הרשמה ל-JoVE נדרשת לצפייה בתוכן זה. התחברו או התחילו בגרסת ניסיון בחינם.

מאמר שיטה

ביו-פרוספקציה של מיקרואורגניזמים אקסטרמופיליים לטיפול בזיהום סביבתי

3.7K צפיות

⸱

DOI:

10.3791/63453

⸱

30 בדצמבר 2021

 ,  ,  ,  ,  , 
1Department of Biology, University of Naples Federico II, 2Institute of Polymers, Composites and Biomaterials (IPCB), Consiglio Nazionale delle Ricerche CNR, 3Division of Biological Systems and Engineering, Lawrence Berkeley National Laboratory, 4BAT Center-Interuniversity Center for Studies on Bioinspired Agro-Environmental Technology, University of Napoli Federico II

במאמר זה

סיכום

הבידוד של מיקרובים עמידים למתכות כבדות ממעיינות גיאותרמיים הוא נושא חם לפיתוח מערכות ביולוגיות וניטור סביבתי. מחקר זה מספק גישה מתודולוגית לבידוד וזיהוי של חיידקים עמידים למתכות כבדות ממעיינות חמים.

תקציר

מעיינות גיאותרמיים עשירים ביוני מתכת שונים בשל האינטראקציה בין סלע למים המתרחשת באקוויפר העמוק. יתר על כן, בשל שונות עונתיות ב- pH ובטמפרטורה, תנודות בהרכב האלמנטים נצפות מעת לעת בסביבות קיצוניות אלה, ומשפיעות על קהילות המיקרוביאליות הסביבתיות. מיקרואורגניזמים אקסטרמופיליים המשגשגים בנביעות תרמיות געשיות פיתחו מנגנוני התנגדות לטיפול במספר יוני מתכת הנמצאים בסביבה, ובכך לוקחים חלק במחזורים ביו-גיאוכימיים מורכבים של מתכות. יתר על כן, אקסטרמופילים ומוצריהם מצאו דריסת רגל נרחבת בשוק, וזה נכון במיוחד לגבי האנזימים שלהם. בהקשר זה, האפיון שלהם פונקציונלי לפיתוח ביו-מערכות ועיבודים ביולוגיים לניטור סביבתי ולתיעוד ביולוגי. נכון להיום, הבידוד והטיפוח בתנאי מעבדה של מיקרואורגניזמים אקסטרמופיליים עדיין מהווים צוואר בקבוק לניצול מלא של הפוטנציאל הביו-טכנולוגי שלהם. עבודה זו מתארת פרוטוקול יעיל לבידוד של מיקרואורגניזמים תרמופיליים ממעיינות חמים, כמו גם את הזיהוי הגנוטיפי והפנוטיפי שלהם באמצעות השלבים הבאים: (1) דגימה של מיקרואורגניזמים מאתרים גיאותרמיים ("Pisciarelli", אזור וולקני של קמפי פלגרי בנאפולי, איטליה); (2) בידוד של מיקרואורגניזמים עמידים למתכות כבדות; (3) זיהוי מבודדים מיקרוביאליים; (4) אפיון פנוטיפי של המבודדים. המתודולוגיות המתוארות בעבודה זו עשויות להיות מיושמות באופן כללי גם לבידוד של מיקרואורגניזמים מסביבות קיצוניות אחרות.

מבוא

הסביבות הקיצוניות על פני כדור הארץ שלנו הן מקורות מצוינים של מיקרואורגניזמים המסוגלים לסבול תנאים קשים (כלומר, טמפרטורה, pH, מליחות, לחץ ומתכות כבדות)1,2, בהיותם איסלנד, איטליה, ארה"ב, ניו זילנד, יפן, מרכז אפריקה והודו, האזורים הגעשיים המוכרים והנחקרים ביותר 3,4,5,6,7,8,9 . תרמופילים התפתחו בסביבות קשות במגוון טמפרטורות מ 45 °C (76 °F) עד 80 °C (80 °F) 10,11,12 . מיקרואורגניזמים תרמופיליים, השייכים לממלכות הארכאיות או החיידקיות, הם מאגר לחקר המגוון הביולוגי, הפילוגנזה וייצור ביומולקולות בלעדיות ליישומים תעשייתיים 13,14,15,16. ואכן, בעשורים האחרונים, הביקוש התעשייתי המתמשך בשוק העולמי עודד ניצול של אקסטרמופילים ותרמוזימים ליישומיהם המגוונים במספר תחומים ביוטכנולוגיה 17,18,19.

מעיינות חמים, שבהם אורגניזמים חיים במאגדים, הם מקורות עשירים של מגוון ביולוגי, ולכן מייצגים בית גידול אטרקטיבי לחקר אקולוגיה מיקרוביאלית20,21. יתר על כן, אזורים עשירים במתכות געשיות אלה מיושבים בדרך כלל על ידי מיקרואורגניזמים שפיתחו מערכות עמידות כדי לשרוד ולהסתגל לנוכחות של מתכות כבדות22,23 ולכן הם מעורבים באופן פעיל במחזורים הביוגיאוכימיים שלהם. כיום, מתכות כבדות נחשבות למזהמים מועדפים עבור בני אדם והסביבה. המיקרואורגניזמים העמידים למתכות כבדות מסוגלים לבודד ולזרז מתכות על ידי הפיכתן ושיפוץ המערכות האקולוגיות שלהם24,25. ההבנה של המנגנונים המולקולריים של עמידות מתכות כבדות היא נושא חם עבור הדחיפות לפתח גישות ירוקות חדשות 26,27,28. בהקשר זה, הגילוי של חיידקים סובלניים חדשים מייצג את נקודת המוצא לפיתוח אסטרטגיות חדשות לשיקום ביולוגי סביבתי24,29. בליווי המאמצים לחקור סביבות הידרותרמיות באמצעות הליכים מיקרוביולוגיים ולהגביר את הידע על תפקידם של הגנים העומדים בבסיס הסבילות למתכות כבדות, נערכה בדיקה מיקרוביאלית באזור המעיין החם של קמפי פלגרי באיטליה. סביבה זו, העשירה במתכות כבדות, מראה פעילות הידרותרמית רבת עוצמה, פומרולה ובריכות רותחות, המשתנה ב-pH ובטמפרטורה בתלות בעונתיות, גשמים ותנועות גיאולוגיות תת-קרקעיות30. בפרספקטיבה זו, אנו מתארים דרך קלה ליישום ויעילה לבודד חיידקים העמידים בפני מתכות כבדות, לדוגמה, Geobacillus stearothermophilus GF1631 (שנקרא כבודד 1) ו- Alicyclobacillus mali FL1832 (שנקרא כבודד 2) מאזור Pisciarelli בקמפי פלגרי.

הגישה מוגבלת. התחברו או התחילו תקופת ניסיון כדי לצפות בתוכן זה.

פרוטוקול

1. דגימה של מיקרואורגניזמים מאתרים גיאותרמיים

  1. בחר את האתר לדגימה באמצעות כמקומות קריטריון עם הטמפרטורה הרצויה ו- pH. מדוד את הפרמטרים הפיזיקליים באמצעות בדיקה תרמית דיגיטלית, והכנס אותה לבריכות או לבוץ שנבחרו.
  2. לאסוף 20 גרם של דגימות קרקע (במקרה זה, מבוץ באתר הידרותרמי של Pisciarelli Solfatara), להרים אותם עם כפית מעוקרת. קח לפחות שתי דוגמאות עבור כל אתר שנבחר.
  3. שים את הדגימות בצינורות פוליפרופילן סטריליים של 50 מ"ל ומיד לסגור.
  4. מדוד pH וטמפרטורה באמצעות גשושית thermocouple דיגיטלית על ידי החדרתה ישירות לאתר הדגימה. לאחר השימוש, לשטוף את הבדיקה בזהירות עם מים deionized.

2. בידוד של מיקרואורגניזמים עמידים למתכות כבדות

הערה: בצע שלבים 2.1-2.7 תחת מכסה מנוע ביולוגי סטרילי.

  1. חסן 2 גרם מכל דגימה שנאספה לתוך 50 מ"ל של מדיום Luria-Bertani שהוכן לאחרונה (LB), שבו ה- pH הותאם ל-4 או 7 באמצעות תוספת של HCl או NaOH.
  2. הדגירה של הדגימות באותה טמפרטורה של אתר הדגימה ובטמפרטורה של ±5 מעלות צלזיוס (55 מעלות צלזיוס ו-60 מעלות צלזיוס לדגימות פיסיארלי) בשייקר מסלולי מבוקר טמפרטורה למשך 24 שעות עם קצב רעד של 180 סל"ד.
  3. צלחת 200 μL של הדגימות שגודלו על LB agar (pH 4 או pH 7) ודגירה במצב סטטי במשך 48 שעות ב 55 °C (55 °C ) או 60 ° C .
  4. מבודדים מושבות בודדות וחוזרים על מחזורי ציפוי פסים (שלבים 2.3 ו-2.4) לפחות שלוש פעמים.
  5. כדי להכין -80 מעלות צלזיוס מלאי תאים קפואים, לגדל את התרביות בן לילה (ON) ולהוסיף לתאים הגדלים 20% גליצרול (בנפח סופי של 1 מ"ל); השתמש בתערובת של אצטון וקרח יבש להקפאה מהירה.
  6. כדי להכין אינוקולום ממלאי גליצרול, לחסן 50 μL ב-50 מ"ל של LB (pH 4 או pH 6) ולדגום ב-55 °C או 60 °C (60 °C) בשייקר המסלולי ב-180 סל"ד ON.
  7. כדי לקבל פרופיל גדילה, דיללו קדם-תרבות (המתקבלת משלב 2.6) ל-0.1 OD600 ננומטר ב-10 מ"ל של LB (pH 4 או pH 6), הגדילו את התאים ב-55 °C או 60 °C במשך 16 שעות בשייקר המסלולי, ומדדו את OD600 ננומטר במרווחים של 30 דקות.
  8. בנה עקומת גדילה מהנתונים המתקבלים בשלב 2.7 עם זמן (דקה) על ציר X ו- OD600 ננומטר על ציר Y.
  9. לממש את אותה עקומת גדילה המתוארת בשלבים 2.7 ו-2.8, אך לשנות את ה-pH (± 1 יחידה) של מדיום התרבית (למשל, pH 3 ו-5 עבור דגימות שגודלו ב-pH 4) כדי לקבוע את ה-pH האופטימלי לתנאי מעבדה.

3. זיהוי מבודדים מיקרוביאליים

  1. הכנת דנ"א גנומי
    1. לחסן את המבודד המפוספס ממלאי הגליצרול ב-50 מ"ל של מדיום LB (pH 4 או pH 6) ולגדול בשייקר מסלולי ב-55 מעלות צלזיוס או 60 מעלות צלזיוס ב-180 סל"ד ON.
    2. קציר את תרבות ON על ידי צנטריפוגה במשך 10 דקות ב 5000 x g. השליכו את הסופרנאטנט.
    3. הכן 10 מ"ל של מאגר ליזה של חיידקים המורכב על ידי: 20 mM Tris-HCl pH 8.0, 2 mM EDTA, 1.2% Triton X-100, ו lysozyme (20 מ"ג / מ"ל) מיד לפני השימוש.
    4. החייאת הכדור ב-180 μL של חיידקים lysis buffer. אינקובציה למשך 30 דקות בטמפרטורה של 37 מעלות צלזיוס.
    5. עקוב אחר ההנחיות שצוינו על ידי ערכת טיהור דנ"א גנומית (טבלת חומרים) כדי לחלץ דנ"א גנומי.
    6. לכמת את הדנ"א הגנומי המופק ואת טוהרו על ידי מדידת UV-Vis. עבור טוהר לקבוע יחסים-OD 260/280 ננומטר ו- OD 260/230 ננומטר.
    7. הערך את שלמות הדנ"א הגנומי על ידי העמסת 200 ננוגרם של כל דגימה על ג'ל אגרוז של 0.8% והשוואת התפלגות הגודל לסמן מולקולרי בעל משקל גבוה.
    8. נציבות לשירות חיצוני את הכנת מקטעי rRNA 16S rRNA, ריצוף וניתוח השוואתי של הרצף המתקבל (1000 bp) עם אלה הנמצאים במאגר הנוקלאוטידים של המרכז הלאומי למידע ביוטכנולוגי בארה"ב (NCBI)33.
  2. כדי לאשש נתונים של ריצוף 16S rRNA, בצע גם ריבוטיפינג אוטומטי על הדנ"א הכרומוזומלי המעוכל (שירות חיצוני, טבלת חומרים).
  3. במקרה שבו לא ניתן לקבוע את זיהוי ה-specie רק באמצעות נתוני ריבוטיפ, הזמינו ניתוח MALDI-TOF MS לזיהוי חומצות שומן.
  4. כדי לבצע ניתוח פילוגנטי של הסוג שזוהה, לנתח את רצף 16S rRNA של המבודד עם BLASTn34. יש להשתמש ברצפים עם זהויות של 99% עד 97% כדי לבנות יישור רצפים מרובים באמצעות CLUSTAL Omega35. בנה עץ מצטרף לשכן באמצעות אפשרות ברירת המחדל של ClustalW2 (פילוגנזה פשוטה).

4. רגישות למתכות כבדות ואנטיביוטיקה

  1. לחסן את המבודד ממלאי גליצרול (ראה שלב 2.5) ולגדל אותו ב-200 מ"ל של LB בתנאי ה-pH והטמפרטורה האופטימליים שנקבעו קודם לכן.
  2. דיללו כל קדם-תרבות ב-0.1 OD600 ננומטר ב-5 מ"ל של מדיום LB (ב-pH המתאים) המכילים ריכוזים הולכים וגדלים של מתכות כבדות. הריכוזים נעים בין 0.01-120 mM עבור מתכות כבדות [As(V), As(III), Cd(II), Co(III), Cr(VI), Cu(II), Hg(II), Ni(II), Ni(II), V(V)] או 0.5-1 מ"ג/מ"ל לאנטיביוטיקה [אמפיצילין, בציטרצין, כלוראמפניקול, ציפרופלוקסצין, אריתרומיצין, קנאמיצין, סטרפטומיצין, טטרציקלין ואנקומיצין].
  3. לבצע טיפולים במתכת כבדה ואנטיביוטיקה בנפרד. השתמשו בצינור פוליפרופילן של 50 מ"ל והגדילו את התאים בשייקר מסלולי מבוקר טמפרטורה עם קצב רעד של 180 סל"ד ב-55 מעלות צלזיוס או 60 מעלות צלזיוס למשך 16 שעות לכל מצב/טיפול.
  4. חישוב ריכוז מעכב מינימלי (MIC) עבור אנטיביוטיקה או מתכות כבדות על ידי זיהוי ערכי הריכוז בצינורות שבהם לא מתרחשת צמיחה מיקרוביאלית, כלומר קביעת הערכים המעכבים לחלוטין את צמיחת התאים לאחר 16 שעות.
  5. בדוק שהריכוז מעכב ולא קטלני עבור התאים על ידי ציפוי 200 μL של התרבית שגדלה בערך שנחשב כ- MIC על צלחות LB-agar (ב- pH ובטמפרטורה המתאימים) ואימות נוכחות של מושבות לאחר דגירה ON.
    הערה: מכיוון שהתרבית על צלחת אגר LB היא בת קיימא בטמפרטורה של 4 מעלות צלזיוס רק למשך מספר שבועות, על מנת לשמר את המבודדים למשך זמן רב יותר, הוכנו מלאי הגליצרול ואוחסנו בטמפרטורה של -80 מעלות צלזיוס. לצורך קביעת MIC, בוצעו לפחות שלושה שכפולים עצמאיים באמצעות תרביות עצמאיות. סטיית התקן חושבה בין ניסויים משולשים.

הגישה מוגבלת. התחברו או התחילו תקופת ניסיון כדי לצפות בתוכן זה.

תוצאות

אתר הדגימה
פרוטוקול זה ממחיש שיטה לבידוד של חיידקים עמידים למתכות כבדות ממעיין חם. במחקר זה, אזור פיסיארלי, סביבה גיאותרמית חומצית-סולפידית, שימש כאתר דגימה (איור 1). מערכת אקולוגית זו מאופיינת בזרימה של נוזלי גופרית אגרסיביים שמקורם בפעילות געשית. הוכח כי הקהילות המיקרוביאליות במערכות גיאותרמיות חומציות-סולפידיות נתונות ללחץ סלקטיבי קיצוני שנוצר על ידי נוכחות של ריכוזים גבוהים של מתכות כבדות. הדגימות נאספו בשתי תקופות שונות של השנה (אפריל וספטמבר) מ-2,21...

הגישה מוגבלת. התחברו או התחילו תקופת ניסיון כדי לצפות בתוכן זה.

דיון

מעיינות חמים מכילים מגוון לא מנוצל של מיקרוביום עם יכולות מטבוליות מגוונות באותה מידה12. פיתוח אסטרטגיות לבידוד של מיקרואורגניזמים שיכולים להמיר ביעילות מתכות כבדות לתרכובות פחות רעילות10 מייצג תחום מחקר בעל עניין הולך וגובר ברחבי העולם. מאמר זה נועד לתאר גישה יעילה לסינון ובידוד של מיקרובים עם היכולת להתנגד לכימיקלים רעילים. ניתן לשנות בקלות את השיטה המתוארת כדי לבודד מיקרובים ממקורות סביבתיים מגוונים כגון מים, מזון, אדמה או משקעים. עם זאת, ישנן כמה מגבלות בטכניקה זו הקשור...

הגישה מוגבלת. התחברו או התחילו תקופת ניסיון כדי לצפות בתוכן זה.

גילויים

המחברים מצהירים כי אין להם ניגודי עניינים.

תודות

עבודה זו נתמכה על ידי ERA-NET Cofund MarTERA: "FLAshMoB: כימרה עמילואידית פונקציונלית לביוסנסינג ימי", PRIN 2017-PANACEA CUP:E69E19000530001 ועל ידי GoodbyWaste: להשיג מוצריGOOD-ניצול על-ידי-מוצרים-להפחית פסולת, MIUR 2017-JTNK78.006, איטליה. אנו מודים לד"ר מוניקה פיוצ'י ולד"ר אנג'לה מורמונה (Istituto Nazionale di Geofisica e Vulcanologia, Sezione di Napoli Osservatorio Vesuviano, איטליה) על הזיהוי והאפיון של האתר הגיאותרמי.

הגישה מוגבלת. התחברו או התחילו תקופת ניסיון כדי לצפות בתוכן זה.

חומרים

רשימת החומרים שנעשה בהם שימוש במאמר זה
שםחברהמספר קטלוגהערות
AmpicillinSigma AldrichA9393
Aura Minibio air s.c.r.l.ברדס ביולוגי
בציטראציןסיגמא אולדריץ'B0125
קדמיום כלורידסיגמא אולדריץ202908
כלורמפניקולסיגמא אולדריץC0378
ציפרופלוקסציןסיגמא אולדריץ'17850
קובלט כלורידסיגמא אולדריץ'C8661
נחושת כלורידסיגמא אולדריץ'224332
אריתרומיציןסיגמא אולדריץ'E5389
שירות חיצוניDSMZמכון לייבניץ DSMZ-אוסף גרמני של מיקרואורגניזמים ותרביות תאים GmbH
ערכת טיהור DNA גנומיתרמו מדעי#K0721
קנמיצין סולפטסיגמא אולדריץ'60615
MaxQTM 4000 שייקר אורביטלי BenchtopThermo ScientificSHKE4000
כספית כלורידסיגמא אולדריץ'215465
NanoDrop 1000 ספקטרופוטומטרתרמו סיינטיפיק
ניקל כלורידסיגמא אולדריץ'654507
אוריון כוכב A221 מד pH ניידתרמו סיינטיפיקSTARA2218
נתרן (מטה) ארסניטסיגמא אולדריץ'S7400
נתרן ארסן דו-בסיסי הפטהידראטסיגמא אולדריץ'A6756
נתרן כלוריסיגמא אולדריץ'S5886
סטרפטומיציןסיגמא אולדריץ'S6501
טטרציקליןסיגמא אולדריץ'87128
טריפטון ביוכימיהApplichem PanreacA1553
ונקומיציןסיגמא אולדריץ' PHR1732
תמצית שמרים לביולוגיה מולקולריתApplichem Panreac  א3732
' '

מקורות

  1. Arora, N. K., Panosyan, H. Extremophiles: applications and roles in environmental sustainability. Environmental Sustainability. 2, 217-218 (2019).
  2. Gallo, G., Puopolo, R., Carbonaro, M., Maresca, E., Fiorentino, G. Extremophiles, a nifty tool to face environmental pollution: From exploitation of metabolism to genome engineering. International Journal of Environmental Research and Public Health. 18 (10), 5228(2021).
  3. Saxena, R., et al. Metagenomic analysis of hot springs in Central India reveals hydrocarbon degrading thermophiles and pathways essential for survival in extreme environments. Frontiers in Microbiology. 7, 2123(2017).
  4. Papke, R. T., Ramsing, N. B., Bateson, M. M., Ward, D. M. Geographical isolation in hot spring cyanobacteria. Environmental Microbiology. 5 (8), 650-659 (2003).
  5. Zitelle, L., Lan Pe, N. I. al The role of photosynthesis and CO2 evasion in travertine formation: a quantitative investigation at an important travertine-depositing hot spring. Journal of the Geological Society. 164, 843-853 (2007).
  6. Kubo, K., Knittel, K., Amann, R., Fukui, M., Matsuura, K. Sulfur-metabolizing bacterial populations in microbial mats of the Nakabusa hot spring. Japan. Systematic and Applied Microbiology. 34 (4), 293-302 (2011).
  7. Siljeström, S., Li, X., Brinckerhoff, W., van Amerom, F., Cady, S. L. ExoMars mars organic molecule analyzer (MOMA) laser desorption/ionization mass spectrometry (LDI-MS) analysis of phototrophic communities from a silica-depositing hot spring in Yellowstone national park, USA. Astrobiology. , (2021).
  8. Aulitto, M., Tom, L. M., Ceja-Navarro, J. A., Simmons, B. A., Singer, S. W. Whole-genome sequence of Brevibacillus borstelensis SDM, isolated from a sorghum-adapted microbial community. Microbiology Resource Announcements. 9 (48), 8-9 (2020).
  9. Antranikian, G., et al. Diversity of bacteria and archaea from two shallow marine hydrothermal vents from Vulcano Island. Extremophiles. 21 (4), 733-742 (2017).
  10. Gallo, G., Puopolo, R., Limauro, D., Bartolucci, S., Fiorentino, G. Metal-tolerant thermophiles: from the analysis of resistance mechanisms to their biotechnological exploitation. The Open Biochemistry Journal. 12 (1), 149-160 (2018).
  11. Aulitto, M., et al. Draft genome sequence of Bacillus coagulans MA-13, a thermophilic lactic acid producer from lignocellulose. Microbiology Resource Announcements. 8 (23), 341-360 (2019).
  12. Mehta, D., Satyanarayana, T. Diversity of hot environments and thermophilic microbes. Thermophilic Microbes in Environmental and Industrial Biotechnology: Biotechnology of Thermophiles. , Springer. Dordrecht. (2013).
  13. Fusco, S., et al. The interaction between the F55 virus-encoded transcription regulator and the RadA host recombinase reveals a common strategy in Archaea and Bacteria to sense the UV-induced damage to the host DNA. Biochimica et Biophysica Acta - Gene Regulatory Mechanisms. 1863 (5), (2020).
  14. Puopolo, R., et al. Self-assembling thermostable chimeras as new platform for arsenic biosensing. Scientific Reports. 11 (1), (2021).
  15. Fiorentino, G., Contursi, P., Gallo, G., Bartolucci, S., Limauro, D. A peroxiredoxin of Thermus thermophilus HB27: Biochemical characterization of a new player in the antioxidant defence. International Journal of Biological Macromolecules. 153, 608-615 (2020).
  16. Fiorentino, G., Del Giudice, I., Bartolucci, S., Durante, L., Martino, L., Del Vecchio, P. Identification and physicochemical characterization of BldR2 from Sulfolobus solfataricus, a novel archaeal member of the MarR transcription factor family. Biochemistry. 50 (31), 6607-6621 (2011).
  17. Bhattacharya, A., Gupta, A. G. Microbial Extremozymes. Current trends in applicability of thermophiles and thermozymes in bioremediation of environmental pollutants. , Elsevier, Academic Press. 161-176 (2022).
  18. Aulitto, M., et al. Prebiotic properties of Bacillus coagulans MA-13: Production of galactoside hydrolyzing enzymes and characterization of the transglycosylation properties of a GH42 β-galactosidase. Microbial Cell Factories. 20 (1), 1-18 (2021).
  19. Ing, N., et al. A multiplexed nanostructure-initiator mass spectrometry (NIMS) assay for simultaneously detecting glycosyl hydrolase and lignin modifying enzyme activities. Scientific Reports. 11 (1), 11803(2021).
  20. Saw, J. H. W. Characterizing the uncultivated microbial minority: towards understanding the roles of the rare biosphere in microbial communities. mSystems. 6 (4), 0077321(2021).
  21. He, Q., et al. Temperature and microbial interactions drive the deterministic assembly processes in sediments of hot springs. Science of the Total Environment. 772, 145465(2021).
  22. Shakhatreh, M. A. K., et al. Microbiological analysis, antimicrobial activity, and heavy-metals content of Jordanian Ma'in hot-springs water. Journal of Infection and Public Health. 10 (6), 789-793 (2017).
  23. Antonucci, I., et al. An ArsR/SmtB family member regulates arsenic resistance genes unusually arranged in Thermus thermophilus HB27. Microbial Biotechnology. 10 (6), 1690-1701 (2017).
  24. Ozdemir, S., Kılınç, E., Poli, A., Nicolaus, B. Biosorption of Heavy Metals (Cd 2+, Cu 2+ , Co 2+ , and Mn 2+ ) by Thermophilic Bacteria, Geobacillus thermantarcticus and Anoxybacillus amylolyticus Equilibrium and Kinetic Studies. Bioremediation Journal. 17 (2), 86-96 (2013).
  25. Hlihor, R. -M., Apostol, L. -C., Gavrilescu, M. Environmental bioremediation by biosorption and bioaccumulation: Principles and applications. Enhancing Cleanup of Environmental Pollutants: Volume 1: Biological Approaches. , Springer. Cham. 289-315 (2017).
  26. Del Giudice, I., Limauro, D., Pedone, E., Bartolucci, S., Fiorentino, G. A novel arsenate reductase from the bacterium Thermus thermophilus HB27: its role in arsenic detoxification. Biochimica et Biophysica Acta (BBA)-Proteins and Proteomics. 1834 (10), 2071-2079 (2013).
  27. Politi, J., Spadavecchia, J., Fiorentino, G., Antonucci, I., Casale, S., De Stefano, L. Interaction of Thermus thermophilus ArsC enzyme and gold nanoparticles naked-eye assays speciation between As(III) and As(V). Nanotechnology. 26 (43), 435703(2015).
  28. Antonucci, I., et al. Characterization of a promiscuous cadmium and arsenic resistance mechanism in Thermus thermophilus HB27 and potential application of a novel bioreporter system. Microbial Cell Factories. 17 (1), (2018).
  29. Ilyas, S., Lee, J. C., Kim, B. S. Bioremoval of heavy metals from recycling industry electronic waste by a consortium of moderate thermophiles: Process development and optimization. Journal of Cleaner Production. 70, 194-202 (2014).
  30. Piochi, M., Mormone, A., Strauss, H., Balassone, G. The acid-sulfate zone and the mineral alteration styles of the Roman Puteolis (Neapolitan area, Italy): clues on fluid fracturing progression at the Campi Flegrei volcano. Solid Earth. 10 (6), 1809-1831 (2019).
  31. Puopolo, R., et al. Identification of a new heavy-metal-resistant strain of Geobacillus stearothermophilus isolated from a hydrothermally active volcanic area in southern Italy. International Journal of Environmental Research and Public Health. 17 (8), 2678(2020).
  32. Aulitto, M., et al. Genomic insight of Alicyclobacillus mali FL18 isolated from an Arsenic-rich hot spring. Frontiers in Microbiology. 12, 639697(2021).
  33. Agarwala, R., et al. Database resources of the National Center for Biotechnology Information. Nucleic Acids Research. 46, 8-13 (2018).
  34. Altschul, S. F., et al. Gapped BLAST and PSI-BLAST: a new generation of protein database search programs. Nucleic Acids Research. 25 (17), 3389-3402 (1997).
  35. Sievers, F., Higgins, D. G. Clustal Omega. Current Protocols in Bioinformatics. 2014, 1-16 (2014).
  36. Kliem, M., Sauer, S. The essence on mass spectrometry based microbial diagnostics. Current Opinion in Microbiology. 15 (3), 397-402 (2012).
  37. Madeira, F., et al. The EMBL-EBI search and sequence analysis tools APIs in 2019. Nucleic Acids Research. 47, 636-641 (2019).
  38. Piochi, M., Mormone, A., Balassone, G., Strauss, H., Troise, C., De Natale, G. Native sulfur, sulfates and sulfides from the active Campi Flegrei volcano (southern Italy): Genetic environments and degassing dynamics revealed by. Journal of Volcanology and Geothermal Research. 301, 180-193 (2015).
  39. Hsu, H. -C., et al. Assessment of temporal effects of a mud volcanic eruption on the bacterial community and their predicted metabolic functions in the mud volcanic sites of Niaosong, Southern Taiwan. Nicroorganisms. 9 (11), 2315(2021).
  40. Ye, J., Rensing, C., Su, J., Zhu, Y. G. From chemical mixtures to antibiotic resistance. Journal of Environmental Sciences (China). 62, 138-144 (2017).
  41. Farias, P., et al. Natural hot spots for gain of multiple resistances: arsenic and antibiotic resistances in heterotrophic, aerobic bacteria from marine hydrothermal vent fields. Applied and Environmental Microbiology. 81 (7), 2534-2543 (2015).
  42. Aulitto, M., Fusco, S., Nickel, D. B., Bartolucci, S., Contursi, P., Franzén, C. J. Seed culture pre-adaptation of Bacillus coagulans MA-13 improves lactic acid production in simultaneous saccharification and fermentation. Biotechnology for Biofuels. 12 (1), 45(2019).

הגישה מוגבלת. התחברו או התחילו תקופת ניסיון כדי לצפות בתוכן זה.

הדפסות חוזרות והרשאות

תגיות

עמידות למתכות כבדותביו-רמדיאציה סביבתיתמעיינות גיאותרמייםבידוד מיקרוביאליאפיון פנוטיפימיצוי DNA גנומיריכוז מעכב מינימליעמידות לאנטיביוטיקהמחזורים ביו-גיאו-כימיים
ביו-פרוספקציה של מיקרואורגניזמים אקסטרמופיליים לטיפול בזיהום סביבתי
צרו קשר
המליצו לספרייה

פרטיות

תנאי שימוש

מדיניות

זכויות יוצרים © 2026 MyJoVE Corporation. כל הזכויות שמורות.