קביעת קינטיקה במבחנה והפעלה תאית עבור אפטאמרים של RNA פלואורוגניים

Madeline M. Mumbleau; Madeline R. Meyer; Ming C. Hammond

doi:10.3791/64367

מאמר שיטה

קביעת קינטיקה במבחנה והפעלה תאית עבור אפטאמרים של RNA פלואורוגניים

DOI:

10.3791/64367

⸱

9 באוגוסט 2022

Madeline M. Mumbleau^*¹ , Madeline R. Meyer^*¹ , Ming C. Hammond¹

¹Department of Chemistry and Henry Eyring Center for Cell & Genome Science, University of Utah

^* These authors contributed equally

במאמר זה

סיכום

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

הפרוטוקול מציג שתי שיטות לקביעת הקינטיקה של הרנ"א הפלואורוגני אפטאמרים תרד2 וברוקולי. השיטה הראשונה מתארת כיצד למדוד קינטיקה פלואורוגנית של אפטמר במבחנה באמצעות קורא צלחת, ואילו השיטה השנייה מפרטת את מדידת הקינטיקה הפלואורוגנית של אפטמר בתאים על ידי ציטומטריה של זרימה.

תקציר

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

אפטאמרים פלואורוגניים של RNA יושמו בתאים חיים כדי לתייג ולהמחיש רנ"א, לדווח על ביטוי גנים ולהפעיל ביוסנסורים פלואורסצנטיים המזהים רמות של מטבוליטים ומולקולות איתות. על מנת לחקור את השינויים הדינמיים בכל אחת מהמערכות הללו, רצוי לקבל מדידות בזמן אמת, אך דיוק המדידות תלוי בקינטיקה של התגובה הפלואורוגנית שתהיה מהירה יותר מתדר הדגימה. במאמר זה נתאר שיטות לקביעת הקינטיקה החוץ-גופית והתאית עבור אפטאמרים פלואורוגניים של RNA באמצעות קורא צלחות המצויד במזרק דגימה וציטומטר זרימה, בהתאמה. אנו מראים כי ניתן למדל את הקינטיקה במבחנה עבור הפעלת הפלואורסצנציה של האפטמרים תרד2 וברוקולי כתגובות אסוציאציה דו-פאזיות ויש להם קבועי קצב פאזה מהירים שונים של 0.56 s−1 ו- 0.35 s⁻¹, בהתאמה. בנוסף, אנו מראים כי הקינטיקה התאית להפעלת פלואורסצנטיות של תרד2 ב-Escherichia coli, המוגבלת עוד יותר על ידי דיפוזיית צבע לחיידקים גראם-שליליים, עדיין מהירה מספיק כדי לאפשר תדירות דגימה מדויקת על ציר הזמן הדק. שיטות אלה לניתוח קינטיקה של הפעלת פלואורסצנציה ישימות לאפטמרים פלואורוגניים אחרים של RNA שפותחו.

מבוא

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

תגובות פלואורוגניות הן תגובות כימיות היוצרות אות פלואורסצנטי. אפטאמרים פלואורוגניים של RNA בדרך כלל מבצעים את הפונקציה הזו על-ידי קשירת צבע מולקולה קטנה כדי לשפר את התפוקה הקוונטית הפלואורסצנטית שלה (איור 1A)¹. פותחו מערכות אפטמר RNA פלואורוגניות שונות המורכבות מרצפי RNA אפטמר ספציפיים ומליגנדות הצבע^{המתאימות 1}. אפטאמרים של RNA פלואורוגניים צורפו לתעתיקי RNA כתגי פלואורסצנט המאפשרים הדמיה של תאים חיים של mRNA ו-RNAs^שאינם מקודדים ^2,3,4. הם גם הוצבו לאחר רצפי מקדמים כמדווחים פלואורסצנטיים של ביטוי גנים, בדומה לשימוש בחלבון פלואורסצנטי ירוק (GFP) כמדווח, אלא שפונקציית הדיווח היא ברמת RNA ^5,6. לבסוף, אפטאמרים של RNA פלואורוגניים שולבו בביוסנסורים פלואורסצנטיים מבוססי RNA, שנועדו לעורר את התגובה הפלואורוגנית בתגובה למולקולה קטנה ספציפית. ביוסנסורים פלואורסצנטיים מבוססי RNA פותחו להדמיית תאים חיים של מטבוליטים שונים שאינם פלואורסצנטיים ומולקולות איתות 7,8,9,10,11.

יש עניין גובר בפיתוח אפטמרים של RNA פלואורוגניים כדי לדמיין שינויים דינמיים בלוקליזציה של RNA, ביטוי גנים ואותות של מולקולות קטנות. עבור כל אחד מהיישומים הללו, רצוי לקבל מדידות בזמן אמת, אך הדיוק של המדידות תלוי בקינטיקה של התגובה הפלואורוגנית להיות מהירה יותר מתדר הדגימה. במאמר זה נתאר שיטות לקביעת הקינטיקה במבחנה עבור רנ"א פלואורוגני אפטאמרים תרד2 12 וברוקולי¹³ באמצעות קורא צלחות המצויד במזרק דגימה ולקביעת הקינטיקה הדלקתית התאית עבור^תרד2 המתבטאת ב-Escherichia coli באמצעות ציטומטר זרימה. שני אפטאמרים אלה של RNA נבחרו מכיוון שהם יושמו כדי לחקור לוקליזציה של RNA ^2,3,4, הם שימשו בכתבים ^5,6 וביוסנסורים 7,8,9,10,11^, וליגנדות הצבע המתאימות (DFHBI או DFHBI-1T) זמינות מסחרית. סיכום של תכונותיהם במבחנה שנקבעו בספרות מובא בטבלה 1 4,13,14, אשר ביססה את התפתחות הפרוטוקול (למשל^, אורכי הגל וריכוזי הצבעים שבהם נעשה שימוש). תוצאות אלה מראות כי התגובות הפלואורוגניות המושפעות מאפטאמרים של RNA הן מהירות ואינן אמורות לעכב מדידות מדויקות עבור היישומים הביולוגיים הרצויים של התא.

הגישה מוגבלת. התחברו או התחילו תקופת ניסיון כדי לצפות בתוכן זה.

פרוטוקול

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

1. ניסוי קינטיקה במבחנה

הכנת תבניות DNA על ידי PCR
1. הגדר תגובות PCR: כדי להכין תגובות PCR, שלב את הריאגנטים הבאים בצינור PCR בעל דופן דקה:
  33 μL של מים מזוקקים כפולים (ddH₂O)
  10 μL של מאגר 5x עבור DNA פולימראז באיכות גבוהה
  5 μL של 2 mM כל טריפוספט דאוקסיריבונוקלאוזיד (dNTP)
  0.5 μL של פריימר קדמי של 40 μM
  0.5 μL של פריימר הפוך 40 μM
  0.5 μL (10-100 ננוגרם) של תבנית DNA (עבור תרד2 PCR בלבד; פריימרים ברוקולי חופפים)
  0.5 μL של DNA פולימראז בעל נאמנות גבוהה (הוסף אחרון)
  הערה: אוליגונוקלאוטידים סינתטיים נשלחים לעתים קרובות יבשים. כדי להכין פתרונות מלאי, הוסף נפח ידוע (מומלץ 100 μL) של ddH₂O, ומדוד את A₂₆₀ של תמיסה זו כדי לקבוע את הריכוז על ידי חוק באר, שבו מקדם ההכחדה יכול להיות מחושב על ידי הכללים של השכן הקרוב ביותר באינטרנט. לאחר מכן ניתן להשתמש בפתרון מלאי זה כדי לבצע דילולים המתאימים לשימוש ב- PCR.
2. הפעל את פרוטוקול התרמו-ציקלר.
  1. השתמש בפרוטוקול התרמוציקלר הבא כדי להגביר תבניות דנ"א באורך מלא של תרד2 וברוקולי:
    דנטורציה ראשונית: 98 מעלות צלזיוס למשך 2 דקות
    35 מחזורים:
    דנטורציה: דנטורציה של 98 מעלות צלזיוס למשך 15 שניות
    חישול: 72 מעלות צלזיוס למשך 30 שניות
    הארכה:72 מעלות צלזיוס למשך 30 שניות
    הארכה סופית: 72°C למשך 5 דקות.
  2. לאחר התגובה, לנתח aliquot קטן של המוצר על ידי 2% ג'ל agarose יחד עם סולם משקל מולקולרי נמוך (טווח גודל: 25-766 נוקלאוטידים) כדי לאשר את נוכחותו של מוצר ה- DNA הרצוי.
  3. טהרו את המוצר על ידי מיצוי ג'ל מסחרי או ערכות ניקוי PCR והתחמקו עם ddH₂O או החיץ המסופק על ידי היצרן.
    הערה: ודא בעת בחירת ערכת ניקוי PCR כי חתך המשקל המולקולרי של העמודה נמוך מספיק כדי לשמור על T7-ברוקולי (81 נוקלאוטידים), אחרת מוצר ה-PCR יאבד.
    הערה: נקודת השהיה אופציונלית: אחסן את הדנ"א ב- −20 °C.
הכנת תרד2 וברוקולי RNA על ידי שעתוק חוץ גופי (IVT)
1. הגדר את תגובות השעתוק.
  1. כדי להכין תגובת שעתוק של 100 μL, שלב את הריאגנטים הבאים בצינור מיקרוצנטריפוגה של 1.5 מ"ל: 10 μL של 10x מאגר שעתוק + 20 μL של 10 mM ריבונוקלאוזיד טריפוספטים (rNTPs) + 1-64 μL של תבנית DNA (סה"כ 1 מיקרוגרם) + 2 μL של pyrophosphatase אנאורגני + ddH 2 O עד 98 μL +₂μL של T7 RNA פולימראז (להוסיף אחרון).
  2. לדגום תגובה זו במשך 4 שעות ב 37 מעלות צלזיוס. הרוות את התגובה על ידי הוספת 100 μL של 2x מאגר העמסת ג'ל אוריאה (2x ULB), המורכב מ-20% סוכרוז, 0.1% נתרן דודציל סולפט (SDS), חיץ טריס-בוראט-EDTA (1x TBE) ו-~18 M אוריאה.
    הערה: נקודת השהיה אופציונלית: אחסן את התגובה המרווה ב- −20 °C.
אלקטרופורזה בג'ל פוליאקרילאמיד (PAGE) טיהור RNA
1. טיהור דף של תרד2 וברוקולי RNA
  אזהרה: אקרילאמיד שאינו פולימרי (נוזלי או אבקתי) הוא רעיל ביותר. אם אתם שוקלים אבקת אקרילאמיד, עשו זאת במכסה אדים. תמיד ללבוש ציוד מגן מתאים מיד להסיר כפפות מזוהמות עם אבקת אקרילאמיד או פתרון, לשטוף ידיים ביסודיות. אם אקרילאמיד בא במגע ישיר עם העור, יש לשטוף את האזור החשוף למשך 15 דקות לפחות במים וסבון. אם אקרילאמיד בא במגע ישיר עם העיניים, יש לשטוף אותן במים למשך 15 דקות.
  1. הכן את ג'ל PAGE: כדי להסיר תעתיקים לא רצויים של הפלות ו- rNTPs לא מגיבים מהמוצר באורך מלא, הכן ג'ל אוריאה-פוליאקרילאמיד של 6%. באופן כללי, 28 ס"מ x 16.5 ס"מ x 1.5 מ"מ ג'לים ניתן להשתמש עם מסרק 8 באר. הגדר את ציוד הג'ל והאלקטרופורזה, באמצעות חיץ TBE 1x למילוי המאגרים.
  2. טען דגימות RNA בג'ל PAGE: טען את הג'ל עם תגובה אחת מרוותה של 200 μL לכל נתיב. בנתיב נפרד, טען 2x ULB עם צבעי גשש קסילן ציאנול וכחול ברומופנול, אשר נודדים בג'ל ב 106 נוקלאוטידים ו 26 נוקלאוטידים, בהתאמה¹⁵. השאירו נתיב ריק בין כל דגימה כדי למנוע זיהום פוטנציאלי בשלבים הבאים.
  3. הפעל את ג'ל PAGE: כדי להפריד בין 95-nt תרד 2 וברוקולי 49-nt מהמוצרים החתוכים שלהם בהתאמה, הפעל את הג'ל במשך 1.5-2 שעות ב 25 W, ואז הצבע הכחול ברומופנול יעבור ~ 5/6 מאורך הג'ל.
  4. דמיינו את דגימות ה-RNA בג'ל PAGE: פרקו את לוחות הזכוכית סביב הג'ל וכסו את הג'ל בניילון נצמד משני הצדדים, תוך סימון הנתיבים על העטיפה. דמיינו פסי RNA בחדר חשוך על ידי הצללת UV על ידי הנחת הג'ל העטוף על צלחת TLC פלואורסצנטית תחת אור UV. שרטטו במהירות את הקצה של רצועות ה-RNA המתאימות למוצר בעזרת סמן וכבו את מנורת ה-UV כדי למזער את הנזק מחשיפה לקרינת UV.
  5. הבלו וחלץ את דגימות ה-RNA מג'ל ה-PAGE: עם סכין גילוח טרי לכל דגימה, הוציאו את רצועות המוצר הרצויות, הכניסו קוביות לקוביות של ~1 מ"מ, והוסיפו את חתיכות הג'ל לצינור מיקרוצנטריפוגה של 2 מ"ל עם 500 μL של חיץ ספיגת קראש כדי לחלץ RNA על מסובב למשך שעתיים בטמפרטורת החדר (RT) או לילה בטמפרטורה של 4 מעלות צלזיוס.
    הערה: נקודת השהיה אופציונלית: הדגימה עשויה להיות מאוחסנת ב- −20 °C.
  6. לזרז את הרנ"א
    1. כדי להפריד את חתיכות הג'ל מהרנ"א שחולץ במאגר, צנטריפוגה של הדגימה ב 13,000 x g במשך 20 דקות ב 4 מעלות צלזיוס, ולאחר מכן להשתמש פיפטה צרת קצה כדי לחלץ את supernatant ולהעמיס אותו לתוך צינור microcentrifuge חדש 2 מ"ל.
    2. כדי לזרז את הרנ"א, הוסיפו 1.5 מ"ל של אתנול קר כקרח ו-1 μL של 20 מ"ג/מ"ל גליקוגן, מערבולת, ואחסנו לפחות שעה אחת ב-−20 מעלות צלזיוס או −80 מעלות צלזיוס.
      הערה: נקודת השהיה אופציונלית: ניתן לאחסן את הרנ"א בטמפרטורה של −20 °C למשך מספר חודשים.
  7. אוסף של משקע RNA: גלולה את הרנ"א המזורז על ידי צנטריפוגה ב 13,000 x g במשך 20 דקות ב 4 מעלות צלזיוס. הסר את הסופר-נאטנט ואפשר לאתנול הנותר להתאדות באוויר הפתוח (~1 שעות) לפני החייאת הכדור ב-30 μL של ddH₂O או 1x TE buffer.
    הערה: תהליך זה מביא בדרך כלל לריכוז RNA סופי של ~10 μM.
    הערה: נקודת השהיה אופציונלית: דגימת הרנ"א עשויה להיות מאוחסנת בטמפרטורה של −20 °C למשך מספר חודשים.
2. קבע את ריכוזי מלאי ה- RNA.
  1. הכינו RNA aliquot לתגובת ההידרוליזה.
    1. כדי לבצע בדיקה זו, תחילה, השתמש בספקטרופוטומטר ננו UV/Vis כדי לקבוע את A₂₆₀ של דגימת ה-RNA של המניה ולבצע אליקוט מדולל של הדגימה ל~10 יחידות ספיגה (AU) ב-ddH₂O.
    2. הכן את התגובה הבאה בצינור PCR של 0.5 מ"ל: 16 μL של ddH 2 O + 2 μL של 10x Na 2 CO₃ מאגר +₂μL של RNA aliquot מדולל ל ~ 10 AU. לדגום את התגובה במשך 90 דקות ב 95 מעלות צלזיוס, ולאחר מכן לאפשר לו להתקרר RT.
  2. קבע את ריכוז ה-RNA באמצעות ספיגת נוקלאוטידים: מדוד את ה-A₂₆₀ של דגימה זו באמצעות ספקטרופוטומטר ננו-UV/Vis וחשב את ריכוז ה-RNA באמצעות הנוסחה הבאה:
    
    כאשר c הוא ריכוז הרנ"א, b הוא אורך הנתיב, i הוא הנוקלאוטיד הספציפי (A, C, G או U), n i הוא התדירות של נוקלאוטיד i ברצף הרנ"א, ו-ε i הוא מקדם ההכחדה הטוחנת של נוקלאוטיד _i. כדי לקבוע את ריכוז ה-RNA המקורי של המניה, הכפל את c בגורם הדילול.
    הערה: נקודת השהיה אופציונלית: ניתן לאחסן את הרנ"א בטמפרטורה של −20 °C למשך מספר חודשים.
ביצוע in vitro מבחן קינטיקה של קורא צלחות
1. הגדר את תוכנית רנטורציה של RNA: צור את פרוטוקול התרמו-ציקלר הבא על-ידי בחירה באפשרות צור תוכנית חדשה > הוסף שלב חדש > הוסף שלב חדש מספר פעמים כדי להוסיף כל אחד מהשלבים הבאים לפני לחיצה על שמור:
  70 מעלות צלזיוס למשך 3 דקות
  65 מעלות צלזיוס למשך 45 שניות
  60 מעלות צלזיוס למשך 45 שניות
  55 מעלות צלזיוס למשך 45 שניות
  50 מעלות צלזיוס למשך 45 שניות
  45 מעלות צלזיוס למשך 45 שניות
  40 מעלות צלזיוס למשך 45 שניות
  35 מעלות צלזיוס למשך 45 שניות
  30 מעלות צלזיוס למשך 45 שניות
2. טבע מחדש של הרנ"א: כדי ליצור מחדש רנ"א של תרד2 וברוקולי, הכן 2 מאגרי מיקרומטר של כל רנ"א ב-ddH 2 O בצינור PCR דק של 0.5 מ"ל, ולאחר מכן הוסף נפח שווה של 2x חיץ רנטורציה (80 mM HEPES, pH 7.5 [KOH], 250 mM KCl, 6 mM MgCl₂) כדי ליצור פתרונות RNA של 1 μM. הוסף את הצינורות ל- thermocycler, פתח את תוכנית הרנטורציה שנשמרה ולחץ על הפעל.
  הערה: אם תרמוציקלר אינו זמין, ניתן לדגור את ה-RNAs במקום זאת על בלוק חום של 70 מעלות צלזיוס למשך 3 דקות ולאחר מכן לאפשר להם להתקרר באיטיות ל-RT על הספסל.
3. הכן את מאגר תגובת הקשירה: כדי להכין את המאגר לתגובת קשירה אחת של אפטאמר-צבע, צור תערובת אב המכילה רכיבי מאגר (69.5 μL של ddH 2 O +4 μL של 1 M HEPES, pH 7.5 [KOH] + 6.2 μL של 2 M KCl + 0.3 μL של 1 M MgCl₂). בהתאם למספר הדגימות והשכפולים הדרושים, הכפל ערכים אלה במספר הדגימות בתוספת אחת. באופן כללי, שלושה שכפולים לכל דגימת RNA משביעי רצון.
4. הכינו את קורא הצלחות.
  1. הגדר את תוכנית המזרקים של קורא הלוחות: בקורא הלוחות הפלואורסצנטיים, בחר Temp והגדר את הטמפרטורה הרצויה ל- 37 °C, וודא שהטמפרטורה התאזן לערך זה הרבה לפני תחילת ניסויי קינטיקה. פתח את תוכנת קורא הלוחות, בחר הגדרות > תצוגת רכישה והזן את התוכנית הבאה למדידות קינטיות:
    לולאה: לכל באר
    הגדרה בסיסית: 60 קריאות בסיסיות
    הגדרות SmartInject: הזרקת 10 μL (שתתרחש לאחר קריאת הבסיס)
    פלואורסצנציה (או FL) קוראת:
    עירור: 448 ננומטר (רוחב פס: 9 ננומטר)
    פליטת מזהמים: 506 ננומטר (רוחב פס: 15 ננומטר)
    מחסנית: מונו (s/n 3297)
    תזמון:
    זמן קריאה כולל: 10 דקות
    מרווח קריאה: 0.5 שניות
    PMT ואופטיקה: 6 הבזקים לכל קריאה
    לולאה: הבאר הבאה
  2. הכן את המזרק
    1. לשטוף ולשאוף את המזרק: כדי להכין את מזרק קורא הצלחות, בחר תחילה הזרק על קורא הצלחות, ספק צלחת איסוף פסולת לקורא הצלחות כאשר אתה מכוון, ולאחר מכן בחר שטיפה, ונקה את צינור ההזרקה בהתאם להוראות בקורא הצלחת עם נפחים של 1 מ"ל של ddH 2 O, 75% אתנול ב- ddH₂O, ולאחר מכן ddH₂O. לאחר מכן, בחר שואף, ומאפשר למזרק להוציא נוזלים עודפים.
    2. הפריים את המזרק: לאחר היציאה למסך הקודם, בחר Prime כדי להכין את המזרק עם שני נפחי ליגנד של 260 μL שיש להזריק כדי להבטיח שליגנד טהור ומרוכז יתווסף לדגימות במהלך ניסויים - במקרה זה, פריים עם 100 μM DFHBI ב- ddH₂O.
5. ביצוע ניסויים בקינטיקה חוץ גופית : כדי לבצע ניסוי קינטיקה אחד, הוסף תחילה 80 μL של תערובת מאסטר חיץ מחייב שהוכנה בעבר לבאר אחת של צלחת תחתית ברורה היטב 96 היטב, ולאחר מכן 10 μL של RNA renatured. אפשרו לצלחת זו ולתמיסת DFHBI במזרק להתאזן ל-37 מעלות צלזיוס למשך 15 דקות בקורא הלוחות.
6. בתוכנת קורא הצלחות הגדרות תחת אזור קריאה, בחר את הבאר לניתוח ולאחר מכן, תחת הכרטיסיה בית , בחר הפעל כדי להפעיל את תוכנית הקינטיקה שתוארה קודם לכן. חזור על תהליך זה עד להשלמת כל הניסויים.
  הערה: באופן קריטי, ניסויי קינטיקה צריכים להתבצע היטב אחד בכל פעם כדי להבטיח שהקינטיקה של הרנ"א נמדדת בתנאים זהים בין שכפולים לדגימות.
7. לשטוף את המזרק: כדי להסיר את תמיסת DFHBI הנותרת מצינור ההזרקה, לשטוף את צינור ההזרקה כמתואר בשלב 1.4.4.2.1 עם 1 מ"ל נפחים של ddH 2 O, 75% אתנול ב ddH2 O, ולאחר מכן ddH₂O.
  הערה: נקודת השהיה אופציונלית.
ניתוח של קינטיקה חוץ גופית של אפטאמרים RNA פלואורוגניים.
1. הזן נתונים לתוכנת הניתוח: ייצא נתונים ניסיוניים כגיליון אלקטרוני כדי להעתיק בקלות את הנתונים לעיבוד. בתוכנת הניתוח, צור טבלת נתונים חדשה בתבנית XY. בעמודה X, הזן כל נקודת זמן לקריאה, כאשר t = 0 הוא הזמן של הזרקת DFHBI. בעמודה Y, הזן את ערכי הפלואורסצנציה הממוצעים בין משכפלים באותה נקודת זמן מתאימה, החל מ- t = 0.
2. נרמל וגרף את הנתונים: כדי לנרמל את ערכי הפלואורסצנציה, לחץ על נתח > עיבוד נתונים > נרמל ולאחר מכן לחץ על אישור. בחר להשתמש בערכים הקטנים והגדולים ביותר של ערכת הנתונים לצורך נורמליזציה, כדי להציג תוצאות כשברים, כדי ליצור גרף של התוצאות ולאחר מכן לחץ על אישור. ליצירת גרף של הפלואורסצנציה הממוצעת המנורמלת לאורך זמן, לחצו על הסמל ' נרמול של [שם ערכת הנתונים] ' ובחרו 'משפחת תרשימים: XY עם נקודות בלבד'.
  הערה: קווי שגיאה יכולים להיות שימושיים להצגה במקרים שבהם מספר קטן של נקודות זמן מוצגות בגרף. אם אלה רצויים, בעת בחירת טבלת נתונים בתבנית XY, בחר באפשרות תחת "Y" כדי להזין ערכים משוכפלים בעמודות זו לצד זו. יצירת גרפים של הטבלה המתקבלת עם אפשרויות ברירת המחדל שנבחרו תפיק תרשים עם קווי שגיאה.
3. בצע התאמת עקומה כדי לקבל פרמטרים קינטיים: כדי להתאים עקומה לנתונים הקינטיים, לחץ על נתח > ניתוח נתונים ובחר רגרסיה לא ליניארית (התאמת עקומה) תחת הכרטיסייה XY Analyses . תחת הכרטיסייה מודל , לחץ על שיוך מעריכי > דו-פאזי כדי להתאים את נתוני הקינטיקה למשוואת האסוציאציה הדו-פאזית הבאה:
  
  כאשר Y הוא הפלואורסצנציה בזמן X, Y 0 הוא הפלואורסצנציה ב- t = ₀, K _Fast ו- K Slow הם קבועי קצב מהיר ואיטי, בהתאמה, ו- SpanFast ו- _SpanSlow הם הטווחים של הפעלת פלואורסצנציה המוסברים על ידי הקצבים המהירים והאיטיים, בהתאמה (ראה תוצאות מייצגות, איור 1). לחץ על הכרטיסיה התאמה ללא לין כדי להציג קבועי קצב, ערכי_{t 1/2} וערכי PercentFast.
  הערה: כדי להשיג סטיית תקן עבור כל הערכים הללו, ניתן לעבד שכפולים של ניסויים בקורא לוחות בודדים באותו אופן כפי שתואר לעיל.

2. ניסוי קינטיקה תאית

הכנת זני אי קולי
1. להפוך BL21 כוכב (DE3) E . coli תאים עם ~ 100 ng של pET31b tRNA-תרד2 לבנות בהתאם לפרוטוקול של היצרן.
  הערה: מבנה פלסמיד זמין מסחרית (פלסמיד #79783).
2. צלחת את התאים על אגר LB המכיל קרבניצ'ילין (פחמימות: 50 מ"ג/מ"ל) צלחת ודגירה ב 37 מעלות צלזיוס במשך 12-16 שעות. תאים המכילים פלסמידים יגדלו כמושבות על הצלחת.
  הערה: נקודת השהיה אופציונלית: ניתן לאחסן תאי כוכב BL21 שעברו טרנספורמציה על צלחות בטמפרטורה של 4 מעלות צלזיוס כשהם עטופים בפרפילם למשך שבוע אחד.
גידול תאים וגרימת ביטוי של RNA אפטמר פלואורוגני
1. לחסן תרבית של 2 מ"ל של מדיה לא משררה (NI) המכילה קרבניצ'ילין (פחמימות: 50 מ"ג/מ"ל) עם מושבה אחת של תאי כוכב BL21 שעברו טרנספורמציה. חזור על כך עבור לפחות שלושה שכפולים ביולוגיים. דגירה של התרביות ב-37 מעלות צלזיוס באינקובטור/שייקר ב-250 סל"ד למשך 22-24 שעות.
  הערה: נקודת השהיה אופציונלית: תאים הגדלים במדיית NI שומרים על הפלסמיד וניתן לאחסן אותם בטמפרטורה של 4 מעלות צלזיוס למשך שבוע אחד.
2. לאחר הצמיחה במדיית NI, יש לדלל את התרבית פי 100 ל-3 מ"ל טריים של מדיה אוטואינדוקציה (AI) של ZYP-5052 המכילה קרבניצ'ילין (פחמימות: 50 מ"ג/מ"ל). לגדל את התאים ב-37 מעלות צלזיוס באינקובטור/שייקר ב-250 סל"ד למשך 16-18 שעות כדי לגרום לביטוי.
  הערה: OD₆₀₀ טיפוסי לתרביות ינוע בין 2.0-3.3 לאחר 18 שעות של צמיחה. טווח צפיפות התאים האופטימלי הוא בין 2.5-3.0.
ביצוע ניסוי הקינטיקה התאית
1. הגדר את ציטומטר הזרימה.
  1. הפעל את ציטומטר הזרימה ואת המחשב המחובר למכשיר. לאחר הכניסה לתוכנה עבור ציטומטר הזרימה, תחת מכשיר הכרטיסייה, לחץ על סמל ההפעלה . בצע את השלבים המצוינים במסך התוכנה כדי להבטיח אתחול מכשור תקין.
    הערה: ציטומטרים מסוימים של זרימה מכנים את רצף ההפעלה של המכשיר Priming. הקפידו לעקוב אחר פרוטוקול היצרן עבור ציטומטר הזרימה שישמש לניסוי.
  2. הפעל בדיקת ביצועים (אם רלוונטי). תחת הכרטיסייה תפריט ראשי , לחץ על מבחן ביצועים. בצינור תרבית, הוסף שלוש טיפות של חרוזי מעקב הביצועים של היצרן לתוך 3 מ"ל של נוזל מיקוד.
  3. הנח את צינור התרבית לתוך מרים צינור הדגימה והרם את מרימי המשקולות. לפני לחיצה על הפעל בדיקת ביצועים, ודא שהלוט # של הצינור של חרוזי המעקב זהה למה שמצוין במסך הגדרת בדיקת ביצועים . לחץ על בדיקת ביצועים כדי להפעיל את הבדיקה.
  4. הגדר את תוכנת ציטומטר הזרימה לניסוי זה עם פרמטרי הרכישה הבאים עבור פלואורסצנציה חד-תאית:
    לייזר עירור: 488 ננומטר
    ערוץ פליטה: GFP (נקרא גם FITC)
    נפח רכישה: 40 μL (עם נפח משיכה כולל של 90 μL)
    קצב זרימה: 200 μL / min
    ספירת תאים עבור כל מדידה: 30,000
    הגדרות מכשיר:
    מתח:
    FSC: 480 V
    SSC: 400 וולט
    BL1: 540 וולט
    BL2: 392 V
    BL3: 422 V
2. הגדר את קבצי הניסוי.
  1. צור קובץ ניסוי חדש בכרטיסיה סייר הניסויים על-ידי לחיצה באמצעות לחצן העכבר הימני על שם המשתמש של ציטומטר הזרימה. בחר ניסוי חדש בחלון הנפתח. כאשר חלון חדש במסך המחשב צץ, בחר אישור.
  2. בקובץ הניסוי החדש, לחץ באמצעות לחצן העכבר הימני על התיקייה "קבוצה" ובחר הוסף צינור דגימה חדש. תייג את צינורות הדגימה עבור כל נקודת זמן ספציפית ושכפל אותה על ידי לחיצה ימנית על דגימה ובחירה באפשרות שנה שם בתפריט הנפתח. חזור על שלב זה עבור המספר הכולל של עותקים משוכפלים ונקודות זמן עבור מהלך הזמן המיועד של המחקר.
3. הכן תמיסת תאים מדוללים: בצינור תרבית חדש, הוסף 1.5 מ"ל של תמיסת PBS אחת. לאחר מכן, הוסף 3 μL של תאים מושרים במדיית AI לתמיסת PBS 1x כדי ליצור תמיסת תאים מדוללים. חזור על שלב זה עבור כל שכפול ביולוגי בצינורות תרבית שונים.
4. מדוד את פלואורסצנטיות הרקע של התאים: לפני הוספת צבע, קח קריאות של כל צינור תרבית שכפול ביולוגי המכיל תאים בתמיסת PBS אחת. זאת כדי שהרקע הפלואורסצנטי של התאים יימדד כדי לראות את הקפל נדלק לאורך זמן לאחר הוספת הצבע.
  1. כדי לבצע קריאה, הנח את צינור התרבית לתוך מרים צינור הדגימה, והרם את המרים ביד אל מחט הזרקת הדגימה. בחרו בקובץ לדוגמה המתאים בכרטיסייה ' חלונית אוסף ' ולחצו על ' רשומה'.
  2. בסיום הריצה, הנמיכו את מרים צינור הדגימה בעזרת צינור התרבית ביד. פעולה זו תיזום שלב שטיפה שישטוף את המערכת הנוזלית וימזער את הנשיאה בין כל דגימת שכפול ביולוגית. הנתונים יישמרו באופן אוטומטי במחשב לאחר השלמת הריצה.
  3. חזור על השלבים בתוך 2.3.4 כדי למדוד את הרקע הפלואורסצנטי התאי עבור לפחות שלושה שכפולים ביולוגיים. כדי לעבור לקובץ לדוגמה הבא, בחר את הקובץ לדוגמה הבא על-ידי לחיצה על סמל החץ ימינה ליד שם צינור הדגימה מתחת לסמל הקלטה .
5. מדידת פלואורסצנטיות בנקודות זמן עבור תאים עם צבע.
  1. הוסף 1.4 μL של מלאי צבע מרוכז (50 mM DFHBI-1T ב- DMSO) לתמיסת PBS אחת עם תאים כדי לתת ריכוז סופי של 50 μM DFBHI-1T. לאחר מכן, אבטח את מכסה צינור התרבית, ולאחר מכן הפוך את צינורות התרבית 3x-5x כדי לערבב את התמיסה באופן שווה לפני ביצוע הקריאה הנקודתית הראשונה.
    הערה: האחוז הכולל של DMSO בתוך צינורות התרבית עבור E. coli לא יעלה על 10%, מכיוון שהדבר יכול להשפיע על כדאיות התא¹⁶.
  2. הסר את המכסה והנח את צינור התרבית לתוך מרים צינור הדגימה. הרם את המחזיק ביד אל מחט הזרקת הדגימה, ותחת קובץ הדגימה המתאים, לחץ על תקליט סמל. בנוסף, התחל טיימר על-ידי לחיצה על התחל עבור הניסוי.
  3. הורד את מרים הצינורות ביד לאחר השלמת הריצה, וחזור על שלבים 2.3.5.1-2.3.5.2. (כאשר הטיימר פועל) על ידי הוספת 1.4 μL של DFHBI-1T המרוכז, היפוך צינורות התרבית, ולקיחת קריאות עבור כל השכפולים הביולוגיים הנותרים. ההקלטות הראשונות הללו יהיו הקריאות המתקבלות ב-0 דקות עבור כל השכפולים הביולוגיים. עשו זאת אחד בכל פעם עבור כל שכפול ביולוגי.
    הערה: רשום לעצמך את הזמן שבו לוחצים על רכישת הציטומטריה של זרימת הרשומות. לדבוק בזמן הזה מזעזע עבור נקודות זמן במהלך הניסוי.
  4. המשך לקרוא על ידי העלאת צינורות התרבית במרים צינור הדגימה למחט הזרקת הדגימה, בחירת קובץ הדגימה המתאים, לחיצה על הקלט והורדת המרים ביד לאחר השלמת כל ריצה. עשו זאת עבור כל נקודות הזמן הנוספות והשכפולים הביולוגיים הנבדקים. חזור על השלבים עד להשלמת הניסוי.
    הערה: שמור את הדגימות הרחק מאור כדי למנוע הלבנת תמונות של DFHBI-1T בתמיסה על-ידי כיסוי הדגימות ברדיד אלומיניום.
6. מדידת פלואורסצנטיות בנקודות זמן עבור תאים ללא צבע (בקרה).
  1. הפעל את פרוטוקולי הניקוי המתאימים עבור ציטומטר הזרימה לפני שתחזור שוב על הניסוי עם בקרות שליליות בהתאם לפרוטוקול היצרן. זה נעשה כדי למזער כל העברה מהניסוי הקודם לניסוי ניתוח נקודת הזמן של הבקרה. להלן השלבים הבאים עבור ציטומטר הזרימה בין הניסויים:
    1. הנח שפופרת תרבות ריקה במרים הצינורות ביד, הרם את מחזיק הצינור ולחץ על סמל Unclog בכרטיסייה מכשיר . פעולה זו תפעיל backflush במערכת fluidics כדי לנקות דגימות דביקות. הורד את מחזיק הצינור ביד והסר את הצינור לאחר סיום רצף Unclog .
    2. עם צינור תרבית חדש, להוסיף 3 מ"ל של תמיסת אקונומיקה 10%, למקם את צינור התרבית לתוך מחזיק הצינור, ולהרים את המחזיק ביד אל מחט הזרקת הדגימה. בנוסף, יש להכניס לוחית נקייה של 96 בארות לתוך הדגימה האוטומטית, אם רלוונטי לציטומטר הזרימה.
    3. לחץ על סמל SIP של חיטוי SIP/חיטוי אוטומטי כדי להפעיל רצף ניקוי עם 10% אקונומיקה בכל מערכת הנוזלים. הנמיכו את מחזיק הצינור כדי להשלים את רצף הניקוי.
  2. הגדר את הקבצים לדוגמה עבור הפעלת ניתוח נקודת הזמן של הבקרה בהתאם להוראות בשלב 2.3.3.
  3. בצינור תרבית חדש, הכינו תמיסת תאים מדוללים ב-1.5 מ"ל של תמיסת PBS אחת. הוסף 3 μL מהתאים המושרים במדיית AI לתמיסת PBS 1x כדי ליצור תמיסת תאים מדוללים. חזור על שלב זה עבור כל שכפול ביולוגי.
  4. הוסף 1.4 μL של DMSO לתוך צינור התרבית אחד בכל פעם לתמיסת PBS 1x עם תאים ובדוק את אותן נקודות זמן. אבטח את מכסה צינור התרבית, ולאחר מכן הפוך את צינורות התרבית 3x-5x כדי לערבב את התמיסה באופן שווה לפני ביצוע הקריאה הנקודתית הראשונה. עשו זאת אחד בכל פעם עבור כל שכפול ביולוגי.
  5. בצע את אותו פרוטוקול לניתוח תאי בקרה כמו עבור תאים עם צבע, באמצעות שלבים 2.3.5.2-2.3.5.4.
7. כבה את ציטומטר הזרימה: עקוב אחר פרוטוקול היצרן לכיבוי תקין של המכשור. עבור ציטומטר הזרימה, המכשיר מוכן לכיבוי באופן הבא:
  1. בצע את פרוטוקול הניקוי הראשוני עבור ציטומטר הזרימה בשלבים 2.3.6.1.1-2.3.6.1.3.
  2. החלף את צינור התרבית בתמיסת אקונומיקה 10% בצינור תרבית עם 3 מ"ל של נוזל מיקוד. הרם את מחזיק הצינור ביד, ותחת סמל הכיבוי , לחץ על התפריט הנפתח ובחר יסודי.
    הערה: נקודת השהיה אופציונלית.
ניתוח נתוני ציטומטריה של זרימה
1. ייצא את כל קבצי FCS לניתוח. פתח את קבצי FCS באמצעות תוכנה לניתוח ציטומטריה של זרימה.
2. באמצעות אחד מקבצי FCS של תאים בלבד, צור שער ממתווה הנקודה של הפיזור הקדמי (FSC) והפיזור הצדדי (SSC) (FSC-Area/SSC-Area), תוך שימוש בשני צירי יומן הרישום כדי לא לכלול אותות מפסולת. כדי ליצור שער זה, לחץ על סמל AutoGate בתוכנת ניתוח ציטומטריה של זרימה וקרא לו שער 1. החל שער זהה על כל הדגימות שנבדקו תחת הכרטיסיה כל הדוגמאות בסביבת העבודה של עיבוד הנתונים. התוצאה תהיה שער 1 מתחת לכל קבצי FCS המעובדים.
3. צור קובץ ערכת משנה חדש עם קובץ FCS של תא בלבד המשמש בשלב 2.4.2 על-ידי לחיצה כפולה עליו. שנה את הגדרות הציר ל- FSC-Area/FSC-Height, כאשר שניהם משתמשים בצירי יומן. לחץ על סמל AutoGate בתוכנת ניתוח ציטומטריה של זרימה כדי ליצור שער סגלגל, וקרא לו שער 2. החל שער זה כתת-ערכה מתחת לערכת השערים בשלב 2.4.2 על כל הדוגמאות שנבדקו. התוצאה תהיה שלכל הדוגמאות שער 1 > שער 2 ישויכו לכל קובץ FCS.
4. צור קובץ ערכת משנה נוסף כאשר שני השערים מוגדרים בשלב 2.4.2 ושלב 2.4.3 מוחלים על-ידי לחיצה כפולה על שער 2. שנה את הגדרות הציר ל- FSC-Area/היסטוגרמה. החל שער היסטוגרמה זה כתת-ערכה על כל הדגימות שנבדקו, וכתוצאה מכך כל הדגימות כוללות שער 1 > שער 2 > שער 2 המשויכים לכל קובץ FCS.
  הערה: ניתן לשנות את שם ההיסטוגרמות משער 2 להיסטוגרמה כדי לסייע בהעברת ההיסטוגרמות לחלון הפריסה, וכן כדי ליצור ארגון רב יותר בעיבוד הנתונים.
5. כדי לנתח את ערכי עוצמת הפלואורסצנציה הממוצעת (MFI), פתח את חלון הפריסה. לחץ וגרור את שערי ההיסטוגרמה עבור כל נקודת זמן לחלון הפריסה.
6. בצע ניתוח סטטיסטי עבור "ממוצע ∑: BL1-A" (GFP) עבור כל דגימה שנבדקה כדי להציג את תוצאות ה- MFI בחלון הפריסה.
7. חשב את סטיית התקן עבור ערכי MFI לניתוח נקודת זמן עבור לפחות שלושה שכפולים ביולוגיים בלתי תלויים.
8. שמרו את ההיסטוגרמות ואת ערכי MFI לכל נקודת זמן באמצעות ייצוא חלון הפריסה כקובץ PDF.
  הערה: נקודת השהיה אופציונלית.
נתוני ציטומטריה של זרימת גרף
1. פתחו את קובץ PDF הכולל את ההיסטוגרמות ואת ערכי MFI לכל נקודת זמן. ערכי MFI יועתקו לתוכנת ניתוח נתונים. בתוכנת גרפים של נתונים, צור טבלת נתונים חדשה בתבנית XY.
  1. בחר כדי ליצור טבלת XY כשהאפשרות הבאה נבחרה:
    טבלת נתונים: הזנה או ייבוא של נתונים לטבלה חדשה
    אפשרויות:
    X: זמנים שחלפו
    Y: הזן (שלושה עד ארבעה) ערכים משוכפלים בעמודות משנה זו לצד זו
  2. תייג על ציר X את כל נקודות הזמן לניסוי ולריצות הבקרה.
  3. בקבוצה A, הזן את ערכי ה-MFI עבור כל השכפולים הביולוגיים לתוך כל נקודת זמן לצורך ניתוח פלואורסצנטי של התאים עם תוספת הצבע.
  4. בקבוצה B, הזן את ערכי MFI עבור כל השכפולים הביולוגיים בכל נקודת זמן לצורך ניתוח התאים ללא תוספת צבע (DMSO).
  5. כדי לראות את התוצאות, לחץ על [הוסף שם ערכת נתונים] תחת הכרטיסיה תרשימים . פעולה זו תציג את נקודות הנתונים כאמצעי, עם קווי שגיאה המייצגים את סטיית התקן (s.d.) בכל נקודת זמן. ציר ה-X מייצג את הזמן שחלף, וציר ה-Y מייצג את ערכי ה-MFI.

הגישה מוגבלת. התחברו או התחילו תקופת ניסיון כדי לצפות בתוכן זה.

תוצאות

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

קינטיקה במבחנה
הרצפים של תבניות הדנ"א והפריימרים, שנרכשו כאוליגונוקלאוטידים סינתטיים, מוצגים בטבלה 2, ומתכוני הריאגנטים מוצגים בקובץ משלים 1. הגברת PCR משמשת להגדלת כמות תבנית הדנ"א באמצעות מקדם T7, הנדרש לתגובת השעתוק במבחנה (IVT) הבאה. בנוסף, ניתן להשתמש בהגברת PCR לשתי מטרות באותה תגובה: ליצור את תבנית הדנ"א של ברוקולי באורך מלא על ידי הרחבת פריימר, כמו גם להגדיל את תבנית הדנ"א.

לאחר תגובת ה- IVT לסינת...

הגישה מוגבלת. התחברו או התחילו תקופת ניסיון כדי לצפות בתוכן זה.

דיון

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

עבור ניסוי הקינטיקה במבחנה, ניתן לשנות את אותו פרוטוקול כללי כדי למדוד את הקינטיקה במבחנה של ביוסנסור פלואורסצנטי מבוסס RNA המכיל גם תחום קושר ליגנד וגם תחום קושר פלואורופור 8. במקרה זה, יש לדגור את הרנ"א עם הפלואורופור לפני המדידות בעת הזרקת הליגנד על מנת לקבל קינטיקה של תגובת ליגנד. אם נצפתה שונות גבוהה בין המשכפלים, ניתן לפתור בעיות על ידי בדיקה שכל דגימה מותרת לשיווי משקל למשך אותה כמות זמן בלוח 96 הבאר לפני המדידה. כל דגימה או שכפול צריכים להיות מוכנים בנפרד בבאר ולמדוד מיד...

הגישה מוגבלת. התחברו או התחילו תקופת ניסיון כדי לצפות בתוכן זה.

גילויים

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

המחברים מצהירים על היעדר ניגוד עניינים.

תודות

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

עבודה זו נתמכה על ידי המענקים הבאים ל- MCH: NSF-BSF 1815508 ו- NIH R01 GM124589. MRM נתמך חלקית על ידי מענק הכשרה NIH T32 GM122740.

הגישה מוגבלת. התחברו או התחילו תקופת ניסיון כדי לצפות בתוכן זה.

חומרים

רשימת החומרים שנעשה בהם שימוש במאמר זה
שם	חברה	מספר קטלוג	הערות
Agarose	Thermo Fischer Scientific	BP160500
ציוד אלקטרופורזה ג'ל Agarose Thermo	Fischer Scientific	B1A-BP
Alpha D-(+)-לקטוז מונוהידראט	Thermo Fischer Scientific	18-600-440
ענבר 1.5 מ"ל צינורות מיקרוצנטריפוגה Thermo	Fischer Scientific	22431021
אמוניום פרסולפט (APS)	Sigma-Aldrich	A3678
אמוניום סולפט ((NH₄)₂SO₄)	Sigma-Aldrich	A4418
Attune NxT זרימה ציטומטר	תרמו פישר מדעי	A24861
Attune 1x נוזל מיקוד	תרמו פישר מדעי	A24904
Attune פתרון כיבוי	תרמו Fischer Scientific	A24975
Attune חרוזי מעקב אחר ביצועים	Thermo Fischer Scientific	4449754
Attune Wash Solution	Thermo Fischer Scientific	J24974
חומצה בורית	סיגמא-אולדריץ'	B6768
ברומופנול כחול	סיגמא-אולדריץ'	B0126
מלח דיסודיום קרבניצילין	סיגמא-אולדריץ'	C3416
אקונומיקה כלור	אמזון	B07J6FJR8D
קורנינג קוסטאר 96 בארות	צלחת דייגר סיינטיפיק	EF86610A
צינורות תרבית, 12 מ"מ x 75 מ"מ, 5 מ"ל עם מכסה מיקום כפול מחובר	גלובוס סיינטיפיק	05-402-31
DFHBI	סיגמא-אולדריץ'	SML1627
DFHBI-1T	סיגמא-אולדריץ'
(נטול מים)	Acros Organics	AC410955000
דימתיל סולפוקסיד (DMSO)	סיגמא-אולדריץ'	D8418
דיתיותרייטול (DTT)	סיגמא-אולדריץ'	DTT-RO
DNA טוען צבע	ניו אינגלנד ביולאבס	B7025S
DNA LoBind צינורות (2.0 מ"ל)	Eppendorf	22431048
dNTPs: dATP, dCTP, dGTP, dTTP	ניו אינגלנד Biolabs	N0446S
EDTA, pH 8.0	Gibco, Life Technologies	AM9260G
אתנול (EtOH)	Sigma-Aldrich	E7023
קצות מיקרופיפטור קצה מסנן	Thermo Fischer Scientific	AM12635, AM12648, AM12655, AM12665
FlowJo Software	BD Biosciences	N/A	FlowJo v10 תוכנה
קורא צלחות פלורסנט עם בקרת חימום	VWR	10014-924
ספק כוח אלקטרופורזה ג'ל	Thermo Fischer Scientific	EC3000XL2
גליצרול	סיגמא-אולדריץ'	G5516
גליקוגן AM95010	Thermo Fischer Scientific	AM95010
GraphPad Prism	Dotmatics	N/A	מבית Academic Group License
בלוק חום	תומאס סיינטיפיק	1159Z11
HEPES	סיגמא-אולדריץ'	H-4034
פירופוספאטאז אנאורגני	סיגמא-אולדריץ'	I1643-500UN
סולם DNA במשקל מולקולרי נמוך	ניו אינגלנד Biolabs	N3233L	מסופק עם בקבוקון חינם של צבע טעינת ג'ל, סגול (6x), ללא SDS (NEB #B7025).
מגנזיום כלוריד הקסהידראט (MgCl₂)	Sigma-Aldrich	M2670
מגנזיום גופרתי (MgSO₄)		של Fisher Scientific
(1.5 מ"ל)	Eppendorf	22363204
מיקרוצנטריפוגה עם בקרת טמפרטורה	Marshall Scientific	EP-5415R
מיקרופיפטורים	Gilson	FA10001M, FA10003M, FA10005M, FA10006M
קצות מיקרופיפטור	מסנן מים Sigma-Aldrich	Z369004, AXYT200CR, AXYT1000CR
Millipore עם יחידת BioPak	Sigma-Aldrich	CDUFBI001, ZRQSVR3WW
קצות פיפטה מיקרופיפטור צרים	DOT Scientific	RN005R-LRS
PBS, 10x	תרמו פישר ערכת	BP39920
מדעית PCR	Qiagen	28181
PCR פריימרים ותבניות	טכנולוגיות DNA
PCR תרמו-ציקלר לצינורות PCR דקי דופן	Bio-Rad	1851148
PCR thermocycler לצינורות 0.5 מ"ל	Techne	5PRIME/C
pET31b-T7-Spinach2	Plasmid Addgene	פלסמיד #79783
פולימראז DNA בנאמנות גבוהה	רכישת New England Biolabs	M0530L	של אנזים נאמנות גבוהה של Phusion מסופקת עם 5x Phusion HF Buffer, 5x Phusion GC Buffer ו-MgCl₂ ופתרונות DMSO.
מסרק ג'ל אלקטרופורזה של ג'ל פוליאקרילאמיד, C.B.S. Scientific	C.B.S. Scientific	VGC-1508
ציוד אלקטרופורזה של ג'ל פוליאקרילאמיד	C.B.S. Scientific	ASG-250
אשלגן כלורי (KCl)	Sigma-Aldrich	P9333
אשלגן פוספט מונו-בסיסי	Sigma-Aldrich	P5655
סכיני גילוח	Genesee מדעי	38-101
rNTPs: ATP, CTP, GTP,	UTP מעבדות ביולוגיות ניו אינגלנד	N0450L
SDS	סיגמא-אולדריץ'	L3771
מקור אור UV גל קצר	תרמו פישר	11758221
נתרן פחמתי (Na₂CO₃)	Sigma-Aldrich	S7795
נתרן כלוריד (NaCl)	סיגמא-אולדריץ'	S7653
נתרן הידרוקסיד (NaOH)	סיגמא-אולדריץ'	S8045
נתרן פוספט דו-בסיסי, נטול מים	תרמו פישר סיינטיפיק	S375-500
SoftMax Pro	מכשירים מולקולריים	N/A	SoftMax Pro 6.5.1 (תוכנת קורא צלחות) שהושגו באמצעות רישיון קבוצה אקדמית
יחידות סינון סטריליות	תרמו Fischer Scientific	09-741-88
סוכרוז	Sigma-Aldrich	S0389
SYBR כתם ג'ל DNA בטוח	Thermo Fischer Scientific	S33102
מאגר TAE לאלקטרופורזה של ג'ל אגרוז	Thermo Fischer Scientific	AM9869
Tetramethylethylenediamine (TEMED)	Sigma-Aldrich	T9281
Tris base	סיגמא-אולדריץ'	TRIS-RO
טריפטון (מגורען)	תרמו פישר סיינטיפיק	M0251S
T7 RNA פולימראז	ניו אינגלנד ביולאבס	M0251S
מערכת ג'ל אוריאה-PAGE	National Diagnostics	EC-833
UV פלואורסצנטי TLC צלחת	סיגמא-אולדריץ'	1.05789.0001
ספקטרופוטומטר UV/Vis	תרמו פישר מדעי	ND-8000-GL
מערבל מערבולת	תרמו פישר 2215415
קסילן ציאנול	סיגמא-אולדריץ'	X4126
תמצית שמרים (מגורענת)	תרמו פישר סיינטיפיק	BP9727-2

SML2697-D-גלוקוז תוכנת ניתוח צינורות מיקרוצנטריפוגה MFCD00011110 ניקוי משולבותמדעימדעי

מקורות

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Su, Y., Hammond, M. C. RNA-based fluorescent biosensors for live cell imaging of small molecules and RNAs. Current Opinion in Biotechnology. 63, 157-166 (2020).
Zhang, J., et al. Tandem spinach array for mRNA Imaging in living bacterial cells. Scientific Reports. 5, 17295(2015).
Wang, Z., et al. In spatial complementation of aptamer-mediated recognition enables live-cell imaging of native RNA transcripts in real time. Angewandte Chemie. 57 (4), 972-976 (2018).
Strack, R. L., Disney, M. D., Jaffrey, S. R. A superfolding Spinach2 reveals the dynamic nature of trinucleotide repeat-containing RNA. Nature Methods. 10 (12), 1219-1224 (2013).
Thavarajah, W., et al. Point-of-use detection of environmental fluoride via a cell-free riboswitch-based biosensor. ACS Synthetic Biology. 9 (1), 10-18 (2020).
You, M., Litke, J. L., Jaffrey, S. R. Imaging metabolite dynamics in living cells using a Spinach-based riboswitch. Proceedings of the National Academy of Sciences of the United States of America. 112 (21), 2756-2765 (2015).
Kellenberger, C. A., Wilson, S. C., Sales-Lee, J., Hammond, M. C. RNA-based fluorescent biosensors for live cell imaging of second messengers cyclic di-GMP and cyclic AMP-GMP. Journal of the American Chemical Society. 135 (13), 4906-4909 (2013).
Manna, S., Truong, J., Hammond, M. C. Guanidine biosensors enable comparison of cellular turn-on kinetics of riboswitch-based biosensor and reporter. ACS Synthetic Biology. 10 (3), 566-578 (2021).
Bose, D., Su, Y., Marcus, A., Raulet, D. H., Hammond, M. C. An RNA-based fluorescent biosensor for high-throughput analysis of the cGAS-cGAMP-STING pathway. Cell Chemical Biology. 23 (12), 1539-1549 (2016).
Wang, X. C., Wilson, S. C., Hammond, M. C. Next-generation RNA-based fluorescent biosensors enable anaerobic detection of cyclic di-GMP. Nucleic Acids Research. 44 (17), 139(2016).
Paige, J. S., Thinh, N. -D., Wenjiao, S., Jaffrey, S. R. Fluorescence imaging of cellular metabolites with RNA. Science. 335 (6073), 1194(2012).
Paige, J. S., Wu, K. Y., Jaffrey, S. R. RNA mimics of green fluorescent protein. Science. 333 (6042), 642-646 (2011).
Filonov, G. S., Moon, J. D., Svensen, N., Jaffrey, S. R. Broccoli: Rapid selection of an RNA mimic of green fluorescent protein by fluorescence-based selection and directed evolution. Journal of the American Chemical Society. 136 (46), 16299-16308 (2014).
Song, W., Strack, R. L., Svensen, N., Jaffrey, S. R. Plug-and-play fluorophores extend the spectral properties of spinach. Journal of the American Chemical Society. 136 (4), 1198-1201 (2014).
Sambrook, J., Fritsch, E., Maniatis, T. Molecular Cloning: A Laboratory Manual. , Cold Spring Harbor Laboratory Press. Cold Spring Harbor, NY. (1989).
Basch, H., Gadebusch, H. H. In vitro antimicrobial activity of dimethylsulfoxide. Applied Microbiology. 16 (12), 1953-1954 (1968).
Kallansrud, G., Ward, B. A comparison of measured and calculated single- and double-stranded oligodeoxynucleotide extinction coefficients. Analytical Biochemistry. 236 (1), 134-138 (1996).
Wilson, S. C., Cohen, D. T., Wang, X. C., Hammond, M. C. A neutral pH thermal hydrolysis method for quantification of structured RNAs. RNA. 20 (7), 1153-1160 (2014).
Szatmári, D., et al. Intracellular ion concentrations and cation-dependent remodelling of bacterial MreB assemblies. Scientific Reports. 10, 12002(2020).
Boulos, L., Prévost, M., Barbeau, B., Coallier, J., Desjardins, R. LIVE/DEAD® BacLightTM: Application of a new rapid staining method for direct enumeration of viable and total bacteria in drinking water. Journal of Microbiological Methods. 37 (1), 77-86 (1999).
Huang, H., et al. A G-quadruplex-containing RNA activates fluorescence in a GFP-like fluorophore. Nature Chemical Biology. 10 (8), 686-691 (2014).
Jeng, S. C. Y., Chan, H. H. Y., Booy, E. P., McKenna, S. A., Unrau, P. J. Fluorophore ligand binding and complex stabilization of the RNA Mango and RNA Spinach aptamers. RNA. 22 (12), 1884-1892 (2016).
Han, K. Y., Leslie, B. J., Fei, J., Zhang, J., Ha, T. Understanding the photophysics of the Spinach-DFHBI RNA aptamer-fluorogen complex to improve live-cell RNA imaging. Journal of the American Chemical Society. 135 (50), 19033-19038 (2013).
Wang, P., et al. Photochemical properties of Spinach and its use in selective imaging. Chemical Science. 4 (7), 2865-2873 (2013).
Dao, N. T., et al. Photophysics of DFHBI bound to RNA aptamer Baby Spinach. Scientific Reports. 11, 7356(2021).

הגישה מוגבלת. התחברו או התחילו תקופת ניסיון כדי לצפות בתוכן זה.

הדפסות חוזרות והרשאות

בקש הרשאה לשימוש חוזר בטקסט או באיורים של מאמר JoVE זה

בקש הרשאה

תגיות

Fluorogenic RNA Aptamers Turn On Kinetics In Vitro Kinetics Cellular Kinetics Fluorescence Activation Plate Reader Flow Cytometry Spinach2 Aptamer Broccoli Aptamer RNA Based Biosensors

קביעת קינטיקה במבחנה והפעלה תאית עבור אפטאמרים של RNA פלואורוגניים

במאמר זה

סיכום

תקציר

מבוא

פרוטוקול

תוצאות

דיון

גילויים

תודות

חומרים

מקורות

הדפסות חוזרות והרשאות

תגיות

מאמרים קשורים