מאמר שיטה

רכישת נתוני הדמיית תהודה מגנטית תפקודית של מצב מנוחה בחולדה

DOI:

10.3791/62596

⸱

28 באוגוסט 2021

 ,  ,  ,  ,  , 
1Dartmouth-Hitchcock Medical Center, 2Geisel School of Medicine at Dartmouth, 3National Institute on Drug Abuse, National Institutes of Health, 4University of Guelph

* These authors contributed equally

במאמר זה

סיכום

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

פרוטוקול זה מתאר שיטה לקבלת נתוני הדמיית תהודה מגנטית תפקודית יציבה של מצב מנוחה (rs-fMRI) מעכברוש המשתמש באיזופלוראן במינון נמוך בשילוב עם dexmedetomidine במינון נמוך.

תקציר

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

הדמיית תהודה מגנטית תפקודית של מצב מנוחה (rs-fMRI) הפכה לשיטה פופולרית יותר ויותר לחקר תפקוד המוח במצב מנוחה ולא משימה. פרוטוקול זה מתאר שיטת הישרדות פרה-אקלינית לקבלת נתוני rs-fMRI. שילוב איזופלוראן במינון נמוך עם עירוי מתמשך של אגוניסט אגוניסט קולטן adrenergic α2 dexmedetomidine מספק אפשרות חזקה לרכישת נתונים יציבה ואיכותית תוך שמירה על תפקוד רשת המוח. יתר על כן, הליך זה מאפשר נשימה ספונטנית ופיזיולוגיה כמעט נורמלית בחולדה. רצפי הדמיה נוספים יכולים להיות משולבים עם רכישת מצב מנוחה יצירת פרוטוקולים ניסיוניים עם יציבות הרדמה של עד 5 שעות בשיטה זו. פרוטוקול זה מתאר את ההתקנה של ציוד, ניטור של פיזיולוגיה חולדה במהלך ארבעה שלבים נפרדים של הרדמה, רכישת סריקות מצב מנוחה, הערכת איכות של נתונים, שחזור של החיה, ודיון קצר של ניתוח נתונים לאחר עיבוד. פרוטוקול זה יכול לשמש על פני מגוון רחב של מודלים מכרסמים פרה-קליניים כדי לעזור לחשוף את השינויים ברשת המוח המתקבלים המתרחשים במנוחה.

מבוא

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

הדמיית תהודה מגנטית תפקודית של מצב מנוחה (rs-fMRI) היא מדד לאות תלוי רמת החמצן בדם (BOLD) כאשר המוח נמצא במנוחה ואינו עוסק בשום משימה מסוימת. אותות אלה יכולים לשמש למדידת מתאם בין אזורי המוח כדי לקבוע את הקישוריות התפקודית בתוך רשתות עצביות. rs-fMRI נמצא בשימוש נרחב במחקרים קליניים בשל אי פולשניותו וכמות המאמץ הנמוכה הנדרשת מחולים (בהשוואה ל- fMRI מבוסס משימה) מה שהופך אותו לאופטימלי עבור אוכלוסיות חולים מגוונות1.

ההתקדמות הטכנולוגית אפשרה rs-fMRI להיות מותאם לשימוש במודלים מכרסמים כדי לחשוף מנגנונים שבבסיס מצבי המחלה (ראה התייחסות2 לבדיקה). מודלים פרה-קליניים של בעלי חיים, כולל מודלים של מחלות או נוקאאוט, מאפשרים מגוון רחב של מניפולציות ניסיוניות שאינן ישימות בבני אדם, ומחקרים יכולים גם לעשות שימוש בדגימות שלאחר המוות כדי לשפר עוד יותר את הניסויים2. עם זאת, בשל הקושי הן להגביל את התנועה והן להקל על הלחץ, רכישת MRI במכרסמים מבוצעת באופן מסורתי תחת הרדמה. חומרי הרדמה, בהתאם לפרמקוקינטיקה שלהם, פרמקודינמיקה, ויעדים מולקולריים, להשפיע על זרימת הדם במוח, חילוף החומרים במוח, ועלול להשפיע על מסלולי צימוד נוירווסקולרי.

היו מאמצים רבים לפתח פרוטוקולים הרדמה המשמרים צימוד נוירווסקולרי ותפקוד רשת המוח3,4,5,6,7,8. דיווחנו בעבר משטר הרדמה שהפעיל מינון נמוך של איזופלוראן יחד עם מינון נמוך של α2 אגוניסט קולטן adrenergic dexmedetomidine9. חולדות בשיטה זו של הרדמה הציגו תגובות BOLD חזקות לגירוי שפם באזורים התואמים את מסלולי ההקרנה הוקמה (גרעינים תלמיים גחוניים וגחוניים, קליפת המוח הסומטו-סנסורית העיקרית והמשנית); רשתות מוח במצב מנוחה בקנה מידה גדול, כולל רשת מצב ברירת המחדל10,11 ורשת salience12 זוהו גם הם בעקביות. יתר על כן, פרוטוקול הרדמה זה מאפשר הדמיה חוזרת על אותה חיה, אשר חשוב לניטור התקדמות המחלה ואת ההשפעה של מניפולציות ניסיוניות לאורך.

במחקר הנוכחי אנו מפרטים את ההתקנה הניסיונית, הכנת בעלי החיים והליכי הניטור הפיזיולוגי המעורבים. בפרט, אנו מתארים את השלבים ההרדמה הספציפיים ורכישת סריקות במהלך כל שלב. איכות הנתונים מוערכת לאחר כל סריקה של מצב מנוחה. סיכום קצר של ניתוח לאחר הסריקה נכלל גם הוא בדיון. מעבדות המעוניינות לחשוף את הפוטנציאל של שימוש rs-fMRI בחולדות ימצאו פרוטוקול זה שימושי.

הגישה מוגבלת. התחברו או התחילו תקופת ניסיון כדי לצפות בתוכן זה.

פרוטוקול

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

כל הניסויים בוצעו בסורק MRI 9.4 T, ואושרו על ידי הוועדה המוסדית לטיפול בבעלי חיים ושימוש במכללת דארטמות'. אישור נוסף הושג כדי להקליט ולהציג את בעלי החיים המשמשים בסרטון ובדמויות להלן.

1. הכנות לפני הסריקה

  1. קו עירוי תת עורי
    1. הסר חלקית מחט 23 G מהחבילה שלה, כך נקודת המחט נשאר סטרילי.
    2. החזק בבטחה את רכזת המחט והשתמש בסכין גילוח כדי להבקיע את פיר המחט שבו הוא פוגש את הרכזת.
    3. מהדק מחזיק מחט סביב הפיר ישירות מתחת לניקוד ולשבור בעדינות את הפיר מהרכזת.
    4. הכנס 1/3 של פיר המחט (קצה קהה) לתוך קו PE50 מעוקר בעבר עם אורך קו מספיק כדי להרחיב ממשאבת הסמים לחיה בתוך המגנט משעמם.
  2. דילול של דקסמדטומידין ואטיפמזול
    1. הכן פתרון של הידרוכלוריד dexmedetomidine מדולל באמצעות 0.5 מ"ל של 0.5 מ"ג / מ"ל מלאי מעורבב עם 9.5 מ"ל של תמיסת מלח סטרילית בבקבוק זכוכית ברור, סטרילי (ריכוז מדולל = 0.025 מ"ג / מ"ל).
    2. הכן פתרון של atipamezole מדולל באמצעות 0.1 מ"ל של 5 מ"ג / מ"ל מלאי מעורבב עם 9.9 מ"ל של מלוחים סטריליים בבקבוק זכוכית ברור, סטרילי (ריכוז מדולל = 0.05 מ"ג / מ"ל).
  3. פרמטרי סריקה
    1. השתמש בפרמטרים המוצגים בטבלה 1 כדי להכין רצפי סריקה.

2. הרדמה שלב 1: אינדוקציה והכנה של בעלי חיים

  1. ההתקנה
    1. ודאו שכל הציוד פועל ופועל כראוי, כולל מערבל החמצן והאוויר, כרית החימום ומערכת ניקוי אקטיבית (ראו איור 1).
    2. הגדר את נקודת סט הטמפרטורה של מערכת החימום ל 37 °C (5 °F).
  2. אינדוקציה של בעלי חיים
    1. מניחים את החיה (חולדת ספראג דולי זכר בת 90 יום) בתא האינדוקציה ומעוררים הרדמה עם 2.5% איזופלוראן ב-30% אוויר מועשר בחמצן.
      הערה: ניתן להשתמש במגוון רחב של גילאים של בעלי חיים ושני המינים.
    2. לאחר החיה הוא מרדים, להסיר אותו מהתא, לשקול את החיה, ומניחים אותו חרוט האף (ב 2.5% איזופלוראן) על כרית החימום בחלל ההכנה.
  3. הכנת בעלי חיים
    1. יש למרוח משחת סיכה עיניים על כל עין כדי למנוע ייבוש.
    2. אשר את עומק ההרדמה על ידי חוסר תגובה צביטת בוהן.
    3. השתמש בקוצץ כדי לגלח שטח מרובע בגודל 2 אינץ' על 2 אינץ' על החלק התחתון של גב החיה (כלומר, ישירות מעל הזנב).
    4. לנהל 0.015 מ"ג/ק"ג של תמיסה dexmedetomidine עם הזרקה intraperitoneal (i.p.) (למשל, חולדה 300 גרם יקבל 0.18 מ"ל) לתוך הרביע הימני התחתון של הבטן באמצעות מחט 25 G.
    5. החלף את זרימת האיזופלוראן מחלל ההכנה לעריסת בעלי החיים.
    6. תזיז את החיה לעריסת החיות. מניחים את השיניים הקדמיות של החולדה בבטחה מעל לתוך מוט הנשיכה. לדחוף את חרוט האף מעל האף כדי להבטיח התאמה הדוקה.
      הערה: אם חרוט האף אינו מכסה את הלסת התחתונה, השתמש בסרט פרפין כדי להחזיק בעדינות את הלסת סגורה תוך איטום סביב חרוט האף.
    7. מקמו את משטח הנשימה מתחת לבטן החולדה מתחת לכלוב הצלעות ומיקמו אותו מחדש עד שצורת גל הנשימה מראה שוקת עמוקה שבמרכזה כל נשימה (ראו צורת גל נשימה באיור 2).
    8. נטר את נשימת החיה באמצעות תוכנת ניטור פיזיולוגיה. לעבור לשלב הבא של הרדמה כאשר הנשימה היא פחות מ 40 נשימות / דקה (bpm; כ 5 דקות לאחר הזרקת dexmedetomidine).

3. שלב 2 הרדמה: הגדרת בעלי חיים

  1. הכנס מוטות אוזניים לתוך תעלת האוזן כדי לייצב את ראשו של החולדה בעריסת החיה. לאחר מיקום, למשוך קדימה על מוט הנשיכה ולאשר את הראש לא זז. כווננו מחדש את קונוס האף ואת סרט הפרפין לפי הצורך (ראו איור 3a).
  2. הכנס את בדיקת הטמפרטורה לכיסוי בדיקה חד פעמי משומן מראש. מכניסים בעדינות את בדיקת הטמפרטורה כ-1/2 אינץ' לפי הטבעת, ומדביקים אותה לבסיס הזנב עם סרט רפואי.
  3. מניחים את קליפ האוקסימטר הדופק על אזור metatarsal של כף הרגל האחורית, להבטיח את מקור האור הוא על החלק התחתון של כף הרגל (כף היד).
    הערה: סיבוב של הקליפ יכול להשפיע על האות; לכן, יצירת מחזיק כדי לשמור על כף רגל קליפ זקוף יוביל ליציבות רבה יותר. כמו כן, שים לב כי עד החולדה היא בטמפרטורת גוף נורמלית, רוויית החמצן עשויה להיות נמוכה (<95%).
  4. השתמש במשקל של החולדה כדי לחשב את קצב עירוי כדי להוציא 0.015 מ"ג / קילוגרם / שעה של dexmedetomidine (חולדה 300 גרם מקבל 0.18 מ"ל / שעה).
  5. הגדר את משאבת התרופה כדי להוציא את שיעור עירוי מחושב.
  6. מלא מזרק 3 מ"ל עם פתרון dexmedetomidine סטרילי, מדולל ולהכניס את קצה המחט לתוך הקצה הפתוח של קו עירוי מעוקר (המשתרע ממשאבת הסמים לעריסת החיה עם המחט התת עורית שחוברה בעבר). מלא את הקו ואבטח את המזרק במחזיק המזרק של משאבת הסמים.
  7. הזז את בלוק דוחף קדימה עד שהוא נוגע הבוכנה, ואת התרופה מסולקת על המחט, להבטיח את קו עירוי הוא מלא לחלוטין.
  8. באמצעות מגבון אלכוהול, לנקות את האזור המגולח כדי להסיר כל שיער תועה.
  9. צבוט את העור כשתי אצבעות רוחב מעל בסיס הזנב. הכנס 1/3 של מחט קו עירוי לתוך העור אוהל.
  10. אבטחו את המחט לעור עם פיסת סרט רפואי רחבה של 3". הניחו חתיכה שנייה של סרט רפואי רחב מעל הראשון, על פני החולדה, ומחוברים לשני צידי עריסת החיות (ראו איור 4).
    הערה: חשוב מאוד שהמחט הפרומגנטית מאובטחת היטב כדי למנוע תנועה במהלך הסריקה.
  11. התחל עירוי של dexmedetomidine תת עורי.
  12. מניחים חתיכת גזה על גשר האף של החולדה כדי ליצור משטח רמה ל סליל. השתמשו בסרט נייר, שאינו מפריע לאות ה-MRI, כדי לאבטח את סליל לראש החולדה, ולרכז אותו מעל המוח (ראו איור 3b, c).
  13. אבטחו את כל הקווים והכבלים בתוך עריסת החיות עם סרט מעבדה ובדקו אם כל אותות הפיזיולוגיה יציבים (ראו איור 2).
  14. מניחים מגבות נייר מעל החיה, מאבטחים אותם לעריסת החיות עם סרט מעבדה. אם משתמשים במערכת חימום אוויר, עוטפים יריעת פלסטיק סביב העריסה כולה כדי להכיל את האוויר החם.
  15. תזיזו את החיה לתוך השעמום ותכוונו את המגנט.

4. הרדמה שלב 3: רכישת סריקה אנטומית

  1. להפחית איזופלוראן ל 1.5%, וכתוצאה מכך עלייה מתמדת בנשימה כ 45-50 bpm. הישאר ברמה זו למשך הסריקה האנטומית.
  2. השתמש בסריקת לוקליזציה של FLASH כדי להבטיח שהמוח מיושר עם איזו-מרכז המגנט(איור 5a). מקם מחדש את החיה וחוזר על הפעולה במידת הצורך.
  3. הפעל את סריקת התזרים הנדיר ברזולוציה גבוהה יותר והשתמש בפלט הסריקה הזה כדי ליישר 15 פרוסות קשת ממורכזות במוח (משמאל לימין, איור 5b).
  4. בעזרת פרוסת הקשת האמצעית, יישרו את הפרוסה צירית מרכזית לפירוק של הקומיסור החלקירי, המופיע כנקודה כהה(איור 5c). שים לב להיסט הפרוסה לשימוש מאוחר יותר בסריקות מצב המנוחה.
  5. רכוש 23 פרוסות באמצעות הפרוטוקולים ציריים FLASH ו- RARE כדי לסייע ברישום למרחב משותף במהלך ניתוח שלאחר הסריקה.
  6. שיים על פני כל המוח באמצעות רצף PRESS.

5. שלב 4: רכישת סריקת מצב מנוחה

  1. לאחר השלמת סריקות אנטומיות, להפחית איזופלוראן ל 0.5% עד 0.75%, התאמה כך הנשימה של החיה היא 60-65 נשימות לדקה. הישאר ברמה זו לפחות 10 דקות לפני תחילת סריקת מצב המנוחה כדי להבטיח יציבות.
  2. כאשר הפיזיולוגיה יציבה (טווח הנשימה הוא 60-75 bpm ללא התנשפות או אי סדרים, טמפרטורת גוף הליבה היא 37.5 ± 1.0 מעלות צלזיוס, ורוויה חמצן היא 95% ומעלה), לרכוש 15 פרוסות EPI סריקה באמצעות אותו פרוסה היסט כמו סדרת ציר אנטומית.
  3. לאחר השלמת כל סריקת מצב מנוחה, בדוק את האיכות באמצעות ניתוח רכיבים עצמאי (ICA) כדי לפרק את הנתונים לרכיבים מרחביים וטמפורליים.
  4. השג לפחות שלוש סריקות מצב מנוחה באיכות גבוהה.

6. שחזור לאחר הסריקה

  1. לאחר השלמת הסריקה, להגדיל איזופלוראן ל 2% ולעצור את עירוי dexmedetomidine תת עורי.
  2. הסר את עריסת החיה מן המגנט נשא, לפרוק את החיה, ולהסיר מוטות אוזניים, בדיקת טמפרטורה, קליפ אוקסימטר דופק, ואת מחט dexmedetomidine.
  3. הזריק 0.015 מ"ג/ק"ג של פתרון atipamezole מדולל לתוך שריר הרגל האחורית של החולדה באמצעות מזרק 1 מ"ל עם מחט 25 G (כלומר, חולדה 300 גרם יקבל 0.09 מ"ל).
  4. מניחים את החולדה בחזרה בכלוב הביתי על גבי כרית חימום ומפקחים עד שהחיה אמבולטורית.

הגישה מוגבלת. התחברו או התחילו תקופת ניסיון כדי לצפות בתוכן זה.

תוצאות

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

לאחר כל סריקה של מצב מנוחה, היציבות מוערכת באמצעות ניתוח רכיבים עצמאי (ICA; סקריפט לדוגמה הכלול בקבצים משלימים). איור 6 מציג דוגמאות לפלט רכיבים מסריקות במצב מנוחה. איור 6a מציג רכיב אות מסריקה עם יציבות גבוהה. שימו לב כי מרחבית, לרכיב יש אזוריות גבוהה. בתוך מסלול הזמן מתחת למרכיב המרחבי, האות יציב ולא צפוי, מה שמעיד על פעילות מוחית אמיתית. ספקטרום הכוח בתחתית מראה בעיקר תדרים נמוכים. איור 6b מציג רכיב מאותה סריקה כ...

הגישה מוגבלת. התחברו או התחילו תקופת ניסיון כדי לצפות בתוכן זה.

דיון

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

יציבות החיה, הן פיזית והן מבחינה פיזיולוגית, היא המפתח להשגת נתוני מצב מנוחה באיכות גבוהה. פרוטוקול זה משיג יציבות על ידי מעבר דרך ארבעה שלבים נפרדים של הרדמה. זה הכרחי כי החיה פגשה את הסף הפיזיולוגי להגדיר לפני המעבר לשלב הבא של הרדמה; מאז שיטה זו מסתמכת על מנגנוני autoregulatory פיזיולוגיים, בעלי חיים בודדים עשויים לדרוש כמויות שונות במקצת של זמן בכל שלב הרדמה. הניסיון שלנו הוא שלוקח יותר זמן בכל שלב הוא יעיל יותר מאשר למהר בשלבים מוקדמים יותר מבלי לתת לפיזיולוגיה של החולדה מספיק זמן להתיישב. המרכיבים העיקריים המאפשרים...

הגישה מוגבלת. התחברו או התחילו תקופת ניסיון כדי לצפות בתוכן זה.

גילויים

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

למחברים אין מה לחשוף.

תודות

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

עבודה זו נתמכה על ידי מימון מהמכון הלאומי לבריאות (NIH) על שימוש בסמים (NIDA) [DJW, EDKS, ו- EMB נתמכו על ידי גרנט R21DA044501 שהוענק לאלן א. גרין ו- DJW נתמך על ידי גרנט T32DA037202 לאלן ג 'בדני] והמכון הלאומי לאלכוהול ואלכוהוליזם (NIAAA) [Grant F31AA028413 לאמילי ד . סאליבן]. תמיכה נוספת ניתנה באמצעות הקרן המוענקת של אלן גרין כפרופסור לפסיכיאטריה של ריימונד סובל ב דארטמות'.

Hanbing Lu נתמך על ידי המכון הלאומי על סמים שימוש תוך-מלונטרלי תוכנית מחקר, NIH.

המחברים רוצים להודות ולאלן א. גרין המנוח. מסירותו הבלתי מעורערת לתחום ההפרעות המתרחשות במשותף סייעה לבסס שיתוף פעולה בין המחברים. אנו מודים לו על חונכותו והדרכתו, אשר יחסר מאוד.

הגישה מוגבלת. התחברו או התחילו תקופת ניסיון כדי לצפות בתוכן זה.

חומרים

רשימת החומרים שנעשה בהם שימוש במאמר זה
שםחברהמספר קטלוגהערות
9.4T MRIVarian/BrukerVarian משודרג עם קונסולת Bruker הפועלת על Paravision 6.0.1 תוכנת
Air-Oxygen MixerSechristדגם 3500CP-G
ניתוח של NeuroImages פונקציונליות (AFNI)NIMH/NIHגרסה AFNI_18.3.03זמין בחינם בכתובת: https://afni.nimh.nih.gov/
Animal CradleRAPID BiomedicalLHRXGS-00563מחזיק חולדה עם מוט נשיכה, חרוט אף ומוטות אוזניים
ניטור פיזיולוגיה של בעלי חיים & מערכת שערSAIIדגם 1025מערכת תואמת MR כולל ריווי חמצן, טמפרטורה, נשימה ואוקסימטריית דופק סיבים אופטיים תוסף
אנטיסדאן (atipamezole hydrochloride)פטרסון וטרינרי07-867-7097Zoetis, פריט יצרן #10000449
מספריים קרמיים בטוחים ל-MRIMRIequip.comMT-6003
קוצץפטרסון וטרינרי07-882-1032ערכת גוזם מגע Wahl משולבת, פריט יצרן #09990-1201
Dexmedesed (dexmedetomidine hydrochloride)פטרסון וטרינרי07-893-1801Dechra מוצרים וטרינריים, פריט יצרן #17033-005-10
מדחום רקטלי דיגיטלי מכסהאת ספריית התוכנה MedlineMDS9608
FMRIBFMRIBMELODIC גרסה 3.15זמין בחינם בכתובת: https://fsl.fmrib.ox.ac.uk/fsl/fslwiki
Heating PadCara Inc.דגם 50
מלקחיים Hemostat, ישרKent ScientificINS750451-2
IsofluranePatterson Veterinary07-893-1389Patterson Private Label, פריט יצרן #14043-0704-06
Isoflurane VaporizerVetEquip Inc.
קלטת מעבדה 911103, 3/4 אינץ'VWR International89097-990
מחטים, רכזת פלסטיק 305145 BDמד 23 הוסרה
Parafilm Laboratory FilmPatterson Veterinary07-893-0260Medline Industries Inc., פריט יצרן #HSFHS234526A
סליל משטח מישוריBrukerT126092 ס"מ
פוליאתילן צינורותBraintree ScientificPE50 50FT0.023 אינץ' (קוטר פנימי), 0.038 אינץ' (קוטר חיצוני)
Puralube Ophthalmic משחהפטרסון וטרינרי07-888-2572Dechra מוצרים וטרינריים, פריט יצרן #211-38
Sprague Dawley RatsCharles River400 SAS SD
סטרילי 0.9% תמיסת מלחפטרסון וטרינרי07-892-4348אספן וטרינר, פריט יצרן #14208186
רפידות הכנה לאלכוהול סטריליותMedline
סרט כירורגי, 1 אינץ' (3M Durapore)MedlineMMM15381Z3M Healthcare, "סרט רפואי רחב"
סרט נייר לבן כירורגי, 1/2 אינץ' (3M Micropore)MedlineMMM153003M
מזרקי בריאות, 1 מ"ל עם 25 מחט BD309626
מזרקים, 3 מ"לBD309657
מערכת אינדוקציה וניקוי מאווררתVetEquip Inc.942102תא אינדוקציה 2 ליטר עם ניקוי
411724 מד
931600קוביית נבלות, "ואקום"
921616חרוט אף, ללא נשימה חוזרת
MDS090735 פעיל זרימה אומגה

מקורות

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,
  1. Smitha, K. A., et al. Resting state fMRI: A review on methods in resting state connectivity analysis and resting state networks. The Neuroradiology Journal. 30 (4), 305-317 (2017).
  2. Gorges, M., et al. Functional connectivity mapping in the animal model: Principles and applications of resting-state fMRI. Frontiers in Neurology. 8, (2017).
  3. Paasonen, J., Stenroos, P., Salo, R. A., Kiviniemi, V., Gröhn, O. Functional connectivity under six anesthesia protocols and the awake condition in rat brain. NeuroImage. 172, 9-20 (2018).
  4. Pawela, C. P., et al. A protocol for use of medetomidine anesthesia in rats for extended studies using task-induced BOLD contrast and resting-state functional connectivity. NeuroImage. 46 (4), 1137-1147 (2009).
  5. Jonckers, E., et al. Different anesthesia regimes modulate the functional connectivity outcome in mice. Magnetic Resonance in Medicine. 72 (4), 1103-1112 (2014).
  6. Williams, K. A., et al. Comparison of alpha-chloralose, medetomidine and isoflurane anesthesia for functional connectivity mapping in the rat. Magnetic Resonance Imaging. 28 (7), 995-1003 (2010).
  7. Zhurakovskaya, E., et al. Global functional connectivity differences between sleep-like states in urethane anesthetized rats measured by fMRI. PloS One. 11 (5), 0155343(2016).
  8. Fukuda, M., Vazquez, A. L., Zong, X., Kim, S. -G. Effects of the α2-adrenergic receptor agonist dexmedetomidine on neural, vascular and BOLD fMRI responses in the somatosensory cortex. The European Journal of Neuroscience. 37 (1), 80-95 (2013).
  9. Brynildsen, J. K., et al. Physiological characterization of a robust survival rodent fMRI method. Magnetic Resonance Imaging. 35, 54-60 (2017).
  10. Lu, H., et al. Rat brains also have a default mode network. Proceedings of the National Academy of Sciences of the United States of America. 109 (10), 3979-3984 (2012).
  11. Lu, H., et al. Low- but not high-frequency LFP correlates with spontaneous BOLD fluctuations in rat whisker barrel cortex. Cerebral Cortex. 26 (2), 683-694 (2016).
  12. Tsai, P. -J., et al. Converging structural and functional evidence for a rat salience network. Biological Psychiatry. 88 (11), 867-878 (2020).
  13. Murphy, K., Bodurka, J., Bandettini, P. A. How long to scan? The relationship between fMRI temporal signal to noise ratio and necessary scan duration. NeuroImage. 34 (2), 565-574 (2007).
  14. Birn, R. M., et al. The effect of scan length on the reliability of resting-state fMRI connectivity estimates. NeuroImage. 83, 550-558 (2013).
  15. Lu, H., et al. Synchronized delta oscillations correlate with the resting-state functional MRI signal. Proceedings of the National Academy of Sciences of the United States of America. 104 (46), 18265-18269 (2007).
  16. Lu, H., et al. Registering and analyzing rat fMRI data in the stereotaxic framework by exploiting intrinsic anatomical features. Magnetic Resonance Imaging. 28 (1), 146-152 (2010).
  17. Cox, R. W. AFNI: software for analysis and visualization of functional magnetic resonance neuroimages. Computers and Biomedical Research. 29 (3), 162-173 (1996).
  18. Ash, J. A., et al. Functional connectivity with the retrosplenial cortex predicts cognitive aging in rats. Proceedings of the National Academy of Sciences of the United States of America. 113 (43), 12286-12291 (2016).
  19. Hsu, L. -M., et al. Intrinsic insular-frontal networks predict future nicotine dependence severity. The Journal of Neuroscience. 39 (25), 5028-5037 (2019).
  20. Li, Q., et al. Resting-state functional MRI reveals altered brain connectivity and its correlation with motor dysfunction in a mouse model of Huntington's disease. Scientific Reports. 7, (2017).
  21. Lu, H., et al. Abstinence from cocaine and sucrose self-administration reveals altered mesocorticolimbic circuit connectivity by resting state MRI. Brain Connectivity. 4 (7), 499-510 (2014).
  22. Seewoo, B. J., Joos, A. C., Feindel, K. W. An analytical workflow for seed-based correlation and independent component analysis in interventional resting-state fMRI studies. Neuroscience Research. 165, 26-37 (2021).
  23. Broadwater, M. A., et al. Adolescent alcohol exposure decreases frontostriatal resting-state functional connectivity in adulthood. Addiction Biology. 23 (2), 810-823 (2018).
  24. Jaime, S., Cavazos, J. E., Yang, Y., Lu, H. Longitudinal observations using simultaneous fMRI, multiple channel electrophysiology recording, and chemical microiontophoresis in the rat brain. Journal of Neuroscience Methods. 306, 68-76 (2018).

הגישה מוגבלת. התחברו או התחילו תקופת ניסיון כדי לצפות בתוכן זה.

הדפסות חוזרות והרשאות

בקש הרשאה לשימוש חוזר בטקסט או באיורים של מאמר JoVE זה

בקש הרשאה

תגיות

fMRIfMRI

מאמרים קשורים