PKD13 ו-ppcr סקריפט Cam SK +, בהתאמה) (טבלה 1).
  2. ביצוע מעכל הגבלה על שני פלסטלינה באמצעות אנזימים הגבלה מסחרית HindIII ו-BamHI בהתאם למפרט של היצרן.
  3. הסרת אנזימים הגבלה ו-DNA מגורש מן pPCR סקריפט מצלמת SK+ התגובה ולטהר את 3,370-בסיס זוג (bp) השדרה פלזמה באמצעות ערכת ניקוי מסחרית זמין DNA על פי מפרטים של היצרן.
  4. הפרד בין השברים מעיכול ההגבלה pKD13 על 1% ג'ל שנוצר באמצעות תא אלקטרופורזה.
  5. להמחיש להקות באמצעות האור בצבע כחול ממאיר והבלו את הרסיס 1,333 bp מן הג (איור 1C).
    הערה: קטע זה מכיל את הגן המחתרת של FRT-מקיפים הדרושים להחלפת allelic כרומוזומלית.
  6. לטהר את ה-DNA מתוך שלב 1.5 באמצעות ערכת הפקת ג'ל מסחרי.
  7. כדי ליצור pskap, להאריך את השבר מטוהרים מ pKD13 (משלב 1.6) לתוך ppcr סקריפט מצלמת SK+ (משלב 1.3) באמצעות מסחרי T4 DNA ליגאז על פי מפרטים של היצרן.
  8. הפוך תאים DH5α מוכשרים כימיים באמצעות הדגם pSKAP התואם לפרוטוקול היצרן (טבלה 1).
  9. התפשטות transformants על ליברות אגר לוחות שיושלם עם 50 μg/mL kanamycin ו-דגירה ב 37 ° c לילה.
  10. בחר מושבה מן הצלחת ו פס אותו על צלחת החדש LB אגר בתוספת עם 50 μg/mL kanamycin ו מודב 37 ° c לילה. בחר מושבה מצלחת זו ולהשתמש למרק ליברות בתוספת עם 50 μg/mL kanamycin. מודיית את התרבות לילה ב 37 ° c עם עצבנות מתמדת.
  11. כדי לטהר את pSKAP. מהתרבות החיידקית לילה
  12. בצע עיכול הגבלת אבחון של הפלסמיד משלב 1.11 באמצעות הינד III ו-Bam HI לפי מפרטי היצרן. שברי הדמיה של 1% צמח ג'ל כמו בשלבים 1.4-1.5.
    הערה: הגודל הכולל של pSKAP צריך להיות 4,703 bp. קטעים לאחר שלב 1.12 צריך להיות 3,370 ו-1,333 bp.
  13. עיצוב ה-PCR התחל לinsertional מוטזיס (SDM) (טבלה 2 ו-S1) באופן כזה להוספת רצף דנ א ייחודי בן 25 בסיס במיקום 725 של pSKAP (איור 2).
    הערה: ה-DNA ברקוד מוכנס לתוך הפלבאמצע ממש מחוץ לבית המחתרת של FRT-מקיפים את גן ההתנגדות, כך הברקוד לא יאבד במהלך ההסרה הבאה של הקלטת ההתנגדות kanamycin. אם יצירת רצפי ברקוד חדשים, השתמש בכלים מקוונים כדי להבטיח את השימוש במכונות ה-PCR בעלי התווית הספציפית של היעד (להלן מתייחסים פשוט כ-"בדיקה") באופן יעיל לאגד את הרצף החדש. רצפי ההכנסה שתוכננו עד היום, יחד עם התחל הדרוש כדי ליצור אותם, מסופקים בטבלאות 2 ו- S1.
  14. להכין תגובות SDM באמצעות DNA מסחרי באיכות גבוהה פולימראז, הזוגות הרצוי פריימר (שולחן 2), ו pSKAP תבנית. הגדר את הציקלנית כדי לבצע את הפעולות הבאות: 1) 98 ° צ' עבור 30 s, 2) 98 ° צ' עבור 10, 56 ° צ' עבור 15 s, 72 ° c עבור 2 דקות, 3) לחזור על שלבים 2, 24 פעמים, 4) 72 ° צלזיוס עבור 5 דקות, 5) להמתין 4 ° c.
  15. לאחר השלמת ה-PCR, לרוקן את התבנית pSKAP על ידי הוספת האנזים ההגבלה Dpn I לתגובה. מודקון ב 37 ° c עבור 20 דקות.
    הערה: מוצרים מ-PCR צריך להיות מדמיינו על ג'ל agarose כדי לאמת את הגודל והטוהר של המוצר. שליטה Dpn I העיכול המורכב של התבנית pSKAP לא שונה ניתן לבצע ולהשתמש בשלבים הבאים כדי להבטיח DNA התבנית הוא מתעכל לחלוטין.
  16. השתמש 5 μL של המוצר משלב 1.15 כדי להפוך 100 μL של תאים מסחריים כימית DH5α המוסמכת בהתאם להמלצות של היצרן.
  17. התפשטות transformants אל LB אגר צלחות בתוספת עם 25 μg/mL כלוראמנול ו-דגירה ב 37 ° c לילה.
  18. בחר מושבה (או מושבות) מלוחות לילה על פס על לוחות ליברות אגר בודדים שיושלם עם 25 μg/mL כלוראמאנרול ו דגירה ב 37 ° c בלילה. בחר מושבה מלוחות לילה ולהשתמש לאיחסן 5 מ ל של ציר LB בתוספת עם 25 μg/mL כלוראמאניול. תרבית התרבות (s) לילה ב 37 ° c עם עצבנות מתמדת.
  19. השתמשו בערכה מסחרית של ציוד מסחרי, כדי לטהר את הפלאמידים מהתרבות הלילה (ים).
  20. רצף סאנגר מטוהר בעזרת הרצף הM13 קדימה (שולחן 2). השוואת אזור מוטציה לפלסמיד המקורי ולהעריך את דיוק insertional SDM.
  21. לאחר אישור הכניסה ברקוד ודיוק, להקצות כל ברקוד פלאמיד שם.
    הערה: ברקודים שנוצרו עד התאריך הוקצו ייעוד של שתי אותיות: AA, AB, AC,..., BA, BB, לפנה ס, וכו '. פלמידים ברמיונים מסומנים כ-pSKAP_AA, pSKAP_AB, pSKAP_AC,..., pSKAP_BA, pSKAP_BB, pSKAP_BC, וכו '.
  22. חזור על שלבים 1.14-, כדי להפיק את המספר הרצוי של ברקודים DNA.

2. להציג ברקוד DNA על כרומוזום של S. Typhimurium

הערה: החדרת ברקודים DNA אל S. כרומוזום typhimurium מושגת באמצעות שיטה allelic exchange שתוארו על ידי Datsenko ו-Wanner14 כי כבר שונה לשימוש S. . סוג של מוטיום

  1. לקבוע את הלוקוס ב -S. הגנום typhimurium שבו להוסיף את ברקוד ה-DNA (איור 3).
    הערה: בחר באזור גדול ומלא-מגניים של הכרומוזום. להימנע אזורים המייצרים RNA שאינו קידוד. מחקר זה ניצל מקום במורד הזרם של לשים P בין שאריות 1,213,840 ו 1,213,861 (נקבע מהרכבת הגנום GCA_ 000022165.1). האזור הזה מטופל בעבר גנטית עבור השלמת טרנס של גנים15. לחילופין, ברקוד DNA יכול להיות הציג במקביל לשבש גן של עניין. פעולה זו דורשת שינויים מינימליים בפרוטוקול זה ומייעל את יצירת המוטציות.
  2. עיצוב PCR התחל כדי להגביר את הברקוד הייחודי FRT-מקיפים את גן ההתנגדות של pSKAP ברקוד המכיל את הג משלב 1.21 (שולחן 2). הוסף 40-הרחבות נוקלאוטיד הומוולוגי לאזור שנבחר בשלב 2.1 לסוף של 5 כל פריימר (שולחן 2).
  3. לבצע את הגברה באמצעות מסחרי באיכות גבוהה פולימראז, התחל משלב 2.2, ואת pSKAP הרצוי ברקוד המכיל פלסמיד כתבנית. הגדר את הציקלנית לבצע את הפעולות הבאות: 1) 98 ° צ' עבור 30 s, 2) 98 ° צ' עבור 10, 3) 56 ° צ' עבור 15 s, 4) 72 ° צ' עבור 60 s, חזור על שלבים 2-4 29 פעמים, 5) 72 ° צלזיוס עבור 5 דקות, 6) להחזיק ב 4 ° c.
  4. לאחר השלמת ה-PCR, לרוקן את ה-DNA של תבנית באמצעות DpnI כפי שמתואר בשלב 1.15. לטהר ולמקד את ה-DNA באמצעות ערכת ניקוי DNA מסחרי על פי מפרט היצרן.
  5. עיין בפרוטוקול שפורסם בעבר ליצירת מוטציות ב- S. מאמץ typhimurium 14028s מ-PCR מוצרים14,16,17,18.
    הערה: זה לא הכרחי שהגן של הקנאמיצין. מגורש מהכרומוזום עם זאת, כריתה של הגן הוא מינימלית לשבש את הכרומוזום החיידקי כפי שהוא התוצאה של צלקת 129 bp שישאיר פוטנציאל במורד הגנים במסגרת. מומלץ כי המתח המכיל את הגן ההתנגדות kanamycin נשמר כפי שהוא יכול לשמש כדי להעביר ברקודים בין זנים באמצעות התמרה P22-בתיווך.
  6. חזור על שלבים 2.3 – 2.5 כדי ליצור את הזנים הרצויים עם ברקודים המתאים.
    הערה: ברקודים ניתן להציג לתוך סוג של פראי. Typhimurium כי אז יכול להיות נתון מניפולציה גנטית נוספת, או ברקודים ניתן להציג לתוך זנים כי כבר שונה גנטית בעבר.

3. מצבי גדילה בקטריאליים ובתחרות חוץ גופית

  1. מ בקטריה במלאי, הרצוי שלפס. זנים typhimurium כי כל הנמל ברקוד DNA ייחודי על לוחות LB אגר. לוחיות הרישוי של הלילה. ב-37 ° c
  2. בחרו מושבה אחת מכל מאמץ ומחסן 5 מ ל של ציר LB. מודטה עבור 20 h ב 37 ° צ' עם עצבנות תמידית.
    הערה: באמצעות התרבות לילה, המשך לשלב 3.5 לאסוף דנ א טהור של גנומית (gDNA) מכל זן ברקוד. זה הכרחי לניסויים הבאים בנוגע לאימות ושליטה בסעיף 6.
  3. עבור כל שיטת תחרות, העבר כמות שווה של כל תרבות לילה לתוך צינור סטרילי בגודל כראוי. ביסודיות לערבב זנים יחד על ידי vortexing במרץ עבור לפחות 5 s.
    הערה: הנפח של כל תרבות לילה להעביר צריך להספיק לכל תנאי ולשכפל, כמו גם לבידוד gDNA כדי לכמת קלט. אמנם זה לא לגמרי הכרחי כדי למדוד צפיפויות אופטיות של תרבויות, כי המספר המוחלט של מיקרואורגניזמים קלט יהיה כימות באמצעות ה-PCR הדיגיטלי, מספר חיידקים קלט עבור כל זן צריך להיות שווה בערך כדי למנוע צווארי בקבוק או תחרות לא שוויונית מוקדם בניסוי. התחרות הייצוגית הוסר בפרוטוקול זה בהשוואה לשיעורי הצמיחה של 8 זנים בו זמנית. זנים נוספים או פחות עשויים להיות נחוצים עבור עיצובים ניסיוניים בודדים.
  4. העברת 100 μL של מעורבות מעורבת לתוך 4.9 mL מרק ליברות סטרילי. מודטה ב 37 ° c לזמן הרצוי או לדחיסות אופטית רצויה.
  5. הקציר 500 μL של האינוצנטריפוגה על ידי ב> 12000 x g עבור 1 דקות. הסר ולמחוק את הסופרנטאנט. המשך מיד לסעיף 4 עם התאים.
  6. בנקודות הזמן הרצויות, להסיר 500 μL האליבטים של התרבות ותאי הקציר על-ידי צנטריפוגה ב > 12000 x g עבור 1 דקות. הסר ולמחוק supernatant.
    הערה: אם האיסוף ממשיך בנקודות זמן מרובות, הקפא כדורי ב-20 ° צ' או מייד לשלב 4.1 לאחר כל אוסף.

4. איסוף וככמת של gDNA מ S. Typhimurium (מתוך שלבים 3.5 ו 3.6)

  1. לקצור gDNA מתאים באמצעות ערכת טיהור gDNA מסחרי. אם הוא זמין, בצע את הצעד האופציונלי של מחסור ב-RNA.
    הערה: מחסור ב-RNA אינו הכרחי; עם זאת, הנוכחות של RNA יהיה להגדיל באופן מלאכותי את ריכוז ה-DNA, המוביל חישובים חריגה בשלבים הבאים. אם באמצעות ערכת טיהור gDNA מסחרי, בצע את ההמלצות של היצרן כדי להבטיח כי העמודה אינה עמוסה עם ה-DNA. אין ריכוז מינימלי של דנ א נדרש אם המדגם הוא ככמת בשלבים הבאים.
  2. השתמש בספקטרוסקופיה כדי לכמת דנ א בכל מדגם.
    הערה: DNA ניתן לכמת באמצעות כל שיטה אמינה.
  3. חישוב gDNA מספר עותק מבוסס על גודל הגנום חיידקי באמצעות המשוואה הבאה שבה: X הוא כמות של ה-DNA ב ng ו-N הוא אורך של מולקולת DNA כפול תקועים (גודל הגנום).
    figure-protocol-1
    הערה: 660 g/השומה משמש כמסה הממוצעת של ה-DNA bp. וריאציות קטנות עשויות להתקיים בהתאם להרכב הנוקלאוטיד של האורגניזם. מחשבונים רבים זמינים באינטרנט כדי לבצע את החישוב.

5. עיצוב תחל וזונדים לזיהוי כמותי של ברקודים DNA באמצעות ה-dDigital PCR

  1. עיצוב התחל כדי להגביר את האזור מקודד של S. כרומוזום typhimurium במורד הזרם של putp (איור 3C ושולחן 2).
    הערה: פריימר ועיצובים בדיקה ניתן להקל על ידי תוכניות מקוונות רבות (טבלת חומרים). אם ברקודים מוכנסים כולם לאותו הבית, מערכת אחת של כללי הגברה היא אוניברסלית עבור כל ברקודים.
  2. עיצוב 6-carboxyfluorescein (משפחתי)-מבוסס ו/או הקסאכלואותעין (הקסדצימאלי) מבוססי רגשים ספציפיים לכל ברקוד (שולחן 2 ו S1).
    הערה: הקורא ה-droplet המשמש בניסוי זה מסוגל לזהות גם בדים מבוססי-משפחה ו-HEX במקביל בתגובת מולטיפלקס. עיצוב 1/2 של הגששים לנצל משפחה ו 1/2 להשתמש HEX. זה לא צעד הכרחי, אך תפחית את השימוש האגייתי והעלויות הנסיוניות אם תיושם.
  3. הפוך 20x פריימר-בדיקה הורים מתערבב המכיל 1) 20 מ"מ של כל אחד קדימה לאחור הגברה פריימר, 2) 10 מ"מ של משפחה אחת בדיקה, ו 3) 10 מ"מ של בדיקה HEX אחת (אם ריבוב).

6. לאמת את הרגישות ואת הספציפיות של כל Pprimer-בדיקה להגדיר עבור כל ברקוד גנומית באמצעות PCR דיגיטלי

הערה: פרוטוקול זה משתמש באימות שמונה ברקודים ייחודיים עם שמונה בדים ייחודיים כדוגמה. מספר ברקודים מנוצל ניתן להגדיל או להקטין כדי להכיל עיצובים ניסיוניים שונים.

  1. צור מאגר של gDNA המכיל כל ברקוד מלבד אחד. השתמש במאגר זה כמו הדילול לבצע סדרת דילול עם gDNA המכיל את הברקוד הנותר היחיד (לדוגמה ערכת דילול מסופק באיור 4).
    הערה: שימוש במאגר gDNA כמו דילול מבטיח רקע עקבי תוך ברור רגישות לגבי. באמצעות מספרי ההעתקה נקבע בשלב 4.3, לדלל gDNA למספר עותק בתוך טווח ה-PCR הדיגיטלי המומלץ (1-100,000 עותקים לכל 20 μL התגובה). יש לזכור כי הטווח מוגדר עבור כל יעד ייחודי (ברקוד), לא הכולל gDNA.
  2. הכינו תגובות ל-PCR הדיגיטלי בשכפול בהתאם להמלצות היצרן לשימוש ב-PCR דיגיטלי מיועד לכימיה מבוססת-בדיקה. השתמש בתערובות משלב 6.1 כדוגמת דנ א של תבנית. השימוש 20x פריימר-בדיקה מאסטר ערבוב משלב 5.3 המכיל את הגשוש עבור ברקוד מדולל בשלב 6.1.
  3. הכינו שכפול תגובות לבקרת ה-PCR הדיגיטלי בהתאם להמלצות של היצרן לשימוש ב-PCR דיגיטלי מיועד לכימיה המבוססת על המחקר. תגובות שליטה עבור כל תמהיל בדיקה חייב להיות מורכב 1) אין פקדי תבנית (NTCs), 2) פקדים חיוביים ו 3) בקרות חיוביות.
    הערה: המספר המינימלי של תגובות בקרה לשכפול הוא שניים. פרוטוקול דוגמה זה משתמש בארבעה NTCs, שישה פקדים שליליים ושישה פקדים חיוביים עבור כל ברקוד. פקדים שליליים צריכים להכיל gDNA עם כל ברקוד למעט הברקוד המתאים לבדיקה נבדק. זה יהיה לאמת את הספציפיות של כל לווין.
  4. חזור על שלבים 6.1-6.3 כדי ליצור תגובות PCR דיגיטליות עבור כל דגימת gDNA בעלת מקודד. באיור 5מוצג סידור לוחית דגימה.
    הערה: השלבים הבאים מתוארים בהתאם לפלטפורמת ה-PCR הדיגיטלית הספציפית העושה שהיא משתמשת בטיפות ובטכנולוגיה מבוססת-זרימה. החלופה הדיגיטלית PCR פלטפורמות המשתמשים בטכנולוגיה מבוססת שבב יכול בקלות להיות להחליף עם שינויים קלים בפרוטוקול זה. שלב 6.4 עשוי לדרוש יותר מ 1 96-באר צלחת לאמת את כל ערכות פריימר. בניגוד qPCR, לוחיות נפרדות שנותחו על ידי PCR דיגיטלי ניתן להשוות ללא צורך בארות התייחסות סטנדרטית בין לוחות.
  5. ליצור טיפות עבור כל מצב תגובה באמצעות מחולל droplet בהתאם להוראות של היצרן.
  6. להעביר טיפות החדש שנוצר לתוך צלחת 96-הטוב המתאים. השתמש ב-200 μL לקבלת עצות בנוגע לצנרת רב-ערוצית ב5-50 μL.
    הערה: כאשר מלטף טיפות, פיפטה לאט וחלק! יצרנית הציוד הדיגיטלי של ה-PCR ממליצה להשתמש רק בעזרת פיפטות ושוט מיצרן מסוים (למשל, Ranin). טיפים אלה צינורות יש פתיחה חלקה ללא שברי פלסטיק מיקרוסקופיים שיכולים להרוס טיפות או נזק מיקרופלואידיקה מיקרופלואידיקה של הקורא droplet. מותגים רבים של טיפים נבדקו ונצפו יש ספקטרום של איכות הייצור. תוצאות שוות ערך הושגו באמצעות חלופות עצה הצנרת; עם זאת, יש להשתמש בזהירות בעת הסטות מהמלצות היצרן.
  7. לאחר כל טיפות נוצרו והועברו, לאטום את הצלחת עם חותם לוחית נייר.
  8. השתמש ביצרן-מומלץ לבצע את תנאי הרכיבה התרמיים הבאים: 1) 94 ° צ' למשך 10 דקות; 2) 94 ° צ' במשך 1 דקות, שיעור השיפוע נקבע ב-1 ° צ'/s; 3) 55 ° צ' למשך 2 דקות, שיעור השיפוע נקבע ב -1 ° צ'/ים; 4) חזור על שלבים 2 ו 3 49 פעמים; 5) 98 ° c במשך 10 דקות; 6) החזיקו ב -4 ° c עד 24 שעות.
    הערה: העברה תרמית בתגובת droplet אינה זהה ל-PCR הרגיל. תנאי תגובה עשויים לדרוש שינוי.
  9. בעוד ביצוע התרמותרמיים מבוצע, לתכנת את תוכנת ניתוח הנתונים עם מידע הגדרת לוחית כגון שם לדוגמה, סוג ניסוי (כימות מוחלטת), supermix בשימוש, יעד 1 שם (שם ברקוד משפחה), מטרה 1 סוג (NTC, בקרה חיובית, שליטה שלילית, או לא ידוע), היעד 2 שם (שם ברקוד HEX), היעד 2 סוג (ריק, בקרה חיובית, בקרה שלילית, או לא ידוע). מידע הכיוונון הסופי מוצג באיור 5.
  10. לאחר השלמת התרמותרמיים, העבר את התגובות שהושלמו לקורא ה-droplet והתחל את תהליך הקריאה בהתאם להוראות היצרן.

7. לכמת את מספר החיידקים בניסוי המדד התחרותי

  1. לדלל gDNA מבודדים וככמת מסעיף 4 לריכוז מתאים כמתואר לעיל.
  2. הכינו תגובות ל-PCR הדיגיטלי בהתאם להמלצות היצרן לשימוש בתמהיל העילי המתאים. השתמש ב-DNA משלב 7.1 כתבנית. השתמש באחד 20x פריימר-בדיקה לערבב מאסטר המכיל את הגשוש (או רגשים אם זיהוי הן משפחה ו HEX) עבור ברקודים אפשרי נוכח בניסוי.
  3. להכין תגובות PCR נוסף דיגיטלי כמו בשלב 7.2 באמצעות שונים 20x פריימר-בדיקה בסיס מתערבב עד כל ברקודים מנוצל בעיצוב ניסיוני ניתן לזהות.
  4. כלול פקדים עבור כל תנאי כמתואר ב-6.3. כולל 1) אין פקדי תבנית (NTCs), 2) פקדים חיוביים ו-3).
  5. המשך בפרוטוקול כמתואר בשלבים 6.5-6.10.

8. ניתוח נתוני PCR דיגיטלי וחישוב מספרי עותקים מוחלטים

  1. כאשר כל הבארות נקראו וההפעלה הושלמה, פתח את קובץ הנתונים. qlp באמצעות תוכנת ניתוח הנתונים.
    הערה: סוגי הקבצים והליכי ניתוח הנתונים המתוארים כאן הם ספציפיים ליצרן PCR דיגיטלי אחד. אם נעשה שימוש בפלטפורמות PCR דיגיטליות, סוגי קבצים ופרוצדורות ניתוח נתונים יהיו ספציפיות לפלטפורמה שבשימוש ויש לבצעו בהתאם למפרט המומלץ של היצרן.
  2. בחר את כל הבארות לנצל את התמהיל באותו פריימר-בדיקה הורים.
  3. בכרטיסיה טיפות , בדוק את מספר הטיפות שנותחו בכל באר (הן טיפות חיוביות ושליליות). להוציא מהניתוח כל טוב שיש פחות מ 10,000 טיפות הכולל.
  4. מעבר ללשונית משרעת 1 d ובוחן את המרחק של טיפות חיוביות ושליליות. ודא שהם מהווים שתי אוכלוסיות נפרדות.
  5. בתוך התוכנה, השתמש בתכונה סף כדי לבצע ניתוק בין טיפות חיוביות ושליליות עבור כל לווין זה היה מנוצל (איור 6).
    הערה: כל הבארות להשתמש באותו תחל-בדיקה מאסטר לערבב משלב 5.3 צריך להיות אותו סף.
  6. לאחר ספי המתאים הוחלו על כל הבארות, התוכנה יחשב את מספר עותקי ה-DNA בכל תגובה. יצא נתונים לגיליון אלקטרוני כדי להקל על הניתוח.
    הערה: תוכנת ניתוח הנתונים משתמשת במספר הטיפות החיוביות והשליליות המתאימות להתפלגות פואסון כדי לקבוע את מספר ההעתקה.
  7. באמצעות הערכים משלב 8.6, לחשב את מספר העותק הראשוני של כל ברקוד גנומית ייחודי במדגם. קבע את שיעור המשמעות השלילית הממוצע מתגובות הבקרה השליליות והפחת ערך זה מהערכים המתקבלים בתגובות נסיוניות. הכפל ערכים לפי הצורך בהתבסס על הדילול שבוצעו בעת הגדרת כל ניסוי (טבלה 3).

9. קבע כושר יחסי של האורגניזם על ידי חישוב CI או COI מ-PCR דיגיטלי מבוססי הקוונפיקציה של זנים ברמקוליים

  1. לחשב את CI של זן מקודד באמצעות הנוסחאות הבאות שבו:פלט הוא הקוונפיקציה מוחלטת של זן ברקוד בנקודת זמן נתונה,הפלט WT הוא הקוונפיקציה מוחלטת של חיידקים מסוג פראי ברקודים באותו timepoint,קלט הוא כימות מוחלטת של הקלט הנתונים של המתח בקידוד, הקלט WT הוא הקוונפיקציה המוחלטת של הקלט הנתונים של חיידקים מסוג פראי מקודד, Xפלט הוא הסיכום של כל הזנים ב באותה נקודת זמן,קלט X הוא סיכום של הקלט הכולל של כל הזנים מקודדים.

figure-protocol-2
figure-protocol-3
הערה: עיין בדיון לגבי יתרונות, חסרונות והשימוש המתאים ביותר בכל נוסחה.

  1. חזור על שלב 9.1 עבור כל זן מקודד באמצעות כל נקודות הזמן.
  2. אם הדבר ישים, חשב את ה-COI באמצעות הנוסחאות הבאות כאשר:פלט הוא הקוונפיקציה המוחלטת של זן מקודד עם גן מוטציה a בנקודת זמן נתונה,פלט AB הוא כימות מוחלטת של זן ברקוד עם גנים מוטציה a ו- B באותה תקופה,קלט הוא קוונפיקציה מוחלטת של הקלט הנתונים של המתח מקודד עם גן מוטציה A,קלט AB הוא הקוונפיקציה המוחלטת של הקלט הנתונים של זן מקודד עם גנים מוטציה A ו- b, bפלט הוא קוונפיקציה מוחלטת של זן ברקוד עם גן מוטציה B ב timepoint נתון, ו Bקלט הוא קוונפיקציה מוחלטת של הקלט של המתח המסומן בעזרת. גן מוטציה ב'

figure-protocol-4
ו/או
figure-protocol-5

הגישה מוגבלת. התחברו או התחילו תקופת ניסיון כדי לצפות בתוכן זה.

תוצאות

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

השימוש במתודולוגיה זו דורש שתגובות הבקרה המתאימות מבוצעות כדי לאמת את הרגישות והספציפיות של כל בדיקה המשמשת לזיהוי הדנ א של היעד. בניסוי מייצג זה, הצלחנו לוודא שמונה ברקודים ייחודיים DNA עם שמונת הבדיקות המתאימות לזיהוי. כל שמונת הבדיקות היו שיעור נמוך של תוצאות חיוביות שווא הן ב-NTC והן בתגובות בקרה שליליות (שולחן 3), סימון ספציפיות שלהם גם בין רצפי DNA דומים מאוד. כדי להעריך את הרגישות של כל תנאי, gDNA המכיל ברקוד ייחודי היה מדולל ברקע קבוע של gDNA המכיל כל אחד משבעת רצ...

הגישה מוגבלת. התחברו או התחילו תקופת ניסיון כדי לצפות בתוכן זה.

דיון

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

היכולת לכמת מיקרואורגניזמים במדויק היא בעלת חשיבות עליונה למחקר מיקרוביולוגיה, והיכולת לספור זנים ייחודיים מאוכלוסיה מעורבת ראשונית הוכיחה להיות כלי רב-ערך להערכת תכונות כושר והתקפה אלימה ב חיידקים. עם זאת, הטכניקות לביצוע זה לא התקדמו בקצב עם פיתוחים מודרניים בביולוגיה מולקולרית. הטכנולוגיה כדי לשנות בקלות את הכרומוזומים של חיידקים רבים, כולל S. Typhimurium, כבר זמין כמעט שני עשורים14, אבל היכולת הזאת כבר מנוצל לעתים נדירות עבור התיוג זנים עם רצפי DNA ייחודי. על ידי ניצול היכולת ליצור זנ...

הגישה מוגבלת. התחברו או התחילו תקופת ניסיון כדי לצפות בתוכן זה.

גילויים

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

. למחברים אין מה לגלות

תודות

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

המחקר שדווח בפרסום זה נתמך על ידי קרן הפקולטה למשפטים של הנשיא ג'ורג ' האדדיקס והמכון הלאומי למדעי הרפואה הכללית של המכונים הלאומיים לבריאות (NIH) תחת מספר הפרסים GM103427. התוכן הינו באחריות המחברים בלבד ואינו מייצג בהכרח את ההשקפות הרשמיות של המכון הלאומי לבריאות.

הגישה מוגבלת. התחברו או התחילו תקופת ניסיון כדי לצפות בתוכן זה.

חומרים

רשימת החומרים שנעשה בהם שימוש במאמר זה
שםחברהמספר קטלוגהערות
צינורות מיקרוצנטריפוגה 1.5 מ"לEppendorf22600028רכש מכל יצרן
16 מ"ל צינורות תרביתMidSci8599רכש מכל יצרן
5-200 μ L טיפים לפיפטהRAININ30389241רכשו מותגי טיפים אלטרנטיביים בזהירות על בסיס איכות הייצור
5-50 μ פיפטה רב-ערוצית LRAININ17013804השתמש בזהירות בפיפטות רב-ערוציות חלופיות
AgaroseThermoFisher ScientificBP160-500רכש מכל יצרן
ניתוח פיצוץNCBIN/Ahttps://blast.ncbi.nlm.nih.gov/Blast.cgi
C1000 מגע Thermocycler עם מודול תגובת באר עמוק 96Rad1851197יש לרכוש אספקת ddPCR מ-Bio Rad. חלופות עדיין אינן זמינות.
DH5 ואלפא מוכשרים מבחינה כימית;Invitrogen18258012לרכוש מכל יצרן או להכין את עצמך
ChloramphenicolThermoFisher ScientificBP904-100לרכוש מכל יצרן
Cytation5 קורא MicroplateBioTekCYT5MFProcure מכל יצרן, להשתמש בכל מערכת המסוגלת לכמת במדויק
תוכנת ניתוח נתוני DNA (QuantaSoft ו- QuantaSoft Data Analysis Pro)Bio Radאיןצורך לרכוש אספקת ddPCR מ-Bio Rad. חלופות עדיין אינן זמינות.
ddPCR 96-Well PlatesBio Rad12001925חייב לרכוש אספקת ddPCR מ-Bio Rad. חלופות עדיין אינן זמינות.
ddPCR Droplet Reader OilBio Rad1863004חייב לרכוש אספקת ddPCR מ-Bio Rad. חלופות עדיין אינן זמינות.
ddPCR Supermix לבדיקות (ללא dUTP)Bio Rad1863024חייב לרכוש אספקת ddPCR מ-Bio Rad. חלופות עדיין אינן זמינות.
מחסניות DG8 עבור מחולל טיפות QX200/QX100Bio Rad1864008חייב לרכוש אספקת ddPCR מ-Bio Rad. חלופות עדיין אינן זמינות.
אטמי DG8 עבור מחולל טיפות QX200/QX100Bio Rad1863009חייבים לרכוש אספקת ddPCR מ-Bio Rad. חלופות עדיין אינן זמינות.
שמן לייצור טיפות לבדיקותBio Rad1863005חייב לרכוש אספקת ddPCR מ-Bio Rad. חלופות עדיין אינן זמינות.
KanamycinThermoFisher ScientificBP906-5רכוש מכל יצרן
Luria-Bertani agarThermoFisher ScientificBP1425-2רכוש מכל יצרן או הכין אותו בעצמך מאגר, טריפטון, עיכול שמרים ו- NaCl
מרק לוריא-ברטאניThermoFisher ScientificBP1426-2רכוש מכל יצרן או הכין אותו בעצמך מטריפטון, עיכול שמרים ו- NaCl
חותם חום לוחית PCR, נייר כסף,ביו ראד1814040 חובה לרכוש אספקת ddPCR מ-Bio Rad. חלופות עדיין אינן זמינות.
צינורות PCREppendorf951010022לרכוש מכל יצרן
צלחות פטריThermoFisher ScientificFB0875712לרכוש מכל יצרן
pPCR Script Cam SK+Stratagene/Agilent211192כבר לא זמין מסחרית
פריימר/בדיקה עיצובIDTN/Ahttps://www.idtdna.com/Primerquest/Home/Index
pSKAP ומספריפלסמיד pSKAP_Barcodes Addgene122702-122726www.addgene.org
PX1 PCR Plate SealerBio Rad1814000חייב לרכוש אספקת ddPCR מ-Bio Rad. חלופות עדיין אינן זמינות.
מחולל טיפות QX200Bio Rad1864002חייב לרכוש אספקת ddPCR מ-Bio Rad. חלופות עדיין אינן זמינות.
QX200 Droplet ReaderBio Rad1864003חייב לרכוש אספקת ddPCR מ-Bio Rad. חלופות עדיין אינן זמינות.
Salmonella typhimurium זן ATCC 14028sATCC ATCC14028swww.atcc.org
Take3 Micro-Volume PlateBioTekTAKE3Procure מכל יצרן, השתמש בכל מערכת המסוגלת לכמת במדויק DNA
Thermo Scientific FastDigest BamHIThermoFisher ScientificFERFD0054לרכוש מכל יצרן
Thermo Scientific FastDigest DpnIThermoFisher ScientificFERFD1704לרכוש מכל יצרן
Thermo Scientific FastDigest HindIIIThermoFisher ScientificFERFD0504 לרכוש מכל יצרן
Thermo Scientific GeneJet Gel Extraction and DNA Cleanup Micro KitThermoFisher ScientificFERK0832לרכוש מכל יצרן
Thermo Scientific GeneJet Miniprep KitThermoFisher ScientificFERK0503לרכוש מכל יצרן
Thermo Scientific Phusion High-Fidelity DNA PolymeraseThermoFisher ScientificF534LProcure מכל יצרן
Thermo Scientific T4 DNA LigaseThermoFisher ScientificFEREL0011Procu מכל יצרן
ThermocyclerBio Rad1861096Procu מכל יצרן
UVP Visi-Blue TransilluminatorThermoFisher ScientificUV95043301או טרנזילומייטור אחר המאפשר הדמיה של
DNA מים, ביולוגיה מולקולרית כיתהThermoFisher ScientificBP28191רכישה מכל יצרן
Bio מנוקב

מקורות

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,
  1. Beuzón, C. R., Holden, D. W. Use of mixed infections with Salmonella strains to study virulence genes and their interactions in vivo. Microbes and Infection. 3 (14-15), 1345-1352 (2001).
  2. Bäumler, A. J., Tsolis, R. M., Valentine, P. J., Ficht, T. A., Heffron, F. Synergistic effect of mutations in invA and lpfC on the ability of Salmonella typhimurium to cause murine typhoid. Infection and Immunity. 65 (6), 2254-2259 (1997).
  3. Vital, M., Hammes, F., Egli, T. Competition of Escherichia coli O157 with a drinking water bacterial community at low nutrient concentrations. Water Research. 46 (19), 6279-6290 (2012).
  4. Schellenberg, J., Smoragiewicz, W., Karska-Wysocki, B. A rapid method combining immunofluorescence and flow cytometry for improved understanding of competitive interactions between lactic acid bacteria (LAB) and methicillin-resistant S. aureus (MRSA) in mixed culture. Journal of Microbiological Methods. 65 (1), 1-9 (2006).
  5. Becker, D., et al. Robust Salmonella metabolism limits possibilities for new antimicrobials. Nature. 440 (7082), 303(2006).
  6. Rang, C., Galen, J. E., Kaper, J. B., Chao, L. Fitness cost of the green fluorescent protein in gastrointestinal bacteria. Canadian Journal of Microbiology. 49 (9), 531-537 (2003).
  7. Santiviago, C. A., et al. Analysis of pools of targeted Salmonella deletion mutants identifies novel genes affecting fitness during competitive infection in mice. PLoS Pathogens. 5 (7), e1000477(2009).
  8. Ahmer, B. M., Gunn, J. S. Interaction of Salmonella spp. with the intestinal microbiota. Frontiers in Microbiology. 2, 101(2011).
  9. Gallagher, L. A., Shendure, J., Manoil, C. Genome-scale identification of resistance functions in Pseudomonas aeruginosa using Tn-seq. MBio. 2 (1), (2011).
  10. Van Opijnen, T., Bodi, K. L., Camilli, A. Tn-seq: high-throughput parallel sequencing for fitness and genetic interaction studies in microorganisms. Nature Methods. 6 (10), 767(2009).
  11. van Opijnen, T., Lazinski, D. W., Camilli, A. Genome‐wide fitness and genetic interactions determined by Tn‐seq, a high‐throughput massively parallel sequencing method for microorganisms. Current Protocols in Microbiology. 36 (1), (2017).
  12. Mutalik, V. K., et al. Dual-barcoded shotgun expression library sequencing for high-throughput characterization of functional traits in bacteria. Nature Communications. 10 (1), 308(2019).
  13. Yoon, H., Gros, P., Heffron, F. Quantitative PCR-based competitive index for high-throughput screening of Salmonella virulence factors. Infection and Immunity. 79 (1), 360-368 (2011).
  14. Datsenko, K. A., Wanner, B. L. One-step inactivation of chromosomal genes in Escherichia coli K-12 using PCR products. Proceedings of the National Academy of Sciences. 97 (12), 6640-6645 (2000).
  15. Henard, C. A., Bourret, T. J., Song, M., Vázquez-Torres, A. Control of redox balance by the stringent response regulatory protein promotes antioxidant defenses of Salmonella. Journal of Biological Chemistry. 285 (47), 36785-36793 (2010).
  16. Poteete, A. R., Fenton, A. C. λ red-dependent growth and recombination of phage P22. Virology. 134 (1), 161-167 (1984).
  17. McCollister, B. D., Bourret, T. J., Gill, R., Jones-Carson, J., Vázquez-Torres, A. Repression of SPI2 transcription by nitric oxide-producing, IFNγ-activated macrophages promotes maturation of Salmonella phagosomes. Journal of Experimental Medicine. 202 (5), 625-635 (2005).
  18. Shaw, J. A., et al. Salmonella enterica serovar Typhimurium has three transketolase enzymes contributing to the pentose phosphate pathway. Journal of Biological Chemistry. 293 (29), 11271-11282 (2018).
  19. Freter, R., O'Brien, P., Macsai, M. S. Role of chemotaxis in the association of motile bacteria with intestinal mucosa: in vivo studies. Infection and immunity. 34 (1), 234-240 (1981).
  20. Taylor, R. K., Miller, V. L., Furlong, D. B., Mekalanos, J. J. Use of phoA gene fusions to identify a pilus colonization factor coordinately regulated with cholera toxin. Proceedings of the National Academy of Sciences. 84 (9), 2833-2837 (1987).
  21. Nogva, H. K., Dromtorp, S., Nissen, H., Rudi, K. Ethidium monoazide for DNA-based differentiation of viable and dead bacteria by 5'-nuclease PCR. Biotechniques. 34 (4), 804-813 (2003).
  22. Nocker, A., Camper, A. K. Novel approaches toward preferential detection of viable cells using nucleic acid amplification techniques. FEMS Microbiology Letters. 291 (2), 137-142 (2009).
  23. Nocker, A., Cheung, C. -Y., Camper, A. K. Comparison of propidium monoazide with ethidium monoazide for differentiation of live vs. dead bacteria by selective removal of DNA from dead cells. Journal of Microbiological Methods. 67 (2), 310-320 (2006).
  24. Nocker, A., Mazza, A., Masson, L., Camper, A. K., Brousseau, R. Selective detection of live bacteria combining propidium monoazide sample treatment with microarray technology. Journal of Microbiological Methods. 76 (3), 253-261 (2009).
  25. Nocker, A., Sossa, K. E., Camper, A. K. Molecular monitoring of disinfection efficacy using propidium monoazide in combination with quantitative PCR. Journal of Microbiological Methods. 70 (2), 252-260 (2007).
  26. Nocker, A., Sossa-Fernandez, P., Burr, M. D., Camper, A. K. Use of propidium monoazide for live/dead distinction in microbial ecology. Applied and Environmental Microbiology. 73 (16), 5111-5117 (2007).
  27. Price-Carter, M., Tingey, J., Bobik, T. A., Roth, J. R. The Alternative Electron Acceptor Tetrathionate Supports B12-Dependent Anaerobic Growth ofSalmonella enterica Serovar Typhimurium on Ethanolamine or 1, 2-Propanediol. Journal of Bacteriology. 183 (8), 2463-2475 (2001).
  28. Taylor, R. G., Walker, D. C., McInnes, R. E. coli host strains significantly affect the quality of small scale plasmid DNA preparations used for sequencing. Nucleic Acids Research. 21 (7), 1677(1993).
  29. Cherepanov, P. P., Wackernagel, W. Gene disruption in Escherichia coli: Tc R and Km R cassettes with the option of Flp-catalyzed excision of the antibiotic-resistance determinant. Gene. 158 (1), 9-14 (1995).

הגישה מוגבלת. התחברו או התחילו תקופת ניסיון כדי לצפות בתוכן זה.

הדפסות חוזרות והרשאות

בקש הרשאה לשימוש חוזר בטקסט או באיורים של מאמר JoVE זה

בקש הרשאה

תגיות

SalmonellaDNA

מאמרים קשורים