הרשמה ל-JoVE נדרשת לצפייה בתוכן זה. התחברו או התחילו בגרסת ניסיון בחינם.

מאמר שיטה

שיטת בידוד לתאי גזע המטופויטיים לטווח ארוך וקצר

3.1K צפיות

⸱

DOI:

10.3791/64488

⸱

19 במאי 2023

 ,  ,  ,  , 
1Hematopoietic Stem Cell Biology and Medical Innovation (HSCBMI), Department of Pediatrics, Kobe University Graduate School of Medicine, 2RIKEN Center for Biosystems Dynamics Research

במאמר זה

סיכום

אנו מציגים פרוטוקול שלב אחר שלב לבידוד תאי גזע המטופויטיים ארוכי טווח (LT-HSCs) ותאי HSC לטווח קצר (ST-HSCs) באמצעות מערכת הדיווח Hoxb5.

תקציר

יכולת התחדשות עצמית ופוטנציאל התמיינות רב-שושלות נחשבים בדרך כלל למאפיינים המגדירים של תאי גזע המטופויטיים (HSC). עם זאת, מחקרים רבים הציעו כי הטרוגניות תפקודית קיימת בתא HSC. ניתוחים חד-תאיים שנערכו לאחרונה דיווחו על שיבוטים של HSC עם גורלות תאים שונים בתוך תא HSC, המכונים שיבוטים מוטים של HSC. המנגנונים העומדים בבסיס תוצאות הטרוגניות או שאינן ניתנות לשחזור מובנים מעט, במיוחד לגבי משך ההתחדשות העצמית כאשר שברי HSC מטוהרים מושתלים על ידי אימונוסטיין קונבנציונלי. לכן, קביעת שיטת בידוד ניתנת לשחזור עבור HSCs לטווח ארוך (LT-HSCs) ו- HSCs לטווח קצר (ST-HSCs), המוגדרת על ידי משך ההתחדשות העצמית שלהם, היא חיונית להתגברות על בעיה זו. באמצעות סינון רב-שלבי בלתי משוחד, זיהינו גורם שעתוק, Hoxb5, שעשוי להיות סמן בלעדי של LT-HSCs במערכת המטופויטית של עכבר. בהתבסס על ממצא זה, הקמנו קו עכברים של כתב Hoxb5 ובודדנו בהצלחה LT-HSCs ו-ST-HSCs. כאן אנו מתארים פרוטוקול מפורט לבידוד LT-HSCs ו- ST-HSCs באמצעות מערכת הכתב Hoxb5 . שיטת בידוד זו תסייע לחוקרים להבין טוב יותר את מנגנוני ההתחדשות העצמית ואת הבסיס הביולוגי להטרוגניות כזו בתא HSC.

מבוא

תאי גזע המטופויטיים (HSCs), בעלי יכולת התחדשות עצמית ורב-עוצמה, שוכנים בפסגת ההיררכיה ההמטופויטית 1,2. בשנת 1988 הדגימו וייסמן ועמיתיו לראשונה כי בידוד של HSCs עכבריים יכול להיות מושג באמצעות ציטומטריית זרימה3. לאחר מכן, דווח כי חלק שהוגדר על ידי שילוב של סמני פני התא, Lineage−c-Kit+Sca-1+CD150+CD34−/loFlk2−, מכיל את כל HSCs בעכברים 4,5,6,7,8.

הוגדרו אימונופנוטיפית (שושלת−c-Kit+Sca-1+CD150+CD34−/loFlk2−) HSCs (להלן: pHSCs) נחשבו בעבר הומוגניים מבחינה תפקודית. עם זאת, ניתוחים חד-תאיים אחרונים גילו כי pHSCs עדיין מפגינים הטרוגניות ביחס ליכולת ההתחדשות העצמית שלהם 9,10 ורב-עוצמה11,12. באופן ספציפי, נראה כי שתי אוכלוסיות קיימות בחלק pHSC ביחס ליכולת ההתחדשות העצמית שלהם: תאי גזע המטופויטיים לטווח ארוך (LT-HSCs), שיש להם יכולת התחדשות עצמית מתמשכת, ותאי גזע המטופויטיים לטווח קצר (ST-HSCs), שיש להם יכולת התחדשות עצמית חולפת 9,10.

נכון להיום, המנגנונים המולקולריים של יכולת התחדשות עצמית המבדילים בין LT-HSCs ו-ST-HSCs עדיין אינם מובנים. חיוני לבודד את שתי אוכלוסיות התאים בהתבסס על יכולות ההתחדשות העצמית שלהן ולגלות את המנגנונים המולקולריים העומדים בבסיסן. מספר מערכות כתב הוכנסו גם לטיהור LT-HSCs13,14,15; עם זאת, טוהר LT-HSC המוגדר על ידי כל מערכת דיווח משתנה, וטיהור LT-HSC בלעדי לא הושג עד כה.

לכן, פיתוח מערכת בידוד עבור LT-HSCs ו-ST-HSCs יאיץ את המחקר בנוגע ליכולת התחדשות עצמית במקטע pHSC. בבידוד של LT-HSCs ו-ST-HSCs, מחקר שהשתמש בסינון רב-שלבי ובלתי מוטה זיהה גן יחיד, Hoxb5, המתבטא באופן הטרוגני בחלק pHSC16. בנוסף, ניתוח מח עצם של עכברי כתב Hoxb5 גילה כי כ 20%-25% של מקטע pHSC מורכב מתאיקופה Hoxb5. בדיקת השתלות תחרותית באמצעות Hoxb5 pos pHSCs ו- Hoxb5 neg pHSCs גילתה כי רק ל- Hoxb5pos pHSCs יש יכולת התחדשות עצמית לטווח ארוך, בעוד ש- Hoxb5 neg pHSCs מאבדים את יכולת ההתחדשות העצמית שלהם תוך תקופה קצרה, מה שמצביע על כך ש- Hoxb5 מזהה LT-HSCs בשבר pHSC16.

כאן, אנו מדגימים פרוטוקול שלב אחר שלב לבידוד LT-HSCs ו- ST-HSCs באמצעות מערכת הכתב Hoxb5 . בנוסף, אנו מציגים בדיקת השתלות תחרותית כדי להעריך את יכולת ההתחדשות העצמית של Hoxb5pos/neg pHSCs (איור 1). מערכת כתבים זו של Hoxb5 מאפשרת לנו לבודד באופן פרוספקטיבי LT-HSCs ו-ST-HSCs ותורמת להבנת המאפיינים הספציפיים של LT-HSC.

הגישה מוגבלת. התחברו או התחילו תקופת ניסיון כדי לצפות בתוכן זה.

פרוטוקול

כל הניסויים בבעלי חיים שתוארו אושרו על ידי מרכז RIKEN לחקר דינמיקה של מערכות ביולוגיות.

1. התניה מוקדמת של העכברים המקבלים

  1. הכינו עכברים קונגניים זכרים C57BL/6 בני 8-10 שבועות כעכברים מושתלים. מספר העכברים המקבלים תלוי בפרוטוקול הניסוי. בדרך כלל אנו מכינים 10-20 עכברים לכל מצב.
    1. האכילו את העכברים במים מעוקרים בתוספת אנרופלוקסצין (170 מ"ג/ליטר). מכיוון שהעכברים המוקרנים רגישים מאוד לזיהום, שמרו על הכלובים נקיים ככל האפשר.
      הערה: תוספת אנטיביוטיקה מתחילה 24 שעות לפני ההקרנה ונמשכת 3 שבועות לאחר ההשתלה כדי למנוע זיהומים.
  2. הקרנת גוף כוללת
    1. הקרנת הגוף הכוללת הורסת את תאי מח העצם המקבל כדי להבטיח קליטה של התאים התורמים. העבירו את העכברים המקבלים לכלוב הקרנה. יש להקרין באופן קטלני את העכברים המושתלים במנה אחת של 8.7 Gy ב-12-16 שעות לפני ההשתלה.
      הערה: מינון הקרינה והזמן עשויים להשתנות בהתאם לציוד. מינון הקרינה הקטלנית צריך להיות מאושר עם מקרין של החוקר וזן עכבר.
    2. החזירו אותם לכלובים שלהם לאחר הקרנת הגוף הכוללת.

2. איסוף תאי מח העצם התורם

  1. הכינו עכבר Hoxb5-tri-mCherry זכר בן 12 שבועות, והרדימו את העכבר על ידי חשיפה ל-CO2 ולאחר מכן פריקת צוואר הרחם או בשיטות שאושרו על ידי ועדת האתיקה המקומית של בעלי חיים.
    הערה: אמצעי האחסון מגיב לכל עכבר מתואר בשלבים הבאים.
  2. בתנאים סטריליים יש להסיר את העור ולחשוף את העצמות (עצם הירך, השוקה, האגן, עצם הזרוע). חותכים את השרירים העיקריים ולוקחים את העצמות (עצם הירך, השוקה, האגן, הומרוס) מהעכבר. הניחו אותם בכלי תרבית תאים סטריליים עם PBS קר כקרח ללא Ca 2+ו-Mg 2+.
  3. קצצו את השרירים והרקמות הסיביות מהעצמות באמצעות פינצטה, מספריים קטנים ומגבונים למניעת זיהום. היזהר לא לשבור את העצמות במהלך שלב זה. השליכו את כל העצמות השבורות על מנת לשמור על סטריליות.
  4. לעקר טיט ו pestle עם 70% אתנול (EtOH), ולתת להם להתייבש לחלוטין. יש לאזן את שיווי המשקל עם חיץ מכתים לתאים (PBS נטול Ca 2+ ו-Mg2+ בתוספת FBS מומת חום 2%, 2 mM EDTA, 100 U/mL פניצילין ו-100 מיקרוגרם/מ"ל סטרפטומיצין).
  5. שים את העצמות במכתש, ולהוסיף 3 מ"ל של חיץ מכתים תאים. למחוץ את העצמות לפתוח עם pestle. מפרקים את גושי התאים על ידי פיפטינג עדין, ומעבירים את תרחיף התא דרך מסננת תאים של 100 מיקרומטר לתוך צינור של 50 מ"ל.
  6. חזור על שלב 2.5 עד שהפתרון יתבהר. בדרך כלל, שלוש פעמים זה מספיק.

3. הפרדת תאי c-kit+ על ידי מיון מגנטי

  1. צביעת נוגדנים למיון מגנטי
    1. צנטריפוגה הדגימות ב 400 x גרם ו 4 ° C במשך 5 דקות. שאפו את הסופרנטנט, והשעו מחדש את הגלולה ב 1 מ"ל של חיץ צביעת התא. יש להוסיף 10 μL של חולדה-IgG (5 מ"ג/מ"ל) כדי להפחית קשירת נוגדנים לא ספציפיים, ולזלף בעדינות מעלה ומטה באמצעות פיפטה P1,000. דוגרים על קרח במשך 15 דקות.
    2. מוסיפים את נוגדן c-Kit (שיבוט 2B8) בריכוז של 4 מיקרוגרם/מ"ל, ומערבבים עם פיפטה P1,000. דוגרים על קרח במשך 15 דקות.
    3. מוסיפים 5 מ"ל של חיץ צביעת תאים, ומערבבים היטב. צנטריפוגה הדגימות ב 400 x גרם, 4 ° C, 5 דקות. שאפו את הסופרנטנט, והשעו מחדש את הגלולה ב-500 מיקרוליטר של חיץ צביעת תאים.
    4. הוסיפו 35 מיקרו-ליטר מיקרו-כדוריות נגד APC כדי להעשיר את תאי c-Kit+ , וערבבו עם פיפטה P1,000. דוגרים על קרח במשך 15 דקות.
    5. הוסף 4-5 מ"ל של חיץ מכתים תאים. צנטריפוגה הדגימות ב 400 x גרם ו 4 ° C במשך 5 דקות. שאפו את הסופרנטנט, והשעו מחדש את הגלולה ב 1 מ"ל של חיץ צביעת התא.
  2. מיון תאי C-Kit+ באופן מגנטי
    1. בצע את הוראות היצרן כדי למיין את התאים. בקצרה, פריים עמוד מיון מגנטי עם 3 מ"ל של חיץ צביעת תאים. סנן את הדגימה (1 מ"ל) דרך מסננת תאים של 40 מיקרומטר וטען את הדגימה על עמודת המיון המגנטי.
    2. יש לשטוף על ידי הוספת 3 מ"ל של חיץ צביעת תאים שלוש פעמים. הוסף את מאגר צביעת התאים רק כאשר מאגר העמודות ריק.
    3. שים את עמוד המיון המגנטי על גבי צינור קר כקרח של 15 מ"ל והוסף 5 מ"ל של חיץ צביעת תאים. שטפו את התאים על ידי דחיפת הבוכנה בחוזקה לתוך העמודה. שמור את הזרימה על קרח.
      הערה: במקרה של אובדן דגימה בשוגג, אנו שומרים על הזרימה עד סוף הניסוי.

4. צביעת תאי גזע המטופויטיים

  1. צנטריפוגה הדגימה שהוכנה בשלב 3.2.3 ב 400 x גרם ו 4 ° C במשך 5 דקות. שאפו את הסופר-נאנט.
  2. מוסיפים את נוגדן CD34 (שיבוט RAM34) בריכוז של 50 מיקרוגרם / מ"ל לכדור, ודגרים על קרח במשך 60 דקות.
    הערה: הכנת התאים התומכים במהלך השעה הראשונה של הדגירה עם CD34 מומלצת כדי לקצר את זמן העיבוד.
  3. הכינו את תערובת האב של הנוגדנים לפי טבלה 1. מוסיפים 100 מיקרוליטר של תערובת האב לדגימה, ודורים על קרח במשך 30 דקות. הנוגדן לאנטיגן CD34 (שיבוט; RAM34) דורש 90 דקות להכתמה מספקת.
  4. הוסף 4-5 מ"ל של חיץ צביעת תאים. צנטריפוגה הדגימה ב 400 x גרם ו 4 ° C במשך 5 דקות. שאפו את הסופר-נאנט. מוסיפים סטרפטווידין-BUV737 בריכוז של 3 מק"ג/מ"ל לכדורית, ודורים על קרח במשך 30 דקות.
  5. הוסף 4-5 מ"ל של חיץ צביעת תאים. צנטריפוגה הדגימה ב 400 x גרם ו 4 ° C במשך 5 דקות. שאפו את הסופרנטנט, והשעו מחדש את הגלולה ב-400 מיקרוליטר של חיץ צביעת תאים. שמור את הדגימה על קרח.

5. תמיכה בהכנת התא

  1. הכינו עכבר קונגני CD45.1+ CD45.2+ בן 12 שבועות; באופן אידיאלי, זה צריך להיות באותו גיל כמו העכבר התורם. יש להרדים את העכבר על ידי חשיפה ל-CO2 ולאחר מכן פריקת צוואר הרחם או שימוש בשיטות שאושרו על ידי ועדת האתיקה המקומית של בעלי חיים.
    הערה: בדוגמה שסופקה, עכברים קונגניים CD45.1+ CD45.2+ גודלו בבית על ידי חציית B6. עכברי CD45.1 קונגניים עם עכברי C57BL/6J16.
  2. בתנאים סטריליים, קחו גם את עצם הירך וגם את עצם השוקה, והניחו אותם בכלי תרבית תאים סטריליים עם PBS קר כקרח ללא Ca 2+ו-Mg 2+. קצצו את השרירים והרקמות הסיביות מהעצמות באמצעות פינצטה ומספריים קטנים.
  3. חותכים את שני קצוות העצמות במספריים חדים וסטריליים. השתמש במחט 23 גרם ובמזרק 5 מ"ל מלא במאגר תרחיף תאים קר כקרח (PBS ללא Ca 2+ ו- Mg2+ בתוספת FBS מומתק חום 2%, 100 U/mL פניצילין וסטרפטומיצין 100 מיקרוגרם/מ"ל) כדי לשטוף את מח העצם החוצה לתוך צלחת תרבית תאים סטרילית עם חיץ תרחיף תאים. לפרק את גושי התאים על ידי pipetting עדין.
  4. סנן את תרחיף התא דרך מסננת תאים של 40 מיקרומטר באמצעות פיפטה P1,000. ספור את מספר התא של תרחיף התא באמצעות המוציטומטר והכן תרחיף תאי מח עצם המכיל 1 x 106 תאים / מ"ל.
  5. מעבירים 200 μL של תרחיף תאי מח העצם (2 x 105 תאים) לצלחת בעלת 96 בארות, תחתית עגולה. יש לשמור על קרח עד לשימוש.
    הערה: לוחות תחתונים עגולים מומלצים לאיסוף תאים קל.

6. מיון Hoxb5pos או Hoxb5neg pHSC

  1. הגדרת Gating
    1. העבירו 400 μL של הדגימה שהוכנה בשלב 4.5 למבחנה עגולה מפוליסטירן עם מכסה הצמדה של מסננת תאים 35 מיקרומטר. הכינו מגיב צביעת תאים מתים, והוסיפו אותו לדגימה לפני הניתוח בהתאם להוראות היצרן.
    2. הפעל ציטומטר זרימה, והפעל את תוכנת הניתוח בהתאם להוראות היצרן. לאחר מכן, לחץ על טען וקבל את הנתונים.
      הערה: מומלץ להשתמש בציטומטר זרימה המצויד בחמישה לייזרים ובפייה של 70 מיקרומטר כדי לשפר את טוהר התאים הממיינים.
    3. לאחר ניכוי כפילים, תאים מתים ותאים חיוביים לשושלת, שער את שבר השושלת−c-Kit+Sca-1+ . לאחר מכן, שער החוצה את החלק Flk2+ . לאחר מכן, שער Hoxb5pos או Hoxb5neg pHSCs בשבר CD150+CD34−/נמוך (איור 2). בצע פיצוי על החפיפה הספקטרלית בניסוי הראשון.
      הערה: תאים חיוביים של Hoxb5 צפויים לייצג 20%-25% מהשושלת−c-Kit+Sca-1+CD150+CD34−/FLK2 נמוך.
  2. מיון Hoxb5pos או Hoxb5neg pHSC
    1. הכינו צינור קשירת חלבון נמוך של 1.5 מ"ל עם 600 μL של PBS ללא Ca 2+ ו-Mg2+ בתוספת 10% FBS מומת חום.
    2. הגדר את צינור קשירת החלבון הנמוך של 1.5 מ"ל במכשיר איסוף מיון, ומיין את ה- PCHSC של Hoxb5 pos או Hoxb5 neg לצינורשל 1.5 מ"ל באמצעות אסטרטגיית ה- gating שנקבעה בשלב 6.1.3. במיון הראשון, השתמש בתפוקה ממצב דיוק המיון.
    3. הגדר את לוח 96 הקידוחים עם התאים התומכים שהוכנו בשלב 5.5 בשלב יחידת תצהיר התאים האוטומטית (ACDU). הגדר את צינור קשירת החלבון הנמוך בנפח 1.5 מ"ל שהוכן בשלב 6.2.2 ליציאת הטעינה של ציטומטר זרימה.
    4. מיין אתנקודות ה- PHSC של Hoxb5 אוHoxb5 neg ללוח של 96 בארות עם התאים התומכים באמצעות אסטרטגיית gating שנקבעה בשלב 6.1.3. מיין 10נקודות מכירה של Hoxb5 או Hoxb5neg pHSCs כדי לבדוק את יכולות ההתחדשות העצמית שלהם.
      הערה: מומלץ לבצע מיון כפול כדי לשפר את הטוהר. במיון השני, השתמש בטוהר כמצב דיוק המיון המומלץ.
    5. בדרך כלל, 500-1,000 pHSCs מסוג Hoxb5pos ו-1,500-4,000 Hoxb5neg pHSCs נקצרים לאחר מיון כפול. המשך בהליכי ההשתלה בהקדם האפשרי לאחר מיון HSC כדי לשפר את כדאיות התא (באופן אידיאלי תוך 1-2 שעות).

7. השתלה

  1. הניחו את הצלחת הממוינת ב-HSC עם 96 בארות שהוכנה בשלב 6.2.4 על קרח. טפל בצלחת 96 בארות ממוינת HSC בתנאים סטריליים, רצוי במכסה מנוע של תא.
  2. מרדימים עכבר מושתל עם 2% איזופלורן בתא השראת גז. לאחר שהחיה מורדמת לחלוטין, הוציאו אותה והניחו אותה על צדה. כדי להבטיח הרדמה מספקת, יש לוודא שאין תנועה בתגובה לגירוי מזיק.
  3. לאחר אישור הרדמה מתאימה, בצע הזרקת רטרו-אורביטל בהקדם האפשרי כדי למנוע מהעכבר לחזור להכרה. הזרקת רטרו-אורביטל אורכת פחות מ-30 שניות.
    הערה: מכיוון שזמן ההזרקה קצר, אנו מסיימים את ההליך מבלי למרוח משחת עיניים בעיניים. עם זאת, אם ההליך לוקח זמן רב יותר, אנו ממליצים על שימוש משחה אופתלמית.
  4. מקציפים בעדינות את התאים בצלחת 96 בארות ממוינת HSC כדי לערבב אותם. אספו את התאים התורמים בצלחת המיון באמצעות מזרק אינסולין 30 גרם, והזריקו אותם למקלעת הוורידית הרטרו-אורביטלית של העכברים המקבלים. נפח ההזרקה המומלץ הוא ≤200 μL.
  5. התבוננו עד שהעכברים יהיו בהכרה וינועו בכלוב נקי. החזירו אותם לכלובים לאחר אישור החלמתם.

8. ניתוח דם היקפי

  1. לאסוף 50 μL של דם היקפי מן הווריד הזנב, ולהשעות אותו עם 100 μL של Ca 2 + ו Mg 2+ חינם PBS עם2 mM EDTA. מעבירים את כל הדגימות לצלחת של 96 בארות. צנטריפוגה ב 400 x גרם ו 4 ° C במשך 5 דקות, ו להשליך את supernatant.
  2. מוסיפים 200 μL של חיץ ליזה של תאי דם אדומים, ודגורים על קרח במשך 3 דקות. צנטריפוגו את הדגימות בטמפרטורה של 400 x גרם ו-4 מעלות צלזיוס למשך 5 דקות, והשליכו את הסופרנטנט. חזור על הפעולה פעם נוספת.
  3. הוסף 200 μL של חיץ צביעת תאים. צנטריפוגו את הדגימות בטמפרטורה של 400 x גרם ו-4 מעלות צלזיוס למשך 5 דקות, והשליכו את הסופרנטנט.
  4. הכינו תערובת אב נוגדנים לפי טבלה 2. מוסיפים 50 μL של תערובת מאסטר נוגדנים, ודגורים על קרח במשך 30 דקות.
  5. הוסף 150 μL של חיץ צביעת תאים. צנטריפוגו את הדגימות בטמפרטורה של 400 x גרם ו-4 מעלות צלזיוס למשך 5 דקות, והשליכו את הסופרנטנט.
  6. הוסף 200 μL של חיץ צביעת תאים. צנטריפוגו את הדגימות בטמפרטורה של 400 x גרם ו-4 מעלות צלזיוס למשך 5 דקות, והשליכו את הסופרנטנט. יש להשהות מחדש ב-200 מיקרוליטר של חיץ צביעת תאים, ולהוסיף מגיב צביעת תאים מתים לפני הניתוח בהתאם להוראות היצרן.
  7. ניתוח כימריזם דם היקפי באמצעות ציטומטר זרימה כפי שתואר קודם16. יש לאסוף דם לאחר 4 שבועות, 8 שבועות, 12 שבועות ו-16 שבועות לאחר ההשתלה כדי לעקוב אחר בנייה מחדש של שושלות מרובות. תרשימי ציטומטריה של זרימה מייצגת מוצגים באיור 3.

הגישה מוגבלת. התחברו או התחילו תקופת ניסיון כדי לצפות בתוכן זה.

תוצאות

בעבר, יכולת ההתחדשות העצמית נמדדה באמצעות מבחני השתלה תחרותיים, שבהם HSCs של תורמים נחשבים כשומרים על יכולת ההתחדשות העצמית שלהם רק אם תאי תורם רב-שושלות בדם ההיקפי של המקבל נצפים17. בנוסף, מספר דוחות מגדירים LT-HSCs כתאים הממשיכים לייצר תאי דם היקפיים מספר חודשים לאחר השתלת מח העצם השנייה10,18. לכן, על מנת להשוות את יכולות ההתחדשות העצמית שלהם, 10עכברי Hoxb5 pos או Hoxb5neg pHSCs שבודדו מעכברי כתב Hoxb5 הושת...

הגישה מוגבלת. התחברו או התחילו תקופת ניסיון כדי לצפות בתוכן זה.

דיון

באופן מסורתי, HSCs המוגדרים על ידי סמנים בפני השטח של התא הוכנו כדי לחקור את הפונקציות של HSCs, כגון יכולת התחדשות עצמית ורב-עוצמה 19,20,21. עם זאת, החלק האימונופנוטיפי המוגדר (Lineage−c-Kit+Sca-1+CD150+CD34−/loFlk2−) HSC מכיל שתי אוכלוסיות HSC בדידות: LT-HSCs ו-ST-HSCs 9,10. לכן, הניתוח הספציפי...

הגישה מוגבלת. התחברו או התחילו תקופת ניסיון כדי לצפות בתוכן זה.

גילויים

המחברים מצהירים כי אין ניגודי עניינים הקשורים למחקר זה.

תודות

אנו מודים להירושי קיונארי על הטיפול בבעלי חיים ועל כך שסיפק עכברים מושתלים ב- RIKEN BDR, כמו גם היטומי אוגה, קאיוקו נגאסאקה ומסאקי מיהאשי לניהול מעבדה באוניברסיטת קובה. המחברים גם מעריכים מאוד את התמיכה המתמשכת בעבודה זו. מסאנורי מיאנישי נתמך על ידי האגודה היפנית לקידום המדע (JSPS) מספרי מענק KAKENHI JP17K07407 ו- JP20H03268, קרן הזיכרון Mochida למחקר רפואי ופרמצבטי, קרן מדעי החיים של יפן, קרן המדע טקדה, קרן אסטלס לחקר הפרעות מטבוליות, ו- AMED-PRIME, AMED תחת מענק מספר JP18gm6110020. Taro Sakamaki נתמך על ידי מספרי המענק של JSPS KAKENHI JP21K20669 ו- JP22K16334 ונתמך על ידי תוכנית הליבה לליבה של JSPS ותוכנית עמיתי המחקר הצעירים של RIKEN. Katsuyuki Nishi נתמך על ידי JSPS מספר מענק KAKENHI JP18J13408.

הגישה מוגבלת. התחברו או התחילו תקופת ניסיון כדי לצפות בתוכן זה.

חומרים

רשימת החומרים שנעשה בהם שימוש במאמר זה
שםחברהמספר קטלוגהערות
0.2 מ"ל רצועה של 8 צינורות, כובע כיפהSSIbio3230-00
0.5M EDTA pH 8.0AM9260G
100 ומיקרו; m מסננת תאיםFalcon352360
מזרק אינסולין 30GBD326668
40 ומיקרו; m מסננת תאיםFalcon352340
5 מ"ל מבחנה פוליסטירן תחתון עגול, עם מסננת תאים כובע הצמדFALCON352235
7-AAD פתרון צביעת כדאיותBioLegend420404
96 באר U-BottomFALCON351177
Anti-APC-MicroBeadsMilteny biotec130-090-855
שואב עם מלכודת בקבוקBiosanFTA-1
B220-Alexa Fluor 700 (RA3-6B2)BioLegend103232
B220-Biotin (RA3-6B2)BioLegend103204
B220-BV786 (RA3-6B2)BD Biosciences563894
B6. CD45.1 עכברים קוגניים שירות Sankyo LaboN/A
Baytril 10%BAYER341106546
BD FACS Aria II מערכת הזמנות מיוחדות BDN/A
מאגר כתמים מבריקBD566349
CD11b-Alexa Fluor 700 (M1/70)BioLegend101222
CD11b-ביוטין (M1/70)BioLegend101204
CD11b-BUV395 (M1/70)BD Biosciences563553
CD11b-BV711 (M1/70)BD Biosciences563168
CD127-Alexa Fluor 700 (A7R34)Invitrogen56-1271-82
CD150-BV421 (TC15-12F12.2)BioLegend115943
CD16/CD32-Alexa Fluor 700 (93)Invitrogen56-0161-82
CD34-Alexa Fluor 647 (RAM34)BD Biosciences560230
CD34-FITC (RAM34)Invitrogen11034185
CD3-Alexa Fluor 700 (17A2)BioLegend100216
CD3ε -ביוטין (145-2C11)BioLegend100304
CD3ε -BV421 (145-2C11)BioLegend100341
CD45.1/CD45.2 עכברים קונגנייםN/AN/Aשגודלו במעבדה שלנו
CD45.1-FITC (A20)BD Biosciences553775
CD45.2-PE (104)BD Biosciences560695
CD4-Alexa Fluor 700 (GK1.5)BioLegend100430
CD4-Biotin (GK1.5)BioLegend100404
CD8a-Alexa Fluor 700 (53-6.7)BioLegend100730
CD8a-Biotin (53-6.7)BioLegend100704
צינור צנטריפוגה 15 מ"לNICHIRYO00-ETS-CT-15
צינור צנטריפוגה 50 מ"לNICHIRYO00-ETS-CT-50
c-Kit-APC-eFluor780 (2B8)Invitrogen47117182
D-PBS (-) ללא Ca ו-Mg, נוזל Nacalai14249-24
סרום בקרעוברי תרמו פישר10270106
Flk2-PerCP-eFluor710 (A2F10)eBioscience46135182
FlowJo גרסה 10BD Biosciences 
Gmmacell 40 Exactorהטרטרוניקה הטובה ביותרN/A
Gr-1-Alexa Fluor 700 (RB6-8C5)BioLegend108422
Gr-1-Biotin (RB6-8C5)BioLegend108404
Hoxb5-tri-mעכברי דובדבן (רקע C57BL/6J) N/AN/Aגדל במעבדה שלנו
IgG מסרום חולדות, דרגה טכנית, >=80% (SDS-PAGE), תמיסה מימית חוצצתSigma-AldrichI8015-100MG
איזופלורןפייזר4987-114-13340-3 
Kimwipes S200NIPPON PAPER CRECIA 6-6689-01
עמודות LSMilteny biotec130-042-401
מאגר ליזה BD555899
MACS  MultiStandMilteny biotec130-042-303
Microplate לתרבית רקמות (לתאי הידבקות) 6WellIWAKI3810-006
MidiMACS מפרידMilteny biotec130-042-302
כלובי פאי עכברNatsume SeisakushoKN-331
צנטריפוגה מקוררת רב תכליתיתTOMYEX-125
NARCOBIT-E (II)Natsume SeisakushoKN-1071-I
NK-1.1-PerCP-Cy5.5 (PK136)BioLegend108728
תמיסה מעורבת פניצילין-סטרפטומיציןnacalai26253-84
טיט חרסינה φ 120 מ"מ עם PestleAsone6-549-03
חלבון LoBind שפופרת 1.5 מ"ל Eppendorf22431081
Sca-I-BUV395 (D7)BD Biosciences563990
להב אזמל נירוסטהFastGeneFG-B2010
Streptavidin-BUV737BD Biosciences612775
SYTOX-redInvitrogenS34859
Tailveiner Restrainer לעכברים סטנדרטיBraintreeTV-150 STD
TCRb-BV421 (H57-597)BioLegend109230
Ter-119-Alexa Fluor 700 (TER-119)BioLegend116220
Ter-119-Biotin (TER-119)BioLegend116204
Terumo 5 מ"ל מזרק Luer-Slip קונצנטריTERUMOSS-05LZ
מחט היפודרמית Terumo 23G x 1TERUMONN-2325-R
https://www.flowjo.com/solutions/flowjo

מקורות

  1. Weissman, I. L., Shizuru, J. A. The origins of the identification and isolation of hematopoietic stem cells, and their capability to induce donor-specific transplantation tolerance and treat autoimmune diseases. Blood. 112 (9), 3543-3553 (2008).
  2. Majeti, R., Park, C. Y., Weissman, I. L. Identification of a hierarchy of multipotent hematopoietic progenitors in human cord blood. Cell Stem Cell. 1 (6), 635-645 (2007).
  3. Spangrude, G. J., Heimfeld, S., Weissman, I. L. Purification and characterization of mouse hematopoietic stem cells. Science. 241 (4861), 58-62 (1988).
  4. Ogawa, M., et al. Expression and function of c-kit in hemopoietic progenitor cells. Journal of Experimental Medicine. 174 (1), 63-71 (1991).
  5. Ikuta, K., Weissman, I. L. Evidence that hematopoietic stem cells express mouse c-kit but do not depend on steel factor for their generation. Proceedings of the National Academy of Sciences of the United States of America. 89 (4), 1502-1506 (1992).
  6. Osawa, M., Hanada, K., Hamada, H., Nakauchi, H. Long-term lymphohematopoietic reconstitution by a single CD34-low/negative hematopoietic stem cell. Science. 273 (5272), 242-245 (1996).
  7. Christensen, J. L., Weissman, I. L. Flk-2 is a marker in hematopoietic stem cell differentiation: A simple method to isolate long-term stem cells. Proceedings of the National Academy of Sciences of the United States of America. 98 (25), 14541-14546 (2001).
  8. Kiel, M. J., et al. SLAM family receptors distinguish hematopoietic stem and progenitor cells and reveal endothelial niches for stem cells. Cell. 121 (7), 1109-1121 (2005).
  9. Morrison, S. J., Weissman, I. L. The long-term repopulating subset of hematopoietic stem cells is deterministic and isolatable by phenotype. Immunity. 1 (8), 661-673 (1994).
  10. Spangrude, G. J., Brooks, D. M., Tumas, D. B. Long-term repopulation of irradiated mice with limiting numbers of purified hematopoietic stem cells: In vivo expansion of stem cell phenotype but not function. Blood. 85 (4), 1006-1016 (1995).
  11. Dykstra, B., Olthof, S., Schreuder, J., Ritsema, M., de Haan, G. Clonal analysis reveals multiple functional defects of aged murine hematopoietic stem cells. Journal of Experimental Medicine. 208 (13), 2691-2703 (2011).
  12. Grover, A., et al. Single-cell RNA sequencing reveals molecular and functional platelet bias of aged haematopoietic stem cells. Nature Communications. 7, 11075(2016).
  13. Kataoka, K., et al. Evi1 is essential for hematopoietic stem cell self-renewal, and its expression marks hematopoietic cells with long-term multilineage repopulating activity. Journal of Experimental Medicine. 208 (12), 2403-2416 (2011).
  14. Gazit, R., et al. Fgd5 identifies hematopoietic stem cells in the murine bone marrow. Journal of Experimental Medicine. 211 (7), 1315-1331 (2014).
  15. Acar, M., et al. Deep imaging of bone marrow shows non-dividing stem cells are mainly perisinusoidal. Nature. 526 (7571), 126-130 (2015).
  16. Chen, J. Y., et al. Hoxb5 marks long-term haematopoietic stem cells and reveals a homogenous perivascular niche. Nature. 530 (7589), 223-227 (2016).
  17. Ema, H., et al. Quantification of self-renewal capacity in single hematopoietic stem cells from normal and Lnk-deficient mice. Developmental Cell. 8 (6), 907-914 (2005).
  18. Morita, Y., Ema, H., Nakauchi, H. Heterogeneity and hierarchy within the most primitive hematopoietic stem cell compartment. Journal of Experimental Medicine. 207 (6), 1173-1182 (2010).
  19. Yamamoto, R., et al. Clonal analysis unveils self-renewing lineage-restricted progenitors generated directly from hematopoietic stem cells. Cell. 154 (5), 1112-1126 (2013).
  20. Fathman, J. W., et al. Upregulation of CD11A on hematopoietic stem cells denotes the loss of long-term reconstitution potential. Stem Cell Reports. 3 (5), 707-715 (2014).
  21. Oguro, H., Ding, L., Morrison, S. J. SLAM family markers resolve functionally distinct subpopulations of hematopoietic stem cells and multipotent progenitors. Cell Stem Cell. 13 (1), 102-116 (2013).
  22. Haas, S., Trumpp, A., Milsom, M. D. Causes and consequences of hematopoietic stem cell heterogeneity. Cell Stem Cell. 22 (5), 627-638 (2018).
  23. Schroeder, T. Hematopoietic stem cell heterogeneity: Subtypes, not unpredictable behavior. Cell Stem Cell. 6 (3), 203-207 (2010).
  24. Muller-Sieburg, C. E., Sieburg, H. B., Bernitz, J. M., Cattarossi, G. Stem cell heterogeneity: Implications for aging and regenerative medicine. Blood. 119 (17), 3900-3907 (2012).
  25. Duran-Struuck, R., Dysko, R. C. Principles of bone marrow transplantation (BMT): Providing optimal veterinary and husbandry care to irradiated mice in BMT studies. Journal of the American Association for Laboratory Animal Science. 48 (1), 11-22 (2009).
  26. Nishi, K., et al. Identification of the minimum requirements for successful haematopoietic stem cell transplantation. British Journal of Haematology. 196 (3), 711-723 (2022).
  27. Sakamaki, T., et al. Hoxb5 defines the heterogeneity of self-renewal capacity in the hematopoietic stem cell compartment. Biochemical and Biophysical Research Communications. 539, 34-41 (2021).

הגישה מוגבלת. התחברו או התחילו תקופת ניסיון כדי לצפות בתוכן זה.

הדפסות חוזרות והרשאות

תגיות

תאי גזע המטופוייטים (HSCs) לטווח ארוךתאי גזע המטופוייטים (HSCs) לטווח קצרעכברי דווח Hoxb5ציטומטריה זרימתיתבידוד מחולק העצםמנגנוני התחדשות עצמיתמיון תאיםתאים שליליים לשושלת (Lineage Negative Cells)דיפרנציאציה למספר שושלות
שיטת בידוד לתאי גזע המטופויטיים לטווח ארוך וקצר
צרו קשר
המליצו לספרייה

פרטיות

תנאי שימוש

מדיניות

זכויות יוצרים © 2026 MyJoVE Corporation. כל הזכויות שמורות.