הרשמה ל-JoVE נדרשת לצפייה בתוכן זה. התחברו או התחילו בגרסת ניסיון בחינם.

מאמר שיטה

מערך מערכת Droplet ליטר ליצירת חלבון מקבילי בנפט ממולקולות דנ א יחיד

10.3K צפיות

⸱

DOI:

10.3791/60945

⸱

20 ביוני 2020

 ,  ,  ,  , 
1SUGAR Program, X-star, Japan Agency for Marine-Earth Science and Technology (JAMSTEC), 2Center for Mathematical Science and Advanced Technology, Japan Agency for Marine-Earth Science and Technology (JAMSTEC), 3Deep-Sea Nanoscience Research Group, Japan Agency for Marine-Earth Science and Technology (JAMSTEC)

במאמר זה

סיכום

המטרה הכוללת של הפרוטוקול היא להכין מעל 1,000,000 הורה, אחיד, יציב, ותואם ביולוגי טיפות של ליטר על 1 ס מ2 מצע מישורי שניתן להשתמש בו עבור סינתזה של חלבון תא ללא.

תקציר

ההתקדמות ברזולוציה מרחבית ורגישות האיתור של מכשור מדעי מאפשרים ליישם כורים קטנים למחקר ביולוגי וכימי. כדי לענות על הביקוש למכשירים בעלי ביצועים גבוהים, פיתחנו מערך מיקרוליטר של המכשיר (מכשיר "פרמי") ולמעשה היישום שלה באמצעות סינתזה של חלבון מקביל בנפט ללא מקבילים (CFPS) תגובות. מעל 1,000,000 טיפות מדים שנוצרו בקלות בתוך שטח בגודל אצבע באמצעות פרוטוקול איטום שני צעדים שמן. כל droplet עגנה בתוך חדר מיקרו-ליטר שמורכב מתחתית הידרופילי ומקיר צדדי הידרופובי. היברידית הידרופיפילית-in-הידרופובי מבנה ושמני איטום ייעודי והרב הם חיוניים עבור שמירה באופן שטחי הפתרון המימית ליטר בחלל ליטר ללא אובדן אידוי. תצורת הפליטר והמבנה הפשוט של המכשיר הינו מותר לצריכה מזערית. המימד האחיד של כורי ה-droplet הכין מדידות כמותית ומדידה בקנה מידה גדול משכנע ואמין. הטכנולוגיה הנשית מתאם את תפוקת החלבון של תגובת CFPS עם מספר מולקולות ה-DNA ב-droplet כל. אנו מתקנים את ההליכים לגבי המיקרו-בנייה של המכשיר, היווצרות טיפות ליטר, ורכישה וניתוח של נתוני התמונה המיקרוסקופיים. הפרוטוקול המפורט עם עלות הריצה הנמוכה והממוטב הופך את טכנולוגיית הטכנולוגיה הממוטבת לנגישה לכל מי שיש לו מתקני חדר נקי סטנדרטיים ומיקרוסקופ של זריחה קונבנציונאלית במקום שלהם.

מבוא

החוקרים משתמשים בכורים כדי לבצע תגובות ביו/כימיות. ישנם מאמצים משמעותיים שנעשו כדי להקטין את גודל הכור ולהגדיל את התפוקה הניסיונית כדי להקטין את צריכת הדלק תוך שיפור יעילות העבודה. שני ההיבטים מכוונים לשחרור חוקרים מעומס עבודה כבד, הפחתת העלות והאצת המחקר והפיתוח. יש לנו מפת דרכים היסטורית ברורה על פיתוח טכנולוגיות הכור מנקודת המבט של אמצעי התגובה ותפוקה: כוסות יחיד/בקבוקון/מבחן-צינוריות, צינורות מיליליטר, צינורות מיקרוליטר, מיקרוליטר 8-שפופרת, מיקרוליטר 96/384/1536-באר צלחת, ו מיקרופלואידיק/picoliter/פיאוליטר/כורים ליטר1,2,3,4,5,6,7. מקבילה לצמצום גודל התכונה של טרנזיסטורים על שבבי מעגלים משולבים בתעשיית מוליכים למחצה בעשורים האחרונים, ביו/כימי מיקרוקטורים עוברים הפחתת עוצמה ואינטגרציה מערכת. כלים קטנים כאלה השפיעו מאוד על הביולוגיה הסינתטית של התאים או על התאים, ביולוגיה סינתטי, ובדיקת אבי-טיפוס בתפוקה גבוהה והקרנת8,9,10,11,12. נייר זה מתאר את המאמצים האחרונים שלנו על פיתוח של טכנולוגיית מערך droplet ייחודי ומדגים את יישומו ב-CFPS13, טכנולוגיה יסודית לביולוגיה סינתטית וקהילות סינון מולקולריות14. בפרט, אנו מספקים במכוון פרוטוקול מיטבי ובעלות נמוכה כדי להפוך את ההתקן הניתן לגישה של התקן החיצוני לכולם. בעלות נמוכה וקל לטפל פרוטוקול המכשיר המזעור יתרום למטרות חינוכיות של אוניברסיטאות ולעזור להפיץ את הטכנולוגיה.

מכינה לנשים טיפות של ליטר בצפיפות גבוהה של 106 לכל 1 ס מ2 על מצע זכוכית מישורי. אנו מצופים פולימר הידרופובי, CYTOP15, על מצע זכוכית חרוט סלקטיבי (הוסר) cytop במיקומים מוגדרים מראש כדי ליצור מערך מיקרוקאמריים על מצע. לפיכך, המיקרו-חדר המתקבל מורכב מקיר צדדי הידרופובי (CYTOP) ומתחתית הידרופילי (זכוכית). כאשר זורמים באופן רציף מים ושמן על פני השטח עם תבנית, המים יכולים להיות לכודים ואטומים לתוך המיקרותאי. מבנה ההידרופיפילית-בהידרופובי חיוני למים מחוץ למיקרוצ'יימברס, בידוד שחקנים בודדים, ושמירה על תמיסה זעירה ומימית בתוך החלל הפטויטר. המאפיין הייחודי הוחל בהצלחה על הכנת טיפות מים בשמן מיקרו מיקרוליפיד16,17. בהשוואה למכשיר אב טיפוס16, אנחנו הראשונים אופטימיזציה תהליך מיקרוייצור כדי להגשים הסרה מלאה של פולימר cytop, כמו גם חשיפה מלאה של התחתון זכוכית. CYTOP הוא מfluoropolymer מיוחד הכולל מתח נמוך מאוד בפני השטח (19 mN/m) נמוך יותר מזה של חומרים קונבנציונליים מיקרוריאקטור כגון זכוכית, פלסטיק, סיליקון. שלה טוב אופטי, חשמל, ביצועים כימיים כבר נוצל טיפול פני השטח של התקנים microflu,18,19,20,21,22,23,24. במערכת נשית, כדי להשיג הרטבה טובה של השמן על פני CYTOP, מתח פני השטח של הנפט חייב להיות נמוך יותר מאשר המשטח המוצק25. אחרת, השמן הנוזלי במגע עם המשטח המוצק נוטה להיות כדורי במקום להתפשט על פני השטח. חוץ מזה, מצאנו כי כמה שמנים ביולואורופחמן פופולריים (g., 3M FC-40)16 ו הידרופלואורואואתר שמנים (למשל, 3m הסדרה novec) יכול לפזר cytop כתוצאה של מורפולוגיה אמורפיות של cytop, אשר קטלנית למדידה כמותית יהיה מפוקפק במונחים של זיהום בין טיפות. למרבה המזל, זיהינו שמן ביולוגי תואם וידידותי לסביבה מפגין נמוך יותר (< 19 mN/m) מתח פני השטח13. כמו כן מצאנו מסורסטנט חדש שיכול להתמוסס בשמן שנבחר ולתפקד בריכוז נמוך (0.1%, לפחות 10 מקפלים נמוך יותר מאשר דיווחו26בעבר הפופולריים 26,27)13. ניתן לייצב את ממשק המים/הנפט שנוצר על ידי הגולש. בגלל שיעור האידוי הגבוה של השמן, בעקבות הסומק עם השמן, התחלנו עוד שמן ביולוגי תואם וידידותי לסביבה להחליף את הראשון לאטום את המיקרוצ'יימברס. אנו מכנים את השמן הראשון (אסייקלין AE-3000 עם 0.1 wt x SURFLON S-386) "שמן הריקון" ואת השמן השני (פומעבלין Y25) "שמן איטום", בהתאמה.

אסטרטגיית איטום השמן בשני השלבים מסוגלת לממש היווצרות מחזק של מערך ה-droplet של הנשים בתוך דקות ובלי מכשור מתוחכם. בשל בעיית האידוי, הוא נחשב מאתגרת ליצור מיקרואורנים קטנים יותר מאשר picoliter כרכים28. בעיה זו התייחסה לבעיה זו באופן שיטתי מיטוב החומרים והתהליכים המשמשים להכנת מיקרוקטורים/טיפות. כמה מאפיינים ראויים לציון של הטיפות כתוצאה מכך כוללים אחידות גבוהה (או מונוטוני), יציבות, וביותאימות בקנה מידה של ליטר. מקדם הווריאציה (CV) של כרך ה-droplet הוא רק 3% (ללא תיקון כהות לתמונות מיקרוסקופיים), קורות החיים הקטנים ביותר בין פלטפורמות ה-droplet בעולם, המבטיח מדידה מקבילה וכמותית מאוד. ה-droplet הנשית הינה יציבה לפחות 24 שעות ללא זיהום בקרב טיפות בטמפרטורת החדר, שהיא רבת ערך עבור מדידה אמינה בזמן הקורס. בנוגע לביו-תאימות, הצלחנו לסנתז חלבונים שונים מהדנ א של תבנית בעלת עותק יחיד ב-droplet של ליטר, שנחשבה בעבר לקשה או לא יעילה29,30. זה יהיה ראוי להבהיר מדוע חלבונים מסוימים המסוגלים להיות מסונתז בתוך הנשים לא יכול להיות מסונתז במערכות droplet אחרות. היא לא הייתה רק התקדמות טכנית, אלא גם הבינה מדידה כמותית unprecedentedly שיכולה לתאם את תפוקת החלבון (כפי שהיא משתקפת בעוצמת הקרינה של ה-droplet) למספר מולקולות ה-DNA של תבנית ב-droplet. כתוצאה מכך, ההיסטוגרמה של העוצמה הפלואורסצנטית של טיפות מ-CFPS מבוסס-הראה התפלגות בדידה שניתן להתאים בצורה יפה על-ידי סכום של הפצות גאוס במרווחים שווים של שיא לשיא. יתר על כן, ההסתברות של התרחשות של טיפות המכילות מספרים שונים של מולקולות DNA היה התאמה מושלמת התפלגות פואסון31. לכן, ניתן לנרמל את תפוקת החלבון השונה בכל droplet בהתבסס על ההתפלגות הדיסקרטית. תכונה קריטית זו מאפשרת לנו להפריד בין מידע הפעילות האנזימטי לבין העוצמה הנראית לעין, שעדיין לא היתה זמינה עם פלטפורמות אחרות של מיקרומושחקנים. מערכות מיון של תא מיקרופלואידיג קיימים מיומנים במיון אוטומטי לחלוטין וטוב להתרכז בדגימות, אך לעתים ניתן ליצור פלט של היסטוגרמה רחבה או ארוכת זנב יחסית בהיבט האנליטי32,33. שלנו מערכת נשית מאוד כמותית ותואמת סתיימים קובע בחינת ביצועים חדשה ותקן אנליטי גבוה בתחום התפתחות מיקרוריאקטור.

השמנים והחומרים שניתן להשתמש בהם להכנת טיפות הם עדיין מאוד מוגבל34. השילוב של אסהיקלין AE-3000 ו SURFLON S-386 הוקמה בשנת החברה הוא חבר חדש של ארסנל גדל של הממשק הפיזיוכימי בין השלב מימית ובשלב הנפט13. הממשק החדש של למעשה הוא יציב פיזית, מבחינה כימית, ותואם ביולוגית עם תמלול, תרגום ומכונות שינוי פוסט-טרנסלליות עבור סוגים רבים של חלבונים13. זה יהיה מאוד אטרקטיבי למצוא חלבון שלא ניתן לסינתזה בהגדרות ה-droplet במקום. חוץ מזה, החיסכון בעלויות של ריאגנטים הוא ברור יותר במערכת droplet ליטר של הרבה יותר מאשר ב nanoliter ו picoliter הכור מערכות35,36. במיוחד, לעתים קרובות יהיה נפח מת גדול, אשר נגרמת בעיקר על ידי צינורות או אספקה חיצונית, במערכות מיקרופלואידיג מערכות הדור, אבל לא ב-שלנו הנשים. תבנית המערך מעדיפה גם על-ידי אפיון מיקרוסקופי חוזר ומפורט (בדומה לניתוח התוכן הגבוה שנקרא) עבור כל המגיב היחיד37, ולא רק תמונה אחת עבור אובייקט הנע מהיר. בקנה מידה של ליטר מאופשר שילוב של מעל 1,000,000 כורים על האזור בגודל אצבע, בעוד מספר זהה של כורים nanoliter (אם הוא קיים) דורש מעל שטח מרובע, אשר יהיה ללא ספק לייצר או להשתמש במערכת כגון.

הגישה מוגבלת. התחברו או התחילו תקופת ניסיון כדי לצפות בתוכן זה.

פרוטוקול

1. המיקרו-מיקרוקנה של מצע המיקרו-ליטר של המערך

הערה: בצע את הניסוי המיקרוייצור הבאים בחדר נקי. לבשו כפפות וחליפת חדר נקי לפני הכניסה לחדר הנקי.

  1. המצע לניקוי מזכוכית
    1. הגדר את הזכוכית המכסה על מדף כיסוי זכוכית מכתים. Sonicate את הזכוכית המכסה ב 8 M נתרן הידרוקסיד (NaOH) עבור 15 דקות בטמפרטורת החדר (RT).
      התראה: NaOH בריכוזים גבוהים הוא מסוכן מאוד לעור ולעין. . טפל בזה בעדינות בלי להתיז
    2. קח את המתלה מתוך פתרון NaOH ולשטוף את זכוכית המכסה באמצעות מים 10 פעמים. שמור את הזכוכית המכסה. במים הטהורים
      הערה: השמט את הפסולת האלקליין למיכל המיועד. הפתרון NaOH ניתן למחזר לבקבוק המקורי משמש עד חמש פעמים.
    3. יבש כל פיסת זכוכית כיסוי עם אקדח מפוצץ אוויר.
    4. אופים את הזכוכית המכסה מיובש על צלחת חמה ב 200 ° c עבור 5 דקות. לשמור על הכיוון של הצד העליון של המצע זכוכית עקבי במהלך הטיפול הבאים התהליכים.
  2. סילניזציה של משטח הזכוכית
    1. מאפס את זכוכית הכיסוי הנקוע על מדף מכתים יבש.
    2. מוסיפים 150 מ ל של אתנול לתוך גביע השתמש במחט (22 גרם x 70 מ"מ) מצויד מזרק 1 מ ל לצייר 0.075 mL של (3-aminopropyl) triethoxysilane ומיד להזריק אותו לאתנול (כלומר, 0.05 vol%). למשוך ולדחוף את המזרק מספר פעמים כדי לשטוף את החלק הפנימי של המזרק. מערבבים את הפתרון עם המחט כדי להפוך אותו הומוגנית.
      הערה: (3-aminopropyl) triethoxysilane ניתן לאחסן בטמפרטורת החדר ו 1 כספומט הלחץ במשך שנתיים עם איטום צר. אתנול מוחלט צריך להיות אטום הדוק לאחר השימוש. אנחנו לא ממליצים על שימוש בריאגנטים שפג תוקפם.
    3. דגירה את הזכוכית כיסוי 0.05 vol% עמינח הפתרון עבור 1 h ב RT.
    4. שטפו את זכוכית הכיסוי במים טהורים חמש פעמים. שמור את הזכוכית המכסה. במים הטהורים
      הערה: השמט את הפסולת למיכל המיועד.
    5. יבש כל פיסת זכוכית כיסוי עם האקדח מפוצץ האוויר.
    6. מניחים את כל זכוכית העטיפה מיובשים על רדיד אלומיניום. אופים את זכוכית הכיסוי על הפלטה החמה ב-80 ° c עבור 5 דקות.
  3. ציפוי הספין CYTOP perfluoropolymer
    1. מניחים את הזכוכית המכסה על צ ' אק ואקום מותאם אישית של מסתובב ספין (איור 1A). הפעל את מתג הוואקום כדי לתקן את מצע הזכוכית.
      הערה: העיצוב של צ'אק ואקום הוא חיוני לציפוי אחיד של פולימר צמיגי על מלבני (24 מ"מ × 32 מ"מ) ו דק (0.13-0.17 mm) המצע (איור 1A). מצאנו כי שלב לדוגמה מלבנית עם חורים מרובים (48 חורים, כל אחד עם קוטר 1 מ"מ) חיבור לערוץ ואקום עבד טוב יותר מאשר השלב העגול עם חור מרכזי אחד עשה.
    2. ירידה 70-90 μL מסוג-פולימר CYTOP במרכז מצע הזכוכית. מיד ספין-מעיל הפולימר (איור 1B).
      הערה: מצב ציפוי ספין (3,400 rpm, 30 s) מספק 3 יקרומטר עובי. השתמשו במיקרופיפטה. שמיועד לנוזל צמיגי להחזיק את המיקרופיפטה זקוף כדי להפוך את הפולימר ליפול קרוב לשלמות מעגל על המצע. בועת אוויר נוצרת לעתים קרובות בתוך הקצה הפיפטה כאשר הבוכנה נעה כלפי מטה. אל תפיל את הטיפה האחרונה של CYTOP עם הבועה.
    3. להרים את הזכוכית מצופה עם האצבעות מחזיק פינות של מצע הזכוכית, ומניחים אותו על רדיד אלומיניום.
    4. חזור על הצעדים 1.3.1-1.3.3 כדי ספין-מעיל את כל החלקים הנותרים של זכוכית המכסה.
    5. אופים את הזכוכית מצופה ב 80 ° c עבור 30 דקות ולאחר מכן ב 200 ° c עבור 1 h.
      הערה: עיבוד זה מרפא באופן מלא את CYTOP והקשר הטוב CYTOP למשטח הזכוכית. מכסים את אזור האפייה עם מכסה עשוי רדיד אלומיניום כדי למנוע אבק פוטנציאלי במהלך תהליך האפייה הארוכה במידת הצורך.
    6. הסר את זכוכית מכסה CYTOP מצופה מפלטת הפלטה וקריר למטה RT. בזהירות להרים כל פיסת זכוכית מצופה ולבדוק את זה כדי לראות אם הוא מצופה כראוי. להיפטר המצע מציג ציפוי הומוגנית.
      הערה: פני השטח של CYTOP מצופה יפה צריך להיראות שטוח ללא הקשת לא סדיר תבניות כמו (איור 1C). בדיקה חזותית מזווית נאותה יכולה לשפוט במהירות את השטצות, כמו גם את איכות הציפוי. הפרוטוקול יכול להיות מושהה כאן.
  4. ציפוי ספין photoresist
    1. מניחים את הזכוכית המכסה CYTOP-מצופה על צ ' אק ואקום (ראה שלב 1.3.1) של מרובע ספין. הפעל את מתג הוואקום כדי לתקן את הזכוכית המכסה.
    2. ירידה 0.2-0.3 מ ל של photoresist במרכז המצע. מיד ספין-מעיל הphotoresist ב 6,000 סל ד עבור 60 s.
      הערה: אל תפיל את הטיפה האחרונה של הphotoresist עם בועות. אם מסתובב ספין תומך מהירות ספין גבוהה יותר, מהירות ספין יכול להיות עד 7,500 סל ד כדי להשיג ציפוי דק יותר. האנרגיה של פני השטח נמוך של CYTOP מונעת את רוב הפוטורסיוסטים מלהיות מדבק לפני השטח שלה. אם AZ P4903 photoresist אינו זמין, AZ P4620 photoresist היא חלופה טובה.
    3. להרים את המצע מצופה עם שתי אצבעות מחזיק פינות של המצע. נגב את עודף photoresist בסמוך לקצה המצע (נקרא לעתים להסרת קצה חרוז או EBR) באמצעות מנגב האתנול-ספוג נקי (איור 1D). מניחים את המצע על רדיד אלומיניום.
      הערה: אצטון אינו מומלץ עבור EBR.
    4. חזור על שלבים 1.4.1-1.4.3 כדי לכסות את הphotoresist עבור החלקים הנותרים של זכוכית כיסוי מצופה CYTOP. לאסוף כל פיסת זכוכית מצופה ולבדוק את זה כדי לראות אם הוא מצופה כראוי.
      הערה: המשטח של photoresist מצופה יפה צריך להיראות שטוח ללא דפוסים חריגים (איור 1D). בדיקה חזותית מזווית נאותה יכולה לשפוט במהירות את השטצות, כמו גם את איכות הציפוי. המצע מציג ציפוי הומוגנית ניתן למחזר באמצעות כביסה עם אצטון, 2-propanol, ו H2O ברצף, ולאחר מכן שימוש חוזר.
    5. אופים את המצע מצופה ב 110 ° c עבור 5 דקות על פלטת הפלטה.
    6. להסיר את המצע מצופה מפלטת הפלטה וקריר עד RT. בואו לעמוד 30 דקות בלחות יחסית של 40%-60% עבור הסבה של הphotoresist.
      הערה: H2O הוא הכרחי עבור התגובה הבאה פוטוכימית. Photoresist אפוי איבד את ה-H2O תוכן בתוך photoresist. תהליך החידוש מאפשר ל-H2O להיקלט מהאוויר. לחות יחסית נמוכה מ-20% או יותר מ-80% אינה מתאימה לתהליך החידוש.
  5. פוטוליתוגרפיה
    1. בזמן ההמתנה של היום (ראה שלב 1.4.6), הפעל את מסכת התנינים. . תחמם את מקור האור טען את הפושאול הכרום.
      הערה: בצע את מדריך ההוראות כדי להפעיל את המסכה מסכה. ניתן לזייף את הפוטובול באמצעות קרן אלקטרונים (EB) אם מתקן EB זמין. לחלופין, הפושאול יכול להיות מיקור חוץ לחברה מקומית.
    2. טען את המצע הרטוב (לאחר סיום שלב 1.4.6) על צ'אק (איור 1E).
    3. הגדר פרמטרים לחשיפה. לחשוף את המצע עבור 25 s עם עוצמת UV של 13 mW/cm2 (h-line) במצב מגע ואקום. ואז לפרוק את המצע ולהגדיר אותו על מתלה זכוכית כיסוי מכתים (אותו ארון המשמש בשלב 1.1.1).
    4. חזור על שלבים 1.5.2-1.5.3 כדי לחשוף את החלקים הנותרים של המצע הרטוב.
  6. פיתוח
    1. לפתח את המצע עבור 5 דקות לפזר את הphotoresist החשופים (איור 1F). במהלכו, לנענע בעדינות את המדף במפתח פעם אחת בנקודת הזמן של 4 דקות.
      הערה: המפתח היה AZ 300 MIF. מפתחים אלקליין חלופיים (למשל, AZ 400 K) חלים בדרך כלל עבור הפיתוח, אך צריך לדרוש אופטימיזציה של תנאי פיתוח (למשל, זמן, טמפרטורה, עצבנות). אין להשתמש בכוסות זכוכית כמכל המפתחים.
    2. שטפו את המצע במים טהורים עשר פעמים. שמור את הזכוכית המכסה. במים הטהורים
      הערה: מחק את המפתח למיכל המיועד.
    3. יבש ביסודיות כל פיסת מצע עם אקדח המכה האוויר.
  7. תחריט מגיב
    1. הניחו את המצע היבש (משלב 1.6.3) בחדר התגובות של מכונת החריטה התגובתית (RIE).
      הערה: על פי שלטון התחזוקה של המתקן, מכונת ה-RIE יכולה להיות תמיד מופעלת או כיבוי בכל פעם. אם המתג היה כבוי, הפעל את המתג בהתאם למדריך.
    2. לאיכול CYTOP photoresist החשופה עם פלזמה O2 (איור 1g).
      הערה: מצב RIE היה כדלקמן. O2 שיעור זרימת גז: 50 sccm; לחץ החדר: 10.0 Pa; כוח RF: 50 W; תצריב זמן: 27 דקות זמן החריטה היה מותאם לחריטה לחלוטין 3 יקרומטר עובי של cytop.
    3. להרים כל פיסת מצע מן התא התגובה באמצעות פינצטה ולמקם אותם על מתלה זכוכית כיסוי מכתים.
      הערה: על פי שלטון התחזוקה של המתקן, תא התגובות עשוי לדרוש תהליך ניקוי הפלזמה קצר O2 (למשל, זמן התחריט: 5 דקות) כדי לשמור על חדר התגובה נקי לאחר כל ריצה.
  8. הסרת photoresist וניקוי
    1. Sonicate את המצע באצטון עבור 5 דקות ב-RT כדי לפזר את הphotoresist הנותרים.
    2. Sonicate את המצע ב 2-propanol עבור 5 דקות ב RT.
    3. שטפו את המצע במים טהורים חמש פעמים. Sonicate המצע עבור 5 דקות ב RT. לשטוף את המדגם באמצעות מים טהורים חמש פעמים נוספות. שמור את המצע במים טהורים.
    4. יבש כל פיסת מצע עם האקדח המכה האוויר (איור 1H).
      הערה: ניתן לאחסן את המצע בצלחת פטרי מפלסטיק. המצע מפוברק יציב מבנית ב RT לפחות שנה אחת. הפרוטוקול יכול להיות מושהה כאן.
    5. אפיון פרופיל פני השטח של המצע המוכן על-ידי סריקת לייזר תלת-ממדית (3D), מיקרוסקופ באור לבן, אינטרפרומטריה (או מטרימטריה לסריקת קוהרנטיות), או סריקת מיקרוסקופ אלקטרוני. השתמש בתוכנה המתאימה כדי למדוד את הקוטר והעומק של המיקרותאי המתקבלים.
      הערה: ניתן לעשות שימוש חוזר במדגם לניסויים אחרים לאחר האפיון בעזרת המיקרוסקופ התלת-ממדי של סריקת לייזר תלת-ממד ומיקרוסקופ בלתי הרסני או אינטרלומטר לאור לבן. הפרוטוקול יכול להיות מושהה כאן.

2. הכנת מיקרואוקסיטן (PDMS)

הערה: אל תלבש כפפות גומי לטיפול ב-PDMS. במקום זאת, לבשו כפפות פוליאתילן (PE).

  1. ביצוע המאסטר של המיקרוערוצים
    1. חותכים את קלטת הסרט Kapton מצופה כפול לתוך a מוגדר (3 מ"מ x 19 מ"מ) מיקרוערוץ צורה באמצעות חותך שולחני.
      הערה: הקלטת Kapton היה No. 7602 #25 (Teraoka Seisakusho), וכתוצאה מכך גובה הערוץ של 135 μm. חותך שולחן העבודה STIKA משתמש תוסף (זמין מאתר האינטרנט של רולנד: https://www.rolanddga.com) של Adobe Illustrator להפעיל את חיתוך בהתאם לציור בקובץ Adobe Illustrator. הפרוטוקול יכול להיות מושהה כאן.
    2. תקע כל קלטת של קאפטון על החלק התחתון השטוח של צלחת פטרי. המנה הסטנדרטית 90 מ"מ בצלחת פטרי יכולה להכיל 12 פיסות מהקלטת.
      הערה: מבנה הסיוע משמש כמאסטר לעיצוב עותק משוכפל של PDMS. לחץ על משטח הקלטת בעדינות עם הטוויצר אם יש בועות אוויר בין הקלטת למצע צלחת פטרי. לחילופין, ליתוגרפיה קלאסית הקלאסי ניתן להחיל כדי להכין את המאסטר על סיליקון וופל38. הפרוטוקול יכול להיות מושהה כאן.
  2. אשפרה את שרף PDMS בתוך הסרט בדוגמת צלחת פטרי
    1. ללבוש כפפות PE חדש, ולהעביר 2.5 g של ריפוי סוכן של SYLGARD 184 אלסטורר סיליקון באמצעות פיפטה פלסטיק חד פעמי לתוך גביע פלסטיק שצוין (איור 2A).
    2. לשנות לתוך כפפות חדשות, ולהעביר 25 גרם של בסיס טרום פולימר של SYLGARD 184 אלסטורר סיליקון באמצעות מזרק חד פעמי 50 mL לתוך גביע פלסטיק מעל.
      הערה: לשנות את הכפפות בזאת כדי למנוע את הזיהום הפוטנציאלי של סוכן הריפוי לבסיס.
    3. השתמש מיקסר deaeration לערבב ומאוורר את התערובת (תוכנית: 3 דקות ערבוב ואחריו 2 דקות deaeration).
      הערה: אם מערבל ההקפאה אינו זמין, התערובת מוטרדת באופן ידני (עבור כ -15 דקות) ניתן לניטרול בתאי ואקום.
    4. יוצקים את התערובת PDMS לתוך צלחת פטרי בדוגמת הסרט (איור 2B). הגדר את צלחת פטרי בחדר ריק מיני ומאוורר את התערובת PDMS עבור 1-3 h (איור 2C).
      הערה: אם האוויר נשאר בתערובת PDMS לאחר 1 h, קח את צלחת פטרי מתוך תא הוואקום, שבור את בועת האוויר באמצעות מפוח אוויר, ולאחר מכן שים את צלחת פטרי חזרה בחדר הריק והמשך בתהליך הדאנטנה.
    5. מניחים את צלחת פטרי בתנור ב 60 ° c ללילה כדי לרפא את PDMS (איור 2D).
      הערה: למרות הגדלת הטמפרטורה יכול לקצר את זמן הריפוי, את הטמפרטורה המקסימלית שניתן לסבול על ידי קלקר צלחת פטרי ללא דפורמציה פיזית היא כ 60 ° c.
  3. יציקת עותק משוכפל של ערוץ PDMS
    1. לקלף את התרופה הנרפאת מכלי פטרי (איור 2E).
    2. חתוך כל פיסת בלוקים של ערוץ PDMS באמצעות חותך כבל שטוח (איור 2F).
    3. הניחו את האלסטואר PDMS במשטח חיתוך הפונה לכיוון הערוץ כלפי מעלה. ניקוב חור בכל קצה של הערוץ באמצעות פונץ ' ביופסיה (איור 2G).
    4. נקה את פני השטח של ערוץ PDMS עם סלוטייפ. לאחר מכן לעטוף את שרף PDMS בחלק אחר של קלטת וויסקי כדי לשמור אותו נקי לפני השימוש. אחסן את ערוץ PDMS המוכן בצלחת פטרי נקיה.
      הערה: ניתן להשהות את הפרוטוקול כאן.

3. הרכבת מערך מיקרותאי מיקרו ליטר

  1. מניחים כמה חתיכות של מנקי מים נקיים לאורך הקיר הפנימי של צלחת פטרי כדי להפוך את החדר לחות מפושטת. מניחים את שרף PDMS מכוסה על ידי קלטת וויסקי בחדר מחולל לחות וחותם את התא באמצעות סרט פרפין. דגירה לפחות 3 שעות אבל לא יותר מיום.
    הערה: PDMS הוא חומר נקבובי המאפשר גז לעבור על פני שרף39. המבנה הנקבובי של PDMS מוביל לספיגת מולקולות מים מהסביבה עד להשגת שיווי משקל. זה טרום טיפול ממלא את הנקבוביות של PDMS עם אדי מים והוא יכול לדכא באופן משמעותי את האידוי של טיפות מימית בסמוך לקצה של ערוץ PDMS.
  2. קח את קלטת הוויסקי. משרף ה-PDMS הצב את ערוץ PDMS באזור המערך המיקרותאי של המצע (איור 2H).
    הערה: שרף PDMS המהווה הפיך הדבקה על פני השטח CYTOP. לחץ על לחסום pdms בעדינות עם פינצטה כדי להסיר בועות אוויר בין שרף pdms לבין המצע אם היה קיים.
  3. הוסף לאחד (כשקע) את קצה הצינורות הבלתי מסונן של 200 μL לאחת (כפורקן) של החורים בערוץ PDMS.
    הערה: עוצמת הדבקה בין PDMS ו-CYTOP מוגבלת. כדי למנוע דפורמציה פיזית של שרף PDMS, כמו גם התנתקות של ערוץ PDMS מעל פני השטח, לא להוסיף את הטיפ של פיפטה עמוק מדי.

4. טעינת פתרון תגובה למכשיר המורכב

  1. שימו דוכן מיקרוצינורית אלומיניום על הקרח. לצנן את שמן הריקון (אסייקלין AE-3000 שמן מעורבב עם 0.1 wt x SURFLON S-386 1.5 הגולש) בתוך מיקרוצינורית מיקרו mL על דוכן האלומיניום.
  2. . שים עוד בלוק אלומיניום על הקרח
  3. הכנת פתרון התגובה של CFPS
    1. הכינו את פתרון התגובה של CFPS בצינור PCR. מערבבים כל מרכיב סדרת מחלקים של ערכת cfps, DNA תבנית מדולל (כפי שהיא להלן על ידי חלבון פלורסנט מנמובגרין40 ו es, מונכיה coli פוספאטאז41) פתרון, ורכיבים אחרים הנחוצים על פי הצרכים הספציפיים (למשל, rnase מעכב, המצע fluorogenic, מלווה).
      הערה: ה-DNA של התבנית המשמשת עבור CFPS חייב להיות מוכן על פי ההוראה של ערכת CFPS המתאים. הפגנה זו החלה מערכת ביטוי מבוססת T742. מכיוון שצריכת האגמיכימית בהתקן הפשידה היא קטנה למדי, 10 μL גדול מספיק כדי למלא את כל הערוץ PDMS.
    2. עבור סינתזה חלבון פלואורסצנטי ירוק, לערבב את הרכיבים בסדר הבא: להוסיף 2.7 μL של nuclease-H חינם2O כדי 6 μL ליטר של פתרון a (מתוך ערכת cfps); להוסיף 0.3 μL של מעכב RNase; להוסיף 1.5 μL של פתרון DNA תבנית מדולל; בקצרה לערבב ולהעביר את התערובת ל-4.5 μl סדרת מחלקים של פתרון B (מתוך ערכת cfps).
      הערה: אמצעי האחסון הכולל הוא 15 μL. כמות כל סדרת מחלקים הוא פרופורציונלי הנפח הכולל של התערובת הסופית, נפח הכולל פחות מ 10 μl עלול לגרום לנפח קטן מדי (< 0.2 μl) של חלק מרכיב סדרת מחלקים.
    3. עבור סינתזה פוספספטאז אלקליין, לערבב את הרכיבים בסדר הבא: להוסיף 1.2 μL של H2O כדי 6 μl של פתרון A; להוסיף 0.3 μL של מעכב RNase; להוסיף 0.6 μl של שיפור אג ח קשר דיסולפידי 1 ו-2 (מתוך ערכה); הוסף 0.3 μL של 5 מ"מ 6, 8-difluoro-4-מתושלח פוספט (הפצת); להוסיף 1.5 μL של פתרון ה-DNA; בקצרה לערבב ולהעביר את התערובת כדי 4.5 μL של פתרון B.
      הערה: בתוך הסדר של פוספספטאז אלקליין, המצע פלואורוגנטי יכול לייצר פלורסנט מאוד 6, 8-difluoro-7-הידרוxy-4-מתילקוארין (מפזרת) על מחשוף אנזימטי של קבוצת פוספט מסוף.
  4. לצייר את 10 μL של התערובת באמצעות קצה הצינורות 200 μL לא מסונן. הכנס את קצה הפיפטה לחור האוויר (עיין בצעד 3.3) של ערוץ PDMS. לחץ על הבוכנה כדי להזריק את הפתרון לערוץ עד שהוא יגלוש מן השקע (שם עוד קצה הצינור כבר הוכנס בשלב 3.3).
  5. הפרידו את הפיפטה מקצה הפיפטה ושמרו על שני הטיפים האלה שעדיין מוכנסים לשקע החשמל.
    הערה: הימנע מיצירת בועות אוויר במהלך הליטוף. אל תשאירו את האגודל מהבוכנה עד שתפריד את הפיפטה מעצת הפיפטה כדי למנוע את הזרמת התמיסה בערוץ PDMS.

5. יצירת מערך droplet של ליטר (שליטה נשית) עבור CFPS

  1. העבר את כל הסט של המכשיר המורכב לבלוק אלומיניום מקורר מראש (ראה שלב 4.2). ודא בזהירות שאזור המערך המיקרו-קאמרית מגיע במהירות משקוף למחצה (איור 2I) לשקוף (איור 2i).
    הערה: פתרון התגובה CFPS לא יכול ליישר לתוך המיקרוצ'יימברס. מסיסות האוויר במים היא ביחס הפוך לטמפרטורה. האוויר לכוד להתמוסס לתוך הפתרון לאחר המכשיר הועבר מ-RT לטמפרטורה נמוכה. שינוי השקיפות הוא מחוון חזותי נוח לשפוט אם הפתרון נכנס למיקרו-תאי.
  2. לצייר 30 μL של שמן מקורר לפני המים (ראה שלב 4.1), ומיד להעביר את השמן לתוך משקע הצינורות מוכנס לתוך הפתח העליון שלה. שמן סומק נע לתוך הערוץ והבלטת הפתרון העודף התגובה הממוקם מחוץ למיקרו-צ'יימברס. . כל מיקרותאי מבודדים בשמן הסומק
    הערה: הממשק הנע בין פתרון הריאקציה לבין שמן הריקון גלוי, המסייע לאנשים להתבונן בתנועת הנוזל בתוך התעלה. ניתן לאסוף את הפתרון המרובד לתוך הצינור הקודם, המאוחסן ב-4 ° c, ולעשות שימוש חוזר עבור התקן משני של המכשיר, או תגובה בצובר מקבילה (במיקרו-צינורית או בלוח מיקרוטיטר).
  3. מראש לצייר 30 μL של איטום שמן (פועבלין Y25) לקצה מסוננים 200 μL. תתלה את הפיפטה. במקום כלשהו
  4. הסירו בו את שני הטיפים המוכנסים (ראו שלבים 3.3 ו-4.4) מהמכשיר. מייד להזיז את המכשיר מבלוק אלומיניום כדי parafilm.
    הערה: השתמש בטוויזר כדי לתקן (אך התרחק מאזור הערוץ) המכשיר בבלוק האלומיניום במהלך הסרת העצות הפיפטה.
  5. מיד הכנס את הקצה המוכן של הפיפטה המכיל את שמן האיטום (ראה שלב 5.3) לתוך מפרץ הערוץ של PDMS, והכנס את השמן לערוץ עד שהוא יגלוש משקע החשמל.
    הערה: בצע את השלב הזה ברגע הזזת המכשיר ל-RT. כדי למנוע את הזרמת הרקע בתוך הערוץ, אל תשאירו את האגודל מהבוכנה עד ששמן האיטום יגלוש מהשקע. שמן פלאש מתאדה מיד לאחר שעבר משקע של הערוץ, בעוד שמן איטום הבאים מצטבר בשקע בשל אובדן אידוי נמוך מאוד שלה.
  6. הפרידו את הפיפטה מקצה הפיפטה ולאחר מכן הסירו את קצה הפיפטה מהמכשיר. נקה את משטח PDMS באמצעות פיסת מגב נקי ולאחר מכן להחיל טיפה חדשה של איטום שמן אל השקע ואת הפורקן, בהתאמה. הטיפות הפטופליטר חתומות במיקרותאי-מיקרו בשמן.
    הערה: השתמש בטוויזר כדי לתקן (אך התרחק מאזור הערוץ) ערוץ PDMS במצע במהלך הסרת הטיפ המיקרופיפטה.
  7. נגב את הלחות המצטברת על המשטח התחתון של הזכוכית המכסה. המכשיר המוכן ביותר מוכן להדמיה והדמיה מיקרוסקופית.

6. הדמיה מיקרוסקופית

  1. תתחילו במיקרוסקופ. הפוך לקרינה פלואורסצנטית המתן לייצוב (קירור) של המצלמה. השתמש בעדשת היעד של השמן 60x או 100x. הגדר את המכשיר לנשים על הבמה המונעת. הגדר את פרמטרי ההדמיה.
    הערה: פרמטרי הדמיה כוללים את נתיב הקובץ, ערוצי הדמיה, מסננים, זמני חשיפה (באופן כללי, 100 ms הוא מספיק; זמן קצר או ארוך יותר ניתן גם בהתאם למפרט של המצלמה), ועוצמת אור.
  2. . מצא את המטוס המוקד להתאים את המיקום של ציר z של העדשה האובייקטיבית ולתקן את המטוס המוקד באמצעות מערכת פוקוס אוטומטי פנימי. הגדר את אזור הריבית (ROI; כלומר, x, ציר y) ליצירת תמונה.
    הערה: יצרני המיקרוסקופ העיקריים (ניקון, אולימפוס, Zeiss, לייקה) כל לספק את האפשרות לשלב את מערכת פוקוס אוטומטי עם המיקרוסקופ. זו מערכת פוקוס אוטומטי הכרחי לשמירה על קבוע מטוס מוקד במהלך הדמיה מרובת השטח האוטומטי. ROIs לכסות את האזור הפרמי בערוץ PDMS.
  3. . לכדו את התמונות הפלואורסצנטית לכידת מסגרת בודדת של תמונת שדה בהיר ממוקדת (BF) עבור כל ROI. אין לשנות את הסדר ואת הקואורדינטות של ROIs בעת הדמיה של ערוצים שונים.

7. ניתוח נתוני תמונה

הערה: לנתח את נתוני התמונה באמצעות תוסף תוצרת בית (המכונה "שליטה נשית") על בסיס פיג'י (http://fiji.sc) כדי לחלץ את עוצמת הקרינה הפלואורסצנטית של כל droplet43. התקן את הגירסה הנכונה של פיג'י בהתאם למערכת ההפעלה. פיג'י תומך ברוב תבניות קובץ התמונה (למשל, קובץ nd2 ממיקרוסקופ ניקון, קובץ czi ממיקרוסקופ Zeiss) באמצעות תוסף לבנות ב-"ביו פורמטים".

  1. התקנת תוסף
    1. העתק והדבק את קובץ ה-plugin (אשר זמין על פי בירור המחבר המתאים או דרך הקישור המוסדי הבא: https://fbox.jamstec.go.jp/public/FcsQwAsMKIqA9j0B2MJwLUMeHGsxp09hAkAFdVhQIDkZ) לתוך התיקייה "תוספים" של פיג'י.
    2. הפעל את תוכנת פיג'י; את התוסף "שליטה נשית" ניתן למצוא בתפריט הנפתח "תוספים" של פיג'י.
  2. עיבוד מקדים של נתוני תמונה
    1. פתח את תמונת BF הממוקדה (ראה שלב 6.3). לחץ על תהליך | הפחת רקע. .. כדי להסיר את הרקע הרציף החלק של כל מסגרת של נתוני התמונה (איור 4B). לחץ על תהליך | מסננים | חציון כדי להקטין את הרעש של כל מסגרת של נתוני התמונה (איור 4c).
    2. לחץ על תמונה | כוונן | הסף כדי לבדוק ולהפריד את הקידמה (המציינת את המיקרותאי) מהרקע (המציין את האזור שמחוץ למיקרו-תאי) של כל מסגרת של נתוני התמונה (הוספות מוגדלות באיור 4א-ג).
      הערה: בחר אלגוריתם מתאים מהרשימה הנפתחת בחלון הסף כך שרק האזורים המיקרוקאמריים, כמו גם הקצוות של כל מיקרוקאמריים, יכולים להיות מזוהים ומסומנים כקידמה. במיוחד, רוב הקצוות המסומנים חייבים להיות רציפים ללא פערים.
  3. קביעת קואורדינטות Droplet
    1. לחץ על תוספים | שליטה נשית | ניתוח לפתיחת ממשק המשתמש הגרפי (GUI) של התוסף המותאם אישית (המחצית העליונה של איור 4d).
    2. הקלט את המספר המינימלי והמקסימלי של פיקסלים של מיקרותא יחיד. קלט את המעגל המינימלי הצפוי והמקסימלי (0: צורה שרירותית; 1: מעגל מושלם) של המיקרוצ'יימברס. הקלט את מספר המסגרת של מסגרת ההתחלה ומסגרת הסיום.
    3. לחץ ליצור ROI על GUI כדי לזהות כל מיקרו-תא, ואת rois זיהה בהצלחה מוצגים בחלוןמוקפץ.
    4. חזור אל החלון ניתוח לאחר שליטה בחלונות ולחץ על הלחצן החל מסכת ROI כדי לבדוק אם המיקרוצ'יימברס מעל המסגרות זוהו כראוי (השמאלי התחתון של איור 4d). אם לא, לשנות חלק מהם וחזרה לחיצה ליצור roi ולהחיל רועי מסכה. אם כן, עבור לשלב הבא.
      הערה: ייתכנו מיקרותאי מיקרו מאוד שלא ניתן לזהותם היטב כהחזר התשואה (ראה את החצי התחתון של איור 4D) על ידי אלגוריתם כלשהו של הסף בשל הניגוד האין מספיק בין הקידמה לרקע. זה לא בעייתי בנקודת המבט הסטטיסטית.
  4. חילוץ בעצימות פלואורסצנטית
    1. פתח את התמונה הפלואורסצנטית. והבא אותו לחזית לחץ על החל מסכת ROI שוב כדי להחיל את rois הנחוש על התמונה הפלואורסצנטית (הימנית התחתונה של איור 4d).
    2. בחרו באחת משתי התמונות לניתוח תמונת נקודת קצה (כפי שניתן לציין בנתונים הקיצורים) או בקפיצה בזמן לניתוח נתוני מסלול הזמן (לדוגמה, עם נתוני פוספספטאז אלקליין).
    3. קלט 100 במספר התיבה של העליון פיקסלים פירושו שרק העליון 100 פיקסלים של כל ROI ישמש כדי לחשב את העוצמה הממוצע של ה-droplet המתאים. אם הקלט 0 במספר הפיקסלים העליונים, כל הפיקסלים של כל ROI ישמשו לחישוב העוצמה הממוצע של ה-droplet המתאים.
      הערה: ייתכן שיהיה הסחף של מספר פיקסלים בין BF לבין תמונות הזריחה, כלומר כמה פיקסלים בתוך ה-ROIs עשויים להשתייך לרקע של התמונה הפלואורסצנטית. מכאן, תוסף מספק אפשרות לציין את מספר הפיקסלים המדורגים בעוצמה מדורגת לחישוב העוצמה הממוצע של כל droplet.
    4. לניתוח של התמונה נקודת קצה (כלומר, בחר אחד-Shot בשלב 7.4.2), לחץ על כפתור למדוד עוצמה כדי לחשב את עוצמות ממוצע של כל טיפות שזוהו. התמונה מתעדכנת עם הנתונים החדשים מהתמונה הפלואורסצנטית. בינתיים, היסטוגרמה מוצגת בהיסטוגרמה חדשה של חלון מוקפץ (איור 4e).
      הערה: שינוי גודל הסל במספר סל התיבה יכול למטב את תצוגת ההיסטוגרמה. ניתן להשיג התאמה לסכום של הפצות גאוסיאנית בממשק הGUI המפותח. חלון היומן המוקפץ של פיג'י מציג את תוצאות ההתאמה. לחילופין, לייצא את הנתונים על ידי לחיצה על לחצן שמור כטקסט ולבצע ניתוחים סטטיסטיים שונים עם תוכנות אחרות (איור 4F, G).
    5. לניתוח של תמונת הזמן-קורס (כלומר, לבחור את הזמן פקיעה בשלב 7.4.2), החלון המוקפץ הוא חוזק קורס הזמן במקום היסטוגרמה, אשר מכיל היסטוגרמה המתאימה לנקודת זמן מסוימת ומזימה בעלת עוצמת זמן (איור 5). ניתן גם לייצא את הנתונים הטקסטואליים באמצעות תפריט הקובץ של החלון המוקפץ.

הגישה מוגבלת. התחברו או התחילו תקופת ניסיון כדי לצפות בתוכן זה.

תוצאות

תהליך המיקרוייצור כולל ניקוי מצע, פונקציונליזציה לפני השטח, ציפוי CYTOP, פוטוגרפיה, תחריט יבש, photoresist להתפשט וניקוי סופי. חשוב מכך, הפרוטוקול המוצג איפשר הסרה מלאה של פולימר CYTOP הידרופובי בתוך המיקרוצ'יימברס איור 3A), הפקת מבנה מקביל במיוחד הידרופיפילית-בהידרופובי על מצע זכוכית כיסוי סטנדרטי. בעזרת פרוטוקול איטום השמן, המימד האחיד של הטיפות המתקבל אומת על ידי פתרון פלורסנט encapsulating במיקרוצ'יימברס (איור 3 ב'). עוצמת הקרינה הפלואורסצנטית שחולצו באמצעות...

הגישה מוגבלת. התחברו או התחילו תקופת ניסיון כדי לצפות בתוכן זה.

דיון

המדידה הכמותית ביותר המבוססת על הטיפות האחידה, היציבות והביו-מתאימות באמצעות החלוקה הדיסקרטית, מאפשרת את ההפצה הנפרדת, התכונה הייחודית של המחקר שלנו שונה מאחרים. באופן שיטתי אופטימיזציה והפרטים את תהליכי היווצרות המיקרוייצור ו-droplet בנייר זה. קיימים מספר שלבים קריטיים בפרוטוקול המבוסס.

ראשית, ציפוי אחיד של פולימר CYTOP מאוד פולימרי על מצע זכוכית מלבני דק במידה רבה קובע את האיכות של המצע שנוצר. בהינתן מרחק עבודה קצר בדרך כלל העדשה האובייקטיבית עם הגדלה גבוהה (ראה שלב 6.1), את הזכוכית לכסות דק...

הגישה מוגבלת. התחברו או התחילו תקופת ניסיון כדי לצפות בתוכן זה.

גילויים

. למחברים אין מה לגלות

תודות

עבודה זו נתמכת על ידי JSPS KAKENHI גרנט מספר JP18K14260 ואת התקציב של הסוכנות היפנית עבור מדעי הארץ ימית וטכנולוגיה. אנו מודים לשייגרו דגוצ'י (JAMSTEC) ו Tetsuro Ikuta (JAMSTEC) למתן מתקני אפיון. אנו מודים לקן Takai (JAMSTEC) עבור תמיכה בתוכנה מסחרית. המיקרו-הייצור נערך ב-"טקדה", האוניברסיטה של טוקיו, הנתמכת על-ידי "תוכנית הטכנולוגיה הטכנולוגית" של משרד החינוך, התרבות, הספורט, המדע והטכנולוגיה (MEXT), יפן, גרנט מספר JPMXP09F19UT0087.

הגישה מוגבלת. התחברו או התחילו תקופת ניסיון כדי לצפות בתוכן זה.

חומרים

רשימת החומרים שנעשה בהם שימוש במאמר זה
שםחברהמספר קטלוגהערות
(3-אמינופרופיל) טריאתוקסילאןסיגמא-אולדריץ'440140
1 מ"ל מזרקTerumoSS-01T
2-פרופנולקאנטו כימיEL כיתהEL: לשימוש אלקטרוני.
מיקרוסקופ קונפוקלי לסריקת לייזר תלת מימדיתLasertecOPTELICS HYBRIDמיקרוסקופים דומים אחרים (למשל, Keyence VK-X1000, Olympus LEXT OLS5000) ישימים גם הם.
מזרק 50 מ"לTerumoSS-50LZ
6,8-difluoro-4-methylumbelliferyl phosphateThermo Fisher ScientificD6567הכן תמיסת מלאי של 5 מ"מ בדימתיל סולפוקסיד
אצטוןקאנטו כימיEL כיתהEL: לשימוש אלקטרוני.
טוהר 99.8%.
מפוח אווירHozanZ-263
בלוק אלומיניוםBIO-BIKAB-24M-02
מעמד מיקרו-צינורות אלומיניוםBIO-BIKAB-136C
ASAHIKLIN AE-3000AGC(מדגם בדיקה)מדגם בדיקה חינם עשוי להיות זמין לאחר פנייה ל-AGC.
מגב BEMCOT PS-2Ozu028208
אגרוף ביופסיה עם בוכנהKaiBPP-10F
כיסוי זכוכיתמטסונאמיזכוכית מס' 1 (24 מ"מ ופעמים; 32 מ"מ, עובי 0.13 ~ 0.17 מ"מ)מותאם אישית לגודל.
כיסוי מתלה מכתים מזכוכיתNakayama803-131-11
CRECIA TechnoWipe מגב נקיNippon Paper CreciaC100-M
מחצלת חיתוךGE HealthcareWB100020
CYTOPAGCCTL-816AP
מיקסר הסרת אוורורThinkyAR-100
חותך שולחנירולנדSTIKA SV-8
מפתחAZ Electronic MaterialsAZ 300 MIFAZ Electronic Materials נרכשה כעת על ידי Merck.
מפתחים אלקליין אחרים עשויים להיות ישימים גם הם אך צריכים לדרוש אופטימיזציה של תנאי הפיתוח (זמן, טמפרטורה וכו')
סרט סרט קפטון דבק בציפוי כפולTeraoka Seisakusho7602 #25
אתנולקאנטו כימיEL כיתהEL: לשימוש אלקטרוני.
טוהר 99.5%.
פיג'י: ImageJ 1.51n
חותך כבלים שטוחיםTokyo-IDEALMT-0100
שמן פומבליןSolvayY25, או Y25/6מדגם בדיקה חינם עשוי להיות זמין לאחר פנייה ל-Solvay. פומבלין Y25/6 הוא חלופה אם Y25 אינו זמין.
פלטה חמהכמחטאחת TH-900
TerumoNN-2270C22G ופעמים; נדרשים
מיקרוסקופ פלואורסצנטי הפוך70Eclipse Ti-Eמפרט אפיפלואורסצנטי, מצלמת CCD או sCMOS, שלב ממונע, מערכת פוקוס אוטומטי ועדשת אובייקטיבית NA גבוהה.
סינרגיהשל KaleidaGraph4.5
מיישר מסכהSUSSMA-6יישור מסכות אחרות ישימות גם כל עוד מצב מגע הוואקום זמין.
MICROMAN pipetteGILSONE M250Eקצה בוכנה נימי: CP250
Microsoft Excelמיקרוסופט: 16.16.15
תא ואקוםמיני כאחדMVP-100MV
מים ללא נוקלאזNIPPON GENE316-90101
ParafilmAmcorPM-996
PCR צינורNIPPON Geneticsצלחת פטרי FG-021D/SP
כאחדGD90-15קוטר 90 מ"מ, גובה 15 מ"מ.
PhotoresistAZ Electronic MaterialsAZ P4903AZ Electronic Materials נרכשה כעת על ידי Merck. AZ P4620 היא אלטרנטיבה.
קורא צלחותBioTekPOWERSCAN HT
כפפות פוליאתלןAS ONE6-896-02שם מסחרי: סנימנט.
ערכת סינתזת חלבון במבחנה PURExpress NewEngland BiolabsE6800S או E6800Lלתגובת סינתזת חלבון ללא תאים.
מערכת תחריט יונים ריאקטיבייםSamcoRIE-10NRמערכות RIE אחרות ישימות גם הן אך צריכות לדרוש אופטימיזציה של תנאי RIE (קצב זרימת גז, לחץ תא, הספק RF, זמן תחריט וכו ')
מעכב RNaseNew England BiolabsM0314S
סקוטש טייפ3M810-1-18D
תמיסת נתרן הידרוקסידFUJIFILM Wako Pure Chemical194-09575ריכוז 8 M; סכנה.
ציפוי ספיןOshiganeSC-308
SURFLON S-386 פעילי שטחAGC(מדגם בדיקה)מדגם בדיקה חינם עשוי להיות זמין לאחר פנייה ל-AGC.
SYLGARD 184 אלסטומר סיליקוןDowSylgard184הרכב כימי: פולידימתילסילוקסן. יחס הערבוב המוגדר כברירת מחדל הוא בסיס: חומר ריפוי = 10: 1 (m/m).
פינצטהIdeal-tek2WF. SA.1
2A
שואב אולטרסאונדכאחדASU-2M
צ'אק ואקוםOshigane(מותאם אישית)חומר: delrin; שלב מדגם מלבני עם מספר חורים (48 חורים, כל אחד בקוטר 1 מ"מ); הגודל מותאם אישית כך שיתאים לגודל זכוכית הכיסוי (24 מ"מ ופעמים; 32 מ"מ).
גרסת הזרקה מ"מ Nikon גרסת : גרסת

מקורות

  1. Chiu, D. T., Lorenz, R. M., Jeffries, G. D. M. Droplets for ultrasmall-volume analysis. Analytical Chemistry. 81 (13), 5111-5118 (2009).
  2. Squires, T. M., Quake, S. R. Microfluidics: fluid physics at the nanoliter scale. Reviews of Modern Physics. 77 (3), 977-1026 (2005).
  3. Guo, M. T., Rotem, A., Heyman, J. A., Weitz, D. A. Droplet microfluidics for high-throughput biological assays. Lab on a Chip. 12 (12), 2146-2155 (2012).
  4. Zhu, P. A., Wang, L. Q. Passive and active droplet generation with microfluidics: a review. Lab on a Chip. 17 (1), 34-75 (2017).
  5. Griffiths, A. D., Tawfik, D. S. Miniaturising the laboratory in emulsion droplets. Trends in Biotechnology. 24 (9), 395-402 (2006).
  6. Tran, T. M., Lan, F., Thompson, C. S., Abate, A. R. From tubes to drops: droplet-based microfluidics for ultrahigh-throughput biology. Journal of Physics D: Applied Physics. 46 (11), 114004(2013).
  7. Zhang, Y., Jiang, X. Microfluidic tools for DNA analysis. DNA Nanotechnology. Fan, C. , Springer. Heidelberg. 113-153 (2013).
  8. Dubuc, E., et al. Cell-free microcompartmentalised transcription-translation for the prototyping of synthetic communication networks. Current Opinion in Biotechnology. 58, 72-80 (2019).
  9. Damiati, S., Mhanna, R., Kodzius, R., Ehmoser, E. K. Cell-free approaches in synthetic biology utilizing microfluidics. Genes. 9 (3), (2018).
  10. Lee, K. H., Kim, D. M. Applications of cell-free protein synthesis in synthetic biology: Interfacing bio-machinery with synthetic environments. Biotechnology Journal. 8 (11), 1292-1300 (2013).
  11. Supramaniam, P., Ces, O., Salehi-Reyhani, A. Microfluidics for artificial life: techniques for bottom-up synthetic biology. Micromachines. 10 (5), (2019).
  12. Bowman, E. K., Alper, H. S. Microdroplet-assisted screening of biomolecule production for metabolic engineering applications. Trends in Biotechnology. , (2019).
  13. Zhang, Y., et al. Accurate high-throughput screening based on digital protein synthesis in a massively parallel femtoliter droplet array. Science Advances. 5 (8), 8185(2019).
  14. Silverman, A. D., Karim, A. S., Jewett, M. C. Cell-free gene expression: an expanded repertoire of applications. Nature Reviews Genetics. , (2019).
  15. Sakane, Y., Suzuki, Y., Kasagi, N. The development of a high-performance perfluorinated polymer electret and its application to micro power generation. Journal of Micromechanics and Microengineering. 18 (10), 104011(2008).
  16. Sakakihara, S., Araki, S., Iino, R., Noji, H. A single-molecule enzymatic assay in a directly accessible femtoliter droplet array. Lab on a Chip. 10 (24), 3355-3362 (2010).
  17. Watanabe, R., et al. Arrayed lipid bilayer chambers allow single-molecule analysis of membrane transporter activity. Nature Communications. 5, 4519(2014).
  18. Chiu, C., Lisicka-Skrzek, E., Tait, R. N., Berini, P. Fabrication of surface plasmon waveguides and devices in Cytop with integrated microfluidic channels. Journal of Vacuum Science & Technology B. 28 (4), 729-735 (2010).
  19. Krupin, O., Asiri, H., Wang, C., Tait, R. N., Berini, P. Biosensing using straight long-range surface plasmon waveguides. Optics Express. 21 (1), 698-709 (2013).
  20. Hanada, Y., Ogawa, T., Koike, K., Sugioka, K. Making the invisible visible: a microfluidic chip using a low refractive index polymer. Lab on a Chip. 16 (13), 2481-2486 (2016).
  21. Berry, S., Kedzierski, J., Abedian, B. Low voltage electrowetting using thin fluoroploymer films. Journal of Colloid and Interface Science. 303 (2), 517-524 (2006).
  22. Lin, Y. Y., et al. Low voltage electrowetting-on-dielectric platform using multi-layer insulators. Sensors and Actuators B-Chemical. 150 (1), 465-470 (2010).
  23. Kimura, H., Yamamoto, T., Sakai, H., Sakai, Y., Fujii, T. An integrated microfluidic system for long-term perfusion culture and on-line monitoring of intestinal tissue models. Lab on a Chip. 8 (5), 741-746 (2008).
  24. Yang, T. J., Choo, J., Stavrakis, S., de Mello, A. Fluoropolymer-coated PDMS microfluidic devices for application in organic synthesis. Chemistry-a European Journal. 24 (46), 12078-12083 (2018).
  25. de Gennes, P. G. Wetting: statics and dynamics. Reviews of Modern Physics. 57 (3), 827-863 (1985).
  26. Holtze, C., et al. Biocompatible surfactants for water-in-fluorocarbon emulsions. Lab on a Chip. 8 (10), 1632-1639 (2008).
  27. Wagner, O., et al. Biocompatible fluorinated polyglycerols for droplet microfluidics as an alternative to PEG-based copolymer surfactants. Lab on a Chip. 16 (1), 65-69 (2016).
  28. Mashaghi, S., Abbaspourrad, A., Weitz, D. A., van Oijen, A. M. Droplet microfluidics: a tool for biology, chemistry and nanotechnology. TrAC Trends in Analytical Chemistry. 82, 118-125 (2016).
  29. Mazutis, L., et al. Droplet-based microfluidic systems for high-throughput single DNA molecule isothermal amplification and analysis. Analytical Chemistry. 81 (12), 4813-4821 (2009).
  30. Galinis, R., et al. DNA nanoparticles for improved protein synthesis in vitro. Angewandte Chemie-International Edition. 55 (9), 3120-3123 (2016).
  31. Zhang, Y., Noji, H. Digital bioassays: theory, applications, and perspectives. Analytical Chemistry. 89 (1), 92-101 (2017).
  32. Mazutis, L., et al. Single-cell analysis and sorting using droplet-based microfluidics. Nature Protocols. 8 (5), 870-891 (2013).
  33. Courtois, F., et al. An integrated device for monitoring time-dependent in vitro expression from single genes in picolitre droplets. ChemBioChem. 9 (3), 439-446 (2008).
  34. Baret, J. C. Surfactants in droplet-based microfluidics. Lab on a Chip. 12 (3), 422-433 (2012).
  35. Agresti, J. J., et al. Ultrahigh-throughput screening in drop-based microfluidics for directed evolution. Proceedings of the National Academy of Sciences of the United States of America. 107 (9), 4004-4009 (2010).
  36. Fallah-Araghi, A., Baret, J. C., Ryckelynck, M., Griffiths, A. D. A completely in vitro ultrahigh-throughput droplet-based microfluidic screening system for protein engineering and directed evolution. Lab on a Chip. 12 (5), 882-891 (2012).
  37. Duncombe, T. A., Dittrich, P. S. Droplet barcoding: tracking mobile micro-reactors for high-throughput biology. Current Opinion in Biotechnology. 60, 205-212 (2019).
  38. Qin, D., Xia, Y. N., Whitesides, G. M. Soft lithography for micro- and nanoscale patterning. Nature Protocols. 5 (3), 491-502 (2010).
  39. Mukhopadhyay, R. When PDMS isn't the best. Analytical Chemistry. 79 (9), 3248-3253 (2007).
  40. Shaner, N. C., et al. A bright monomeric green fluorescent protein derived from Branchiostoma lanceolatum. Nature Methods. 10 (5), 407-409 (2013).
  41. Bradshaw, R. A., et al. Amino acid sequence of Escherichia coli alkaline phosphatase. Proceedings of the National Academy of Sciences of the United States of America. 78 (6), 3473-3477 (1981).
  42. Shimizu, Y., et al. Cell-free translation reconstituted with purified components. Nature Biotechnology. 19 (8), 751-755 (2001).
  43. Schindelin, J., et al. Fiji: an open-source platform for biological-image analysis. Nature Methods. 9 (7), 676-682 (2012).
  44. Mantilla, C. B., Prakash, Y. S., Sieck, G. C. Volume measurements in confocal microscopy. Techniques in Confocal Microscopy. Conn, P. M. , Academic Press. Oxford, UK. 143-162 (2010).
  45. Noji, H. Single-molecule counting of biomolecules with femtoliter dropret chamber array. The 17th International Conference on Solid-State Sensors, Actuators and Microsystems (TRANSDUCERS & EUROSENSORS XXVII. , 630-632 (2013).
  46. Zhang, Y., et al. Matrix-localization for fast analysis of arrayed microfluidic immunoassays. Analytical Methods. 4 (10), 3466-3470 (2012).
  47. Zhang, Y., et al. Two dimensional barcode-inspired automatic analysis for arrayed microfluidic immunoassays. Biomicrofluidics. 7 (3), 034110(2013).
  48. Gonzalez, R. C., Woods, R. E. Digital image processing. , Pearson. New York, NY. (2018).
  49. Cohen, L., Walt, D. R. Single-molecule arrays for protein and nucleic acid analysis. Annual Review of Analytical Chemistry. 10 (1), 345-363 (2017).

הגישה מוגבלת. התחברו או התחילו תקופת ניסיון כדי לצפות בתוכן זה.

הדפסות חוזרות והרשאות

תגיות

מערך מערכת Droplet ליטר ליצירת חלבון מקבילי בנפט ממולקולות דנ א יחיד
צור קשר
המלצה לספרייה

פרטיות

תנאי שימוש

מדיניות

2026 © זכויות יוצרים MyJoVE Corporation. כל הזכויות שמורות.