הרשמה ל-JoVE נדרשת לצפייה בתוכן זה. התחברו או התחילו בגרסת ניסיון בחינם.

מאמר שיטה

Retroviral ביטוי יתר של CXCR4 על מורנה ב-1a תאים והעברה המאמצת עבור B-1a תא הגירה במח העצם ו IgM הפקה

4.9K צפיות

⸱

DOI:

10.3791/61003

⸱

31 במאי 2020

 ,  ,  ,  , 
1Department of Microbiology, Immunology, Cancer Biology, University of Virginia, 2Cardiovascular Research Center, University of Virginia, 3Beirne B. Carter Center for Immunology Research, University of Virginia

במאמר זה

סיכום

כאן אנו מתארים שיטה של הבעה overexpression והעברה המאמצת של תאים מורנין ב-1a כדי לבחון ב vivo B-1a תא הגירה ולוקליזציה. פרוטוקול זה ניתן להארכה עבור שונים הזרם התפקודי של המטה אומר כולל כימות של לוקליזציה של התורם B-1a או ניתוח של הגורמים הנגזרים לתא התורם הנגזר לאחר העברה המאמצת.

תקציר

כאשר פונקציית התא מושפעת מגורמים ספציפיים לנישה בסביבת מיקרו-הסביבה הסלולרית, שיטות לנתח את הלוקליזציה של תאים והגירה יכולות לספק תובנה נוספת בנוגע לתפקוד התא. התאים b-1a הם קבוצת משנה ייחודית של תא B בעכברים לייצר נוגדנים IgM טבעי המגן נגד האפיסקופים ספציפיים חמצון הנובעים במהלך בריאות ומחלות. B-1a הייצור של תא IgM משתנה בהתאם למיקום התא B-1a, ולכן הוא הופך להיות שימושי מבחינה טיפולית כדי למקד את B-1a לוקליזציה לתמיכה נישות של ייצור נוגדנים גבוהה. כאן אנו מתארים שיטה למקד את ה-B-1a תא הגירה מח העצם על ידי retroviral-ביטוי overexpression של C-X-C מוטיב קולטן כימוקין 4 (CXCR4). האינדוקציה ג'ין בתאי murine הראשי B יכול להיות מאתגר ובדרך כלל לתשואות יעילות החצייה נמוכה של 10-20% בהתאם לטכניקה. כאן אנו מדגימים כי התמרה ויראלי של התאים הראשוניים B-1a התוצאות 30-40% יעילות התמרה. שיטה זו מנצלת העברת תאים המאמצת של תאים B-1a לתוך עכבר לקוי של הנמען תא כדי להפוך את העברת התאים של התורם B-1a ולוקליזציה ניתן לדמיין. פרוטוקול זה יכול להיות שונה עבור מבנים retroviral יעיל אחרים ניתן להשתמש בתוך מגוון פונקציונלי שלאחר העברה המאמצת, כולל ניתוח של תא התורם או המחשב המארח של תאים ותפקוד, או ניתוח של גורמים מסיסים מופרש post B-1a העברת תאים. השימוש של תורמים ועכברים הנמען ברורים הבדיל על-ידי CD 45.1 ו-CD 45.2 allotype ואת הנוכחות של עיתונאי GFP בתוך הפלסטלינה הretroviral יעיל אמצע יכול גם לאפשר זיהוי של תאים תורמים אחרים, החיסונית מספיק מודלים של העכבר המכיל את אוכלוסיית התאים האנדוגניים B.

מבוא

מחקרים שנעשו לאחרונה הפגינו תא החיסון ניכר, ובמיוחד B תא, פנוטיic ו טרוגניות פונקציונלי בהתאם לוקליזציה של התא1,2,3,4,5. B-1a תאים הם אחד כזה אוכלוסיה עם יכולת הטרוגנית לייצר נוגדנים IgM מגן; מח עצם B-1a תאים להפריש באופן קונסטיטוטיבי ולתרום בצורה משמעותית את מגדל פלזמה מטרים6, בעוד בתאי הצפק B-1a יש ברמה נמוכה igm הפרשה ב הומאוסטזיס ובמקום זאת ניתן להפעיל דרך קולטן מולדים שיחת כמו (tlr) או cytokine בתיווך איתות כדי להתרבות במהירות, להעביר, ו להפריש igm7,8,9,10. B-1a בתאי IgM לזהות אפיסקופים ספציפיים לחמצון (OSE) הנמצאים על פתוגנים, תאים אפוטוטיים, ו-LDL תחמוצת, ו-IgM קשירה כדי OSE יכול למנוע דלקת במורד הזרם מחלות כמו טרשת עורקים11. לכן, אסטרטגיות כדי להגדיל את ייצור IgM באמצעות הגדלת הצפק B-1a תא הגירה לאתרים כמו מח העצם עשוי להיות שימושי מבחינה רפואית. עם זאת, חשוב עבור אסטרטגיות כאלה כדי להיות ממוקד ותא סוג ספציפי, כמו תופעות מחוץ ליעד עלול להשפיע באופן שלילי על תפקוד המערכת החיסונית או בריאות.

כאן אנו מתארים שיטה ממוקדת לטווח ארוך הביטוי של CXCR4 ב-murine הראשי B-1a תאים העברה המאמצת הבאים כדי להמחיש את הגירה התא וליצור נוגדנים IgM פונקציונלי (איור 1). מניפולציה גנטית של תאי B ראשי מוגבל על ידי יעילות הזיהום נמוך לעומת העברה של קווי תאים שהפכו שינוי. עם זאת, כאשר קווי תאים שעברו שינוי יכולים לסטות באופן משמעותי מתאים ראשוניים12,13, השימוש בתאים ראשיים עשוי לספק תוצאות הדוקות יותר לפיזיולוגיה נורמלית. טכניקות מספר תוארו עבור העברת גנים בתאי murine הראשי, כולל התמרה ויראלית, התמרה ויראלית, ליפוגן, או אלקטרופורציה המבוססת על מעבר, אשר יש רמות שונות של יעילות, ארעיות, והשפעה על בריאות התא13,14,15. השיטה הבאה מנוצל התמרה ויראלי כפי שהוא הניב יעילות העברת גנים נאותה של > 30% בעוד מינימלית להשפיע על הכדאיות התא. וירוס CXCR4-הביע הופק באמצעות המבנה הקודם שתוארו כretroviral יעיל לבנות תא גזע מורטין הנגיף-פנימי הזנה ריבוזומאתר-חלבון פלורסנט ירוק (MSCV-IRES-GFP; MigR1)16, שבו העכבר CXCR4 הגן היה משוכפל משנה4. MigR1 (בקרה (Ctl)-gfp) ו-CXCR4-gfp החלקיקים נוצרו באמצעות הזיהום סידן פוספט כפי שמתואר פרוטוקולים שפורסמו בעבר4,14.

לאחר מכן הותמרה בהצלחה בתאים B-1a והועברו באופן מידי אל לימפוציטים Rag1-/- עכברים. גם עכברים התורם וגם הנמען הכילו נוקאאוט של הגנים אפוליפופרוטאין E (apoe), אשר תוצאות הצטברות OSE מוגברת טרשת עורקים, ובכך לספק מודל עבור vivo B-1 תא הפעלה ו igm הייצור. יתר על כן, עכברים תורמים ונמענים שונים ב-CD45 allotype; התאים התורמים B-1 הגיעו מתקליטור 45.1 + ApoE-/- עכברים והועברו לתוך Rag1- Cd 45.2 + apoe-/- הנמענים. זה מותר הבידול של 45.1 CD התורם מתקליטור הנמען 45.2 B תאים שלאחר ההעברה ללא צורך להכתים בנוסף עבור סמנים תא B במהלך הניתוח cy, try הזרימה. התוצאות המסופקות כאן להדגים כי ממוקדות CXCR4 overexpression על B-1a תאים מקורביו עם יכולת מוגברת של תאים B-1a לעבור את מח העצם, אשר מקורביו עם פלזמה מוגברת anti-OSE IgM. אנו מספקים בנוסף שיטה להעשרת התאים הפריפריאלית ב -1 באמצעות בחירה שלילית ולהדגים את הדרישה של הפעלת תא B-1 לצורך התמרה יעילה. שיטה זו יכולה להיות מותאמת עבור מבנים retroviral יעיל אחרים כדי ללמוד את ההשפעה של ביטוי יתר חלבון על B-1a תא הגירה, פנוטיפ, או פונקציה. יתר על כן, השימוש CD 45.1 לעומת הבחנה CD 45.2 allotype יכול תיאורטית לאפשר העברה לתוך דגמי murine אחרים מספיק החיסונית המכילים תאים אנדוגניים B.

הגישה מוגבלת. התחברו או התחילו תקופת ניסיון כדי לצפות בתוכן זה.

פרוטוקול

כל פרוטוקולי החיות אושרו על ידי הוועדה לטיפול בבעלי חיים והשתמש באוניברסיטת וירג.

1. הפרדה מגנטית והעשרה של תאים בעלי 1 הצפק

  1. המתת חסד 12-14-שבוע בן, זכר, CD 45.1+apoe-/- עכבר באמצעות CO2.
  2. לעשות חתך שטחי בבטן באמצעות מספריים כירורגי ישר לקלף את העור האחורי באמצעות מספריים מעוקל לחשוף את הקיר הצפק. החלל הצפק סומק עם 10 מ ל של 37 ° c RPMI-1640 בינונית באמצעות מזרק 10 מ"ל ו 25 גרם מחט. לנער את העכבר כדי לנתק את התאים על ידי אוחז את הזנב והזזת העכבר לצד בצד ביסודיות עבור 15 לאחד.
    הערה: עיסוי צפק לבנה יכול גם למקסם את שחזור התא.
  3. לאסוף נוזל הצפק באמצעות מזרק 10 מ ל 25 גרם מחט על ידי ציור למעלה נוזל בצד הימני התחתון של צפק ממש מעל רמת הירך, ליד המעיים. הימנע משיבוש מחסני שומן ואיברים המשמשים כבסיס. להימנע מציור נוזל מהצד השמאלי של העכבר כמו שומן מאונטל יכול בקלות להיגרר לתוך המזרק.
  4. פעם אחת ~ 6-7 mL של נוזל נאסף, מוותר על צינור 50 mL ממוקם על קרח. הבא, העלה את העכבר אנכית על ידי החזקת הקיר הצפק מעל הסרעפת באמצעות מלקחיים כך כל נוזל שנותר נשאר בתחתית חלל הצפק. לעשות חתך קטן בקיר הצפק באמצעות מספריים כירורגי מעל הכבד (לוודא שלא לחתוך את הכבד) ולאסוף את כל נוזל הצפק הנותרים באמצעות זכוכית pipet ו הנורה.
  5. בריכת כשלון הצפק תאים מכל התקליטורים 45.1+apoe-/- עכברים (n = 15-20 למעלה) לצינורות חרוטי 50 mL, ולאחסן על הקרח.
    הערה: לחישוב מספר העכברים הדרושים: התאים ב-1a מהווים 5-10% מכלל אוכלוסיית הצפק הכוללת ומפיקות בערך 2.5-5 x 10-B- 1a תאים לכל עכבר בידי מחברים. התמרה של יעילות היא ~ 30 לערך 40%, כפי שמוצג להלן.
  6. לספור תאים חיים באמצעות צבע הכדאיות כגון טרילקון כחול ו-הומוציטומטר (לדלל דגימות 1:5 בטריקון כחול ולטעון 10 μL לתוך החדר הומוציטוטומטר). תאי בריכה במרחק של עד 1 x 108 תאים לכל צינור. בתאי צנטריפוגה ב 400 x g עבור 5 דקות ב 4 ° c, ולאחר מכן לאחר מכן לאכול supernatant.
  7. להשעות עד 1 x 108 תאים 1 מ ל של ANTI-CD16/CD32הנוגדן (טבלה של חומרים) מדולל 1:50 במאגר מאגר (1x פוספט באגירה מלוחים [PBS], 0.5% בסרום פרה אלבומין [bsa], 2 מ"מ edta) על מנת לחסום קולטני Fc. קנה מידה לפי הצורך לפי ספירת תאים. דגירה על הקרח 10 דקות ב 4 ° c.
  8. הכינו שילוב מאסטר של 2x של הנוגדנים הביוטילביים (טבלה 1) במאגר ה, עבור דלדול הפחת. 2x מיקס בסיס חשבונות לנפח של הנוזל התאים כבר בזמן הדגירה עם anti-CD16/CD32. לדוגמה, אם התאים מודתים ב-500 μL של מדולל anti-CD16/CD32, ולאחר מכן להוסיף 500 μL של שילוב מאסטר 2x המכיל 10 μL של biotinylated Ter119, Gr-1, CD23, ולאחר מכן 1.1, ו 25 μL של biotinylated Table 1F4/80 נוגדנים כדי להשיג את הוסף תמהיל בסיס של 2x לתאים והכתם עבור 20 דקות ב-4 ° c.
  9. לשטוף את התאים עם 5 מ ל של מאגר השיטת וצנטריפוגה ב 400 x g עבור 5 דקות ב 4 ° c ו-supernatant.
  10. השהה מחדש את התאים האנטי-ביוטין (טבלת חומרים) מדולל במאגר הזמן לפי הריכוז והפרוטוקול המומלצים על ידי היצרן.
  11. לשטוף עם 5 מ ל של מאגר שיטת וצנטריפוגה ב 400 x g עבור 5 דקות ב 4 ° c. לאחר מכן השעיית מחדש עד 1 x 108 תאים ב 500 μl של שיטת האגירה.
  12. ראשי עמודות בחירה מגנטית (טבלת חומרים) עם 3 מ ל של מאגר השיטת. העבר תאים על עמודות בחירה מגנטי ולאסוף את המושלג המכיל מועשר B-1 תאים בצינור 15 מ ל חרוט על קרח. שטוף את עמודת הבחירה המגנטית עם מאגר שינויים נוסף עד שנפח האחסון הכולל שנאסף הוא 10 mL.
    הערה: סדרת מחלקים של שברים מטוהרים מראש ושלאחר מטוהרים צריך להיות מנותח בנפרד על-ידי cy, לנסות לייעל את יעילות הטיהור על ידי צביעת עבור CD19 + B תאים, F480 + מקרופאגים, ו CD5 + T תאים כפי שמוצג באיור 2.
  13. לספור את השבר התא לאחר מטוהרים (the מכיל מועשר B-1 תאים) על ידי ספירת תאים חיים כמו בשלב 1.6, והשעיית מחדש ב-1 x 106 תאים/mL בתוך התרבות B תא בינונית (RPMI-1640, 10% מופעל חום סרום העוברי העובר [fbs], 10 מ"מ hepes, 1x חומצות אמינו לא חיוניות, 1 mM נתרן פירובט, 50 μg/mL gentamicin, 55 μm β-mercaptoethanol).

2. גירוי תא פריפריאלי 1

  1. פצל תאים במאגר עבור שני מצבי התמרה (Ctl-GFP ו-CXCR4-GFP), תוך הגדרה הצידה וציפוי לפחות 10 x 106 תאים עבור שליטה ללא התמרה.
  2. צלחת עד 150 μL (150,000 תאים) לתוך 96-היטב לוחיות הקצה התחתון.
  3. הוסף 100 ננומטר TLR9 אגוניסט ODN1668 לכל הבארות כדי לעורר את התפשטות התא.
  4. מודט עבור 16/18 h ב 37 ° צ', 5% CO2.

3. התמרה ויראלית של תאי הצפק B

  1. צור Ctl-GFP (MigR1) ו-CXCR4-GFP חלקיקים ויראלי באמצעות התרגום סידן פוספט כמתואר בפרוטוקולים שפורסמו בעבר14.
    הערה: זה ייקח מספר ימים, כדי להכין מניות retroviral יעיל ולאחסן את המניות ב-80 ° צ' לפני תחילת פרוטוקול זה.
  2. . להפשיר רטרו וירוס על קרח השתמש מיד ולא להקפיא מחדש כמו סיכוייו וירוס מפחיתה באופן משמעותי במהלך הקפאת ההפשרה מחזורים. הוספת Ctl-GFP או CXCR4-GFP retroviral יעיל ב-20:1 ריבוי של זיהום (מוי) לתאים, בנוכחות של 8 μg/mL polybrene טריים β-mercaptoethanol ב 55 μM ריכוז סופי. אל תוסיף מניות ויראליות לתאים שנקבעו בצד לפקד שאינו מיועד לתאי התמרה.
  3. לבצע זיהום על ידי תפרידו צלחות ב 800 x g עבור 90 דקות בטמפרטורת החדר.
  4. לוחיות הדגירה עם רטרו וירוס ב 37 ° צ', 5% CO2 עבור תוספת 3 h.
  5. הקציר ואת התאים הreplate בינונית תא B טרי ו-דגירה ב 37 ° c, 5% CO2 לילה.

4. תא מיון של תאים בצפק בנפח B-1a

  1. הבציר תאים מתורבתים ובריכה לתוך שלושה נפרדים 50 mL שפופרות חרוט עבור כל תנאי: לא מתתמרים, Ctl-GFP התמרה, ו-CXCR4-GFP.
  2. לספור תאים חיים כמו בשלב 1.6, אז צנטריפוגה ב 400 x g עבור 5 דקות ב 4 ° c ו-supernatant.
  3. השהה מחדש תאים ב 100,000 תאים/μL במאגר מיון (PBS + 1% BSA) המכיל 1:50 anti-CD16/CD32 נוגדן (טבלת חומרים) כדי לחסום קולטני Fc. דגירה על הקרח 10 דקות ב 4 ° c.
  4. להתאים את התאים עבור פקדי פיצוי (~ 30,000 תאים לכל בקרת פיצוי): עבור בלתי מוכתם ושליטה אחת כתם בודד ממדגם ללא התמרה ועבור GFP יחיד בקרת הכתם מדגימות התמרה.
    הערה: לחלופין, ניתן להשתמש בחרוזי פיצוי מסחריים זמינים עבור פקדי כתמים בודדים אם מספר תא שאינו מקבל התמרה נמוך.
  5. הכינו שילוב מאסטר של נוגדן 2x המכיל את הנוגדנים הצופפור בתוך מאגר מיון (שולחן 1). הוסף מיקס תבנית בסיס של 2x ללא התמרה, CTL-GFP, ו-CXCR4-GFP דגימות. הוסיפו נוגדנים בודדים. לפקדי כתם אחד דגירה של 20 דקות ב 4 ° c בחשיכה.
    הערה: הראשי 2x מיקס חשבונות עבור נפח של נוזל התאים כבר כאשר מודגדירוג עם anti-CD16/CD32, כמו בשלב 1.8. מרחק של תאים מכל תנאי יכול בנפרד להיות מוכתם עבור CXCR4 כדי לאשר CXCR4 ביטוי יתר.
  6. לשטוף דגימות עם 1 מ ל של מאגר מיון ולזן דרך מסנני 70 יקרומטר לתוך צינורות פוליפרופילן.
  7. צנטריפוגה ב 400 x g עבור 5 דקות ב 4 ° c ו-לאכול על ידי הסופר. השהה דגימות מחדש ב-50,000 תאים/μL במאגר מיון.
  8. לפני מיון התא להכין מיון המופעל על ידי קרינה פלואורסצנטית (FACS) אוסף צינורות המכילים 1 מ ל של אוסף בינוני (RPMI-1640, 20% חום-מופעל FBS, 10 מ"מ HEPES, 1x חומצות אמינו לא חיוניות, 1 mM נתרן פירובט, 50 μg/mL gentamicin, 55 μM β-mercaptoethanol) עבור כל אוכלוסייה להיות מיון.
  9. לפני הפעלת דגימות בסדרן התא להוסיף 2x DAPI (מוכן 1:5000 דילול במאגר מיון) עבור אפליה תא מת.
  10. מיון GFP + B-1a תאים לתוך צינורות FACS המכילים בינונית אוסף כמו DAPI- CD19+ gfp+ B220mid-lo CD23- IGM+ CD5+ תאים מתוך הדגימות CTL-gfp ו-CXCR4-gfp. השתמש במדגם שאינו התמרה כדי להגדיר את השער GFP + כדי למיין DAPI- CD19+ gfp- B220mid-lo CD23- igm+ CD5+ לא התמרה-B-1a תאים.
    הערה: לחלופין, ניתן למיין תאים שאינם מתתמרים גם מדגימות CTL-GFP ו-CXCR4-GFP על-ידי בנפרד בתאי B-1a בתוך השבר GFP. התמרה או אי-התמרה תאים B-1b יכול להיות גם ממוין באמצעות אסטרטגיה זו מיון כמו DAPI- CD19+ gfp +/- B220mid-lo CD23- igm+ CD5 תאים.

5. העברה מאמצת

  1. לאחר מיון התא, בתאי צנטריפוגה ב 400 x g עבור 5 דקות ב 4 ° צ' ומכה את supernatant בזהירות.
  2. השהה תאים מחדש בקור סטרילי 1x PBS ב 1,000 תאים/μL.
  3. לRag1 זכר-/- apoe- עכברים באמצעות isof, ולהזריק 100 μl (100,000 תאים) לכל עכבר באמצעות ורידי רטרו מסלולית או הזרקת הזנב באמצעות מזרק משובח במיוחד אינסולין. הכנס כמה עכברים באמצעות ה-PBS 1x כפקד.

6. קוונפיקציה של תאים תורמים ו פלזמה IgM

  1. בזמן הרצוי לאחר העברה המאמצת, לנתח תאים שהועברו בעכברים הנמען על ידי מח עצם והקציר רקמת הטחול4 ו cy, להזרים. מכמת לוקליזציה תא תורם ו CXCR4 overexpression יטוי על ידי כתמים עבור תקליטור 45.1, תקליטור 45.2, ו CXCR4 ולנתח את התוצאות של cy try באמצעות תוכנה כגון Flowjo.
    הערה: עיין בטבלה 1 עבור נוגדנים הנמצאים בשימוש בשלב זה. ודא שלא להשתמש המשלים נוגדן כי זוהר בערוץ fitc כמו gfp יהיה נוכח בתאי תורם התמרה.
  2. בידוד פלזמה על ידי הוספת 10 μL של 0.5 M EDTA כדי דם שלם שנאסף באמצעות ניקוב לב בזמן הקרבת בעלי חיים. צנטריפוגה דם שלם ב 7,000 x g ו סדרת מחלקים פלזמה לתוך שונים 1.5 mL צנטריפוגה צינורות. חנות at-80 ° צ' עד ביצוע ניתוח של גורמים המופרשים כגון IgM על ידי אליסה4.

הגישה מוגבלת. התחברו או התחילו תקופת ניסיון כדי לצפות בתוכן זה.

תוצאות

מבט כולל על הפרוטוקול מוענק באיור 1. איור 2 מציג העשרת תאים בעלי הצפק B-1a לאחר דלדול מגנטי של סוגים אחרים של תאי הצפק. לחיות סינגתן תאים בשבר פוסט-דלדול יש שיעור גדול יותר שלCD19 + B תאים לעומת F4/80 מקרופאגים, חסרים CD5hi CD19- T תאים, ולהכיל תדירות מוגברת של CD19+ CD5באמצע B-1a תאים לעומת השבר טרום מחסור. איור 3 מציג את הדרישה של הפעלת תא b עבור התמרה מוצלחת של תאים b ויראלי,...

הגישה מוגבלת. התחברו או התחילו תקופת ניסיון כדי לצפות בתוכן זה.

דיון

השיטה המסופקת כאן מאפשרת יציבה ויעילה באופן יחסי B-1a משלוח גנטי התא, בהעברה המאמצת vivo, זיהוי ולוקליזציה של תאים מוזרק. תאים זוהו 17 שבועות העברה לאחר התאים ונשמר ביטוי CXCR4 גדל. וירוס בתיווך המסירה הניבה 30-40% יעילות התמרה של הראשונית murine B-1a תאים עם השפעה מינימלית על הכדאיות התא בידינו (איור 4e). זה בקנה אחד עם תוצאות ממחקר קודם על ידי Moghimi ועמיתים אשר בהשוואה טכניקות עבור גנים להעביר לתאי murine הראשי כולל זיהום רטרונגיפי, זיהום ויראלי, נוקלאופלוט, או lipofectamine

הגישה מוגבלת. התחברו או התחילו תקופת ניסיון כדי לצפות בתוכן זה.

גילויים

. למחברים אין מה לגלות

תודות

עבודה זו נתמכת על ידי 1R01 HL107490, 1R01 HL136098, פרויקט 3 של P01 HL055798, P01 HL136275-01 (C.A. מקנמרה), ו R01GM100776 (ט בנדר). A. Upadhye נתמך על ידי איגוד הלב האמריקני האגודה טרום דוקטורט 16PRE30300002 ו 5T32AI007496-20. אנו מודים לג'ואן לאנניגן, מייק סולגה, וקלוד ללעוס מאוניברסיטת וירג פלו ליבת הליבה על הסיוע הטכני המעולה שלהם.

הגישה מוגבלת. התחברו או התחילו תקופת ניסיון כדי לצפות בתוכן זה.

חומרים

רשימת החומרים שנעשה בהם שימוש במאמר זה
שםחברהמספר קטלוגהערות
מכסי סינון 70 מיקרוןFalcon352235
מיקרו-חרוזים אנטי-ביוטיןMiltenyi Biotec130-090-485
anti-CD16/CD32, או Fc blockLife TechnologiesMFCR00
B220 APCeBioscience17-0452-83שיבוט: RA3-6B2
בטא-מרקפטואתנולGibco21985-023
CD19 APCef780eBioscience47-0193-82שיבוט: eBio1D3
CD23 ביוטיןeBioscience13-0232-81שיבוט: B3B4
CD23 PECy7eBioscience25-0232-82שיבוט: B3B4
CD3e ביוטיןeBioscience13-0033-85שיבוט: eBio500A2
CD45.1 ApoE-/- עכבריםN/AN/Aשגודלו בבית
CD45.1 PerCP-Cy5.5BD Biosciences560580שיבוט: A20
CD45.2 BV421BD Biosciences562895שיבוט: 104
CD45.2 Rag1-/- ApoE-/- עכבריםN/AN/Aשגדלו בבית
CD5 PEeBioscience12-0051-83שיבוט: 53-7.3
Ctl-GFP רטרו-וירוסN/AN/Aנוצר בבית באמצעות פלסמיד רטרו-ויראלי המבטא GFP MigR1 שסופק על ידי ד"ר T.P. Bender
CXCR4 APCeBioscience17-9991-82שיבוט: 2B11
CXCR4-GFP רטרו-וירוסN/AN/A נוצר בבית על ידי שיבוט עכבר CXCR4 לתוך MigR1 רטרו-ויראלי פלסמיד
F4/80 ביוטיןLife TechnologiesMF48015שיבוט: BM8
Flowjo Software v. 9.9.6Treestar Inc.נדרש
GentamicinGibco15710-064
Gr-1 ביוטיןeBioscience13-5931-82שיבוט: RB6-8C5
סרום בקר עוברי מומת בחוםGibco16000-044
HEPESGibco15630-080
IgM PECF594BD Biosciences562565שיבוט: R6-60.2
מזרקי אינסוליןBD Biosciences329461
איזופלורןהנרי שיין בריאות בעלי חיים029405
טכנולוגיות חייםצהובים חיים / מתיםL34968
עמודותLS Miltenyi Biotec130-042-401
NK1.1 ביוטיןBD Biosciences553163שיבוט: PK136
חומצות אמינו לא חיוניותGibco11140-050
ODN 1668InvivoGentlrl-1668
PBSGibco14190-144
RPMI-1640Gibco11875-093
נתרן פירובטGibco11360-070
Ter119 ביוטיןeBioscience13-5921-82שיבוט: Ter119
רישיון

מקורות

  1. Baumgarth, N. B-1 Cell Heterogeneity and the Regulation of Natural and Antigen-Induced IgM Production. Frontiers in Immunology. 7, 324(2016).
  2. Holodick, N. E., Vizconde, T., Rothstein, T. L. B-1a cell diversity: nontemplated addition in B-1a cell Ig is determined by progenitor population and developmental location. Journal of Immunology. 192 (5), 2432-2441 (2014).
  3. Prohaska, T. A., et al. Massively Parallel Sequencing of Peritoneal and Splenic B Cell Repertoires Highlights Unique Properties of B-1 Cell Antibodies. Journal of Immunology. 200 (5), 1702-1717 (2018).
  4. Upadhye, A., et al. Diversification and CXCR4-Dependent Establishment of the Bone Marrow B-1a Cell Pool Governs Atheroprotective IgM Production Linked to Human Coronary Atherosclerosis. Circulation Research. 125 (10), 55-70 (2019).
  5. Yang, Y., et al. Distinct mechanisms define murine B cell lineage immunoglobulin heavy chain (IgH) repertoires. Elife. 4, 09083(2015).
  6. Choi, Y. S., Dieter, J. A., Rothaeusler, K., Luo, Z., Baumgarth, N. B-1 cells in the bone marrow are a significant source of natural IgM. European Journal of immunology. 42 (1), 120-129 (2012).
  7. Holodick, N. E., Tumang, J. R., Rothstein, T. L. Immunoglobulin secretion by B1 cells: Differential intensity and IRF4-dependence of spontaneous IgM secretion by peritoneal and splenic B1 cells. European Journal of Immunology. 40 (11), 3007-3016 (2010).
  8. Moon, H., Lee, J. G., Shin, S. H., Kim, T. J. LPS-induced migration of peritoneal B-1 cells is associated with upregulation of CXCR4 and increased migratory sensitivity to CXCL12. Journal of Korean Medical Science. 27 (1), 27-35 (2012).
  9. Wang, H., et al. Expression of plasma cell alloantigen 1 defines layered development of B-1a B-cell subsets with distinct innate-like functions. Proceedings of the National Academy of Sciences of the United States of America. 109 (49), 20077-20082 (2012).
  10. Yang, Y., Tung, J. W., Ghosn, E. E., Herzenberg, L. A., Herzenberg, L. A. Division and differentiation of natural antibody-producing cells in mouse spleen. Proceedings of the National Academy of Sciences of the United States of America. 104 (11), 4542-4546 (2007).
  11. Tsiantoulas, D., Gruber, S., Binder, C. J. B-1 cell immunoglobulin directed against oxidation-specific epitopes. Frontiers in Immunology. 3, 415(2012).
  12. Kaur, G., Dufour, J. M. Cell lines: Valuable tools or useless artifacts. Spermatogenesis. 2 (1), 1-5 (2012).
  13. McMahon, S. B., Norvell, A., Levine, K. J., Monroe, J. G. Transient transfection of murine B lymphocyte blasts as a method for examining gene regulation in primary B cells. Journal of Immunological Methods. 179 (2), 251-259 (1995).
  14. Lin, K. I., Calame, K. Introduction of genes into primary murine splenic B cells using retrovirus vectors. Methods in Molecular Biology. 271, 139-148 (2004).
  15. Moghimi, B., Zolotukhin, I., Sack, B. K., Herzog, R. W., Cao, O. High Efficiency Ex Vivo Gene Transfer to Primary Murine B Cells Using Plasmid or Viral Vectors. Journal of Genetic Syndromes and Gene Therapy. 2 (103), 1000103(2011).
  16. DeKoter, R. P., Lee, H. J., Singh, H. PU.1 regulates expression of the interleukin-7 receptor in lymphoid progenitors. Immunity. 16 (2), 297-309 (2002).
  17. Holodick, N. E., Vizconde, T., Hopkins, T. J., Rothstein, T. L. Age-Related Decline in Natural IgM Function: Diversification and Selection of the B-1a Cell Pool with Age. The Journal of Immunology. 196 (10), 4348-4357 (2016).
  18. Laurie, K. L., et al. Cell-specific and efficient expression in mouse and human B cells by a novel hybrid immunoglobulin promoter in a lentiviral vector. Gene Therapy. 14 (23), 1623-1631 (2007).
  19. Warncke, M., et al. Efficient in vitro transduction of naive murine B cells with lentiviral vectors. Biochemical and Biophysical Research Communications. 318 (3), 673-679 (2004).
  20. Moon, B. G., Takaki, S., Miyake, K., Takatsu, K. The role of IL-5 for mature B-1 cells in homeostatic proliferation, cell survival, and Ig production. Journal of Immunology. 172 (10), 6020-6029 (2004).
  21. Takatsu, K., Kouro, T., Nagai, Y. Interleukin 5 in the link between the innate and acquired immune response. Advances in Immunology. 101, 191-236 (2009).
  22. Baumgarth, N. The double life of a B-1 cell: self-reactivity selects for protective effector functions. Nature Reviews Immunology. 11 (1), 34-46 (2011).

הגישה מוגבלת. התחברו או התחילו תקופת ניסיון כדי לצפות בתוכן זה.

הדפסות חוזרות והרשאות

גלה מאמרים נוספים

ביטוי CXCR4העברה מאומצת של תאיםלוקליזציה במוח העצםאיסוף נוזל פריטונאלימיון תאים מגנטיסטימולציה של אגוניסט TLR9זיהוי אלוטייפ של CD45
Retroviral ביטוי יתר של CXCR4 על מורנה ב-1a תאים והעברה המאמצת עבור B-1a תא הגירה במח העצם ו IgM הפקה
צרו קשר
המליצו לספרייה

פרטיות

תנאי שימוש

מדיניות

זכויות יוצרים © 2026 MyJoVE Corporation. כל הזכויות שמורות.