חילוץ, תיוג וטיהור של תאים ספציפיים לשושלת מזקיקים אנטראליים אנושיים

סיכום

כאן אנו מציגים פרוטוקולים לזיהוי וטיהור תאי שחלה מזקיקים אנטראליים. אנו מרחיבים שיטות לעיבוד שחלות שלמות לשימור בהקפאה של רצועות קליפת המוח תוך קצירת זקיקים אנטראליים שלמים המטופלים באופן אנזימטי כדי לשחרר סוגים רבים של תאים שוכנים זקיקים, כולל גרנולוסה, תיקה, אנדותל, המטופויטים ותאי סטרומה.

תקציר

ההפעלה, הצמיחה, ההתפתחות וההבשלה של הביציות הוא תהליך מורכב המתואם לא רק בין סוגי תאים מרובים של השחלה, אלא גם על פני נקודות בקרה מרובות בתוך מעגל ההיפותלמוס/יותרת המוח/השחלות. בתוך השחלה, מספר סוגי תאים מיוחדים גדלים בקשר הדוק עם הביצית בתוך זקיקי השחלות. הביולוגיה של תאים אלה תוארה היטב בשלבים מאוחרים יותר, כאשר הם מתאוששים בקלות כתוצרי לוואי של טיפולי פוריות בסיוע. עם זאת, ניתוח מעמיק של זקיקים אנטראליים קטנים שבודדו ישירות מהשחלה אינו מתבצע בדרך כלל בשל המחסור ברקמת שחלה אנושית והגישה המוגבלת לשחלה בחולות העוברות טיפולי פוריות בסיוע.

שיטות אלה לעיבוד שחלות שלמות להקפאה של רצועות קליפת המוח עם זיהוי/בידוד מקביל של תאים שוכנים בשחלות מאפשרות ניתוח ברזולוציה גבוהה של השלבים המוקדמים של התפתחות זקיק אנטראלי. אנו מדגימים פרוטוקולים לבידוד סוגי תאים בדידים על ידי טיפול בזקיקים אנטראליים באופן אנזימטי והפרדת תאי גרנולוסה, תקה, אנדותל, המטופויטים וסטרומה. בידוד התאים מהזקיקים האנטרליים בגדלים שונים ובשלבי התפתחות שונים מאפשר ניתוח מקיף של המנגנונים התאיים והמולקולריים המניעים את צמיחת הזקיקים ואת הפיזיולוגיה השחלתית ומספק מקור לתאים בני קיימא שניתן לגדל בתרבית במבחנה כדי לשחזר את מיקרו-סביבת הזקיק.

מבוא

המרכיבים הפונקציונליים העיקריים של השחלה האנושית הם הזקיקים, השולטים בצמיחה ופיתוח של ביציות. פרוטוקולים לבידוד תאים פוליקולריים נקבעו היטב בהקשר של הפריה חוץ גופית , אך אלה מתאימים רק לאיסוף תאים מזקיקים לוטאין בנקודת שאיבת הביציות¹. פיתחנו פרוטוקול המאפשר בידוד אוכלוסיות תאים בדידות מזקיקים אנטראליים בשלבי התפתחות שונים הנובעים משחלות טבעיות או מרקמת שחלה מושתלת². למרות שקיים קונצנזוס כי תרומתם של תאים שושבי זקיקים לטיפוח הביצית חשובה ביותר, מחקרים מעטים זיהו וחילצו באופן פרוספקטיבי את תת-הסוגים הפנוטיפיים הייחודיים הקיימים בזקיקים בשלב האנטראלי. הבנה מעמיקה יותר של היררכיית ההתמיינות והעברת האותות בין תאים מתמחים בשלבי ההתפתחות השונים עשויה להרחיב את הבנתנו את הפיזיולוגיה של השחלות בתנאים הומיאוסטטיים ופתולוגיים. יתר על כן, ההבחנה בין תת-סוגים תאיים בדידים ותרומתם המולקולרית לגדילה/הבשלה של זקיקים עשויה לספק אמצעי ליצירת פונדקאיות ex vivo המשחזרות את תפקוד השחלות כדי לעודד הבשלת ביציות ו / או לטפל בתפקוד אנדוקריני.

כל סוג תא ייחודי בתוך השחלה תורם לתפקוד המורכב של הזקיק, המתפקד למעשה כמיני-איבר נפרד לטיפוח הצמיחה וההבשלה של הביצית שהוא מכיל. הביצית, החלק המרכזי של הזקיק, עטופה ישירות בשכבה רציפה של תאי גרנולוזה (GCs), כאשר תאי התקה (TC) יוצרים שכבה משנית של תאים המשתלבים עם הביצית וה-GCs כדי להרכיב את היחידה הפוליקולרית. למרות שהם מסווגים לשתי קבוצות, GCs ו- TCs מכילים תת-סוגים רבים. GCs מסווגים לפי מיקומם בתוך הזקיק; GCs המקיפים את הביצית לעומת אלה הסמוכים לקרום המרתף מוגדרים כ- GCs oophorous ו- mural בהתאמה, ותתי סוגים אלה מציגים חתימות שעתוק ייחודיות. ל-TCs יש תת-סוגים רבים שתפקידם לספק תמיכה סטרואידוגנית, מטבולית ומבנית. תאי אנדותל, כלי דם ומערכת החיסון ממלאים תפקיד מרכזי בשמירה על פיזיולוגיה תקינה של השחלות. סטרומה השחלתית משמשת לא רק כמצע לצמיחת זקיקים, אלא גם ככל הנראה מספקת מקור לאבות המולידים TC. קומפלקס רב-שכבתי זה של תת-סוגים תאיים בתוך השחלה הוא המאפשר את תפקודה הן כאיבר אנדוקריני והן כאיבר רבייה.

מאמר זה מציג פרוטוקול לזיהוי וטיהור של גרנולוסה, תיקה, סטרומה, אנדותל ותאים המטופויטיים מזקיקים אנטראליים. השתמשנו בפרוטוקול זה כדי לבודד את תאי השחלות הללו ולנתח אותם באמצעות ריצוף של תא בודד, ולאחר מכן צביעה ספציפית בזקיקים בשלבי התפתחות שונים. הפרוטוקול מספק מתודולוגיה פשוטה הניתנת לשכפול ותאפשר ניתוח ברזולוציה גבוהה הן של הפיזיולוגיה והן של הפתולוגיה של השחלה.

פרוטוקול

כל ההליכים המערבים עכברים אושרו על ידי הוועדה המוסדית לטיפול ושימוש בבעלי חיים (IACUC) בבית החולים וייל קורנל. כל ניסויי השתלת הקסנו באמצעות רקמת שחלה בוצעו בהתאם להנחיות ולתקנות הרלוונטיות. שתי השחלות בודדו מתורם איברים בן 14 שמת מוות מוחי, ללא היסטוריה של רדיו/כימותרפיה וללא היסטוריה מתועדת של בעיות אנדוקריניות או פוריות. ועדת ועדת הביקורת המוסדית (IRB) של Weill Cornell Medicine אישרה את איסוף הרקמות, ואישור ממשפחת תורם האיברים התקבל לאחר הסכמה מדעת לגבי השימוש ברקמות.

1. איסוף רקמות שחלות וטיפול בהן

1. לאסוף את כל השחלות ואת הרקמה הקשורה, ולשטוף בתמיסת מלח סטרילית.
2. בעזרת פינצטה סטרילית, מניחים את השחלות במיכל סטרילי. יוצקים תמיסה סטרילית, חוצצת וקרה (למשל, מדיום L-15 של לייבוביץ') לתוך המיכל. ודא כי הרקמה מכוסה לחלוטין עם הנוזל.
3. סוגרים את המיכל ומכניסים אותו לשקית כפולה באמצעות שקיות ניילון סטריליות. העבירו את המיכל על קרח בתוך קופסה מבודדת (למשל, קלקר). להעביר את הדגימות למעבדה שתעבד את השחלות בהקדם האפשרי, רצוי בזמן שלא יעלה על 5 שעות ^3,4.

2. עיבוד רקמת השחלה

הערה: ודא שכל הריאגנטים והכלים מוכנים לפני שהרקמה מגיעה למעבדה כדי להפחית את המרווח האיסכמי ככל האפשר. ניתן להכין את המאגרים עד שבוע לפני ההקפאה ולשמור בקירור עד לשימוש.

1. הכנות לעיבוד השחלות והקפאה
   1. הגדר כלים כירורגיים מעוקרים בארון הבטיחות הביולוגית כהכנה לעיבוד רקמות: אזמל מספר 21; אזמל מספר 11; מספריים מעוקלים עדינים וחדים; מלקחיים ארוכים (~ 150 מ"מ אורך); ושני מלקחיים בינוניים (~ 110 מ"מ אורך).
   2. הכינו 100 מ"ל של מדיום עיבוד רקמות (ראו טבלת חומרים): מדיום L-15 של לייבוביץ המכיל תמיסה אנטיביוטית-אנטי-מיקוטית ומסונן באמצעות מסנן 0.2 מיקרומטר. שמור את המדיום מקורר.
   3. תייגו את ההקפאה, הוסיפו 1.5 מ"ל של תמיסת הקפאה (ראו טבלת חומרים) לכל בקבוקון, ואחסנו אותו בטמפרטורה של 4°C.
   4. יש זמין צלחת 6 בארות בהישג יד לשימוש.
2. עם הגעת הרקמה
   1. רססו את המיכל בתמיסת אתנול 70%, נגבו היטב והכניסו אותו לארון הבטיחות הביולוגית.
   2. לובשים כפפות סטריליות, פותחים את המיכל. מניחים את השחלה בצלחת פטרי סטרילית, ויוצקים מדיום צונן (משלב 2.1.2) כדי ללחלח את הרקמה. ודא כי השחלה שקועה למחצה בתווך.
   3. הסר את התפרים או חומר אחר ונתח את שאריות הרקמה שמסביב הרחק מהשחלה.

3. בידוד זקיקים אנטראליים

1. זהה זקיקים בודדים לבידוד. בבחירת זקיקים בריאים, אל תכלול זקיקים מלאים בדם, כהים או לא סימטריים, שכן אלה עשויים להיות אטרטיים.
2. בודד את הזקיקים האנטראליים שנבחרו מהשחלה כולה באמצעות אזמלים, תוך שמירה על האנטרום שלם על ידי כריתת רקמת קליפת המוח המקיפה את הזקיק.
3. מניחים כל זקיק אנטראלי שלם שנכרת בבאר אחת של צלחת 6 הקידוחים. במידת הצורך למטרות תיאוריות, השתמש בסרגל הממוקם מתחת לצלחת כדי לקבוע את קוטר הזקיק.
4. באמצעות אזמל, לחתוך את זקיק antral שלם כדי לקבל גישה לחלל antral, ולהוסיף 4 מ"ל של תווך ניתוק תאים אנזימטי. דגרו על הצלחת באינקובטור לח בטמפרטורה של 5%_CO2 ו-37°C למשך 10 דקות.
5. חזור על מיצוי זקיקים אנטראליים נוספים לפי הצורך.

4. בידוד תאים שושבי זקיק

1. לאחר הדגירה, יש להוסיף 4 מ"ל של תווך זמין המכיל 20% FBS, ולשטוף על ידי פיפטציה חוזרת ונמרצת של התווך מעל הזקיקים המפוצלים עם מיקרופיפטה P1,000.
2. אספו את המדיום, והעבירו אותו דרך מסנן של 100 מיקרומטר.
3. צנטריפוגה את supernatant מסונן ב 300 × גרם ו 4 ° C במשך 3 דקות. שאפו את הסופרנטנט, ושמרו את גלולת התא (מועשרת ב-GCs) על קרח לצורך תיוג ומיון תאים המופעלים על ידי פלואורסצנטיות (FACS).
4. מניחים את הרקמה הנותרת בתערובת של collagenase (100 U / mL) ו dispase (1 U / mL) מדולל בתמיסת מלח מאוזנת (למשל, Hanks), ולדגור במשך 30 דקות ב 5% CO₂ ו 37 ° C, משבש מכנית את הרקמה על ידי trituration ו pipetting נמרץ (כלומר, 10-15 עובר דרך קצה הפיפט) פעמיים לאחר 10 דקות ו 20 דקות.
5. יש לשחזר מדיה המכילה את הרקמה, לשטוף באמצעות פיפט דרך קצה מיקרופיפטה P1,000, ולסנן דרך מסנן של 100 מיקרומטר.
6. צנטריפוגה ב 300 × גרם ו 4 ° C במשך 3 דקות. שאפו את הסופרנטנט, והניחו בצד את גלולת התא (המועשרת בתאי TC וסטרומה) על קרח לצורך תיוג ו-FACS.

5. מיון תאים המופעלים על ידי פלואורסצנטיות

1. להשהות מחדש את כדורי התא בתמיסת חסימה (PBS + 0.1% FBS), ולדגור במשך 10 דקות ב 4 ° C.
2. צנטריפוגה ב 300 × גרם ו 4 ° C במשך 3 דקות, ולשאוף את supernatant.
3. השהה מחדש את כדורי התא בתמיסת חסימה המכילה נוגדנים מצומדים ישירות (ראה טבלה 1 עבור שילובי נוגדנים מתאימים לזיהוי GCs ו- TC), ודגור על קרח במשך 10 דקות.
4. לשטוף ולצנוח את התאים ב 300 × גרם ו 4 ° C במשך 3 דקות. השהה מחדש את התאים במאגר FACS המכיל 4′,6-diamidino-2-phenylindole (DAPI), והפעל את תרחיף התא באמצעות מכשיר FACS כדי ללכוד אוכלוסייה קטנה של התאים (500-1,000) באמצעות עוצמת הפלואורסצנטיות של נוגדנים מצומדים פלואורופורים לגטינג.
5. לזיהוי תת-אוכלוסיות ייחודיות, השתמש באסטרטגיות ה-gating הבאות:
   1. לטיהור GCs, ציירו שער סביב תאי CD45+ (איור 1B), והוציאו את האוכלוסייה הזו מאוכלוסיית CD99⁺ (איור 1A ואיור 1C); לאחר מכן, חלקו עוד יותר את החלק הנותר של CD99+ לשברים ^PVRL+/- (איור 1A ואיור 1C).
   2. לטיהור TCs וסטרומה, שער את כלל אוכלוסיית ENG+ (איור 1A) או CD55+ (איור 1D) כך שלא תכלול את מקטע האנדותל CD34+ (איור 1E) ותבדיל בין התאים הסטרואידוגניים (ANPEP⁺) והלא סטרואידוגניים (ANPEP^-). היזהר לפצות על דימום בין פלואורופורים קרובים בספקטרום הפליטה.
6. כדי לאמת את טוהר מקטע התא המיון, הפעל 5% מהנפח הכולל שנלכד באמצעות מכשיר FACS, וודא שהתאים מאכלסים את השערים הצפויים ונמצאים בטוהר של >95%.

6. עיבוד רקמת קליפת המוח השחלתית

1. חותכים את שארית השחלה, ומוציאים את המדולה באמצעות מספריים ואזמלים עדינים מעוקלים, תוך זהירות כדי למנוע נזק לקליפת השחלות.
2. המשך עיבוד ודילול קליפת השחלות על ידי גירוד עדין עד שתישאר מדולה מינימלית. הקפד להשתמש בכוח המינימלי הדרוש.
   הערה: עובי רקמת קליפת המוח צריך להיות בין 1 מ"מ ל -1.5 מ"מ.
3. מחלקים את רקמת קליפת המוח לרצועות ברוחב 2-3 מ"מ לאורך השחלה.

7. רקמת השחלות הקפאה איטית

1. הכנה להקפאה
   1. הכניסו רצועה אחת מקליפת המוח לכל בקבוקון קריוגני צונן המכיל תמיסת הקפאה.
   2. נערו את הבקבוקונים הקריוגניים המכילים את רצועות קליפת המוח על צלחת מסתובבת למשך 20 דקות בטמפרטורה של 4°C.
2. הקפאה איטית של רקמת השחלה⁵
   1. הכניסו את הקריביאלים המכילים רקמת שחלה למקפיא הניתן לתכנות כך שיתחיל ב-0 מעלות צלזיוס.
   2. מצננים בקצב של 2°C/min עד 7°C-.
   3. שמור על cryovials בטמפרטורה זו במשך 10 דקות.
   4. היווצרות גבישי קרח גרעיניים על ידי נגיעה בכל קריוביאל עם קצה כותנה שהיה שקוע לזמן קצר בחנקן נוזלי (LN₂).
   5. מצננים בקצב של 0.3°C/min עד שטמפרטורת הדגימה מגיעה ל-40°C.
   6. הגדל את קצב הקירור ל -10 ° C / min עד שטמפרטורת הדגימה מגיעה ל -140 ° C.
   7. העבר את cryovials לאחסון LN₂.

תוצאות

בודדנו זקיקים מפני השטח של השחלה וטיפלנו בהם באופן אנזימטי כדי לבודד את תאי GCs כמו גם תאי תקה וסטרומה המקיפים את החלל האנטרלי. התאים נאספו, ושברי התאים מוינו מהזקיקים האנטראליים (קטרים הנעים בין 0.5 מ"מ ל-4 מ"מ) לפי FACS לטוהר של >95% (איור 1).

כדי לתייג ולטהר שברים תאיים ייחודיים בתוך זקיקי האנטראלים האנושיים, שילבנו עיכול אנזימטי עם מיון ציטומטרי של זרימה. זיהינו בעבר חלבוני פני שטח המסמנים באופן ספציפי שברים שוכני זקיק². הראינו ש-CD9...

דיון

פתרון טוב יותר של המגוון התאי בתוך זקיקי השחלות חשוב מבחינה קלינית מכמה סיבות. ביישום הפרוטוקול הנ"ל על בידוד תת-הסוגים הפנוטיפיים הייחודיים השוכנים בתוך זקיקי השלב האנטראלי יש לקחת בחשבון מספר גורמים. ראשית, בריאותה וכדאיותה של רקמת השחלה שממנה נגזר הזקיק האנטרלי היא קריטית לקביעת איכות התאים ולהצלחת היישומים במורד הזרם. זה יכול להיות אופטימלי על ידי מזעור מרווח איסכמי, עבודה מהירה (רצוי בזוגות), והכנת חללי המעבדה שישמשו לעיבוד רקמות FACS. שנית, פרוטוקולים אלה מתאימים היטב לזקיקים בשלב האנטראלי בדיוק משום שניתן לזהות ול...

חומרים

רשימת החומרים שנעשה בהם שימוש במאמר זה

שם	חברה	מספר קטלוג	הערות
<חזק>כימיקלים, ריאגנטים
אנטיביוטיקה-אנטימיקוטיקה 100x	תרמו פישר מדעי	15240062	אנטי
אנטי דהייה תמיסת הרכבה	תרמו פישר מדעי	P36930	ProLong קולגנאז זהב
מ  Clostridium histolyticum	Millipore Sigma	C 2674
DAPI	Thermo Fisher Scientific	D1306
Dispase II, אבקת	Thermo Fisher Scientific	17105041
DMSO	Millipore Sigma	D 2650	דימתיל סולפוקסיד
DPBS, ללא סידן, ללא מגנזיום	Thermo Fisher Scientific	14190144
מדיום ניתוק תאי אנזים	Thermo Fisher Scientific	00-4555-56	Accutase
סרום בקר עוברי,	Thermo Fisher Scientific	10438026
Hanks′ תמיסת מלח מאוזנת	Thermo Fisher Scientific	14175079	ללא סידן, ללא מגנזיום, ללא פנול לייבוביץ אדום
s L-15 בינוני	Thermo Fisher Scientific	11415064
מי מלח רגילה	ביולוגית	114-055-101
סוכרוז	Millipore Sigma	S 1888
<חזק>בינוני מקפיא (100 מ"ל, מסונן דרך מסנן 0.2 מיקרון)
- 69.64 מ"ל של L-15
- 17.66 מ"ל של בקר עוברי סרום
- 3.42 גרם סוכרוז
- 10.65 מ"ל DMSO-
1 מ"ל של כלי פלסטיק וציוד מעבדה אנטיביוטיים<אנטי-פטרייתייםחזקים
6 בארות תחתית שטוחה שקופה לא מטופלת	מסננת תאי קורנינג	351146	פלקון
100 ומיקרו; m	פישר סיינטיפיק	352360	קורנינג, Falcon
Cryovials	תרמו פישר סיינטיפיק	377267	CryoTube 1.8 מ"ל
צלחת פטרי, D x H 150 מ"מ x 25 מ"מ	Millipore Sigma	CLS430599	60EA
מבחנות פוליסטירן עגולות עם תחתית עגולה עם מכסה הצמד מסננת תאים, 5 מ"ל	פישר 352235		מדעי קורנינג,
מערכת מסנן ואקום/בקבוקי אחסון של פלקון, 0.22 ומיקרו; m	קורנינג	431154
<נוגדנים חזקים>
ANPEP	BioLegend	301703
CD34	R& D Systems	FAB7227A
CD45	BioLegend	304019
CD55	BioLegend	311306
CD 99	BioLegend	371308
PVRL	BioLegend	340404
<כלים כירורגיים חזקים>
ארוכים (אורך ~150 מ"מ)	פישרברנד	12-000-128	של פישר סיינטיפיק
(אורך ~110 מ"מ)	פישרברנד	12-000-157	פישר סיינטיפיק
מספר 21 אזמל	אנדווין סיינטיפיק	EF7281H	פישר סיינטיפיק
מספר 11 אזמל	אנדווין סיינטיפיק	FH / CX7281A	פישר מדעי
מספריים מעוקלים עדינים חדים	Roboz כירורגי	RS-5881
<חזק>מכשירים
FACSJazz סדרן תאים מופעל פלורסנציה	BD
LSM 710 META מיקרוסקופ קונפוקלי	Zeiss