מאמר שיטה

ייצוב אוסטאוטומיה של עצם הירך עם קיבוע פלטה באמביסטומה מקסיקנית

1.3K צפיות

⸱

DOI:

10.3791/66648

⸱

12 באפריל 2024

 ,  ,  ,  ,  ,  , 
1Research Institute of Molecular Pathology, 2Julius Wolff Institute for Biomechanics and Musculoskeletal Regeneration, Berlin Institute of Health at Charité - Universitätsmedizin Berlin, 3Berlin Institute of Health Centre for Regenerative Therapies, Berlin Institute of Health at Charité - Universitätsmedizin Berlin

במאמר זה

סיכום

מוצג פרוטוקול לניתוח אוסטאוטומיה של עצם הירך עם שימוש בקיבוע לוחית פנימית באקסולוטלים בוגרים. ההליך יכול לשמש לביצוע מחקרים השוואתיים על התחדשות גפיים וריפוי שברים בדו-חיים ימיים.

תקציר

האקסולוטל (Ambystoma mexicanum) הוא אורגניזם מודל מבטיח לרפואה רגנרטיבית בשל יכולתו יוצאת הדופן לחדש איברים שאבדו או ניזוקו, כולל גפיים, מוח, לב, זנב ועוד. מחקרים על אקסולוטל שופכים אור על מסלולים תאיים ומולקולריים השולטים בהפעלת אבות ושיקום רקמות לאחר פציעה. ידע זה יכול להיות מיושם כדי להקל על ריפוי של פציעות regeneration-incompetent, כגון עצם לא איחוד. בפרוטוקול הנוכחי מתואר ייצוב אוסטאוטומיה של עצם הירך באמצעות מערכת קיבוע לוחית פנימית. ההליך הותאם לשימוש בבעלי חיים ימיים (axolotl, Ambystoma mexicanum). נעשה שימוש באקסולוטלים של ≥20 ס"מ מקצה חוטם לזנב עם עצם הירך המקבילה בגודל עכבר מלא, ותשומת לב מיוחדת הוקדשה למיקום הצלחת וקיבועה, כמו גם לטיפול שלאחר הניתוח. טכניקה כירורגית זו מאפשרת קיבוע עצם סטנדרטי ומיוצב ויכולה להיות שימושית להשוואה ישירה להתחדשות גפיים אקסולוטליות ולמחקרים מקבילים של ריפוי עצם בקרב דו-חיים ויונקים.

מבוא

האקסולוטל (Ambystoma mexicanum) הוא מודל חשוב להתחדשות איברים, כולל הזנב, חוט השדרה, המוח, הלב, הזימים והגפיים 1,2,3,4,5. מחקרים מפורטים של התחדשות גפיים אקסולוטליות חשפו מנגנונים של התמיינות תאים והיווצרות מאגר תאי גזע, בלסטמה, באתר הקטיעה. בשל יכולתם של תאי הבלסטמה לשחזר את כל חלקי הגפיים החסרים, כולל שלד בדוגמת 6,7, האקסולוטל נראה כאורגניזם מודל אטרקטיבי למחקרי ריפוי עצם. לאחרונה, מספר מחקרים התמקדו יותר בביולוגיה של העצם באקסולוטלים, ותיארו מורפולוגיה של השלד, הרכב התא ודינמיקת אוסיפיקציה.

נמצא ביונקים כי תהליך ריפוי העצם בעצמות ארוכות מתרחש באמצעות אוסיפיקציה אנדוכונדרלית ומורכב ממספר שלבים: המטומה, רקמת גרגיר והיווצרות יבלות רכות, אוסיפיקציה של יבלות קשות ועצם ארוגה, ועיצוב מחדש של עצם8. מחקר שנערך לאחרונה הראה כי ניתן לראות שלבים דומים בריפוי עצם אקסולוטלית9.

עד כה, שברים אקסולוטליים נחקרו במערכת לא מיוצבת, שבה עצם פשוט נחתכת עם מספריים iridectomy. השברים הגדולים נוצרו בזאוגופוד, שם מבוצעת אוסטאוטומיה על אחת העצמות, ואילו השנייה משמשת כתמיכה10,11. לעומת זאת, שברים נחקרים באופן שגרתי ביונקים, כולל חולדות ועכברים, באמצעות מערכות קיבוע אמינות, כגון סיכות תוך מדולריות ולוחות יישור עצם, כדי לשלוט בגודל השבר ולהבטיח את יישור העצם.

לפיכך, השיטה נועדה להבטיח קיבוע מיוצב ואחיד של עצם הירך האקסולוטלית לפני אוסטאוטומיה. על מנת להפוך את מחקרי האקסולוטל לדומים יותר ליונקים, כולל עכברים ובני אדם, נלקחו בחשבון פין תוך-מדולרי12, קיבוע לוח חיצוני13,14 וקיבוע לוח יישור עצם פנימי 15,16,17. האחרון הוכח כמבטיח קיבוע עצם תקין ומאפשר יצירת רווח בגודל מסוים באמצעות חתך אחד או שניים עם מסור Gigly בקוטר מסוים. מכיוון שהאקסולוטלים מייצגים את הזחלים הימיים של Ambystoma mexicanum, ייתכן שקיבוע החיצוני גרם לסיבוכים לאחר הניתוח עקב הפצע הפתוח והמגע עם מים. מכיוון שאקסולוטלים אינם מפתחים מרכזי אוסיפיקציה שניוניים אפילו עד שלב מאוחר מאוד בהתפתחותם (גיל20 18), ולכן לא ניתן למנוע מהציפורן התוך-מדולרית הסטנדרטית המשמשת בעכברים לנקב את האפיפיסים, הוחלט ליישם שיטת קיבוע לוחות פנימית על אקסולוטלים גדולים. באקסולוטלים גדולים, גודל עצם הירך ומידת התנודה דומים לאלה של עכבר בוגר, ובכך מאפשרים אוסטאוטומיה דיאפיסיאלית אמצעית עם קיבוע לוחית טיטניום1.

גודל פער השבר קובע במידה רבה את דינמיקת הריפוי ואת תוצאתו. לדוגמה, בעכבר, שברים מיוצבים בקוטר 0.25 מ"מ מתאחים בעיקר באמצעות אוסיפיקציה תוך-ממברנית בשל גודלם הקטן וייצובם הנוקשה; שבר של 0.7 מ"מ מרפא על ידי אוסיפיקציה אנדוכונדרלית, עם היווצרות של יבלת סחוס סביב השבר; פגמים גדולים, כגון פגמים בגודל קריטי של 3.5 מ"מ אינם מחלימים לחלוטין ולכן משמשים למדל שבר עצם ללא איחוד16. במחקר זה, פרוטוקול קיבוע הלוח של עצם הירך האקסולוטלית לפני האוסטאוטומיה באמצעות דוגמה של פער שבר של 0.7 מ"מ נקבע במטרה הסופית להשוות את ריפוי עצם האקסולוטל לזה של עכבר9.

לאחר אוסטאוטומיה עברו השברים תהליך של תנודה אנדוכונדרלית, אם כי איטי יותר מאשר בעכברים, אולי בשל אורח החיים הימי של האקסולוטים וקצב חלוקת התאים האיטי יותר. בשיטה המוצגת כאן, אוסטאוטומיה מרווח 0.7 מ"מ עם קיבוע לוח קשיח מוצג; עם זאת, גדלים מרווחים אחרים וקיבועים גמישים למחצה, כמו גם לוחות מחומרים שונים, אפשריים. בסך הכל, השיטה המוצגת כאן יכולה לשמש לקיבוע עצם סטנדרטי ותהיה מועילה למחקרים המשווים התחדשות גפיים אקסולוטליות לריפוי עצם או לחקר ריפוי עצם באקסולוטלים בתנאים שונים כדי להבטיח קיבוע שבר סטנדרטי.

פרוטוקול

ההליך הבא בוצע באישור שופט השלום בווינה (GZ: MA 58-65248-2021-26). בני 5-8 שנים, ≥ קצה חוטם לזנב בקוטר 20 ס"מ (חוטם עד קצה הזנב) אקסולוטלים ארוכים (Ambystoma mexicanum) שימשו לניתוחי שברים וקטיעות. גברים ונקבות כאחד שימשו לניתוחים. אקסולוטלים גודלו במכון המחקר לפתולוגיה מולקולרית. כאב וסיכון לזיהומים נוהלו באמצעות משככי כאבים ואנטיביוטיקה מתאימים כדי להבטיח תוצאה מוצלחת. הריאגנטים והציוד ששימשו למחקר מפורטים בטבלת החומרים.

1. הכנת בעלי חיים

  1. רחצו את בעל החיים בתמיסת בנזוקאין 0.03% למשך כ-15-20 דקות עד שמגיעים לטשטוש מלא ואין תנועה רפלקסיבית עם נגיעת הגפיים בפינצטה.
  2. הניחו את בעל החיים עם הצד הגחוני כלפי מטה על מגבות נייר רטובות ספוגות בתמיסת בנזוקאין 0.03% וכסו אותה במגבות נייר ספוגות בנזוקאין. עורם של בעלי חיים ימיים, כגון אקסולוטלים, רגיש לייבוש, ולכן חיוני לכסות את פני הגוף כדי למנוע התייבשות ולהבטיח נשימה עורית (עור).
  3. מתחו את הגפה האחורית לניתוח באמצעות מלקחיים טבעתיים. אין להחיל ריאגנטים חיטוי, כגון אתנול, שכן העור axolotl רגיש לכימיקלים בקלות מגורה. במקום זאת, השתמש 0.7x PBS (A-PBS) עם 50 U/mL פניצילין ו 20 מיקרוגרם / מ"ל סטרפטומיצין לניקוי הגפה ולאחר מכן להשקיית עצם לאחר ניסור.
    הערה: הזיהום בדרך כלל אינו מדאיג את הניתוחים המבוצעים באקסולוטלים. עם זאת, בשל האופי המימי של בעלי חיים אלה והתפרים המונחים על פני העור, אנו ממליצים על שימוש באנטיביוטיקה כדי למנוע כל זיהום של אתר הניתוח.

2. ניתוח

הערה: יש לעקר את כל כלי הניתוח. שיטות עיקור נפוצות כגון עיקור בחום, אוטוקלאבינג ושטיפה באתנול 70%, ולאחר מכן הסרה יסודית של שאריות האלכוהול, מתאימות למטרה זו. אם אתם מנתחים מספר בעלי חיים, יש לעקר כלים בין לבין באמצעות מעקר חרוזים חם או אתנול 70%.

  1. בצע חתך אורכי לטרלי (1.5-2 ס"מ) עם אזמל מעל עצם הירך המשתרעת על פני כל הירך בגפה האחורית העליונה. כדי לעשות זאת, למשש את העצם לפני חיתוך העור.
  2. בזהירות לעקור את השרירים והעצבים מאתר הניתוח מבלי לחתוך. השתמש במלקחיים קמורים כדי לעשות זאת ביעילות.
  3. הניחו בעדינות מלקחיים מורכנים מתחת לעצם הירך כדי לחשוף אותה לקראת הניתוח.
  4. הניחו לוחית קיבוע קשיחה בקוטר 7.75 מ"מ בעלת 4 חורים יחד עם דיאפיזה של עצם הירך, הימנעו מנגיעה במפרקים, ואבטחו אותה במצב מיושר עם מלקחיים.
  5. השתמש בארבעה ברגי טיטניום בקוטר 2 מ"מ כדי לחבר את העצם לצלחת.
    הערה: הברגים המשמשים בפרוטוקול זה הם בעלי עיצוב מורכב ומורכבים מ-4 חלקים: החלק העיקרי (יוברג לתוך העצם), ראש בורג (מאפשר הוצאת הברגים והצלחת באמצעות מפתח הקופסה המרובע), צוואר צר יותר (המשמש כנקודת שבירה לאחר הידוק הבורג בעצם) וידית בורג (המשמשת לחיבור למברג ולמכשיר הנחיית המסור).
  6. סדר חיבור הבורג חשוב. התחל תחילה עם הברגים הפנימיים, ולאחר מכן עם שני הברגים החיצוניים כדי לוודא שהצלחת מיושרת עם ציר העצם. השתמש מקדחה ידנית כדי ליצור את החור הראשון בעצם להחדרה קלה של הבורג, ואחריו חריץ בורג1 . יש לקדוח באמצע היקף העצם כדי למנוע עצם דקה יותר בצד אחד, מה שעלול לגרום לשבר עצם ספונטני. השתמש בהשקיה עם PBS 0.7x + 1% Pen/Strep במהלך הקידוח. אין לנתק את הידית של הברג(ים) 1st (אופציונלי: 1st ו-2nd).
  7. יש למרוח את התקן הנחיית המסור על הברג(ים) 1st (אופציונלי: 1st ו-2 nd ) וליישר אותו עם העצם והצלחת.
    הערה: בפרוטוקול זה, לוחית, ברגים, התקן הנחיית מסור ומסור מסופקים על-ידי אותו יצרן וממוטבים כך שיתאימו זה לזה. מכשיר הנחיית המסור יכול להגיע בגדלים שונים כדי להתאים לצלחות וגדלי מסור שונים.
  8. השתמש במכשיר הנחיית המסור כדי לקדוח ולהכניס את שאר הברגים. ודא יישור של הצלחת עם העצם. נתקו את ידיות הברגים.
  9. מניחים חתיכת סרט פלסטיק (6-7 מ"מ על 4-5 ס"מ), מעוקרים על ידי ניגוב עם 70% אתנול ולאחר מכן autoclaved או מעוקר בחום (140 ° C במשך 4 שעות), מתחת עצם הירך כדי למנוע נזק לרקמות רכות במהלך תהליך אוסטאוטומיה.
    הערה: למטרה זו, חתיכת סרט פלסטיק, לחתוך שקית לעיקור בחום ניתן להשתמש.
  10. הניחו מסור תיל בין העצם לסרט הגנה.
  11. חותכים עצם באמצעות מסור תיל Gigly בקוטר 0.66 מ"מ, ויוצרים חתך יחיד של 0.7 מ"מ בעצם הירך. השתמש בהשקיה קבועה עם PBS 0.7x + 1% Pen/Strep במהלך הניסור כדי למזער נזק וחיכוך לרקמות.
  12. הסר את המסור ואת מדריך המסור והשתמש במברג כדי לנתק את ידיות הבורג מהברגים.
  13. הסר את סרט ההגנה והשקה את אזור הניתוח עם PBS 0.7x + 1% Pen/Strep.
  14. כסו את החלק העליון של הצלחת ואת הברגים בשעוות דבורים סטרילית כדי להגן על העור והשרירים מפני גירוי בשולי הברגים.
  15. הניחו את השרירים והעור על גבי שעוות דבורת העצם.
  16. סגור את אתר החתך בתפר סינתטי 7.0 (פוליפרופילן/פוליאתילן) באמצעות תפרים פשוטים קטועים. תפר סינתטי משמש כדי למזער זיהום עם חיידקים ופטריות שנולדו במים.

3. ניהול לאחר הניתוח

  1. כדי לעורר מחדש את החיה, הניחו אותה במיכל עם מי בריכה מלאכותיים טריים, בתוספת 50 U/mL פניצילין, 20 מיקרוגרם / מ"ל סטרפטומיצין, ו Butorphanol analgetic (0.5 מ"ג / ליטר מים).
  2. התבונן בחיה כדי להתחיל להזיז זימים, לעשות צעדים, ולשחות - בדרך כלל בתוך 1 שעה לאחר הניתוח.
  3. שמור את בעל החיים במשך 3 ימים במי בריכה מלאכותיים עם 50 U/mL פניצילין ו 20 מיקרוגרם / מ"ל סטרפטומיצין לפני החזרתו למיכל ההחזקה. כדי להבטיח שיכוך כאבים, להוסיף Butorphanol (0.5 מ"ג / ליטר מים).
  4. יש לוודא שהתפרים נשארים במקומם ומתרחש ריפוי פצעים תקין.

תוצאות

ההליך הכירורגי המתואר כאן (איור 1) נמשך בין 20 דקות ל-30 דקות ודורש מנתח ועוזר. לחלופין, השתמש במיקרוסקופ דיסקציה דו-עינית או במערכת זכוכית מגדלת.

figure-results-1
איור 1: סכמות של ההליך הכירורגי ומערך הניסוי. (A) עצם הירך נחשפת על ידי דיסקציה של העור ומשיכת שרירים משדה הניתוח. (B) לוחית טיטניום מיושרת עם עצם הירך. (C) חור פנימי1 נוצר באמצעות מקדחה ידנית. (D) בורג מוכנס לחור1. (ה) המסור ומדריך המקדחה מוכנסים ומחוברים לידית של בורג1. (ו) שאר הברגים מחוברים בסדר שצוין. (ז) המסור ומדריך המקדחה מוסרים בקפידה, וידיות הברגים נשברות בעת סיבוב המברג בשל קשיחות גבוהה יותר של העצם בהשוואה לצוואר הבורג. (H) רדיד בטיחות ומסור ג'ילי מונחים מתחת לעצם. (I) אוסטאוטומיה מבוצעת תחת השקיה מתמדת של אתר החיתוך. (J) ראשי הברגים מכוסים בשעוות עצם סטרילית לפני החלפת שריר וסגירת העור בתפרים. (D,E,F): המספרים מציינים את הרצף שבו קודחים חורים ומניחים ברגים. אנא לחץ כאן כדי להציג גרסה גדולה יותר של איור זה.

יש להקדיש תשומת לב מיוחדת ליישור הצלחת לעצם ולשלבי החיבור של הצלחת (איור 2). השונות בגיל האקסולוטל מובילה להבדלים קלים בגודל עצם הירך, צורתה ודרגת האוסיפיקציה. לכן, במקרים מסוימים, היה מאתגר למצוא מיקום צלחת טוב כדי להבטיח מספיק מקום לחיבור בורג. בסך הכל, כשל קיבוע נצפה ב-23.5% מהחיות, וזה יכול להיות תוצאה של עצמות צרות יותר או פחות מאובנות אצל חיות צעירות יותר (איור 3). כשל בקיבוע גרם לחוסר התאמה של העצם האוסטאוטומית. ניתן היה לזהות זאת על ידי נוכחות של ברגים מנותקים, תזוזה של שברי העצם עם חוסר התאמה מציר העצם של >20°, או תזוזה צדדית בולטת. בעוד הראשון ניתן לראות בעת קצירת הדגימות, האחרים לא יכול להיות ברור עד ניתוח microCT נעשה. בעוד שבגפיים מיושרות כראוי, רקמת הגרגיר נמצאה במרווח השבר 3 שבועות לאחר הניתוח, בדגימות הלא מיושרות היא נראתה גדולה בהרבה, אולי בניסיון לייצב את העצם.

figure-results-2
איור 2: סקירה כללית של ההליך הכירורגי וכתוצאה מכך של בעל חיים עם אוסטאוטומיה של הגפה האחורית השמאלית. (א) מוצגים השלבים העיקריים של הניתוח: חשיפה לעצם הירך, יישור נכון של לוחית הטיטניום, שימוש במדריך מסור ליצירת חורים בעצם באמצעות מקדחה ידנית ויישום הברגים, שימוש בסרט מגן ומדריך מסור (חץ צהוב) לאוסטאוטומיה, שבר עצם הירך 0.7 מ"מ (חץ לבן), המכסה את ראשי הבורג בשעוות עצם סטרילית (חץ סגול) והתוצאה הסופית בגפה סגורה. (B) בעל חיים לאחר ניתוח. החץ מציין את הגפה האחורית השמאלית, שם בוצע ניתוח האוסטאוטומיה. אנא לחץ כאן כדי להציג גרסה גדולה יותר של איור זה.

שימוש בשעוות דבורת עצם סטרילית לפני תפירת העור (איור 2) הפחית את הפתיחה מחדש של העור מעל לוחית הקיבוע לאחר הניתוח. הגפה נותרה מתפקדת וניתן היה להשתמש בה לעמידה והליכה זמן קצר לאחר הסרת ההרדמה.

figure-results-3
איור 3: תוצאות מייצגות של אוסטאוטומיה מקובעת לוחית אקסולוטלית. (A) סריקות MicroCT של עצם הירך השלמה ושבורה. שימו לב לפער בעצם 3 שבועות לאחר השבר. 23.5% מהגפיים הציגו קיבוע כושל, וכתוצאה מכך חוסר יישור העצם. בדגימות המקובעות, יבלות קשות נוצרות בגיל 6-9 חודשים לאחר השבר. (B) ספרנין O/כתם ירוק בהיר של עצם הירך השלמה ושבורה. שימו לב לפער ברקמת הגרגיר בעצם 3 שבועות לאחר השבר. בגיל 6 חודשים לאחר השבר, היבלת הקשה מורכבת מעצם ארוגה וסחוס. פסי קנה מידה: 1 מ"מ. לחץ כאן כדי להציג גרסה גדולה יותר של איור זה.

מיקרוCT וניתוח היסטולוגי (Safranin O/Light Green staining) אפשרו הדמיה של מיקום שברי העצם וגודל מרווח השבר, כמו גם מצב ריפוי העצם. נתוני MicroCT נרכשו ברזולוציה נומינלית של 10.05 מיקרומטר בסורק דגימות זמין מסחרית ונותחו באמצעות תוכנה תואמת (ראה טבלת חומרים) כמתואר ב- Polikarpova et al.9. בניגוד ליונקים, בהם שבר באותו גודל (0.7 מ"מ) נסגר עם יבלות סחוס וגרמי 3-5 שבועות לאחר הניתוח, לא נצפתה יבלת 3 שבועות לאחר הניתוח באקסולוטל. בדרך כלל, יבלת סחוס נראתה 3 חודשים לאחר ניתוח9, ויבלת גרמית מאובנת - 6 חודשים לאחר הניתוח (איור 3).

דיון

השיטה המתוארת כיום של קיבוע לוחית הירך ואוסטאוטומיה מאפשרת את יישומה בבעלי חיים ימיים, כגון Ambystoma mexicanum (axolotl). שיטה כירורגית זו שימשה לאחרונה להשוואת ריפוי שברים והתחדשות גפיים באקסולוטלים לריפוי שברים בעכברים9. כמו בעכברים, ניתן לחבר לוחית קיבוע בעלת 4 חורים לעצם באמצעות ברגים השבירה את עצמה, וניתן להשתמש במסור Gigly ליצירת שבר בגודל אחיד15. קיבוע פלטה מאפשר שמירה על גודל הפער ומבטיח יישור שברי עצם. שיטת שיכוך הכאבים עברה אופטימיזציה גם על ידי יישום רחצה butorphanol כפי שהוא פחות פולשני (בהשוואה זריקות buprenorphine), אשר לא דווח להשפיע על ריפוי העצם (כמו עם carprofen). עם זאת, מכיוון שמעט ידוע על ניהול כאב בדו-חיים בכלל וכאב לאחר ניתוח בפרט, ניתן להציע את השימוש בטיפול אנאלגטי מונע כחידוד נוסף של ההליך. כאן, התאמה של פרוטוקולים המשמשים במינים אחרים של דו-חיים יכולה להיחשב19. להערכה אובייקטיבית נוספת של מצבו הבריאותי של בעל החיים לאחר הניתוח, מומלץ ליישם וליישם דפי ציונים ספציפיים להגדרת התערבות ונקודות קצה אנושיות.

שלא כמו בשיטה המתוארת עבור עכבר16, סרט פלסטיק משמש להגנה על הרקמה הבסיסית לפני אוסטאוטומיה. כמו כן, בשל האופי הימי ושרירי הגפיים הפחות בולטים, האקסולוטים נזקקו למדבקה להגנה מפני שעוות דבורים על גבי הצלחת והברגים, כמו גם תשומת לב מיוחדת לשימוש בתפרי עור סינתטיים, שכן ביופילמים נאספו על התפרים הנספגים (מבוססי פוליגלקטין 910). הפניצילין-סטרפטומיצין משמש כחלק מהטיפול לאחר הניתוח למניעת זיהום פצעים ותפרים.

השיטה הותאמה לאקסולוטלים בני 5-8, ≥20 ס"מ מחוטם לזנב ולכן הוגבלה לבעלי חיים גדולים ומבוגרים למדי. זו יכולה להיות גם הסיבה לריפוי איטי יותר מעצמות יונקים בגלל שיעורי התרבות תאים נמוכים יותר בבעלי חיים זקנים כאלה. עם זאת, זה עשוי להיות מועיל אם צריך לפתור את השלבים העדינים יותר של ריפוי עצם20. מאפיין חשוב נוסף של השיטה הוא האופי המסחרי של החומרים המתכלים העיקריים המשמשים בפרוטוקול: צלחת קיבוע, ברגים ומסור Gigly. בשל תאימות אופטימלית של מכשירים אלה, פגמים עצם בגודל אמין ומרחק מקצות העצם נוצרים. בפרוטוקול הנוכחי מתואר יישום לוח מתכת טיטניום על עצמות אקסולוטל. עבור עכברים, לוחות פלסטיק PEEK פותחו כדי להקל על הדמיית microCT של הדגימות17. לוחות PEEK באקסולוטלים נבדקו גם הם עם תוצאות דומות; עם זאת, הם יכולים להיות מיושמים רק בבעלי חיים גדולים יותר בשל נפח מעט גבוה יותר של לוחות קיבוע פלסטיק בהשוואה לוחות מתכת.

במחקר זה השתמשנו בבעלי חיים בני 5-8 ונצפתה כשל בקיבוע ב-23.5% מכלל הניתוחים, עם שיעורי כישלון גבוהים יותר בחיות הצעירות יותר. לכן, אנו ממליצים להשתמש בבעלי חיים מבוגרים עם רמה גבוהה יותר של ossification עצם. שיעור הכישלון היה בלתי תלוי במגדר; לפיכך, שני המינים מוסמכים באותה מידה. עבור תכנון גודל המדגם, יש לחשב כ -20% אובדן מדגם עקב התוצאה השלילית. מספרם המדויק של בעלי החיים תלוי בתכנון הניסוי ובמספר התנאים שיש לנתח; עם זאת, מספר בעלי החיים המינימלי המומלץ לקבוצה צריך להיות 5+20% = 6 בעלי חיים.

בסך הכל, שיטה זו נותנת שיפור משמעותי לעומת ניתוחים לא מקובעים או שכנים מקובעים בעבר. יתר על כן, באמצעות שיטה זו, ניתן לחקור אקסולוטלים גדולים שיש להם עצמות דומות בגודל ובהבשלה לאלה המשמשים במחקרי עכבר. זה חשוב מאז microCT אפשרי רק axolotls גדול בשל מידת ossification.

השיטה מהווה התקדמות חשובה בתחום שכן היא מאפשרת השוואה ישירה בין התחדשות גפיים אקסולוטליות לריפוי שברים, עם גודל מרווח מבוקר ויישור עצם נכון (ב-76.5% מהניתוחים שבוצעו). יתר על כן, עם PEEK לוחות קיבוע פלסטיק, microCT, וצילומי רנטגן ניתן להשתמש להערכת תהליך ריפוי עצם. לבסוף, ניתן להתאים את הניתוח המתואר כאן לדו-חיים ימיים אחרים, כגון ניוטים וצפרדעים, מה שמקל עוד יותר על מחקרים בין מינים של ריפוי שברים בעצמות.

גילויים

המחברים מצהירים כי אין אינטרסים מתחרים.

תודות

המחברים רוצים להודות לסבין סטומפ על התמיכה הטכנית המצוינת וללידיה גרוסר על הסיוע בניתוחים. מחקר זה מומן על ידי הקרן האוסטרית למדע [מלגת הרטה פירנברג מספר T-1219], ERC [מענק מתקדם, 742046 RegGeneMems], DFG [CRC 1444].

חומרים

רשימת החומרים שנעשה בהם שימוש במאמר זה
שםחברהמספר קטלוגהערות
מסור תיל Gigly 0.66 מ"מ RISystemRIS.590.120
7.0 תפר אופטילן בראוןC3090538
בנזוקאין סיגמא-אולדריץ'E1501מדלל ל-0.03%  לפני השימוש
בבוטואורפנול (בוטומידור 10 מ"ג/מ"ל)ריכטר פארמה AGמדלל ל-0.5 מ"ג/ליטר  לפני השימוש
במקדח 0.30 מ"מRISystemRIS.590.200
Dumont #5 מלקחיים - Standard/InoxFine Science Tools11251-20
מקדחה ידניתRISystemRIS.390.130עדיף שיהיה לפחות 3 חלקים
מנתח נתונים Micro CTBruker, Billerica, MA, ארה"בSkyScan NRecon תוכנה
Micro CT סורק דגימות Micro CTBruker, Billerica, MA, USASkyScan 1172 
Moria MC31b מלקחיים איריס - חלקים, מעוקלים, 10 ס"מFine Science Tools11373-12FST2 חלקים
מקדחה MouseFix-& מוביל מסור 1.75 מ"מ, קשיחRISystemRIS.301.102
צלחת MouseFix 4 חורים, קשיחRISystemRIS.401.110
בורג MouseFix, L = 2.00 מ"מRISystemRIS.401.100צריך 4 לכל עצם
מלקחיים דפוס צרVWRFSCI11002-12
פניצילין/סטרפטומיציןGibco15140-122
מלקחיים טבעתייםFine Science Tools11103-09
אזמל #15B בראון, Thermo Fischer Scientific5518032
מפתח קופסה מרובע 0.50 מ"מRISystemRIS.590.111
שעוות עצם סטרילית, 2.5 גרםEthicon, Johnson & JohnsonW810
מספריים עדינים לסטודנטים - ישרים/11.5 ס"מכלים מדעיים עדינים91460-11

מקורות

  1. Amamoto, R., et al. Adult axolotls can regenerate original neuronal diversity in response to brain injury. Elife. 5, 13998(2016).
  2. Butler, E. G., Ward, M. B. Reconstitution of the spinal cord following ablation in urodele larvae. J Exp Zool. 160 (1), 47-65 (1965).
  3. Echeverri, K., Tanaka, E. M. Ectoderm to mesoderm lineage switching during axolotl tail regeneration. Science. 298 (5600), 1993-1996 (2002).
  4. Vargas-Gonzalez, A., Prado-Zayago, E., Leon-Olea, M., Guarner-Lans, V., Cano-Martinez, A. Myocardial regeneration in Ambystoma mexicanum after surgical injury. Arch Cardiol Mex. 75 (3), S321-S329 (2005).
  5. Vieira, W. A., Wells, K. M., McCusker, C. D. Advancements to the axolotl model for regeneration and aging. Gerontology. 66 (3), 212-222 (2020).
  6. Song, F., Li, B., Stocum, D. L. Amphibians as research models for regenerative medicine. Organogenesis. 6 (3), 141-150 (2010).
  7. McCusker, C., Bryant, S. V., Gardiner, D. M. The axolotl limb blastema: Cellular and molecular mechanisms driving blastema formation and limb regeneration in tetrapods. Regeneration (Oxf). 2 (2), 54-71 (2015).
  8. Einhorn, T. A., Gerstenfeld, L. C. Fracture healing: Mechanisms and interventions). Nat Rev Rheumatol. 11 (1), 45-54 (2015).
  9. Polikarpova, A., et al. The specialist in regeneration-the Axolotl-a suitable model to study bone healing. NPJ Regen Med. 7 (1), 35(2022).
  10. Chen, X., et al. The axolotl fibula as a model for the induction of regeneration across large segment defects in long bones of the extremities. PLoS One. 10 (6), e0130819(2015).
  11. Cosden-Decker, R. S., Bickett, M. M., Lattermann, C., MacLeod, J. N. Structural and functional analysis of intra-articular interzone tissue in axolotl salamanders. Osteoarthritis Cartilage. 20 (11), 1347-1356 (2012).
  12. Williams, J. N., Li, Y., Valiya Kambrath, A., Sankar, U. The generation of closed femoral fractures in mice: A model to study bone healing. J Vis Exp. (138), e58122(2018).
  13. Cheung, K. M., et al. An externally fixed femoral fracture model for mice. J Orthop Res. 21 (4), 685-690 (2003).
  14. Jiang, S., Knapstein, P., Donat, A., Tsitsilonis, S., Keller, J. An optimized protocol for a standardized, femoral osteotomy model to study fracture healing in mice. STAR Protoc. 2 (3), 100798(2021).
  15. Matthys, R., Perren, S. M. Internal fixator for use in the mouse. Injury. 40, Suppl 4 S103-S109 (2009).
  16. Manassero, M., et al. Establishment of a segmental femoral critical-size defect model in mice stabilized by plate osteosynthesis. J Vis Exp. (116), e52940(2016).
  17. Gunderson, Z. J., Campbell, Z. R., McKinley, T. O., Natoli, R. M., Kacena, M. A. A comprehensive review of mouse diaphyseal femur fracture models. Injury. 51 (7), 1439-1447 (2020).
  18. Riquelme-Guzman, C., et al. Postembryonic development and aging of the appendicular skeleton in Ambystoma mexicanum. Dev Dyn. 251 (6), 1015-1034 (2022).
  19. Gentz, E. J., et al. Medicine and surgery of amphibians. ILAR J. 48 (3), 255-259 (2007).
  20. Lang, A., et al. Collagen I-based scaffolds negatively impact fracture healing in a mouse-osteotomy-model although used routinely in research and clinical application. Acta Biomater. 86, 171-184 (2019).

הדפסות חוזרות והרשאות

תגיות

התחדשות אקסולוטלריפוי עצםקיבוע פנימיהתגבשות תוך-סומקריתאנליזת Micro CTהתחדשות גפהאיחוי עצם לקוי
ייצוב אוסטאוטומיה של עצם הירך עם קיבוע פלטה באמביסטומה מקסיקנית
צרו קשר
המליצו לספרייה

פרטיות

תנאי שימוש

מדיניות

זכויות יוצרים © 2026 MyJoVE Corporation. כל הזכויות שמורות.