הרשמה ל-JoVE נדרשת לצפייה בתוכן זה. התחברו או התחילו בגרסת ניסיון בחינם.

מאמר שיטה

אוורור לחץ שלילי נורממי זילוח ריאות Ex Situ : הערכת תפקוד הריאות וחילוף החומרים

2.6K צפיות

⸱

DOI:

10.3791/62982

⸱

14 בפברואר 2022

 ,  ,  ,  ,  ,  ,  ,  ,  ,  , 
1Division of Cardiac Surgery, Department of Surgery, Faculty of Medicine, University of Alberta, 2Mazankowski Alberta Heart Institute, 3Faculty of Medicine and Dentistry, University of Alberta, 4Department of Surgery, Faculty of Medicine, University of Alberta, 5Ray Rajotte Surgical-Medical Research Institute (SMRI), University of Alberta, 6Alberta Transplant Institute, 7Canadian Donation and Transplantation Research Program

במאמר זה

סיכום

מאמר זה מתאר מודל חזירי של זילוח ריאות בלחץ שלילי ex situ , כולל רכש, התקשרות וניהול בפלטפורמה בהתאמה אישית. הדגש נעשה על טכניקות הרדמה וכירורגיות, כמו גם פתרון בעיות.

תקציר

השתלת ריאות (LTx) נותרה הטיפול הסטנדרטי במחלת ריאות סופנית. מחסור באיברי תורם מתאימים וחששות לגבי איכות האיברים של התורם, המוחמרים על ידי מרחק תחבורה גיאוגרפי מופרז וקריטריונים מחמירים לקבלת איברים מתורם, מציבים מגבלות על מאמצי LTx הנוכחיים. זילוח ריאות Ex situ (ESLP) היא טכנולוגיה חדשנית שהראתה הבטחה בהחלשת מגבלות אלה. האוורור הפיזיולוגי והזילוח של הריאות מחוץ לסביבה הדלקתית של הגוף התורם מעניקים ל- ESLP מספר יתרונות על פני שימור סטטי קר מסורתי (CSP). ישנן ראיות לכך שאוורור בלחץ שלילי (NPV) ESLP עדיף על אוורור בלחץ חיובי (PPV) ESLP, כאשר PPV גורם לפגיעה ריאתית משמעותית יותר כתוצאה ממכונות הנשמה, ייצור ציטוקינים מעודד דלקת, בצקת ריאות והיווצרות בולות. היתרון של NPV נובע אולי מההתפלגות ההומוגנית של לחץ תוך חזה על פני כל שטח הריאה. הבטיחות הקלינית וההיתכנות של מכשיר NPV-ESLP מותאם אישית הודגמו בניסוי קליני שנערך לאחרונה בהשתתפות ריאות אנושיות של תורם קריטריון מאריך (ECD). כאן, השימוש במכשיר מותאם אישית זה מתואר במודל חזירי צעיר של NPV-ESLP נורמותרמי במשך 12 שעות, תוך מתן תשומת לב מיוחדת לטכניקות ניהול. הכנה טרום ניתוחית, כולל אתחול תוכנת ESLP, פרימינג וביטול אוורור של מעגל ESLP, ותוספת של חומרים אנטי טרומבוטיים, אנטי מיקרוביאליים ואנטי דלקתיים, מוגדרת. מתוארות טכניקות תוך ניתוחיות של החדרת קו מרכזי, ביופסיית ריאות, exsanguination, איסוף דם, cardiectomy, ו דלקת ריאות. יתר על כן, תשומת לב מיוחדת מוקדשת לשיקולי הרדמה, עם השראת הרדמה, תחזוקה ושינויים דינמיים מתוארים. הפרוטוקול מציין גם את האתחול, התחזוקה וסיום הזילוח והאוורור של המכשיר המותאם אישית. טכניקות ניהול איברים דינמיות, כולל שינויים באוורור ופרמטרים מטבוליים כדי לייעל את תפקוד האיברים, מתוארים ביסודיות. לבסוף, ההערכה הפיזיולוגית והמטבולית של תפקוד הריאות מאופיינת ומתוארת בתוצאות המייצגות.

מבוא

השתלת ריאות (LTx) נותרה הטיפול הסטנדרטי במחלת ריאות סופנית1; עם זאת, ל-LTx יש מגבלות משמעותיות, כולל ניצול לקוי של איברים מתורם2 ותמותה ברשימת המתנה של 40%3, שהיא גבוהה יותר מכל השתלת איברים מוצקה אחרת 4,5. שיעורי ניצול האיברים של התורם נמוכים (20-30%) בשל בעיות באיכות האיברים. מרחק תחבורה גיאוגרפי מוגזם, בתוספת קריטריונים מחמירים לקבלת איברים מתורמים, מחריפים חששות איכות אלה. LTx עוקב גם אחר השתלות איברים מוצקים אחרות במונחים של השתלה ארוכת טווח ותוצאות המטופל2. תפקוד לקוי של השתל הראשוני (PGD), הנגרם לרוב על ידי פגיעה איסכמית ברפרפוזיה (IRI), מייצג את הגורם המוביל לתמותה ותחלואה של 30 יום לאחר LTx ומעלה את הסיכון לתפקוד לקוי כרוני של השתל 6,7. מאמצים להפחית את IRI ולהאריך את זמני ההובלה הבטוחה הם בעלי חשיבות עליונה לשיפור תוצאות המטופלים.

זילוח ריאות Ex situ (ESLP) היא טכנולוגיה חדשנית שהראתה הבטחה בהחלשת מגבלות אלה. ESLP מאפשר שימור, הערכה ומיזוג מחדש של ריאות תורם לפני ההשתלה. הוא הציג תוצאות משביעות רצון בטווח הקצר והארוך לאחר השתלת ריאות תורם קריטריונים מורחב (ECD), ותרם לעלייה במספר הריאות המתאימות לתורם LTx, עם שיעורי ניצול איברים שגדלו ב -20% במרכזים מסוימים 8,9,10. בהשוואה לתקן הקליני הנוכחי עבור LTx, שימור סטטי קר (CSP), ESLP מציע מספר יתרונות: זמן שימור איברים אינו מוגבל ל -6 שעות, הערכת תפקוד האיברים אפשרית לפני ההשתלה, ובשל זילוח איברים מתמשך, ניתן לבצע שינויים בפרפוזט המייעל את תפקוד האיברים11.

הרוב המכריע של מכשירי ESLP הנוכחיים המיועדים לשימוש אנושי משתמשים באוורור לחץ חיובי (PPV); עם זאת, ספרות עדכנית הצביעה על כך שאסטרטגיית אוורור זו נחותה מ- ESLP של אוורור בלחץ שלילי (NPV), כאשר PPV גורם לפגיעה ריאתית משמעותית יותר כתוצאה מהנשמה12,13,14,15. הן בריאות האדם והן בריאות חזיריות, NPV-ESLP מציג תפקוד איברים מעולה בהשוואה לזילוח ריאות בלחץ חיובי (PPV-ESLP) בתחומים פיזיולוגיים שונים, כולל ייצור ציטוקינים פרו-דלקתיים, בצקת ריאות והיווצרות בולות15. ההתפלגות ההומוגנית של לחץ תוך חזה על פני כל שטח הריאה ב- NPV-ESLP הוצעה כגורם משמעותי העומד בבסיס יתרון זה15,16. בנוסף ליתרונות הפרה-קליניים שלה, הבטיחות הקלינית וההיתכנות של NPV-ESLP הוכחו בניסוי קלינישנערך לאחרונה 17. באמצעות מכשיר NPV-ESLP חדשני, שנים עשר קריטריונים מורחבים לתרומת ריאות אנושיות נשמרו בהצלחה, הוערכו ולאחר מכן הושתלו עם 100% הישרדות של 30 יום ושנה.

מטרת כתב היד הנוכחי היא להדגים פרוטוקול עבודה של מכשיר NPV-ESLP של המעבדה שלנו באמצעות ריאות חזיריות צעירות בתנאים נורמותרמיים למשך 12 שעות. השליפה הכירורגית מכוסה בפירוט, ומתוארים גם הייזום, הניהול והסיום של פלטפורמת התוכנה המותאמת אישית שלנו. כמו כן מוסברת האסטרטגיה לאיסוף רקמות וניהול הדגימות.

הגישה מוגבלת. התחברו או התחילו תקופת ניסיון כדי לצפות בתוכן זה.

פרוטוקול

ההליכים המבוצעים בכתב יד זה תואמים את הנחיות המועצה הקנדית לטיפול בבעלי חיים ואת המדריך לטיפול ושימוש בחיות מעבדה. הוועדה המוסדית לטיפול בבעלי חיים של אוניברסיטת אלברטה אישרה את הפרוטוקולים. נקבות חזירות יורקשייר צעירות במשקל 35-50 ק"ג שימשו באופן בלעדי. הכשרה מתאימה לבטיחות ביולוגית נדרשה על ידי כל האנשים המעורבים בהליכי ESLP. סקירה סכמטית של כל ניסוי NPV-ESLP מיוצגת באיור 1.

1. תכשירים טרום ניתוחיים

  1. מקם את תא האיברים על עגלת ESLP והרכיב את קרום תמיכת הסיליקון (ראה טבלת חומרים) על ווי התא לצורך השעיה.
  2. הרכיבו את צינורות ESLP, מסיר חמצן, מסנן עורקים ומשאבה צנטריפוגלית.
  3. חבר את קווי המים של מחליף החום למסיר החמצן וכן את צינורות הגז הגורפים.
  4. הכנס את בדיקת חיישן הטמפרטורה (ראה טבלת חומרים) למסיר החמצן.
  5. יש לאבטח את מתמר הזרימה של עורק הריאה (PA) (ראו טבלת חומרים) על גבי צינור הרשות הפלסטינית.
    הערה: מתמר הזרימה משתמש באולטרסאונד כדי למדוד את הזרימה ולהעביר אותה בחזרה למשאבה הצנטריפוגלית.
  6. השתמש בסטופרקוק תלת-כיווני כדי להדק את מתמר הלחץ של הרשות הפלסטינית לצינורית הרש"פ.
  7. חברו היטב את כל חיבורי הצינור למניעת נזילות, וסגרו את כל הסטופקוקים ומנעולי הלואר לפני הוספת הפרבוסט.
  8. הפעל את המעגל עם 1000 מ"ל של רכיב בית חולים נפוץ שונה פרפוזט (CHIP).
    הערה: שבב הוא פרפוזט בהתאמה אישית בעלות נמוכה עם מדידה אונקוטית של 35 מ"מ כספית, דומה לתמיסות פרפוזאט קנייניות18.
  9. הפעל את התוכנה לאחר שהמעגל מוכן כדי להקל על ביטול אוורור המשאבה והקווים.
    הערה: שלבים אלה משויכים לאיור 2 ולאיור 3.

2. אתחול תוכנת ESLP, התאמות ומעגל ביטול אוורור

  1. לחץ על קיצור הדרך לתוכנית על הצג כדי להפעיל את תוכנית ESLP. בחר סריקה, עגלת קניות 3, התחבר ולאחר מכן תוכנית NPV ואחריה הפעל תוכנה.
  2. בעמוד הראשי, ברגע שהמעגל מוכן, הגדילו את סל"ד הזרימה ל-900 כדי להוציא אוויר מהמעגל ולהדגים זרימה מבלבלת דרך צינורית הרשות הפלסטינית עם זרם קבוע של נוזל.
  3. הוסף 3.375 גרם piperacillin-tazobactam, 10,000 יחידות של הפרין (10,000 U / 1.5L perfusate = 6.66 U / L), ו 500 מ"ג של methylprednisone למעגל.
  4. קח דגימת גז דם עורקי (ABG) של perfusate למטרות התייחסות.
  5. בדף הראשי , הפעל CPAP עד 20 ס"מ H2O (מרבי) והפעל אותו כדי לבדוק את הפונקציה. כבה לאחר אישור הפעולה.
  6. בדף הראשי , סובב את EIP ל- -5 ס"מ H20 והפעל אותו כדי לבדוק את הפונקציה. כבה לאחר אישור התהליך.
  7. בדף הגדרות , הפעל את תנור החימום (לחץ על הפעל תנור) ואשר את הפונקציה. שנה את נקודת הגדרת הטמפרטורה בצגים ואשר שינוי תואם בצג החימום בעגלה. כבה לאחר הבטחת הפעולה.
    הערה: מנגנון ESLP המשמש כאן מצויד בתוכנה מותאמת אישית (איור 4). התוכנית מאפשרת בקרה על מהירות המשאבה ופרמטרי האוורור כדי להשיג ולשמור על זרימת PA רצויה, לחץ חיובי רציף בדרכי הנשימה (CPAP), לחץ קצה פקיעת (EEP), לחץ סוף השראה (EIP), יחס נשימה (RR) ויחס השראה: פקיעה (I:E). התוכנה מחשבת פרמטרים פונקציונליים ולולאות נפח לחץ. טבלה 1 מפרטת את כל פרמטרי הניטור המסופקים על-ידי התוכנה.

3. הכנות להרדמה

  1. מתן קטמין (20 מ"ג/ק"ג) ואטרופין (0.05 מ"ג/ק"ג) (זריקות תוך שריריות) בחדר הניתוח כקדם-תרופה לחזיר התורם.
  2. הניחו את שכיבת החזיר על שולחן ניתוחים מחומם. לשמור על נורמותרמיה ולהמשיך עם השראת מסכה.
  3. זרימת חמצן טיטראט בהתאם למשקל החי, בדרך כלל 20-40 מ"ל / ק"ג.
  4. מתן איזופלורן בתחילה ב 4-5%. לאחר מכן הפחיתו ל-3% לאחר 1-2 דקות.
  5. להעריך את עומק ההרדמה כל 5 דקות. ודא שלחזיר אין רפלקס נסיגה בתגובה לגירוי מזיק.
  6. לאחר אישור עומק ההרדמה הנכון, יש לבצע אינטובציה לחזיר.
  7. יש לכוון לריווי חמצן מעל 90% על ידי הנחת בדיקת דופק אוקסימטר על הלשון (המועדפת) או האוזן.
  8. התאימו את זרימת החמצן (20-40 מ"ל/ק"ג) ואת גז הממסים הממסים (1-3%) כדי לשמור על רמת ההרדמה.
  9. שמור על הגדרות ההנשמה בטלוויזיה 6-10 מ"ל/ק"ג, קצב נשימה של 12-30 נשימות לדקה, PEEP 5 ס"מ H 2 O,לחץ שיא 20 ס"מ H2O.
  10. יש לגלח ולשטוף באמצעות יוד להכנת אתר החתך.

4. ביופסיית ריאות, הפרשה ואיסוף דם

  1. הכנס קו מרכזי למתן נוזלים והפרין.
    1. בצע חתך קו אמצע 5-8 ס"מ עם electrocautery ממורכז מעל קנה הנשימה ונמשך גולגולתית מן החריץ עצם החזה.
    2. באמצעות צריבה, לחלק את העור ואת השומן תת עורי.
    3. כדי לזהות את צרור כלי התרדמה השמאלי או הימני לרוחב קנה הנשימה, מחלקים את מישור קו האמצע בין שרירי הרצועה ומפרידים את שכבות רקמת החיבור.
    4. באמצעות קשרי משי 2-0 כלולאות כלי, להשיג שליטה דיסטלית ופרוקסימלית של הווריד הצווארי.
    5. כדי לשלוט בזרימת הדם, קשרו את העניבה המקיפה את הגולגולת ונסוגו כלפי מעלה על הקשר הפרוקסימלי.
    6. כדי להתאים לקו מרכזי של 7 Fr, בצע חתך קטן בווריד באמצעות מספריים של מצנבאום (~ 1/3 היקף הכלי).
    7. שחררו את המתח על לולאת כלי הדם הפרוקסימלי בו זמנית את הווריד. קשרו את המשי כדי לאבטח את הצינורית בווריד בעומק של 10 ס"מ.
    8. התחבר לקו IV של 0.9% מלח רגיל לאחר שטיפת הקו עם הפרין (יחידה אחת / מ"ל). אם החזיר הוא intravascular מדולדלות מהתייבשות, לנהל את הנוזל. Hep-lock כל יציאות שאינן בשימוש.
  2. ביצוע עצם החזה החציונית
    1. זהה את החריץ החזה ואת תהליכי הקסיפואיד כציוני דרך חתכים.
    2. השתמשו באלקטרוקאוטריה כדי לבצע חתך בקו האמצע המשתרע על פני כל עצם החזה (כ-40-50 ס"מ) ומחבר את החתך הקודם בחריץ עצם החזה לקסיפואיד.
    3. מחלקים את הרקמה התת עורית ואת הפאשיה בין סיבי שריר החזה המרכזי. לצרוב כל כלי דימום כדי לשמור על hemostasis.
    4. השתמש electrocautery כדי לסמן את קו האמצע לאורך עצם החזה. השתמש מספריים כבדים כדי לחתוך את xiphoid ולהשתמש באצבע כדי לנתח את קרום הלב מן השולחן האחורי של עצם החזה כדי ליצור חלל מוחשי כדי להכיל את המסור עצם החזה.
    5. יש למרוח שני אטבי מגבות משני צדי עצם החזה בגובה הצלעות ה-4 הצידיות לצומת הקוסטוכונדרלי. רכשו את שכבת הרקמה והפאשיה שמעל בתוך אטבי המגבת והרימו את עצם החזה אנכית הרחק מהלב במהלך הסטרנוטומיה.
    6. בצע את עצם החזה עם מסור חשמלי או מופעל באוויר, שיניים למעלה, החל מהקסיפואיד לכיוון החריץ החזה. כדי למנוע פגיעה במבנים הבסיסיים (למשל קרום הלב ווריד ברכיוצפלי, ועורק נקוב), המשיכו בהדרגה עם המסור ונסוגו אנכית באמצעות אטבי מגבות.
      הערה: עצם החזה צוללת עמוק אחורית בחריץ החזה, ויש לכוון את המסור לאחור כדי להשלים את עצם החזה ברמה זו.
    7. השתמש cautery כדי להשיג hemostasis של עצם החזה המדמם.
      הערה: ניתן להשתמש גם בשעוות עצם למטרה זו.
    8. יש לספק 1,000 U/kg הפרין לווריד. יש ליטול דגימת דם in vivo 5 דקות לאחר מתן הפרין.
    9. השתמש באצבע כדי לנתח בבוטות את הצדר מעצם החזה הפנימית כדי ליצור מקום למסיר עצם החזה.
    10. הכנס נשלף עצם החזה עם ידית לכיוון הבטן ונסוג בהדרגה כדי לחשוף את המדיאסטינום במלואו.
  3. הסר את בלוטת התימוס מקרום הלב באמצעות שילוב של דיסקציה קהה עם אצבע ו electrocautery.
    הערה: עדיף להסיר את בלוטת התימוס כחתיכה אחת גדולה ולא כגושים קטנים.
  4. קח ביופסיה של אונת הריאה העליונה הימנית לניתוח רקמות: פתח את הצדר הימני כדי לחשוף את האונה העליונה הימנית. מקיפים חלק של 1 ס"מ 3 במשי 0, קושרים ומוציאים חלק זהשל הריאה באמצעות מספריים של מצנבאום.
    1. חלקו את הביופסיה לשלוש מנות שוות בגודלן, והניחו אחת מכל אחת מהן בג'ל בטמפרטורת חיתוך אופטימלית (OCT), פורמלין וחנקן נוזלי (הקפאת בזק).
    2. אחסנו את דגימות ה-OCT והדגימות הקפואות במקפיא בטמפרטורה של -80°C, ואחסנו את דגימות הפורמלין במקרר בטמפרטורה של 4°C באמצעות מיכל אטום כראוי.
      הערה: דגימות ביופסיה מוכתמות בצביעת המטוקסילין-אאוזין כדי לבחון את ההיסטופתולוגיה של פגיעה ריאתית, כולל בצקת אינטרסטיציאלית, דלקת מכתשית ואינטרסטיציאלית, חדירות נויטרופיליות אינטרסטיציאליות ופריווסקולריות ודימום15.
  5. פתח את קרום הלב. אוהל את קרום הלב באמצעות מלקחיים ולעשות חתך בקו האמצע של קרום הלב עם מספריים Metzenbaum.
    1. המשך חתך זה באופן גולגולתי לשורש אבי העורקים, ולאחר מכן לרוחב כדי לחשוף את הווריד הנבוב העליון (SVC). להשלים את pericardiotomy caudally ו T-off את החתך שמאל וימין ברמה של שיא הלב.
  6. הרדימו את החזיר על ידי הגזמה. חותכים את ה-SVC ומכניסים יניקה עם קצה פול (ראו טבלת חומרים) לתוך הלומן, ומקדמים את קצה היניקה לווריד הנבוב התחתון (IVC).
    הערה: חתך נעשה בקיר הקדמי של האטריום השמאלי (LA) כדי לזרז את ההוצאה.
    1. הרימו את קודקוד הלב וחתכו את ה-LA 1 ס"מ מתחת לסינוס הכלילי בעזרת מספריים של מצנבאום. ב-exsanguination, עברו מ-100% O2 לאוויר החדר.
  7. איסוף דם מלא: שאיבת קצה פול מחוברת למכשיר מציל תאים כדי לאסוף 1200 מ"ל של דם שלם, אשר מסובב כלפי מטה כדי לייצר 500 מ"ל של תאי דם אדומים ארוזים (pRBC).
    הערה: הגדרת פרוטוקול חיסכון בתאים: זרימת מילוי: 300 מ"ל/דקה, זרימת שטיפה: 100 מ"ל/דקה, זרימה ריקה: 150 מ"ל/דקה, זרימה חזרה: 150 מ"ל/דקה, נפח שטיפה: 300 מ"ל, זרימת ריכוז: 200 מ"ל/דקה. זה ייקח ~ 5 דקות.

5. כריתת לב

  1. בצע את cardiectomy: להרים את קודקוד הלב גולגולת ולהמשיך את חתך LA הקודם לרוחב כדי transect את הסינוס הכלילי שבו וריד hemi-azygous שמאל מצטרף אליו.
  2. חלק את LA על ידי חיתוך מדיאלי על פני השטח הקדמי של ביפורקציה PA.
  3. יש לחצות את ה-IVC 1 ס"מ מעל הסרעפת. חבר חתך זה ללוס אנג'לס על ידי חיתוך מדיאלי.
  4. השלם את חלוקת לוס אנג'לס על ידי חיתוך לאורך החלק העליון של עורק הריאה הימני לכיוון התפצלות הרשות הפלסטינית.
    הערה: שלב זה מוציא את וריד הריאתי העליון הימני מלוס אנג'לס האחורי.
  5. הרימו את ה- IVC בצורה גולגולתית וחלקו את וריד הריאתי העליון הימני. חלק את השתקפויות קרום הלב המתמזגות בין הרשות הראשית לבין האטריום הימני (RA)/SVC.
  6. הניחו את הלב והעבירו את ה-SVC. מפרידים את ה-SVC משכבת רקמת החיבור לאחור ומעבירים את הווריד האזיגותי.
  7. להרים את הלב גולגולתי, לחלק את הרשות ברמה של המסתם הריאתי. מנתחים חלקית את אבי העורקים מהרשות הפלסטינית באמצעות מספריים של מצנבאום, ואז מעבירים את אבי העורקים העולה.
    הערה: פעולה זו משלימה את כריתת הלב.

6. כריתת דלקת ריאות

  1. בצע את כריתת דלקת ריאות: בדוק כי נפח הגאות expiratory (TVe) הוא כ 10 מ"ל / ק"ג. עבור ליחס השראה של 2:1 כדי להשיג מטרה זו. אם הטלוויזיה נשארת < 6 מ"ל/ק"ג, הגדל את לחצי השיא ו/או PEEP כדי להשיג יעד של 8-10 מ"ל/ק"ג לגיוס מקסימלי של נאדיות.
  2. פתח את הצדר בצד שמאל של החזיר. בצע חתך אופקי לאורך השולחן האחורי של עצם החזה באמצעות מספריים של מצנבאום. בצע שני חתכים אנכיים במורד הצדר אל העצב הפרני בגבולות העליונים והנחותים של המדיאסטינום.
    1. הבלו את הצדר על ידי חיתוך לאורך העצב הפרני. חזור על שלב זה בצד ימין. פתח והסר את הצדר הסרעפתי באופן דומה, תוך שימוש בשרוול LA האחורי כגבול נחות, באופן דומה לעצב הפרני.
  3. מחלקים את החיבורים הפלאורליים מהסרעפת לכיוון אונת הריאה התחתונה השמאלית. השתמש ברסרקטור Deaver (ראה טבלת חומרים) כדי להחזיק את הסרעפת כלפי מעלה. מחלקים את הרצועה הריאה התחתונה משמאל וממשיכים למעלה לכיוון הילום.
  4. נסו "טכניקה ללא מגע" ביחס לרקמת הריאה עצמה.
    הערה: כלומר, לנסות מניפולציה ידנית מינימלית של הריאה כדי למנוע טראומה.
  5. בצד ימין, מפרידים את ה- IVC ואת החיבורים הפלאורליים מהסרעפת. משוך את הסרעפת כלפי מעלה באמצעות Retractor Deaver. מחלקים את הרצועה הריאה התחתונה בצד ימין וממשיכים למעלה לכיוון הילום.
  6. מחלקים את הווריד ואת כלי הקשת כדי לחשוף את קנה הנשימה.
  7. נתחו בבוטות את הרקמה המקיפה את קנה הנשימה. עם נפחי גאות ושפל (TVe) בכ-10 מ"ל/ק"ג, הדקו את קנה הנשימה באמצעות מהדק צינור בשאיפה מרבית.
  8. חצו את קנה הנשימה והרימו את החלק המהודק כלפי מעלה עבור השלבים הנותרים כדי לספק מתיחה כירורגית.
  9. מנתחים את קנה הנשימה האחורי מהוושט באמצעות דיסקציה קהה בעזרת מספריים כבדים של מצנבאום ויד חופשית. מחלקים את כל החיבורים הפלאורליים הנותרים, מעבירים את אבי העורקים מעל ומתחת לסימפונות השמאליים, ומסירים את הריאות מהחזה עם קטע של אבי העורקים היורד.
  10. לשקול את הריאות עם מהדק על במהירות לאחסן אותם צידנית מלאה קרח. עלייה במשקל במהלך ריצת ESLP היא אינדיקטור להיווצרות בצקת.
    הערה: פעולה זו משלימה את כריתת דלקת ריאות.

7. מיקום הריאות על מכשיר ESLP

  1. הוסף 500 מ"ל של pRBC למעגל הזילוח (שקודם לכן היה מוכן עם 1L של שבב, שלב 1.8) כדי להגיע לנפח סופי של 1.5 L של פרפוזט.
    הערה: ריכוז ההמוגלובין ממוקד בכ-50 גרם/ליטר או המטוקריט של 15%.
  2. צלם תמונות של הריאות עבור רשומות נתונים.
  3. ביופסיה של אונת הריאה האמצעית הימנית. הקיפו חלק של 1 ס"מ3 במשי 0, קשרו והוציאו חלק זה של הריאה באמצעות מספריים לניתוח רקמות כפי שתואר קודם לכן (שלב 4.4).
  4. אבטח את מתאם הצינור בגודל 3/8, 1/2 אינץ 'לעורק הריאה הראשי (mPA). אחוז בצדדים מנוגדים של mPA באמצעות הצמדות. הכנס את המתאם עם החלק בגודל 1/2 אינץ' לתוך mPA והחזק אותו במקומו בזמן שעוזר מאבטח את המתאם במקומו באמצעות עניבות משי 0.
    הערה: המתאם צריך לשבת 2-3 ס"מ מעל הביפורקציה של הרשות הפלסטינית (אם אורך הרשות אינו מספיק, ניתן לתפור מקטע מאבי העורקים היורד של החזיר התורם מקצה לקצה על גבי mPA למשך אורך נוסף).
  5. הניחו את הריאות בשכיבה על קרום התמיכה בסיליקון וחברו אותן למכשיר ESLP.
  6. מניחים מהדק צינור שני על קנה הנשימה ליד המיקום של סימפונות קנה הנשימה. הסר את המהדק הדיסטלי יותר ואינטובציה קנה הנשימה עם הצינור האנדוטרכאלי (ETT).
    1. אבטח את ה-ETT במקומו באמצעות שני אזיקונים. מהדקים את קו האוורור באמצעות מהדק צינור ומשחררים את המהדק הפרוקסימלי מקנה הנשימה.
      הערה: הריאות נשארות מנופחות אם זה נעשה כראוי ואין דליפות אוויר.
  7. חבר את מתאם הרשות הפלסטינית לקו הרשות הפלסטינית ובטל את האוויר של mPA. הפעל את הטיימר לזילוח.
    הערה: ראה איור 5 לתיאור מצולם של השלבים.

8. ייזום זילוח ואוורור

  1. בדף הגדרות , לחץ על הפעל תנור חימום והגדר את הטמפרטורה ל- 38 °C. הזן גם את משקל החזיר כדי לחשב את תפוקת הלב (זרימה).
  2. בדף הראשי , הגדר את ה- CPAP ל- 20 cm H2O ולחץ על Start CPAP. כאשר האוורור מתחיל, שחררו את קו האוורור.
  3. אפס את חיישן לחץ העורקים. הדקו את קו הרשות מעל חיישן הלחץ באמצעות מהדק צינורות. פתחו את החיישן לאוויר החדר, לחצו על ZERO PAP ועל Zero Bld Flow בעמוד 'הגדרות ' ולאחר מכן ודאו שהקריאות מאופסות בעמוד הראשי .
    1. סגור את סטופקוק חיישן הלחץ כדי לקרוא את לחץ הקו, פתח את הקו לצינורית PA, בחר תפוקת לב של 10% בעמוד הראשי, לחץ על חזור למדריך הרשות (הלחצן הופך לירוק) ולאחר מכן בטל את הידוק קו הרשות.
      הערה: הקו מאופס כעת כראוי, והמשאבה זורמת כעת 10% מתפוקת הלב המחושבת.
  4. צייר 10 מ"ל של perfusate עבור ניתוח צנטריפוגלי ולצייר זמן אפס (T0) ABG.
  5. לאחר שהריאות מחוררות במשך 10 דקות, הגדילו את הזרימה ל -20% מתפוקת הלב.
  6. כאשר טמפרטורת הפרבוסט מגיעה ל-32°C, הדקו את מכסה התא למקומו בעזרת מלחציים ליצירת אטם אטום. מקם את הריאות בצורה אופטימלית לפני הנחת המכסה. תקן דליפות אוויר עם פרולן בגודל 6-0 על מחטי BV-1.
  7. כשהמכסה מאובטח, הדקו את צינור האוורור וכבו את ה-CPAP. בדף הגדרות , לחץ על אפס ITP, אפס כפה, אפס זרימת אוויר ולאחר מכן אשר שהקריאות מתאפסות בדף הראשי .
    1. לחץ על Start CPAP at 20 cm H2O ושחרר את צינור האוורור. לאחר מכן, הגדר יעד EEP ל- 0 ס"מH 2 O, EIP ל- 1 ס"מ H20, RR 10, יחס I:E 1:1 ולחץ לחץ כדי להפעיל אוורור בלחץ שלילי.
    2. הקשיבו לאוורור משנה את תפקידו, ואז חברו את צינור האוורור של היציאה הצדדית לתא.
      הערה: מכונת ההנשמה מתחילה את מחזור הנשימה שלה בנשיפה. הריאות יתכווצו מעט אם היציאה הצדדית מחוברת במהלך נשיפה. עדיף לחכות ולהקשיב לשאיפה, ואז לחבר את היציאה הצדדית כדי למקסם את הגיוס.
  8. במהלך הנשימות הבאות, הפחיתו את ה-CPAP ל-12ס"מ H 2 O ובמקביל הגדילו את ה-EIP ל-9 ס"מ H 2 O. שמרו על פרמטרי אוורור אלה במשך השעה הראשונה, ולאחר מכן הפחיתו את ה-CPAP ל-8-10 ס"מ H 2 O בהתאם לגיוס הנאדיות והגדילו את ה-EIP ל-12 עד -13 ס"מ H2O.
  9. הגדר את לחצי השיא ל 20-21 ס"מ H2O.
    הערה: אם נדרשו לחצים גבוהים יותר בזמן כריתת דלקת ריאות, אז זה הופך ללחץ שיא המטרה.
  10. כאשר טמפרטורת הפרבוסט מגיעה ל -35 מעלות צלזיוס, הגדל את הזרימה ל -30% מתפוקת הלב.
    הערה: אלה ההגדרות לשימור איברים (טבלה 2).
  11. ב 3, 5, 7, 9, 11 שעות, להעריך עם זרימות של 50% של תפוקת הלב ותוספת של גז טאטוא מעורב (89% N 2, 8% CO 2, 3% O2) הוסיף deoxygenator ב 0.125 L/min כדי לדמות ניצול חמצן מערכתי (טבלה 3).
  12. בכל שעה אי-זוגית במהלך מצב שימור, ציירו דגימה של 10 מ"ל של פרפוזאט לניתוח עתידי. צייר pre-deoxygenator 1 מ"ל ABG מדגם בכל שעה.
  13. לאחר 5 דקות של מצב הערכה, צייר ABGs מיציאות לפני ואחרי deoxygenator (טבלה 4).
    הערה: פעולה זו משלימה את מיקום הריאות על ESLP והתחלת זילוח ואוורור. ראו טבלה 2 להתחלת הפרוטוקול. טבלה 3 מפרטת את שני המצבים שבהם נעשה שימוש ב-NPV-ESLP.

9. תמיכה מטבולית של הריאה

  1. בדוק את רמת הגלוקוז perfusate כל שעה באמצעות ניתוח ABG. יש לכוון את רמת הסוכר ל-3-6 מילימול/ליטר ולבצע טיטראט בהתאם לשיעורי הצריכה באמצעות משאבת עירוי סטנדרטית לעירוי סוכר רציף ומנות בולוס לפי הצורך.
    הערה: משאבת עירוי נוספת מספקת עירוי רציף של 2 U/h של אינסולין. שבב, יחד עם רוב פתרונות זילוח איברים אחרים, מכיל גלוקוז כמצע האנרגיה העיקרי.

10. הפרין, חומרים אנטי מיקרוביאליים ואנטי דלקתיים

  1. הוסף 10,000 יחידות של הפרין לפרבוסט בתחילת הזלוף לפני הוספת pRBC.
  2. הוסף 3.375 גרם של piperacillin-tazobactam perfusate בתחילת זילוח לפני הוספת pRBC.
  3. הוסף 500 מ"ג של methylprednisolone perfusate בתחילת זילוח לפני הוספת pRBC.

11. הערכת תפקוד הריאות

  1. השתמש בשני מצבים נפרדים של אוורור וזילוח במהלך ריצת ESLP: שימור והערכה.
    הערה: ראו שימור והערכה (טבלה 3). מצב שימור: תפוקת לב 30%, PEEP 8-12, EEP 0, EIP -10 עד -12, לחץ שיא 20-22 ס"מ H2O, RR 6-10 ויחס I:E 1:1-1.5. ריצות ESLP הן בדרך כלל 12 שעות, אם כי ניתן להאריך אותן עד 24 שעות.
  2. הגדר לחץ שיא כך שיתאים ללחץ שיא של כריתת דלקת ריאות והשג טלוויזיה יעד של 10 מ"ל / ק"ג.
    הערה: למרות שהיעד הוא 10 מ"ל/ק"ג, בדרך כלל משיגים 6-8 מ"ל/ק"ג.
  3. כל 30 דקות במהלך השימור, בצע גיוס במשך 30 דקות או פחות.
    הערה: משך הגיוס והיקפם תלויים ב-TVe שהושג. אם TVe הם 8-10 מ"ל / ק"ג, גיוס נוסף אינו הכרחי.
  4. לגיוס, הגדילו את PEEP ל-10-12 ס"מ H 2 O, הפחיתו RR ל-6 נשימות לדקה, הגדילו את לחצי השיא ב-2-4 ס"מ H 2 0 מבלי לחרוג מ-30 ס"מ H2O (לעיתים רחוקות אנחנו עולים על 25 ס"מ H2O), ושנו את יחס I:E ל-1:0.5.
    הערה: באופן כללי, רק אחד או שניים משינויים אלה מתבצעים עבור כל מרווח של 30 דקות, כאשר העלייה ב- PEEP ובלחץ שיא היא היעילה ביותר.
  5. ב 3, 5, 7, 9, 11 שעות, להעריך את תפקוד האיברים.
    הערה: הפרמטר העיקרי של עניין הוא יחס PF; עם זאת, הציות הדינמי ולחצי הרשות הפלסטינית מנוטרים מקרוב (איור 6).
  6. במהלך ההערכה, הגדל את תפוקת הלב ל -50% בעוד גז טאטוא מעורב (89% N 2, 8% CO 2, 3% O2) מתווסף למעגל בקצב זרימה של 0.125 L / min באמצעות deoxygenator.
    הערה: פעולה זו משכפלת דלדול חמצן מערכתי ומתרחשת במשך 5 דקות. במהלך תקופה זו, הפחיתו את ה-PEEP ל-5 ס"מ H2O תוך שמירה על לחצי שיא, והגדילו את ה-EIP בהתאם. שמור על RR על 10 פעימות לדקה והגדר את I:E ל- 1 או 1.5, תלוי אם נראה שהריאות לוכדות אוויר או לא.
  7. בצע את החישובים הפונקציונליים עבור התנגדות כלי דם ריאתיים, אוורור דק, תאימות דינמית ויחס P/F.
    הערה: ניתן לחשב את התנגדות כלי הדם הריאתיים לפי: [(PAP - LAP)/CO] x 80, כאשר LAP (לחץ פרוזדורים שמאלי) הוא 0 מ"מ כספית בגלל התכנון של מערכת ניקוז LA פתוחה.
    אוורור דקות מחושב על ידי: TVexpiratory x RR
    תאימות דינמית מחושבת על ידי: TVexpiratory/EIP
    יחס P/F מחושב על ידי: PaO2/Fi02, כאשר FiO2 הוא 21%.
    תוכנת ESLP מחשבת ומתעדת באופן אוטומטי מדדי אוורור ומדדים פונקציונליים באופן רציף.

12. הערכה מטבולית של הריאות המחוררות לשעבר

  1. להעריך את המצב המטבולי של perfusate כל שעה באמצעות ABGs, אשר פועלים סמן חלופי של מצב הריאות. לאסוף 10 מ"ל של perfusate מן היציאה pre-deoxygenator לניתוח עתידי.
    הערה: ניתוח גז הדם משמש גם כדי לפקח על מצב הגז והיוני של perfusate.
  2. השתמשו ב-PaO2 כסמן לתפקוד הריאות הכללי.
    הערה: הדבר נכון במיוחד במהלך שלבי הערכה כאשר גז טאטוא מעורב מתווסף למעגל כדי לדמות דה-אוקסיגנציה מערכתית. גזים לפני או אחרי deoxygenator מושווים כדי להעריך את עליית החמצן על ידי הריאות.
  3. יש לכוון לחמצת נורמלית עם pH תקין (7.35-7.45) עם בולוסים של חיץ tris-hydroxymethyl aminomethane (THAM) (ראו טבלת חומרים).
    הערה: אלקלוזיס בדרך כלל אינו מתוקן ואינו עולה על 7.55. ניתן להוסיף מטאטא CO2 למעגל כדי לתקן זאת לנורמה או אם אלקלוזיס עולה על סף זה.
  4. יש לטפל ב-PaCO2 באופן מתירני והוא בדרך כלל בטווח של 10-20 מ"מ כספית.
    הערה: ערכים אלה מפורשים כסימן לאוורור משביע רצון. אלקטרוליטים אינם מותאמים במהלך ESLP, אך הם מנוטרים כחלק מניתוח ABG סטנדרטי. הלקטט יטפס במהלך משכי הזמן ההולכים וגדלים של ESLP, וכך גם אשלגן. נתרן נשאר יציב (135-145 mmol / L), וסידן הוא בדרך כלל נמוך. טבלה 4 מכילה תוצאות מדגם מייצגות של ניתוח ABGs perfusate במהלך ריצה של 12 שעות של NPV-ESLP בנורמותרמיה ו-30% תפוקת לב באמצעות פרפוזט תאי (דם + שבב).

13. הפסקת זילוח, אוורור וניתוק הריאות ממכשיר ESLP

  1. בדף הגדרה , לחץ על שרת כיבוי.
  2. הסירו את המכסה מהחדר. נתק את מתאם הרשות הפלסטינית מצינורית הרשות.
  3. להוציא את קנה הנשימה. כדי לקבוע את כמות היווצרות בצקת, לשקול את הריאות.
  4. קח ביופסיה 1 ס"מ3 רקמות של האונה האביזר ולחלק אותו לשלושה חלקים כפי שתואר לעיל.
  5. הפעל את ניתוחי הגזים הסופיים, בצע צנטריפוגות של דגימות הפרפוזט ואחסן את ביופסיות הרקמה כפי שתואר קודם לכן (שלב 4.4).
    הערה: הגדרות צנטריפוגה: מהירות, 112 x גרם; תאוצה, 9; האטה, 9; טמפרטורה, 4 °C, וזמן, 15 דקות משך.
  6. סגור את התוכנית; כל הנתונים המוקלטים יישמרו.
  7. בהתאם לפרוטוקולים מוסדיים, השליכו את הרקמות, הדם והחומרים הביו-אקטיביים שנותרו.
  8. נקו את עגלת ה-ESLP באמצעות חומר חיטוי לניקוי משטחים קשיח (למשל, 70% אתנול) והכניסו את כל הרכיבים לשימוש חוזר במקפיא בטמפרטורה של -20°C כדי להפחית את צמיחת החיידקים.

הגישה מוגבלת. התחברו או התחילו תקופת ניסיון כדי לצפות בתוכן זה.

תוצאות

בתחילת זילוח הריאות ואוורור (מצב שימור), הריאות יהיו בדרך כלל בעלות לחץ עורק ריאתי נמוך (< 10 מ"מ כספית) ותאימות דינמית נמוכה (< 10 מ"ל / מ"מ כספית) כאשר הפרפוזט מתחמם לנורמותרמיה. חזירי יורקשייר השוקלים 35-50 ק"ג גורמים בדרך כלל לריאות השוקלות 350-500 גרם. במהלך השעה הראשונה של NPV-ESLP, נפחי הגאות והשפל הנמדדים (TVe) הם 0-2 מ"ל/ק"ג, ונפחי הגאות והשפל ההשראתיים (TVi) הם 100-200 מ"ל. ה-TVe מגיע בדרך כלל ל-4-6 מ"ל/ק"ג תוך 3-6 שעות, ולאחר מכן עשוי להמשיך לעלות אך להתייצב באופן טבעי בטווח של 6-8 מ"ל/ק"ג. TVi תמיד יעלה...

הגישה מוגבלת. התחברו או התחילו תקופת ניסיון כדי לצפות בתוכן זה.

דיון

ישנם מספר שלבים כירורגיים קריטיים יחד עם פתרון בעיות הדרוש כדי להבטיח ריצה מוצלחת של ESLP. ריאות חזיריות צעירות הן עדינות ביותר בהשוואה לריאות אנושיות בוגרות, ולכן המנתח הרוכש חייב להיות זהיר בעת טיפול בריאות חזיריות. זה קריטי לנסות טכניקה "ללא מגע" כדי למנוע גרימת טראומה atelectasis בעת ניתוח הריאות. "ללא מגע" פירושו שימוש בכמות המינימלית של מניפולציה ידנית של הריאות במהלך הרכש. תמרוני גיוס בזמן ההנשמה במהלך ניתוח יעילים הרבה פחות בריאות חזיריות מאשר ריאות אנושיות. זה לא מומלץ להפנות אוויר באופן ידני דרך alveoli כפי שמב...

הגישה מוגבלת. התחברו או התחילו תקופת ניסיון כדי לצפות בתוכן זה.

גילויים

DHF מחזיקה בפטנטים על טכנולוגיה ושיטות זילוח איברים ex-situ . DHF ו-JN הם המייסדים ובעלי המניות העיקריים של Tevosol, Inc. .

תודות

מחקר זה מומן מטעם קרן המחקר של בית החולים.

הגישה מוגבלת. התחברו או התחילו תקופת ניסיון כדי לצפות בתוכן זה.

חומרים

רשימת החומרים שנעשה בהם שימוש במאמר זה
שםחברהמספר קטלוגהערות
0 ETHIBOND ירוק 1 x 36 אינץ' אנדו לולאה 0ETHICOND8573
2-0 משי שחור 12 אינץ' x 18 אינץ' גדיליםETHICONSA77G
ABL 800 FLEX מנתח גז דםרדיומטר989-963
מסנן אלקטרוסטטי למבוגרים-ילדים HME - קטןCovidien352/5877
מסנן עורקיSORIN GROUP01706/03
Backhaus מגבת מהדקפילינג454300
משאבת ביומדיקוסמקטBPX-80
קשרי כבלים – לבן 12 אינץ'HUASU InternationalHS4830001
סידן כלורידפישר מדעיC69-500G
Cooley Sternal RetractorPilling 341162
CUSHING Gutschdressing מלקחייםפילינג466200
D-גלוקוזSigma-AldrichG5767-500G
Deep Deaver RetractorPilling481826
Debakey ישר רקמת כלי דם מלקחייםפילינג351808
Debakey-Metzenbaum ניתוחפילינג342202
מספרייםפילינג342202
צינור אנדוטרכיאלי 9.0 מ"מ CUFDMallinckrodt9590Eהשרוול הוסר עבור מכשיר ESLP
מתמר זרימהBIO-PROBETX 40
סרום אלבומין אנושיGrifols Therapeutics2223708
משאבת עירויבקסטרAS50
Inspire 7 M מחמצן ממברנה סיבים חלוליםSORIN GROUPK190690
צינורות יירוט 1/4 אינץ' x 1/16 אינץ' x 8'Medtronic3108
צינורות יירוט 3/8 אינץ' x 3/32 אינץ' x 6'מדטרוניק3506
מחבר צינורות יירוט 3/8 אינץ' x 1/2 אינץ'Medtronic6013
MAYO ניתוחי מספרייםפילינג460420
מיכל פחמן דו חמצני רפואיPraxair5823115
מיכל חנקן רפואיPraxairNI MK
מיכל חמצן רפואיPraxairתא
Tevosol
PlasmaLyte ABaxterTB2544
Poole צינור יניקהפילינג162212
אשלגן פוספטפישר מדעיP285-500G
בקנה מידהTANITAKD4063611
תמיכת סיליקון ממברנהTevosol
נתרן ביקרבונטסיגמא-אולדריץ'792519-1KG
נתרן כלורי 0.9%בקסטרJB1324
סורין XTRA שומר תאיםSORIN GROUP75221
מסור חזהStryker6207
מכשיר צריבה כירורגיתKls MartinME411
חיישן טמפרטורה בדיקהOmniacell Tertia Srl1777288F
THAM BufferThermo Fisher Scientific15504020עשוי מתמר לחץ UltraPureTM Tris
TruWaveEdwardsVSYPX272
צנתר ורידי מרכזי דו-לומן 7frArrowg + ardCS-12702-E
Vorse Tubing ClampPilling351377
Willauer-Deaver RetractorPilling341720
פילינגצינור יניקה Yankauer162300
איברים 2014408

מקורות

  1. Chambers, D. C., et al. The international thoracic organ transplant registry of the international society for heart and lung transplantation: Thirty-fifth adult lung and heart-lung transplant report-2018; focus theme: Multiorgan transplantation. The Journal of Heart and Lung Transplantation. 37 (10), 1169-1183 (2018).
  2. Valapour, M., et al. OPTN/SRTR 2017 annual data report: Lung. American Journal of Transplantation. 19, Suppl 2 404-484 (2019).
  3. Chambers, D. C., et al. The registry of the international society for heart and lung transplantation: Thirty-fourth adult lung and heart-lung transplantation report-2017; focus theme: Allograft ischemic time. The Journal of Heart and Lung Transplantation. 36 (10), 1047-1059 (2017).
  4. Klein, A. S., et al. Organ donation and utilization in the united states, 1999-2008. American Journal of Transplantation. 10 (4), Pt 2 973-986 (2010).
  5. Singh, E., et al. Sequence of refusals for donor quality, organ utilization, and survival after lung transplantation. The Journal of Heart and Lung Transplantation. 38 (1), 35-42 (2019).
  6. Bhorade, S. M., Vigneswaran, W., McCabe, M. A., Garrity, E. R. Liberalization of donor criteria may expand the donor pool without adverse consequence in lung transplantation. The Journal of Heart and Lung Transplantation. 19 (12), 1199-1204 (2000).
  7. Snell, G. I., Griffiths, A., Levvey, B. J., Oto, T. Availability of lungs for transplantation: Exploring the real potential of the donor pool. The Journal of Heart and Lung Transplantation. 27 (6), 662-667 (2008).
  8. Cypel, M., et al. Normothermic ex vivo lung perfusion in clinical lung transplantation. The New England Journal of Medicine. 364 (15), 1431-1440 (2011).
  9. Wallinder, A., et al. Early results in transplantation of initially rejected donor lungs after ex vivo lung perfusion: A case-control study. European Journal of Cardio-Thoracic Surgery. 45 (1), 40-45 (2014).
  10. Cypel, M., et al. Experience with the first 50 ex vivo lung perfusions in clinical transplantation. The Journal of Thoracic and Cardiovascular Surgery. 144 (1), 1200-1206 (2012).
  11. Buchko, M. T., et al. Total parenteral nutrition in ex vivo lung perfusion: Addressing metabolism improves both inflammation and oxygenation. American Journal of Transplantation. 19 (12), 3390-3397 (2019).
  12. Andreasson, A. S. I., et al. Profiling inflammation and tissue injury markers in perfusate and bronchoalveolar lavage fluid during human ex vivo lung perfusion. European Journal of Cardio-Thoracic Surgery. 51 (3), 577-586 (2017).
  13. Sadaria, M. R., et al. Cytokine expression profile in human lungs undergoing normothermic ex-vivo lung perfusion. The Annals of Thoracic Surgery. 92 (2), 478-484 (2011).
  14. Ricard, J. D., Dreyfuss, D., Saumon, G. Ventilator-induced lung injury. European Respiratory Journal. 42, 2-9 (2003).
  15. Aboelnazar, N. S., et al. Negative pressure ventilation decreases inflammation and lung edema during normothermic ex-vivo lung perfusion. The Journal of Heart and Lung Transplantation. 37 (4), 520-530 (2018).
  16. Lai-Fook, S. J., Rodarte, J. R. Pleural pressure distribution and its relationship to lung volume and interstitial pressure. Journal of Applied Physiology. 70 (3), 967-978 (1991).
  17. Buchko, M. T., et al. Clinical transplantation using negative pressure ventilation ex situ lung perfusion with extended criteria donor lungs. Nature Communications. 11 (1), 5765(2020).
  18. Buchko, M. T., et al. A low-cost perfusate alternative for ex vivo perfusion. Transplantation Proceedings. 52 (10), 2941-2946 (2020).
  19. Forgie, K. A., et al. Left lung orthotopic transplantation in a juvenile porcine model for ESLP. The Journal of Visualized Experiments. , (2021).

הגישה מוגבלת. התחברו או התחילו תקופת ניסיון כדי לצפות בתוכן זה.

הדפסות חוזרות והרשאות

גלה מאמרים נוספים

השתלת ריאההערכת תפקודי ריאהפרפוזיה נורמותורמיתמטבוליזם ריאתישימור ריאות תורםטכניקת ביופסיה של הריאהאנליזה של גזי דםהתנגדות כלי דם ריאתיים
אוורור לחץ שלילי נורממי זילוח ריאות Ex Situ : הערכת תפקוד הריאות וחילוף החומרים
צרו קשר
המליצו לספרייה

פרטיות

תנאי שימוש

מדיניות

זכויות יוצרים © 2026 MyJoVE Corporation. כל הזכויות שמורות.