מאמר שיטה

כימות ציטוטוקסיות תאית תלוית נוגדנים במודל ספרואידי גידול: יישום לגילוי תרופות

DOI:

10.3791/65922

⸱

26 באפריל 2024

 ,  ,  ,  ,  , 
1Department of Medical Chemistry, Faculty of Medicine, University of Debrecen, 2Doctoral School of Molecular Medicine, University of Debrecen, 3National Academy of Scientist Education, 4HUN-REN-DE Cell Biology and Signaling Research Group

במאמר זה

סיכום

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

במאמר זה אנו מציגים שיטה לזיהוי תרכובות המווסתות את מנגנון ADCC, מנגנון חשוב להרג תאים סרטניים של נוגדנים אנטי-סרטניים. ההשפעה ציטוטוקסית של תאי NK נמדדת בספרואידים של תאי סרטן השד בנוכחות Trastuzumab. ניתוח תמונה מזהה רוצחים חיים ומתים ותאי מטרה בספרואידים.

תקציר

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

אימונותרפיה מבוססת נוגדנים חד-שבטיים המכוונת לאנטיגנים סרטניים היא כיום עמוד התווך של הטיפול בסרטן. אחד ממנגנוני הפעולה הרלוונטיים מבחינה קלינית של הנוגדנים הוא ציטוטוקסיות תאית תלוית נוגדנים (ADCC), שבה הנוגדן נקשר לתאים הסרטניים ומפעיל את המרכיב התאי של מערכת החיסון, למשל תאי הרג טבעי (NK), כדי להרוג את תאי הגידול. ניתן לשפר את יעילותם של טיפולים אלה על ידי זיהוי תרכובות אדג'ובנטיות המגבירות את הרגישות של התאים הסרטניים או את עוצמת תאי החיסון. בנוסף, אינטראקציות בין תרופתיות שלא התגלו בחולי סרטן שקיבלו טיפול תרופתי משותף למצבים קודמים או תסמינים הקשורים לסרטן עשויות לקבוע את הצלחת הטיפול בנוגדנים; לכן, אינטראקציות לא רצויות כאלה בין תרופתיות צריכות להיות מסולקות. מתוך מחשבה על מטרות אלה, יצרנו מודל ADCC לסרטן ואנו מתארים כאן פרוטוקול פשוט למציאת תרופות המווסתות ADCC. מכיוון שמודלים תלת-ממדיים כגון ספרואידים של תאים סרטניים עדיפים על תרביות דו-ממדיות בניבוי תגובות in vivo של גידולים לטיפולים אנטי-סרטניים, תרביות משותפות של תאי סרטן שד המבטאים EGFP HER2+ JIMT-1 ו-NK92. קווי תאים CD16 הוקמו והושרו עם Trastuzumab, נוגדן חד שבטי שאושר קלינית נגד סרטן שד חיובי ל- HER2. ספרואידים מסוג JIMT-1 הורשו להיווצר בלוחות דוחי תאים מסוג U 96 בארות. ביום השלישי נוספו תאי NK וטרסטוזומאב. לאחר מכן הוכתמו הספרואידים ב-Annexin V-Alexa 647 כדי למדוד מוות של תאים אפופטוטיים, אשר כומת באזור ההיקפי של הספרואידים באמצעות מיקרוסקופ אוטומטי. היישום של הבדיקה שלנו לזיהוי מולקולות אפנון ADCC מודגם על ידי מראה כי Sunitinib, מעכב קולטן טירוזין קינאז שאושר על ידי ה- FDA נגד סרטן גרורתי, מבטל כמעט לחלוטין ADCC. הדור של הספרואידים וצינורות רכישת התמונה והניתוח תואמים לבדיקות סקר בתפוקה גבוהה עבור תרכובות מווסתות ADCC בספרואידים של תאים סרטניים.

מבוא

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

ספרואידים רב-תאיים של גידולים (MCTS) נמצאים בשימוש נרחב במודלים תלת-ממדיים (תלת-ממדיים) הנוצרים עקב נטייתם של תאים דבקים להצטבר ומייצגים כלי חשוב להשגת תובנה מכניסטית בביולוגיה של התא הסרטני. הם יכולים להיווצר ממגוון רחב של סוגי תאים על ידי טכניקות רבות, כגון תרביות תלת ממד מבוססות נוזל ופיגומים1. היתרון העיקרי שלהם על פני מודלים דו-ממדיים חד-שכבתיים הוא שהם משחזרים את המאפיינים העיקריים של גידולי in vivo , כלומר ארגון מבני והיפוקסיה, על ידי חיקוי ההתנהגות הביולוגית של תאי הגידול, במיוחד המנגנונים המובילים לבריחה טיפולית ועמידות לתרופות2. לכן, מאחר ש-MCTS יכולים לשפר את יכולת החיזוי של רעילות ורגישות לתרופות, הם נמצאים בשימוש נרחב לחקר סרטן בתלת-ממד ויכולים לשפר את הפיתוח של תרופות יעילות לסוגים שונים של סרטן3.

כדי לחקור כל מחלה, יש צורך קריטי מודלים רלוונטיים ונוחים. הקמת מודלים למחקרי אימונולוגיה של סרטן היא מאתגרת מכיוון שמערכת החיסון מורכבת ממספר סוגי תאים. לכל סוג תא יש מספר תת-סוגים וספקטרום רחב של מצבי שפעול. סוגי תאי חיסון שונים אלה מתקשרים עם תאים סרטניים ומרכיבים סרטניים אחרים, ובסופו של דבר משפיעים על תוצאות המחלה. שיטות דו-ממדיות של תרביות תאים במבחנה אינן מצליחות לשחזר אינטראקציות תאיות מורכבות אלה, מכיוון שהן חסרות יכולת תרגום ואינן מסוגלות לחזות את פעולת התרופה ברמת המערכת (למשל, ברקמות)4,5. יתר על כן, מודלים עכברים יש גם מגבלות חמורות בשל ההבדלים הבסיסיים בין המערכת החיסונית האנושית ו murine. מערכות תרבית תלת-ממדיות יכולות, אם כן, למלא את הפערים הנוכחיים במודלים הזמינים, לספק שיטה חלופית ולשפר את הבנתנו את האימונולוגיה של סרטן6. באופן ספציפי, מודלים ספרואידים עשויים לשמש לבדיקת אימונותרפיה, בעיקר כדי להעריך את היעילות של בדיקת תרופות ונוגדנים טיפוליים לשיפור חדירת תאי מערכת החיסון והשפעות אנטי-גידוליות נגד מטרות הספרואידים7. יתר על כן, הפוטנציאל של MCTS המורכב מתאים במצבים מטבוליים ושגשוגיים שונים לחקור את יחסי הגומלין בין תאי סטרומה (למשל, לימפוציטים, מקרופאגים, פיברובלסטים) ותאים סרטניים ולפיתוח אסטרטגיות אנטי-סרטניות חדשות הוכח היטב8. לפיכך, יש צורך חיוני לאשש פלטפורמות חיזוי ומדויקות על מנת להגביר את תהליך בדיקת התרופות, תוך התחשבות בפתופיזיולוגיה של המיקרו-סביבה של הגידול.

סרטן השד (BC) הוא הסרטן השכיח ביותר המאובחן בעולם אצל נשים. הסיווג הקליני של מחלה הטרוגנית זו מבוסס על נוכחותם של קולטנים טרנסממברנליים כגון קולטני אסטרוגן (ER) ופרוגסטרון (PR) (הנקראים ביחד קולטני הורמונים, HR) יחד עם ביטוי יתר או הגברה של קולטן גורם גדילה אפידרמלי אנושי 2 (HER2) חלבון/אונקוגן . בהתבסס על הביטוי האימונוהיסטוכימי של קולטנים אלה, ארבעה תת-סוגים מוכרים בדרך כלל: לומינלי A (HR+/HER2-), לומינלי B (HR+/HER2+), HER2-חיובי (HR-/HER2+) וסרטן שד טריפל נגטיב (HR-/HER2-). קבוצת HER2+ מהווה 10-15% ממקרי BC ומאופיינת בביטוי HER2 גבוה עם היעדר ER ו- PR, בעלת פרוגנוזה גרועה יותר בהשוואה לגידולים לומינליים ודורשת תרופות ספציפיות המכוונות נגד חלבון HER2/neu9.

התפתחות BC היא תהליך רב שלבי, ואבחון מוקדם חיוני לטיפול מוצלח במחלה10. עם זאת, למרות אפשרויות טיפול BC מותאמות אישית שהתגלו לאחרונה (למשל, טיפולים אנדוקריניים ונוגדנים נגד HER2), BC ממשיך לאתגר אונקולוגים. בדיוק כמו ניתוחים, כימותרפיה והקרנות, גם לטיפולים מותאמים אישית אלה יכולות להיות תופעות לוואי חמורות וחולים יכולים לפתח עמידות לחומרים אלה, מה שהופך את קביעת האסטרטגיה הטובה ביותר11,12 לאתגר ארוך טווח. לפיכך, הבנה משופרת של יחסי הגומלין בין הגידול לבין המיקרו-סביבה שלו חיונית וצפויה לספק כיוונים חדשים לפיתוח טיפולים חדשניים הלוקחים בחשבון את הספציפיות של תת-הסוגים השונים של BC13. גל חדש של אימונותרפיה, כגון תרופות מצומדות נוגדנים, טיפולים מאומצים בתאי T, חיסונים ונוגדנים חד-שבטיים חדשניים (mAbs) מכווני HER2 נחקרים באוכלוסייה רחבה של חולים עם גידולים המבטאים HER214.

Trastuzumab, למשל, מייצג שיטת טיפול יעילה עבור HER2+ BC. כחלק מאופן הפעולה שלו, Trastuzumab מתווך פעילויות תלויות קולטן גמא גבישי פרגמנט (FcγR). FcγRs נבדלים על ידי זיקתם למקטע Fc והתגובה החיסונית שהם יוזמים. הפעלת FcγRIIIa (CD16A) על תאי הרג טבעי (NK) חיונית לתיווך ציטוטוקסיות תאית תלוית נוגדנים (ADCC), ואילו הפעלת FcγRIIa (CD32A) ו-FcγRIIIa על מקרופאגים גורמת לפאגוציטוזה תאית תלוית נוגדנים (ADCP)15. מחקרים על מודלים של בעלי חיים הראו כי עכברים ללא קולטני FcγRI (CD64) ו-FcγRIII (CD16) לא היו מסוגלים ליזום תגובות חיסוניות מגינות נגד אנטיגנים ספציפיים לגידול, מה שחשף כי ADCC הוא ככל הנראה מנגנון פעולה עיקרי עבור mAb Trastuzumab16.

מאחר שתאי NK משתמשים ב-ABS הקשור לתאי הגידול לצורך הרג תאים סרטניים על-ידי ADCC, ביטוי קולטני Fc הוא קריטי לטיפול יעיל ב-Trastuzumab17 (איור 1). יתר על כן, פעולתם מאוזנת ביעילות על ידי גירוי של קולטנים מפעילים ומעכבים, למשל, קולטנים דמויי אימונוגלובולינים של תאי הרג (KIR)18.

figure-introduction-1
איור 1. מנגנון של ADCC בהקשר של תגובה אנטי-סרטנית. קולטן Fcγ של תא הרג טבעי (NK) מזהה את אזור Fc של נוגדן, אשר קודם לכן נקשר לאנטיגן פני השטח על תא סרטני. סינפסה אימונולוגית זו מובילה לדגרנולציה של תא NK, אשר משחרר מתווכים ציטוטוקסיים כגון גראנזימים ופרפורין. מולקולות אלה תורמות להיווצרות נקבוביות בקרום התא ומפעילות מסלולים אפופטוטיים הגורמים למוות תאי מתוכנת של תא המטרה (תמונה שנוצרה באמצעות Biorender.com). אנא לחץ כאן כדי להציג גרסה גדולה יותר של איור זה.

פיתוח אימונותרפיה עבור HER2+ BC מייצג תחום מתפתח. במקרה זה, יש לשקול אינטראקציות בין מרכיבים שונים של המערכת החיסונית. יתר על כן, פרסומים קודמים בחנו בהרחבה טיפולים משולבים הכוללים את כל סוגי הטיפולים המסורתיים, חיסוניים או תאיים כדי לזהות שילובים סינרגטיים19.

מספר מודלים תלת-ממדיים של HER2+ BC שימשו בעבר לגילוי תרופות. לדוגמה, Balalaeva et al. השתמשו בספרואידים SKBR-3 המבטאים יתר על המידה את HER2 כדי להעריך את ציטוטוקסיות הרעלן החיסוני ממוקד HER2 4D5scFv-PE4020. במחקר אחר, הוקמה מערכת תרבית תלת-ממדית מבוססת מטריג'ל HER2+ BC כדי למדוד את גדילת התאים בתגובה לטרסטוזומאב ולסוכנים אנדוקריניים21. מחקרים אלה מדגישים את החשיבות של מודלים ספרואידים סרטניים של HER2 המבטאים יתר על המידה תאים סרטניים בייצוג אסטרטגיה יעילה לשיפור קליני של תגובות טיפוליות22.

הקבוצה שלנו זיהתה בעבר את Sunitinib, מעכב טירוזין קינאז רב-ממוקד, כמעכב ADCC תלוי Trastuzumab בתאי JIMT-1 HER2+ BC בבדיקת תרבית דו-ממדית. המחקר גילה כי סוניטיניב גורם לאוטופגיה ופוגע בתפקוד ההרג של תאי NK, מוריד את יכולת הביטוי של HER2 ומשפר את חיבור פני השטח של תאי JIMT-117.

כאן הקמנו מודל ADCC תלת-ממדי ספרואידי חדשני (NK.92.CD16+Trastuzumab+JIMT-1-EGFP תאים סרטניים) שישמש ליישומי סינון בעלי תפוקה גבוהה, ועל מנת לאמת את הממצאים הנ"ל, סוניטיניב שימש כתרכובת מודל. ראשית, יצרנו EGFP המבטא תאי JIMT-117 וגידלנו ספרואידים מתאים אלה. ADCC הושרה על-ידי תאי NK יחד עם Trastuzumab, וספרואידים נשמרו בתרבית בנוכחות או היעדר תרכובות בדיקה במשך 24 שעות (איור 2). כימות ADCC מבוסס על זיהוי מוות של תאי סרטן אפופטוטיים (צביעת Annexin V) באמצעות מערכת ניתוח תוכן גבוה.

figure-introduction-2
איור 2. ADCC במערכת תרבית משותפת ספרואידית תלת-ממדית. הגדרות הניסוי שלנו מבוססות על מערכת ספרואידית תלת-ממדית שיכולה למדל בצורה מדויקת יותר את המיקרו-סביבה in vivo בהשוואה למודלים דו-ממדיים. תאי סרטן השד JIMT-1 EGFP נזרעו על קרקעית קעורה דוחה תאים ליצירת צביר תאי בצורת עגול, הנקרא ספרואיד. ADCC החלה אז על ידי הוספת NK92. תאי הרג טבעיים CD16 (יחס E:T = 20:1) ונוגדן חד שבטי אנטי-HER2, Trastuzumab. המודל הניסיוני הוכח כיעיל וקל ליישום לזיהוי תרכובות בדיקה לשינוי ADCC (התמונה נוצרה באמצעות Biorender.com). אנא לחץ כאן כדי להציג גרסה גדולה יותר של איור זה.

הוכחנו כי השגת נתונים באופן זה יכולה להיעשות בזמן אמת והיא איתנה סטטיסטית לשימוש בבדיקות סקר בעלות תוכן גבוה בגילוי תרופות לסרטן. חשוב לציין, מודל זה מאפשר אימות מורחב של קבוצה גדולה יותר של תרכובות, וניתן ליישם אותו על מספר בדיקות מעניינות.

פרוטוקול

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

1. הגדרת מודל ספרואיד של חלבון פלואורסצנטי משופר JIMT-1 (EGFP)

  1. כדי ליצור תחתית דוחה תאים בצורת U, צפו את הצלחת בעלת 96 הבארות בתמיסת אגרוז-PBS של 0.5% (30 μL/well). דוגרים על הצלחת בטמפרטורת החדר כ-30-45 דקות.
  2. שטפו את תאי JIMT-1-EGFP פעמיים עם 2 מ"ל של PBS סטרילי (יצירת קו תאי JIMT1-EGFP דווחה בפרסום קודם17). יש להשתמש בצלוחיות תרבית רקמה מסוג T25 ובמדיה JIMT-1 (DMEM/F-12 בינוני בתוספת 20% סרום בקר עוברי (FBS), אינסולין 0.3 U/mL (100 IU/mL, Humulin R) ו-1% פניצילין-סטרפטומיצין) לתרבית תאים.
  3. הוסף 2 מ"ל של טריפסין-EDTA לבקבוק ודגר אותו במשך 10 דקות באינקובטור CO2 .
  4. הקש על הבקבוק כדי לבדוק אם תאי JIMT-1 התנתקו לאחר זמן הדגירה.
  5. השתמש 2 מ"ל של מדיום JIMT-1 כדי לעצור את העיכול ולאסוף את תרחיף התא לתוך צינור 15 מ"ל.
  6. ספרו את התאים בתא Bürker עם 0.4% טריפאן כחול (80 μL של הצבע + 20 μL של תרחיף התא) והתאימו את מספר התא ל-20,000 תאים/מ"ל.
  7. פיפטה 100 μL של תרחיף התא (2000 תאים / באר) לכל באר של צלחת 96 באר (מצופה מראש בתמיסת 0.5% agarose-PBS כמצוין ב 1.1).
  8. אפשרו לתאים להתקבץ יחד במהלך זמן דגירה של 3 ימים בטמפרטורה של 37°C באינקובטורCO2 .
  9. בדוק באופן קבוע את הגודל והצורה של ספרואידים עם מיקרוסקופ הפוך.

2. ציפוי צלחת HCS

הערה: כדי למנוע חיבור של כדורי JIMT-1-EGFP למשטח הזכוכית של הצלחת, ציפוי צלחת סינון התוכן הגבוה (HCS) הוא חיוני (אחרת ניתוח תוכן גבוה לא היה אפשרי).

  1. ביום השלישי לאחר השראת הספרואידים, צפו את צלחת ההקרנה בעלת 96 הבארות בעלות התוכן הגבוה בפלורוניק-F127 (0.5% ב-DMSO, 50 מיקרוליטר/באר) ודגרו על הצלחת במשך 45 דקות בטמפרטורת החדר.
  2. שאפו את תמיסת הציפוי ושטפו את הבארות פעמיים במדיום נטול DMEM/F-12 בסרום (100 מיקרוליטר/באר).

3. העברת ספרואידים לצלחת HCS

  1. באמצעות פיפטה 1 מ"ל, להעביר את spheroids ב triplicates לתחתית זכוכית 96-באר HCS לוחית.

4. טיפול מקדים בכדורי JIMT-1 EGFP עם תרכובות בדיקה

  1. הוסף את תרכובת הבדיקה (למשל, Sunitinib מדולל ב- DMSO בריכוז של 40 μM) על ידי pipetting 10 μL / באר ולהוסיף 10 μL של מדיום JIMT-1 טרי לבארות הבקרה (CTL).
  2. לדגור את הצלחת במשך 1 שעה באינקובטור CO2 ב 37 ° C.

5. אינדוקציה של ADCC על ידי הוספת תאי האפקט

הערה: תאי CD16.176V.NK92 (להלן תאי NK) גודלו בתרבית ב-α-MEM בתוספת 20% FBS, 1% MEM-NEAA, 1% Na-פירובט, 1% גלוטמין, 1% פניצילין-סטרפטומיצין ו-100 IU/mL של IL-2.

  1. לאסוף את תאי NK בבקבוק לתוך צינור 15 מ"ל. ספור את התאים עם כחול טריפאן (80 μL של הצבע + 20 μL של תרחיף התא) והתאם את צפיפות התא ליחס של 20:1 אפקט למטרה (E:T) (40,000 תאי NK/באר).
  2. צבעו את תאי ה-NK ב-10 μM Cell Tracker Blue (CTB, 1 μL ב-1 מ"ל של מדיום NK α-MEM) והכניסו אותם לאינקובטור CO2 בטמפרטורה של 37°C למשך שעה אחת.
  3. צנטריפוגו את תאי ה-NK בטמפרטורה של 150 x גרם למשך 3 דקות בטמפרטורת החדר פעמיים כדי לשטוף את עודפי הצבע עם 1 מ"ל של מדיום α-MEM.
  4. להשעות מחדש את גלולת תא NK ב 1 מ"ל של מדיום JIMT-1 טרי.
  5. הוסף את תאי ה- NK המוכתמים יחד עם נוגדן האנטי-HER2 (Ab) (Trastuzumab, מומס ב- H2O מזוקק סטרילי) לספרואידים היעד JIMT-1 על ידי פיפטציה של 55 μL / well של תאי NK מוכתמים ב- CTB ו- 55 μL / well של 10 μg / mL Ab בתווך JIMT-1 (נפח הטיפול הכולל שנוסף עבור ADCC הוא 110 μL / well והריכוז הסופי של Sunitinib הוא 20 μM).
    הערה: לבחירת ריכוז Ab ויחס E:T, הסתמכנו על הפרסום הקודם שלנו17. ניסויים ראשוניים בוצעו עם יחסי E:T שונים וריכוזים שונים של Trastuzumab כדי להעריך איזה מהם היה היעיל ביותר בגרימת ADCC בספרואידים (איור משלים S1).
  6. הוסף 110 μL / באר של בארות JIMT-1 בינוני טרי לבקרה (CTL).
  7. לדגור את הצלחת במשך 24 שעות באינקובטור CO2 ב 37 ° C.
    הערה: מכיוון שתאי NK92 ידועים כמפעילים פונקציות ציטוטוקסיות לא ספציפיות, לבקרה יש להשתמש בתאי JIMT-1 המודגרים יחד עם שני תאי NK בלבד ועם בקרת איזוטיפ או F(ab')2 Ab. כאן F(ab')2-Trastuzumab (TR-F(ab')2) שימש CTL שלילי. קטע TR-F(ab')2 הוכן כפי שדווח על ידי Tóth et al.19 ונוסף באותו נפח כמו Trastuzumab יחד עם תאי NK כמתואר ב-5.5. הריכוז הותאם ל-6.6 מיקרוגרם/מ"ל בהתאמה לריכוז שווה משקל עם טרסטוזומאב23.

6. נספח V-647 צביעת ספרואידים

  1. כדי למדוד מוות של תאים אפופטוטיים, הכתימו את הספרואידים עם Annexin V-Alexa Fluor 647 מצומדים למשך שעה בתווך JIMT-1 (1:100) על ידי פיפטציה של 50 μL/באר.

7. הדמיה

הערה: הלוח מצולם במהירות של 24 שעות לאחר הוספת תאי אפקט NK לתאי היעד. עבור הדמיה, מנתח תוכן גבוה ותוכנה לניתוח תמונה משמשים.

  1. בחרו את סוג המיקרו-לוחית מרשימת הלוחות באמצעות האפשרות 'סוג לוחית '. השתמש בלוח סינון תוכן גבוה (HCS) של 96 בארות.
  2. בחר מיקוד אוטומטי Two Peak כאשר הבדיקה מתבצעת בלוחות עם יעד 10x עם צמצם מספרי 0.3 (NA), באמצעות האפשרויות מיקוד אוטומטי ואובייקטיבי, בהתאמה. בחר מצב קונפוקלי עם האפשרות Opt. Mode והחל Binning 2 באמצעות האפשרות Binning.
  3. להדמיית ספרואידים, בחרו בערוצים המתאימים בעזרת האפשרות 'בחירת ערוץ '. כדי לזהות תאי JIMT-1 מותמרים של EGFP, בחר EGFP (זמן אינטגרציה 200 אלפיות השנייה, עוצמת לייזר 50%, גובה מחסנית 2.0 מיקרומטר; לדוגמה: 488 ננומטר em: 500-550 ננומטר), וכדי לזהות תאים אפופטוטיים השתמש ב- Alexa 647 (זמן שילוב 100 אלפיות השנייה, עוצמת לייזר 50%, גובה מחסנית 10.0 מיקרומטר; לדוגמה: 640 ננומטר em: 650-760 ננומטר). כדי להמחיש את תאי ה- NK בתוך הספרואידים, בחר את הערוץ הבא: DAPI (זמן שילוב 100 אלפיות השנייה, עוצמת לייזר 50%, גובה מחסנית 2.0 מיקרומטר; לדוגמה: 405 ננומטר em: 435-480 ננומטר).
  4. באפשרות 'בחירת פריסה ', בחרו 'ערימות Z', מכיוון שתאים בכדוריות נוטים להימצא במישורי מוקד שונים של המיקרוסקופ. 10 מטוסים (עם מרחק של 10 מיקרומטר) מספיקים כדי לכסות את כל האזור הספרואידי. הגדר את ערכי המישור הראשון והמישור האחרון על 0 מיקרומטר ו- 90 מיקרומטר, בהתאמה.
    הערה: לפני תחילת המדידה, ניתן לצלם תמונות לדוגמה באמצעות פונקציית התמונה כדי לבדוק את ההגדרות הנכונות.
  5. הגדר את מספר הבארות והשדות להדמיה באמצעות האפשרות Define Layout .

8. ניתוח תוכן גבוה (HCA)

הערה: נתח את התמונות באמצעות תוכנת הרמוניה או ייצא תמונות לניתוח באמצעות תוכנת צד שלישי מועדפת. לצורך ניתוח יעילות ADCC, נמדדת עוצמת הפלואורסצנטיות של Annexin V 647. תאי מטרה שנהרגים על ידי ADCC מופיעים באזור ההיקפי של הספרואידים. לכן, התאים החיוביים של Annexin V נמדדים ב"טבעת" ספרואידית זו. על מנת לאמת שיטה זו, בוצעו ניתוחים עם פרמטרים שונים כדי להעריך מי מהם היה האמין ביותר והניב את התוצאות הטובות ביותר (תרשים משלים S2). באר ADCC מוצגת בסרטון על מנת להדגים שלב אחר שלב את תהליך ניתוח התמונה.

  1. זהה את הספרואידים לפי פלואורסצנטיות EGFP של תאי JIMT-1 באמצעות האפשרות Find Texture Regions וסנן אותם לפי גודל (> 25,000 מיקרומטר2).
  2. הסר אובייקטי גבול לפי האפשרות בחר אוכלוסייה .
  3. מכיוון שתאי Annexin V חיוביים (אפופטוטיים) מופיעים בשולי הספרואידים, מדדו את עוצמת Annexin ב"טבעת" אפופטוטית זו, שנבחרה על ידי האפשרות Select Region (גבול חיצוני -90%) כדי לקבוע מוות של תאים אפופטוטיים.
  4. ערכי עוצמת Express Annexin V כעוצמה ממוצעת.

תוצאות

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

נוצרו תאי EGFP המבטאים תאי JIMT-1, ותאים אלה גדלו ספרואידים. Sunitinib שימש כתרכובת בדיקה כפי שהוכח בעבר להשפיע על מהלך ADCC17. ספרואידים הורשו להתגבש במשך 72 שעות. ביום השלישי, 10 מיקרוגרם/מ"ל של Trastuzumab (או שווה ערך 6.6 מיקרוגרם/מ"ל TR-F(ab')219) ותאי NK (20:1) נוספו לכדורואידים בנוכחות או היעדר 20 מיקרומטר סוניטיניב (1 שעה לפני הטיפול), למשך זמן כולל של 24 שעות. JIMT-1 בלבד ו-JIMT-1 מודגרים יחד עם תאי NK (20:1) שימשו כ-CTLs. הספרואידים הוכתמו ב-Annexin V 647 למשך שעה אחת כדי לזהות מוות של תאים אפופטוטיים ו לאחר מכן צולמו באמצעות מנתח תוכן גבוה.

כפי שצוין על ידי צביעת Annexin V, תוספת של תאי NK יחד עם Trastuzumab לתאי JIMT-1 גרמה למוות תאי בכדורי הגידול. תאים חיוביים (אפופטוטיים) הופיעו באזור ההיקפי של הספרואידים כפי שניתן לראות באיור 3A. מצד שני, תוספת תאי NK לבדה לא גרמה לאפופטוזיס של תאי גידול. כדי להבחין בין היכולת של Trastuzumab לגייס ADCC לבין ההשפעה הביולוגית הישירה שלו, TR-F(ab')2 חסר יכולת קישור FcR פונקציונלית שימש כבקרה שלילית על Trastuzumab. מאחר ש-TR-F(ab')2 הוכח כלא יעיל במודל הזה (איור 3B), סביר להניח שההשפעה מתווכת באמצעות ADCC. יתר על כן, טיפול מקדים עם Sunitinib הפחית את צביעת Annexin V בספרואידים, אישר עמידות ADCC המושרה על ידי Sunitinib וחשף את מניעת מוות של תאים אפופטוטיים ב JIMT-1 spheroids מודגר יחד עם תאי NK ו Trastuzumab.

figure-results-1
איור 3. זיהוי תרכובות אפקטור ADCC במודל ספרואידי תלת ממדי. ספרואידים סרטניים נוצרו עם תאי JIMT-1-EGFP. לאחר זמן דגירה של 3 ימים, הועברו הספרואידים לצלחת HCS, שצופתה בעבר ב-F-127 פלורוני כדי למנוע חיבור תאים. למחרת, 10 מיקרוגרם/מ"ל Trastuzumab (TR) (או שווה ערך 6.6 מיקרוגרם/מ"ל TR-F(ab')2 כ-CTL שלילי) ו-NK92. תאי CD16 (מוכתמים מראש בכחול גשש תאים) נוספו לבארות (יחס E:T של 20:1), בהיעדר או נוכחות של 20 מיקרומטר סוניטיניב (SUN). ספרואידים JIMT-1 בלבד וספרואידים JIMT-1 מודגרים יחד עם תאי NK (20:1) שימשו כ-CTLs. (A) לאחר זמן דגירה של 24 שעות, נעשה שימוש ב-Annexin V 647 (צבע אדום) כדי להכתים את הספרואידים למשך שעה אחת כדי להמחיש תאים אפופטוטיים. (B) תמונות של 3 ספרואידים/מצב צולמו ונותחו עבור עוצמת הפלואורסצנטיות של נספח V 647 באזור ההיקפי של הספרואידים (אזור הטבעת). היסטוגרמה מראה 4 ניסויים עצמאיים (אמצעי±SEM). הנתונים נותחו עם מבחן Kruskal-Wallis ואחריו מבחן פוסט-הוק של דאן (*p < 0.05, #p < 0.05, ns: לא משמעותי). אנא לחץ כאן כדי להציג גרסה גדולה יותר של איור זה.

נתונים אלה מאשרים כי סוניטיניב מעכב ADCC. תרכובות לשיפור ADCC צפויות להיות מזוהות באופן דומה. לסיכום, בדיקת HCS שלנו עשויה להתאים לזיהוי תרכובות המשפיעות על ADCC.

איור משלים S1. אופטימיזציה של יחס E:T וריכוז Trastuzumab. תאי JIMT-1-EGFP שימשו ליצירת ספרואידים. ביום השלישי, ספרואידים הועברו לצלחת HCS ותאי NK נוספו ביחסי E:T שונים (20:1, 40:1 ו-60:1) עם 10, 20 ו-50 מיקרוגרם/מ"ל Trastuzumab (TR) כדי לראות איזה טיפול היה הטיפול היעיל ביותר שיכול לגרום למוות תאי בכדורים. הבקרה (JIMT-1-EGFP) טופלה בתרבית תאים JIMT-1. (A) לאחר 24 שעות, התאים הוכתמו בנספח V 647 (צבע אדום) למשך שעה אחת ומוות תאים אפופטוטי נמדד באמצעות HCA. היסטוגרמות מראות 3 ניסויים עצמאיים (אמצעי±SEM). העמודים מייצגים את עוצמת נספח V 647 סביב ספרואידים JIMT-1. (B) תמונות של 3 ספרואידים/מצב נותחו עבור עוצמת נספח V 647 של אזור הטבעת. הנתונים נותחו באמצעות ANOVA חד-כיווני ואחריו מבחן פוסט-הוק של Tukey (*p < 0.05, **p < 0.01, ns: לא משמעותי). אנא לחץ כאן כדי להוריד קובץ זה.

איור משלים S2. הערכה של אפופטוזיס תאי JIMT-1 בספרואידים. תאי JIMT-1-EGFP שימשו ליצירת ספרואידים. ביום השלישי, ספרואידים הועברו לצלחת HCS וטופלו מראש עם 20 מיקרומטר סוניטיניב (SUN) למשך שעה אחת, ואז תאי NK נוספו ביחס E:T של 20:1 עם 10 מיקרוגרם / מ"ל Trastuzumab. לאחר 24 שעות, התאים הוכתמו בנספחין V 647 למשך שעה אחת ומוות תאים אפופטוטי נמדד באמצעות HCA. תמונות של 3 ספרואידים/מצב נותחו עבור עוצמת Annexin V 647 (בקרה: JIMT-1-EGFP, ADCC: 20:1 NK cells+10 μg/mL Trastuzumab, ADCC+SUN: 20 μM Sunitinib+20:1 NK cells+10 μg/mL Trastuzumab). העמודים מייצגים את עוצמת נספח V 647 סביב הספרואידים JIMT-1 (טבעת) (A), בכל הספרואיד (B) ובכל הבאר (C). היסטוגרמות מראות 3 ניסויים עצמאיים (אמצעי±SEM). הנתונים נותחו באמצעות ANOVA חד-כיווני ואחריו מבחן פוסט-הוק של Tukey (*p < 0.05, **p < 0.01, ns: לא משמעותי). אנא לחץ כאן כדי להוריד קובץ זה.

דיון

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

למרות שיפורים משמעותיים בטיפול ב- BC במהלך העשורים האחרונים, חולים עדיין מפתחים באופן קבוע עמידות לתרופות או חווים תופעות לוואי שליליות24. התחלואה והתמותה הגבוהות הקשורות לפנה"ס מחייבות חקירה מתמשכת של המנגנונים המולקולריים העומדים בבסיסן, בדיוק כמו פלטפורמות סינון חזקות לזיהוי מולקולות חדשות הניתנות לפעולה לפיתוח טיפולי25. אסטרטגיות אלה דורשות בדיקות תרגום מבוססות תרבית תאים. מערכות תלת-ממדיות של תרביות גידולים, כגון ספרואידים ואורגנואידים של גידולים, התפתחו לאחרונה כמודלים זולים וקלים ליישום המייצגים היבטים מרכזיים של פתופיזיולוגיה של הגידול באופן הדוק יותר מאשר תרביות חד-שכבתיות קונבנציונליות. אחד המאפיינים הללו הוא אינטראקציה מתואמת מרחבית בין תאים חיסוניים שונים הקשורים לגידול לבין תאים סרטניים. עובדה זו הופכת מודלים תלת-ממדיים של תרביות משותפות לכלים מעולים לסינון תרופות המיועדות למודולטורים הפועלים על תאי מערכת החיסון לטיפול בממאירויות26.

בעבודה זו, הצגנו מודל ספרואידי חדשני עבור ADCC תלוי טרסטוזומאב בתיווך תאי NK כנגד תאי קרצינומה של השד JIMT-1 ותיארנו זרימת עבודה אוטומטית של הדמיה וניתוח להערכת הרג תאים סרטניים בתיווך תאי NK. ההליך יושם עבור תוכנת הדמיה וניתוח תמונה בעלת תוכן גבוה המאפשרת ניטור של היכולת הרלוונטית למחלה של תאי NK לגרום לאפופטוזיס של תאים סרטניים. מעכב הטירוזין קינאז הרב-ממוקד Sunitinib כתרכובת הגורמת לעמידות ל-ADCC תלוי טרסטוזומאב בתאי JIMT-1 בבדיקות תרבית תאים דו-ממדיות זוהה בעבר. סוניטיניב פוגע בתפקוד ההרג של תאי NK וגורם לאוטופגיה, הפחתת ויסות ביטוי HER2 ומגביר את ההיצמדות של תאי JIMT-117. על מנת לאמת את צינור ניתוח הספרואידים שלנו לזיהוי תרכובות, בדקנו את סוניטיניב כתרכובת מודל ואנו מראים כי היא יכולה לעכב באופן משמעותי את יכולתם של תאי NK להרוג את ספרואידים התא הסרטני המשחזר את ההשפעה שהודגמה בחד-שכבתי.

השיטה שלנו פשוטה, וכוללת גידול ספרואידים בלוחות תרבית רקמה מצופי אגרוז 96 בארות, העברה חד פעמית של הספרואידים שנוצרו למיקרו-צלחת בעלת תחתית זכוכית המתאימה ליישומי HCS ו-HCA, הוספת תרכובות בדיקה ותאי NK-cell מוכתמים בנפרד המופעלים להרוג על ידי מתן טרסטוזומאב, צביעת מוות תאי בצעד אחד, וניתוח מיקרוסקופיה. לא מופעלות מניפולציות חמורות על הבארות לאחר תחילת הרבייה המשותפת של שני סוגי התאים והטיפול התרופתי כדי למנוע פגיעה בשלמות הספרואידים. ביצוע הבדיקה אורך 4 ימים בלבד. ציפוי תחתית לוחות תרבית רקמה 96 בארות באגרוז 1% נמס נמוך כחלק מההליך מהווה חלופה זולה לשימוש בפלטות חיבור נמוכות במיוחד על מנת למנוע מתאי JIMT-1 להיצמד לפני השטח של הצלחת ולקדם את הארגון הספונטני של תאי הגידול לספרואידים. מכיוון שלא ניתן ללכוד תמונה על פני כרית האגרוז ומשטח הפלסטיק בצורת U, היה צורך להעביר את הספרואידים ללוח ההדמיה. קריטי היה פסיבציה של משטח הזכוכית של צלחת HCS עם חומר פעילי שטח ביו-אינרטי, Pluronic-F127 לפני העברת הספרואידים. ללא שלב זה, ספרואידים התפשטו בתחתית הבארות, מה שמקשה על ההדמיה והניתוח.

קו תאי גידול אנושי המבטא ביציבות EGFP שימש ליצירת ספרואידים17. הסמן המקודד גנטית מציע פלואורסצנטיות מתמשכת לאורך כל הפרוטוקול במקום כתמי תאים. ניתוח מרקם ללא פיקוח של אות ה-EGFP מספק את הבסיס לזיהוי הגרעין הקומפקטי של הספרואידים, הכולל את הספרואיד כולו ללא השראת מוות תאית. כאשר נוספו תאי NK והושרה ADCC, ההתפוררות הניכרת של קווי המתאר הציבה לעיתים אתגר בפני אלגוריתם ניתוח התמונה לשרטט את קווי המתאר של הספרואיד. מכיוון שתאים חיוביים V של אנקסין נמצאו בעיקר בשולי הספרואידים, בעיה זו נעקפה על ידי הערכת מוות תאי באזור טבעתי היקפי שנוצר על ידי מודול פילוח התמונה המובנה של התוכנה על ידי הרחבת הליבה הספרואידית המוגדרת היטב. גורם ההתפשטות המגדיר את הגבול החיצוני של אזור זה נבחר כדי להקיף את העט של תאים גוססים, גרוסים ומפוזרים בכל המקרים לאחר שאצר חזותית מאות תמונות ספרואידים. קביעת הפלואורסצנטיות הכוללת של שטח הטבעת האפופטוטי בתחזיות המקסימליות של תמונות מחסנית Z הניבה שגיאות ניסוי נמוכות יותר ואפקט ADCC בולט יותר מאשר מדידת כל שטח הספרואיד או כל שטח הבאר (איור משלים S2). תוויות פלואורסצנטיות נבחרו לסימון תאי BC (EGFP) ולגילוי מוות תאי (Alexa 647) כדי למנוע צורך בהפרדת תעלות. הוחלט לקרוא נקודת קצה בהתבסס על תיוג פלואורסצנטי עבור פוספטידיל-סרין חשוף, סמן אפופטוטי, בניגוד לניטור הירידה בפלואורסצנטיות של EGFP כדי לקבוע את הכדאיות של ספרואידים לאורך זמן, שיכולה להיות אפשרות נוספת. צביעת הסיפוח אפשרה זיהוי מדויק ורגיש יותר של מוות תאי. באופן עקרוני, ניתן לשפר את גישת הצביעה החד-ממדית הנוכחית על ידי השלמתה בסמנים נוספים ומדויקים יותר של מוות תאי, שיכולים לזהות את אופן המוות התאי (למשל, מצעי קספז פלואורסצנטיים) ואת סוג התא שנספה.

ניתן לשנות שיטה זו עם שינויים מינימליים כדי לחקור סוגים אחרים של תאי חיסון משפיעים (מקרופאגים, תאי T וקולטני אנטיגן כימריים [CAR] המבטאים תאים חיסוניים) ומולקולות מפעילות (למשל, ציטוקינים, אינטרלוקינים). מתוך שאיפה לפשטות, חוסן וזמן עיבוד קצר, לא מיצינו את האפשרויות ש-HCA יכול להציע עבור בדיקה זו. פרוטוקולי ההדמיה והניתוח מקובלים על הוספת תוויות פלואורסצנטיות נוספות. בדיקה זו ניתנת להתאמה לחקר ספרואידים מורכבים יותר על ידי הוספת סוגים שונים של תאים ושימוש בבדיקות פלואורסצנטיות מרובות כדי להבחין בין סוגי תאים אלה וסמנים פלואורסצנטיים ספציפיים כדי לקשר אותם לאירועים תאיים מתמשכים 4,5. ניתן להתאים את הפרוטוקול לכל מצלמת HC וניתן לנתח את התמונות באמצעות כל תוכנת ניתוח תמונה המשלבת מודול ניתוח מרקמים.

היבט מרכזי של חשיבותו של פרוטוקול זה, הוא השימוש בכדורים. לפיכך, יש לקחת בחשבון מספר פרמטרים. ידוע כי תאים בתרבית תלת-ממדית מציגים תגובה מוחלשת לתרכובות בהשוואה לתאים הגדלים בחד-שכבות21,22. השימוש בתרביות תאים דו-ממדיות אינו מאפשר לחזות את טווח הריכוזים היעיל של סוכן נבדק באורגניזם כולו. בעת הקמת המודל התלת-ממדי שלנו, בדקנו ריכוזים מורכבים ויחסי E:T גבוהים יותר מאלה שדווחו בדו-ממד. לדוגמה, הפרוטוקול עבר אופטימיזציה על ידי הגדלת יחס E:T מ-2:1 המשמש בבדיקת ADCC הדו-ממדית שלנו17, ל-20:1 עבור ספרואידים סרטניים. הרציונל מאחורי זה יכול להיות שהתרופות לא הצליחו לחדור ביעילות את ליבת הספרואידים והשפיעו בעיקר על תאי השכבות החיצוניות. מצד שני, הגדלת הריכוז של Trastuzumab לא שיפרה עוד יותר את תגובת ADCC (איור משלים S1). בחירה זו עשויה להיות שונה בין שורות תאים ויעד. לכן, יהיה מעניין לבדוק פרוטוקול זה על קווי תאים אחרים, למשל, קו תאים שאינו HER2 BC, תוך התחשבות בכך שרמת ביטוי HER2 היא גורם חשוב בתגובת ADCC20.

לסיכום, השיטה החדשה שלנו מייצגת פלטפורמה מהירה וחזקה לניתוח ההשפעה של תרכובות במודל תלת-ממדי של סרטן מערכת החיסון עם פוטנציאל לשמש לבדיקות סקר של תרופות בתפוקה גבוהה. זה מדגיש את הרלוונטיות של השימוש HER2+ BC spheroids ו NK92. תאי CD16 משפרים עוד יותר את הבנת המנגנונים המולקולריים של Trastuzumab, ובכך מספקים הזדמנות לצפות את היעילות של ADCC תלוי Trastuzumab לתוך הפוטנציאל הטיפולי in vivo27. החיפוש אחר מודולטורים חיסוניים חדשים נגד גידולים יכול להפיק תועלת רבה מבדיקה זו. ניתן להרחיב את השיטה לבדיקות רגישות כימותרפיות מותאמות אישית של תרביות תאי גידול שמקורם בחולה. הוכחנו כי התרביות הדו-ממדיות המסורתיות המשמשות בהרג תאי מערכת החיסון ובבדיקות ADCC ניתנות להמרה לבדיקות ספרואידים תלת-ממדיות, מה שעשוי להגדיל את הרלוונטיות התרגומית שלהן.

גילויים

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

המחברים לא הצהירו על ניגוד עניינים.

תודות

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

LV קיבלה מימון ממענקי המשרד הלאומי למחקר, פיתוח וחדשנות GINOP-2.3.2-15-2016-00010 TUMORDNS", GINOP-2.3.2-15-2016-00048-STAYALIVE, OTKA K132193 ו-K147482. פרויקט זה קיבל מימון מרשת המחקר ההונגרית HUN-REN. תאי CD16.176V.NK-92 התקבלו מד"ר קרי ס. קמפבל (מרכז פוקס צ'ייס, פילדלפיה, פנסילבניה, מטעם Brink Biologics, lnc. סן דייגו, קליפורניה), מוגנים על ידי פטנטים ברחבי העולם, וקיבלו רישיון על ידי Nantkwest, lnc. (www.nantkwest.com). המחברים מודים לגיורגי ורב ולארפד שור על עזרתם בשימוש בקו התאים NK-92 וב-TR-F(ab')2, ועל הייעוץ הטכני.

חומרים

רשימת החומרים שנעשה בהם שימוש במאמר זה
שםחברהמספר קטלוגהערות
תחתית זכוכית 96 באר מנשא תאים מיקרו פלטות אולטרהPerkinElmer, Waltham, MA, USALLCלמדידות ספרואידים
צלחות תרבית רקמות 96 בארותTPP92096לזריעת תאים
ואלפא;-MEM בינוניSigmaM8042במדיום NK
AgaroseSigmaA9539לזריעת ספרואידים
Annexin V-Alexa Fluo 647 מצומדInvitrogen-ThermoFisher ScientificA23204למדידת אפופטוזיס עם תאי HCS
CD16.176 V.NK-92ד"ר קרי ס. קמפבל (מרכז הסרטן פוקס צ'ייס, פילדלפיה, פנסילבניה מטעם Brink Biologics, Inc. סן דייגו, קליפורניה)ATCC CRL-2407לתרבית תאים
Cell Tracker BlueInvitrogen-Thermo Scientific, וולת'אם, MA, ארה"ב)C2110לצביעה של תאי NK
DMEM/ F-12 בינוניSigmaD8437ב-JIMT1-EGFP
בינוני דימתיל סולפוקסיד (DMSO)SigmaD8418לציפוי צלחת HCS לפני העברת הספרואידים
סרום בקר עוברי (FBS)BioseraFB-1090/500JIMT-1-EGFP ו-NK
בינוני גלוטמיןGibco35,050– 061ב-NK בינוני
GraphPad Prism 8.0.1GraphPad Software Inc., סן דייגו, קליפורניה, ארה"ב לניתוח סטטיסטי
תוכנת הרמוניהPerkinElmer, Waltham, MA, ארה"עבור HCA
IL-2Proleukin, Novartis Hungá ria Kft., בודפשט, הונגריהPHC0026באינסולין NK בינוני
(Humulin R)Eli LillyHI0219JIMT-1-EGFP בינוני
JIMT-1 תאילתרבית תאים
MEM חומצות אמינו לא חיוניות (MEM-NEAA)Gibco11,140– 050במדיום NK
Na-pyruvateLonzaBE13-115Eבמדיום NK
ציוד לניתוח תוכן גבוה Opera PhoenixPerkinElmer, Waltham, MA, ארה"HH14001000עבור HCA
PBS (תמיסת מלח חוצצת פוספט)LonzaBE17-517Qלשטיפת התאים
פניצילין-סטרפטומיציןBioseraLM-A4118JIMT-1-EGFP ומדיום NK
pLP-1, pLP-2, pLP-VSV-G, pWOXEGFPInvitrogen, (פרופ' Jó zsef Tfigure-materials-1zsé r, אוניברסיטת דברצן)עבור קו תאים JIMT-1-EGFP
Pluronic-F127SigmaP2443לציפוי צלחת HCS לפני העברת הספרואידים
Sunitinib malateSigmaAldrichPZ0012לטיפולים
Trastuzumab Ab (נוגדן חד שבטי אנטי-HER2 אנושי)Herzuma®, EGIS Pharmaceuticals, בודפשט, הונגריהNDC-63459-303-43לטיפולים
Trastuzumab-F(ab')2מתנת פרופ' Gyö rgy Vereb ו-Á rpá d Szö figure-materials-2r המחלקה לביופיזיקה וביולוגיה של התא, אוניברסיטת דברצןלטיפולים
טריפן כחול 0.4% תמיסהSigmaT8154לספירת תאים
Trypsin-EDTA 1X ב-PBSBioseraLM-T1706לניתוק תאים
6055302 ב סרטן שד ב

מקורות

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,
  1. Jubelin, C., et al. Three-dimensional in vitro culture models in oncology research. Cell Biosci. 12 (1), 155(2022).
  2. Mittler, F., et al. High-content monitoring of drug effects in a 3D spheroid model. Front Oncol. 7, 293(2017).
  3. Badr-Eldin, S. M., Aldawsari, H. M., Kotta, S., Deb, P. K., Venugopala, K. N. Three-dimensional in vitro cell culture models for efficient drug discovery: Progress so far and future prospects. Pharmaceuticals (Basel). 15 (8), 926(2022).
  4. Brancato, V., Oliveira, J. M., Correlo, V. M., Reis, R. L., Kundu, S. C. Could 3D models of cancer enhance drug screening. Biomaterials. 232, 119744(2020).
  5. Pinto, B., Henriques, A. C., Silva, P. M. A., Bousbaa, H. Three-dimensional spheroids as in vitro preclinical models for cancer research. Pharmaceutics. 12 (12), 1186(2020).
  6. Fitzgerald, A. A., Li, E., Weiner, L. M. 3D culture systems for exploring cancer immunology. Cancers (Basel). 13 (1), 56(2020).
  7. Zanoni, M., et al. 3D tumor spheroid models for in vitro therapeutic screening: A systematic approach to enhance the biological relevance of data obtained. Sci Rep. 6, 19103(2016).
  8. Boucherit, N., Gorvel, L., Olive, D. 3D tumor models and their use for the testing of immunotherapies. Front Immunol. 11, 603640(2020).
  9. Li, Y., et al. Recent progress on immunotherapy for breast cancer: Tumor microenvironment, nanotechnology and more. Front Bioeng Biotechnol. 9, 680315(2021).
  10. Lo Nigro, C., et al. NK-mediated antibody-dependent cell-mediated cytotoxicity in solid tumors: Biological evidence and clinical perspectives. Ann Transl Med. 7 (5), 105(2019).
  11. Sun, Y. S., et al. Risk factors and preventions of breast cancer. Int J Biol Sci. 13 (11), 1387-1397 (2017).
  12. Liu, P. H., Wei, J. C., Wang, Y. H., Yeh, M. H. Female breast cancer incidence predisposing risk factors identification using nationwide big data: A matched nested case-control study in taiwan. BMC Cancer. 22 (1), 849(2022).
  13. Burguin, A., Diorio, C., Durocher, F. Breast cancer treatments: Updates and new challenges. J Pers Med. 11 (8), 808(2021).
  14. Costa, R. L. B., Czerniecki, B. J. Clinical development of immunotherapies for HER2(+) breast cancer: A review of HER2-directed monoclonal antibodies and beyond. NPJ Breast Cancer. 6, 10(2020).
  15. Musolino, A., et al. Role of fcgamma receptors in HER2-targeted breast cancer therapy. J Immunother Cancer. 10 (1), e003171(2022).
  16. Petricevic, B., et al. Trastuzumab mediates antibody-dependent cell-mediated cytotoxicity and phagocytosis to the same extent in both adjuvant and metastatic HER2/NEU breast cancer patients. J Transl Med. 11, 307(2013).
  17. Guti, E., et al. The multitargeted receptor tyrosine kinase inhibitor sunitinib induces resistance of HER2 positive breast cancer cells to Trastuzumab-mediated ADCC. Cancer Immunol Immunother. 71 (9), 2151-2168 (2022).
  18. Barok, M., et al. Trastuzumab decreases the number of circulating and disseminated tumor cells despite Trastuzumab resistance of the primary tumor. Cancer Lett. 260 (1-2), 198-208 (2008).
  19. Toth, G., et al. The combination of Trastuzumab and Pertuzumab administered at approved doses may delay development of Trastuzumab resistance by additively enhancing antibody-dependent cell-mediated cytotoxicity. MAbs. 8 (7), 1361-1370 (2016).
  20. Ehlers, F. aI., et al. ADCC-inducing antibody Trastuzumab and selection of KIR-HLA ligand mismatched donors enhance the NK cell anti-breast cancer response. Cancers (Basel). 13 (13), 3232(2021).
  21. Gangadhara, S., Smith, C., Barrett-Lee, P., Hiscox, S. 3d culture of Her2+ breast cancer cells promotes AKT to MAPK switching and a loss of therapeutic response. BMC Cancer. 16, 345(2016).
  22. Balalaeva, I. V., Sokolova, E. A., Puzhikhina, A. D., Brilkina, A. A., Deyev, S. M. Spheroids of Her2-positive breast adenocarcinoma for studying anticancer immunotoxins in vitro. Acta Naturae. 9 (1), 38-43 (2017).
  23. Selis, F., et al. Pegylated Trastuzumab fragments acquire an increased in vivo stability but show a largely reduced affinity for the target antigen. Int J Mol Sci. 17 (4), 491(2016).
  24. Johnston, R. L., et al. High content screening application for cell-type specific behaviour in heterogeneous primary breast epithelial subpopulations. Breast Cancer Res. 18 (1), 18(2016).
  25. Kandaswamy, C., Silva, L. M., Alexandre, L. A., Santos, J. M. High-content analysis of breast cancer using single-cell deep transfer learning. J Biomol Screen. 21 (3), 252-259 (2016).
  26. Esquer, H., Zhou, Q., Abraham, A. D., Labarbera, D. V. Advanced high-content-screening applications of clonogenicity in cancer. SLAS Discov. 25 (7), 734-743 (2020).
  27. Pickl, M., Ries, C. H. Comparison of 3D and 2D tumor models reveals enhanced Her2 activation in 3D associated with an increased response to trastuzumab. Oncogene. 28 (3), 461-468 (2009).

הדפסות חוזרות והרשאות

בקש הרשאה לשימוש חוזר בטקסט או באיורים של מאמר JoVE זה

בקש הרשאה

תגיות

NKTrastuzumabAnnexin VHER2

מאמרים קשורים