מאמר שיטה

שמרי ביקוע כפלטפורמה למסכי תרופות אנטיבקטריאליים המכוונים לחלבוני שלד ציטו-בקטריאלי

1.8K צפיות

⸱

DOI:

10.3791/66657

⸱

26 באפריל 2024

 ,  ,  , 
1School of Biological Sciences, National Institute of Science Education and Research, 2Homi Bhabha National Institutes

במאמר זה

סיכום

שמרי ביקוע משמשים כאן כפונדקאי הטרולוגי לביטוי חלבוני שלד ציטו-שלד חיידקיים כגון FtsZ ו-MreB כחלבוני היתוך תרגומיים עם GFP כדי להמחיש את הפילמור שלהם. כמו כן, תרכובות המשפיעות על פילמור מזוהות על ידי הדמיה באמצעות מיקרוסקופ פלואורסצנטי.

תקציר

חלבוני שלד חיידקיים כגון FtsZ ו- MreB מבצעים פונקציות חיוניות כגון חלוקת תאים ושמירה על צורת התא. יתר על כן, FtsZ ו-MreB התגלו כמטרות חשובות לגילוי אנטי-מיקרוביאלי חדש. מספר בדיקות פותחו כדי לזהות תרכובות המכוונות לקשירת נוקלאוטידים ופילמור של חלבונים ציטו-שלד אלה, בעיקר בהתמקדות ב- FtsZ. יתר על כן, רבים מהבדיקות הן מייגעות או עתירות עלויות, וכדי לברר אם חלבונים אלה הם המטרה התאית של התרופה נדרשים לעתים קרובות שיטות מרובות. לבסוף, גם רעילות התרופות לתאים אאוקריוטים מהווה בעיה. במאמר זה אנו מתארים בדיקה חד-שלבית המבוססת על תאים כדי לגלות מולקולות חדשות המכוונות לשלד ציטוקלטון חיידקי ולמזער פגיעות שעלולות להיות רעילות לתאים איקריוטים. שמרי ביקוע מקובלים על מסכים בעלי תפוקה גבוהה המבוססים על מיקרוסקופיה, ומסך חזותי יכול לזהות בקלות כל מולקולה שמשנה את פילמור FtsZ או MreB. הבדיקה שלנו משתמשת בלוח 96 בארות סטנדרטי ומסתמכת על היכולת של חלבוני השלד הציטו-שלד החיידקיים להתפלמר בתא אאוקריוטי כגון שמרי הביקוע. בעוד שהפרוטוקולים המתוארים כאן הם עבור שמרי ביקוע ומשתמשים ב-FtsZ מ-Staphylococcus aureus וב-MreB מ-Escherichia coli, הם ניתנים להתאמה בקלות לחלבונים ציטו-שלדיים חיידקיים אחרים שמתאספים בקלות לפולימרים בכל פונדקאי ביטוי אאוקריוטי. השיטה המתוארת כאן אמורה לסייע בגילוי נוסף של חומרים אנטי-מיקרוביאליים חדשים המכוונים לחלבוני שלד חיידקיים.

מבוא

העמידות הנרחבת כמעט לכל האנטיביוטיקות המשמשות כיום למאבק בזיהומים חיידקיים יצרה צורך מיידי בקטגוריות חדשות של אנטיביוטיקה. דו"ח משנת 2019 הצביע על כך שזיהומים עמידים לאנטיביוטיקה גרמו לאובדן חייהם של 1.27 מיליון בני אדם, מה שתרם למספר כולל של 4.95 מיליון מקרי מוות כאשר לוקחים בחשבון סיבוכים של זיהומים חיידקיים עמידים1. בעוד שהוא עדיין יעיל בפרקטיקה הקלינית, ארסנל האנטיביוטיקה הנוכחי מכוון בעיקר לספקטרום צר של תהליכים תאיים, בעיקר התמקדות בדופן התא, דנ"א וסינתזה של חלבונים. במהלך חצי המאה האחרונה, פחות מ -30 חלבונים נוצלו באופן מסחרי כמטרות לפיתוח אנטי בקטריאלים חדשים 2,3. טווח מוגבל זה של מטרות בנות קיימא יוצר באופן משמעותי מגבלות לגילוי אנטיביוטיקה חדשה או נגזרותיה למאבק בחיידקים עמידים לאנטיביוטיקה. לכן, כדי להתגבר על בעיית העמידות לאנטיביוטיקה המתהווה, יש צורך בפיתוח אנטיביוטיקה חדשה עם מטרות ומנגנוני פעולה חדשים.

מטרה אנטיבקטריאלית צריכה באופן אידיאלי להיות מרכיב חיוני בצמיחת תאי חיידקים, להישמר בכל המינים המגוונים מבחינה פילוגנטית, להראות הכי פחות הומולוגיה אאוקריוטית, ולהיות נגישה לאנטיביוטיקה4. מאז גילוי חלבוני השלד הציטו-שלד החיידקיים המעורבים בחלוקת התא ובתחזוקת צורת התא, הם התגלו כמוקד מבטיח לפיתוח תרכובות אנטיבקטריאליות5. חלבונים אלה חיוניים לקיום חיידקים וממלאים תפקיד מרכזי בשמירה על צורת התא (MreB, CreS), חלוקה (FtsZ, FtsA) והפרדת דנ"א (ParM, TubZ, PhuZ, AlfA), בדומה לשלד הציטוקריוטי בתאים איקריוטיים. יש לציין כי FtsZ מציג רמה גבוהה להפליא של שימור על פני מגוון רחב של אורגניזמים פרוקריוטים, בעוד MreB נמצא כמעט בכל החיידקים בצורת מוט. תפוצה כה רחבה ורלוונטיות בכדאיות התא הופכות חלבונים אלה למטרה מרתקת במחקר אנטיביוטי 5,6,7.

חיוני לאמץ גישה רב-זרועית המשלבת תצפיות in vivo, אינטראקציות במבחנה וניסויים אנזימטיים כדי לאמת ביסודיות חלבוני שלד חיידקי כמטרה העיקרית של מעכב פוטנציאלי7. הליכים מייגעים או השלכות עלות משמעותיות מכבידים על בדיקות זמינות רבות למטרה זו. אלה הם מכשולים בולטים לשימוש נרחב שלהם בסינון תרכובות עופרת שעלולות להשפיע על שלד החיידק. בין אלה, מיקרוסקופיה בולטת כשיטה יעילה ומהירה במיוחד להערכת יעילותן של תרכובות על ידי בחינה ישירה של שינויים במורפולוגיה של התא. עם זאת, האסוציאציה ההטרו-אסוציאטיבית של חלבון המטרה עם קומפלקסים ציטו-שלד אחרים, השפעות עקיפות הנובעות מקישור מחוץ למטרה ושינויים בפוטנציאל הממברנה, קושי לחדור לתא ביעילות, ונוכחות של משאבות אפלוקס, במיוחד בחיידקים גראם-שליליים, הופכים את איתור הגורם המדויק לעיוות תאי חיידקים 8,9,10 למורכב באופן קולקטיבי.

Schizosaccharomyces pombe, או שמרי ביקוע כפי שהם ידועים בדרך כלל, הוא אורגניזם איקריוטי חד-תאי בצורת מוט. שמרי ביקוע נמצאים בשימוש נרחב כאורגניזם מודל בביולוגיה תאית ומולקולרית בשל השימור יוצא הדופן בתהליכים תאיים כגון מחזור התא וחלוקתו, ארגון התא ושכפול כרומוזומים עם איקריוטים גבוהים יותר, כולל בני אדם11,12. יתר על כן, ארינגטון ועמיתיו ביטאו חלבון ציטו-שלד חיידקי מקומי בקוטב DivIVA בשמרי ביקוע כדי להדגים כי DivIVA הצטבר על משטחים מעוקלים שליליים13. שוב, Balasubramanian והקבוצה ביססו לראשונה שמרי ביקוע כמערכת מודל תאי כדי להביא תובנות חדשות על המנגנון, ההרכבה והדינמיקה של חלבון E. coli actin cytoskeleton כמו MreB14 ו tubulin homolog FtsZ15. הם גם מדגימים את היכולת של A22 לעכב ביעילות את פילמור MreB באמצעות מיקרוסקופ אפיפלואורסצנטי כאשר הוא מבוטא בשמרים14. בעקבות זאת, קבוצות אחרות השתמשו בהצלחה גם בשמרי ביקוע כדי לחקור את תכונות ההרכבה של חלבוני כלורופלסט FtsZ1 ו-FtsZ216. לאחרונה, ביססנו הוכחת היתכנות לכדאיות השימוש בשמרי ביקוע כפלטפורמה תאית לסינון ספציפי של מעכבי שלד ציטו-שלד חיידקי על ידי ביצוע הערכה מקיפה של ההשפעה של שלושה מעכבי FtsZ ידועים - סנגווינרין, ברברין וחלבוני FtsZ PC190723 שמקורם בשני חיידקים פתוגניים, כלומר סטפילוקוקוס זהוב והליקובקטר פילורי17. בנוסף, בדיקה חד-שלבית זו המבוססת על תאים מוכיחה את עצמה כחיונית במזעור הסיכון לזיהוי תרכובות שעלולות להיות רעילות לתאים איקריוטים.

בדו"ח זה, תוך שימוש במערכת שמרי הביקוע, אנו מציעים זרימת עבודה שיטתית באמצעות צלחת סטנדרטית של 96 בארות לסינון וכימות חצי-אוטומטיים של ההשפעה של מעכבי מולקולות קטנות המכוונים ל-FtsZ מ-Staphylococcus aureus ול-MreB מ-Escherichia coli. כאן, אנו מגדירים וממטבים את זרימת העבודה החצי-אוטומטית באמצעות המעכבים המבוססים PC190723 ו- A22 המכוונים ספציפית ל- FtsZ ו- MreB, בהתאמה. תהליך עבודה זה משתמש במיקרוסקופ אפיפלואורסצנטי המצויד בשלב ממונע בדיוק גבוה וברכישת תמונה אוטומטית בלוח סטנדרטי של 96 בארות כדי לשפר את התקינה הנוכחית. לפיכך, ניתן ליישם אותו על מסכים בעלי תפוקה בינונית וגבוהה של ספריות כימיות סינתטיות ולעקוף חלק מהאתגרים המפורטים לעיל.

פרוטוקול

1. ביטוי חלבוני שלד חיידקי המתויגים GFP ב-S. pombe

הערה: ראה טבלה 1 למידע על כל הפלסמידים והזנים המשמשים כאן. ראה טבלה 2 עבור כל הרכבי המדיה.

  1. בצע שיבוט של E. coli MreB עם היתוך Gfp N-terminal (GFP-MreB) ו- S. aureus FtsZ הנושא GFP מסוף C (SaFtsZ-GFP) לתוך וקטור ביטוי S. pombe, pREP42 עם מקדם דיכוי תיאמין בעוצמה בינונית, nmt4118,19 כפי שתואר קודם לכן14,15. לשמור, להגביר ולבודד את הפלסמידים מזני E. coli (DH10β) כמתוארב-20,21.
    הערה: ניתן להשתמש גם בזני E. coli אחרים כגון DH5α, XL1Blue, TOP10 וכו 'או תאים מוסמכים אחרים הזמינים מסחרית המשמשים באופן שגרתי לשיבוט מולקולרי.
  2. הפיכת פלסמידים pREP42-GFP-EcMreB ו-pREP42-SaFtsZ-GFP ל-S. pombe
    1. הפוך את הפלסמידים pCCD3 (pREP42-GFP-EcMreB) ו- pCCD713 (pREP42-SaFtsZ-GFP) לזן S. pombe (h-leu1-32 ura4-D18) באמצעות שיטת ליתיום אצטט22, כפי שהוזכר בשלבים הבאים.
    2. יום 1 - תרבית ראשונית: יש לחסן לולאה של תרבית S. pombe טרייה ב-3 מ"ל של תמצית שמרים אוטוקלאביים ותוספי מזון (YES). לדגור אותו בשייקר מסלולית ב 30 ° C במשך הלילה (O/N).
    3. יום 2:
      1. תרבית משנית: להוסיף כ 500 μL של תרבית ראשונית ל 30 מ"ל של מרק YES autoclaved. לדגור ב 30 ° C במשך 3 - 4 שעות עם רעד OD600 מגיע 0.4 - 0.6.
        הערה: עבור כל טרנספורמציה, 30 מ"ל משמש.
      2. גלולה את תרבית 30 מ"ל ב 2,500 x גרם במשך 6-8 דקות בטמפרטורת החדר. השליכו את הסופרנאטנט ושטפו את התאים ב-50 מ"ל מים מזוקקים סטריליים (D/W). הפילו שוב והשליכו את הסופר-נטנט. להשהות מחדש את התאים ב 1 מ"ל של D / W סטרילי ולהעביר אותו לצינור צנטריפוגה 2 מ"ל. צנטריפוגה כנ"ל ולהשליך סופרנטנט.
      3. הוסף 1 מ"ל של 0.1 M ליתיום אצטט, תמיסת Tris-EDTA (LiAc-TE) וצנטריפוגה כאמור לעיל. יש להשליך את הסופרנאטנט ולהשהות מחדש ב-1 מ"ל של 0.1 M LiAc-TE. צנטריפוגה והשלכת סופרנטנט, תוך השארת 100 מיקרוליטר של תמיסה מאחור.
      4. הוסף 10 - 20 מיקרוגרם של DNA נשא (DNA זרע סלמון; מפורק הבזק מקורר על קרח) ו 2 - 3 מיקרוגרם של DNA פלסמיד, אשר צריך להיות מותנה. מערבבים בעדינות. יש לדגור בטמפרטורת החדר למשך 10 דקות.
      5. הוסף 260 μL של 40% PEG/LiAc-TE; מערבבים בעדינות. יש לדגור במשך 60 דקות בשייקר או בתרמומיקסר בטמפרטורה של 30°C בערבוב עדין. הוסף 43 μL של DMSO; מערבבים בעדינות.
      6. יש לחמם ב-42°C למשך 10 דקות ב-thermomixer. גלולה ב 2,500 x גרם במשך 6-8 דקות ולהשליך supernatant. לשטוף את הגלולה 1x עם 1 מ"ל של D / W סטרילי.
      7. כדור, להשליך supernatant ולהשהות מחדש את הגלולה ב 200 μL של D/W סטרילי. צלחת 100 μL על לוחות אדינבורו בינוני מינימלי (EMM) המכילים 5 מיקרוגרם / מ"ל תיאמין (כדי לדכא מקדם nmt41 ) ותוספי חומצות אמינו אדנין (0.225 מ"ג / מ"ל), היסטידין (0.225 מ"ג / מ"ל) ולאוצין (0.225 מ"ג / מ"ל) אך חסר אורציל (סמן בחירה עבור פלסמיד pREP42).
        הערה: לחלופין, צלחת 70 μL ו 130 μL בשני לוחות שונים. שני נפחים שונים (70 μL ו-130 μL) מצופים כדי לקבל מושבות מבודדות על לפחות אחד מהלוחות בהתאם ליעילות הטרנספורמציה, שיכולה להשתנות מניסוי לניסוי.
      8. לדגור על הצלחות ב 30 ° C במשך 2-3 ימים עד מושבות מופיעות. מערבבים מושבה אחת עם 100 μL של D/W סטרילי ופורסים על צלחת EMM טרייה המכילה תיאמין אך חסר אורציל כמתואר לעיל.
      9. יש לדגור בטמפרטורה של 30 מעלות צלזיוס למשך 2-3 ימים עד לקבלת מדשאה שלמה. יש לגרד את מדשא התאים הגדל באמצעות לולאת חיסון ולהשהות אותה מחדש ל-1 מ"ל של מדיה YES המכילה 30% גליצרול בבקבוקון קריו.
      10. יש להקפיא את בקבוקון ההקפאה בחנקן נוזלי ולאחסן בטמפרטורה של -80°C כדי לשמר את מלאי השמרים הקפואים.
  3. ביטוי חלבוני שלד חיידקי בשמרי ביקוע
    1. פזרו כתם מציר הגליצרול על צלחת ספציפית לשמרים טריים כדי לקבל מספיק תרבית לניסויים נוספים.
      הערה: במקרה של pREP42, השתמשנו בצלחת אגר EMM (מדיה מינימלית) המכילה אדנין, היסטידין ולאוצין (כמו שימוש בזן S. pombe (h- leu1-32 ura4-D18)) ללא אורציל (אורציל קיים ב- pREP42 כסמן בחירה). אנו מוסיפים 15 - 20 מיקרומטר תיאמין ללוחות אגר (כמו pREP42 יש מקדם nmt41 מדכא תיאמין) כדי לדכא את הביטוי של הגן של עניין כאשר גדל על הצלחת.
    2. יש לחסן לולאה קטנה של האינקולום מהמדבקה המפוספסת לתוך 5 מ"ל של מדיה EMM ספציפית לשמרים ללא תיאמין ולדגור עליו במשך 10 - 12 שעות ב 30 מעלות צלזיוס.
      הערה: הביטוי של FtsZ ו-MreB ממינים שונים תחת מקדם nmt41 בפומבה S. יכול להשתנות, בדרך כלל בין 16 ל-30 שעות. הזמן האופטימלי לביטוי חלבון של GFP-EcMreB ו- SaFtsZ-GFP ב- S. pombe הוא 20 - 24 שעות ו- 16 - 20 שעות ב- 30 מעלות צלזיוס, בהתאמה, ללא תיאמין.

2. טיפול בתרביות S. pombe המבטאות חלבוני שלד חיידקיים מתויגים GFP

הערה: מספר מולקולות תרופה שונות נבדקות על תרבית שמרים שגדלה בלילה בצלחת של 96 בארות.

  1. חסן תרבית טרייה על ידי העברת 50 μL של תרבית הלילה לכל באר של צלחת 96 בארות המכילה 150 μL של מדיה EMM שמרים טריים באמצעות מכשיר צנרת חצי אוטומטי, 96 בארות רב ערוצי.
  2. תוך כדי ערבוב נכון פנימה והחוצה באמצעות פיפטה חצי-אוטומטית, רב-ערוצית בת 96 בארות, הכניסו לאט לאט ריכוזים הולכים וגדלים שונים של סמים לתרבות הגידול, שכל אחד מהם נעשה בטריפליקט כפי שמיוצג בסכמה באיור 1.
  3. כבקרה חיובית, השתמש בתרופות הידועות כבר, PC190723 עבור (S. aureus FtsZ) ו- A22 (עבור E. coli MreB) בכפילות.
    הערה: כפי שדווח בעבר, PC190723 ו- A22 שימשו בריכוז של 56.2 מיקרומטר17 ו- 72.6 מיקרומטר 14,17, בהתאמה. בינתיים, טיפול A22 ב- SaFtsZ וטיפול PC190723 ב- EcMreB שימשו כבקרות שליליות, בהתאמה.
  4. השתמש DMSO כבקרת ממס בשלושה ריכוזים שונים על פי הריכוזים הנמוכים והגבוהים ביותר של תרופות.
    הערה: הממס שבו תרופות מומסות משמש כבקרת ממס.
  5. לדגור על תרביות הבקרה והמטופלות בטמפרטורה של 30 מעלות צלזיוס למשך 6-10 שעות (עד שהתאים יראו ביטוי של חלבונים פלואורסצנטיים חיידקיים) ולאחר מכן לדגור באמצעות מיקרוסקופ אפיפלואורסצנטי.

3. הדמיה של הפולימרים

  1. יש למרוח ציפוי של 20 μL של 1 מ"ג/מ"ל concanavalin A על כל באר של צלחת 96 בארות תחתונה שקופה אופטית (דופן שחורה להדמיית פלואורסצנטיות) ולדגור במשך 20 דקות בטמפרטורת החדר. יש לשאוף נוזל ולתת לו להתייבש באוויר במשך 10 דקות.
  2. מעבירים 20 μL של תאים מצלחת התרבית לכל באר בהתאמה ומניחים לשבת במשך 10 דקות. שטפו את התא 3x-4x עם מדיית EMM סטרילית.
  3. כאשר עדשת האובייקט לשימוש במקום (ראה שלב 3.6), השתמש במצב הנווט בלוח הרכישה של תוכנת רכישת התמונה ליישור לוחות של 96 בארות וכיסוי היטב. יישר היטב קצוות על הנווט.
  4. לאחר מכן, בחר את פרמטרי כיסוי הבאר, הכוללים בחירה מרובת מיקומים של אזור העניין בבאר, והשתמש בבקרת מיקוד אוטומטי אדפטיבית עם מצב לפי דרישה כדי לשמור על הדגימה בפוקוס במהלך ההדמיה.
  5. קבל תמונות באמצעות ניגודיות הפרעה דיפרנציאלית (DIC) ופלואורסצנטיות. הגדר מסנני עירור ופליטה של 475/28 ננומטר ו- 525/48 ננומטר, בהתאמה, כדי לצלם את חלבוני החיידקים המתויגים ב- GFP המבוטאים בשמרים. קבל ערימות Z בגודל צעד של 0.2 מיקרומטר דרך עובי תאי השמרים (5 מיקרומטר).
  6. צלם תמונות באמצעות מיקרוסקופ אפיפלואורסצנטי הפוך המצויד ביעד טבילת שמן 100x, 1.4-NA ומצלמת sCMOS בגודל 2,000 x 2,000 (גודל פיקסל 6.5 מיקרומטר x 6.5 מיקרומטר). השתמש במערכת תאורת LED לעירור של פלואורופור.
    הערה: כל מערכת מיקרוסקופ אפיפלואורסצנטי שיש לה במה ממונעת עבור צלחת 96 בארות עם מיקום מדויק רב נקודתי צריכה להיות מתאימה. לרכוש את כל תמונות התא של בקרה וטיפול תרופתי עם זמן חשיפה דומה (בדרך כלל בטווח של 0.3 - 0.5 שניות) בקישור של 1 x 1 והארה ב 15% - 20% כדי למזער את משתני הניסוי ולשמור על עקביות.

4. כימות התמונות באמצעות ImageJ

  1. עבד תמונות תא ומדוד את מספר הכתמים לתא ואת צפיפותו עבור FtsZ17. במקרה של MreB, למדוד צפיפות ואנאיזוטרופיה23 ולהשוות בין תאי ביקורת ומטופלים באמצעות פיג'י (v2.0.0-rc-69/1.52p)24.
  2. באמצעות התמונות מערוץ DIC, תחילה שרטט את תאי השמרים הבודדים באמצעות כלי הציור ביד חופשית ושמור כאזור עניין (ROI) במנהל החזר ההשקעה. שלב זה עדיין אינו אוטומטי, אך ניתן לנסות ולשלב כלים שפותחו לאחרונה באמצעות למידת מכונה25,26 בעתיד הקרוב.
  3. יש להסוות את האזור החיצוני של התא ולמלא אותו בשחור כמתואר בסעיף27.
  4. השתמש במאקרו OPS threshold IJ1 analyzese, תכונה מוכללת בפיג'י, כדי לספור את מספר המקומות24.
  5. השתמש בשיטת otsu לסף אוטומטי והסוו את החלקיקים המקוטעים. הפעל את תוסף ניתוח החלקיקים באמצעות מאקרו.
  6. למדידת צפיפות פולימר (כמות שלד ציטו-שלד ליחידת שטח בתא), יש לעבד תמונות כמתואר, כולל שלבי מיסוך ושלד27,28. השתמש ב- Lpx 2Dfilter בתוסף lpx כדי ליצור שלד של התמונות.
  7. לקבלת פרטים, עיין בפרסום האחרון17. בצע כימות פולימר EcMreB כפי שהוזכר קודם לכן ב23, השתמש באנאיזוטרופיה כדי לכמת ארגון מרחבי באמצעות FibrilTool29 כפי שתואר קודם לכן23.
    הערה: שיטות ניתוח אלה יכולות לשמש לכימות כל חלבוני שלד חיידקיים אחרים אשר מטופלים או לא מטופלים על ידי התרופות.

תוצאות

הגדרת צלחת 96 בארות להקרנת סמים
השימוש ב-S. pombe כדי לבטא C-terminally GFP המתויג S. aureus FtsZ מתוך וקטור (pREP42) המכיל את מקדם התיאמין בעל החוזק הבינוני nmt41נקבע בעבר17 ובאופן דומה, E. coli MreB המתויג עם N- terminal GFP בוטא גם ב-S. pombe14. הראינו גם כי PC190723, מעכב ספציפי של SaFtsZ ו- A22, מעכב MreB, יכולים להפעיל את השפעתם על חלבוני השלד הציטו-שלד החיידקיים בהתאמה באופן ספציפי כאשר הם באים לידי ביטוי בשמרים14,17.

כאן, אנו מציעים להשתמש במערכת ביטוי שמרים כדי לפתח סינון בתפוקה בינונית או גבוהה של תרופות אנטיבקטריאליות המכוונות לחלבוני שלד החיידקי. מיקרוסקופ אפיפלואורסצנטי עם שלב ממונע יכול להיות אוטומטי כדי לצלם צלחת של 96 בארות, וספריות תרופות מסחריות זמינות גם בפורמטים של לוחות 96 בארות. לכן, אנו מעדיפים להשתמש בצלחת של 96 בארות לסינון המוצע של תרופות. הלוחות מסודרים כפי שמוצג באיור 1. השורה הראשונה (איור 1A) מורכבת מ-SaFtsZ-GFP המבטא תרבית שמרים. השורה השנייה (איור 1B) מורכבת מתרביות שמרים המבטאות GFP-EcMreB. שתי העמודות הראשונות של שתי השורות הראשונות (A1:B2) מוגדרות כמדיה ריקה. שש העמודות הבאות של שתי השורות הראשונות (A3:B12) מוגדרות כבקרת DMSO עם שלושה ריכוזים שונים בהתאם לדילול התרופה בכפילות. לאחר מכן, PC190723 (56.2 מיקרומטר) ו-A22 (72.6 מיקרומטר) מתווספים לתאי שמרים המבטאים SaFtsZ-GFP או GFP-EcMreB. PC190723 ו-A22 משמשים כבקרות חיוביות עבור FtsZ ו-MreB, בהתאמה. כל הבארות האחרות (C1:F12) מנוצלות להוספת תרופות שונות (בשלושה ריכוזים שונים ובכפולות) המשמשות במסך לזיהוי גורמים משפיעים על חלבוני שלד הציטו-שלד החיידקי, SaFtsZ או EcMreB. תרביות של שמרים המבטאים את SaFtsZ או MreB המתויגים על ידי GFP מופצים לתוך צלחות אלה של 96 בארות ומגודלות עד שההשפעות של התרופות על הרכבת פולימרים הן דמיינו.

הערכת השפעות גדילה על תאי שמרים
לאחר הדגירה של 96 בארות המכילות תאים תת-תרבית בטמפרטורה של 30°C למשך 6 עד 10 שעות, הצפיפות האופטית (OD) של תרבית השמרים נמדדת באמצעות קורא מיקרו-צלחות. המדידה של OD מסייעת להעריך כל השפעה מעכבת גדילה של התרופות כנגד תאי שמרים אאוקריוטים ואולי השפעות מזיקות על תאים אנושיים. לכן, בדיקה זו יכולה לשמש כדי לסנן תרופות מרובות בהתבסס על הרעילות שלהם במערכת השמרים. עם זאת, לא PC190723 ולא A22 מראים השפעות גדילה או רעילות לתאי שמרים, ו-OD600 מהתרביות המבטאות SaFtsZ-GFP שטופלו ב-DMSO, PC190723 או A22 היו 0.38 ±-0.03, 0.44 ±-0.02 ו-0.43 ±-0.06 (N ≥ 4), בהתאמה. כמו כן, OD600 של התרביות המבטאות GFP-EcMreB וטופלו עם DMSO, PC190723 או A22 היו 0.38 ± 0.04, 0.44 ± 0.07 ו- 0.41 ± 0.08 (N ≥ 4), בהתאמה.

הדמיה של השפעת התרופות על המבנים הפולימריים שהורכבו על ידי SaFtsZ ו- EcMreB המתבטאת ב - S. pombe
על מנת להעריך את השפעת התרופות על פילמור של SaFtsZ או EcMreB, אליקוט של תאי השמרים מהצלחת 96 בארות הנ"ל המכילה תרופות מועבר לצלחת אחרת של 96 בארות עם תחתית זכוכית שקופה אופטית 96 באר המתאימה להדמיית פלואורסצנטיות. צלחת זו בעלת 96 בארות מצופה גם בקונקנבלין A כדי לאפשר הידבקות של תאי השמרים המבטאים את SaFtsZ או EcMreB המתויגים ב-GFP. לוח 96 הקידוחים מצולם באמצעות מיקרוסקופ אפיפלואורסצנטי המכסה את כל 96 הבארות של הלוח במיקומים שנקבעו מראש כפי שנשלטו על-ידי תוכנת רכישת התמונה (איור 2). בבארות הבקרה (DMSO שטופלו), תאי שמרים המבטאים SaFtsZ-GFP הראו מבנים פולימריים בצורה של כתמים או טלאים המפוזרים ברחבי התאים, לאחר 16 - 18 שעות של צמיחה בהיעדר תיאמין. אולם 10-12 שעות לאחר הגידול במחסור בתיאמין, התאים הציגו רק פלואורסצנטיות מפוזרת או מעט מדבקות, מה שמרמז על כך שביטוי FtsZ-GFP לא הגיע לריכוז הקריטי הדרוש לפילמור (איור 3A). להיפך, התרופה המייצבת FtsZ, PC190723, הראתה עלייה ניכרת במבנים הפולימריים (כתמים או טלאים) של SaFtsZ-GFP בהשוואה לבקרת DMSO לאחר 12 שעות של צמיחה (איור 3B), ושימשה כבקרה החיובית. לעומת זאת, תאים שטופלו ב-A22 לא הראו הבדל במבני SaFtsZ-GFP שהורכבו (איור 3C). אולם שלא כמו בתרביות שטופלו ב-PC190723, SaFtsZ-GFP התאסף למדבקות בתרביות לא מטופלות רק כאשר הושרה לפרקי זמן ארוכים יותר, מה שמראה כי PC190723 פעלו להפחתת הריכוז הקריטי של פילמור SaFtsZ (איור 3D). באופן דומה, GFP-EcMreB המתבטא ב-S. pombe יצר מערכים ליניאריים של חוטים ארוכים לאורך ציר האורך של שמרי הביקוע (איור 4A). בעוד שנמצא כי PC190723 לא השפיעו על פילמור EcMreB (איור 4B), טיפול בתאים עם A22 הביא לפלואורסצנטיות מפוזרת לאורך הציטופלסמה של תאי השמרים (איור 4C). התמונות משאר לוחות 96 הקידוח נבדקות חזותית עבור כל ייצוב או השפעות מעכבות של התרופות על SaFtsZ או EcMreB, לפי העניין.

לאחר מכן ניתן לכמת את השפעת התרופות על הרכבת חלבוני שלד חיידקיים באמצעות כלי ניתוח תמונה ותוספים ב-ImageJ או פיג'י, כפי שדווח בעבר עבור SaFtsZ17 ו-EcMreB21. רכישת תמונה אוטומטית בפורמט צלחת 96 בארות ויישום פקודות מאקרו וסקריפטים מותאמים אישית לעיבוד תמונה יכולים להאיץ את זמן ההדמיה ואת כימות ההשפעות של התרופות. לכן, באמצעות שמרים אאוקריוטים חד-תאיים, S. pombe, כמערכת המארחת, אנו מציעים כי מסך בתפוקה בינונית או גבוהה עבור מולקולות קטנות המכוונות לחלבוני השלד של החיידקים יכול להתבצע בהצלחה, מה שיוביל בסופו של דבר לגילוי אנטיביוטיקה חדשה.

figure-results-1
איור 1: סכמטי המראה את השימוש בתאי שמרים בביקוע כדי לסנן תרופות המכוונות להרכבה של חלבוני שלד ציטו-שלד חיידקיים SaFtsZ או EcMreB. FtsZ מ-S. aureus ו-MreB מ-E. coli שובטו לווקטור ביטוי השמרים, pREP42 בעל תג GFP ב-C- ו-N-terminus, בהתאמה, והפכו ל-S. pombe עבור מחקר פנוטיפי ותרופתי. התרביות גודלו במשך 8 - 12 שעות. לאחר מכן, התרביות עברו תת-תרבית בצלחות של 96 בארות עם בקרות מתאימות והתרופות השונות נבדקו. יתר על כן, הצלחת הודגרה ב 30 ° C במשך 6 - 8 שעות עד OD600 מגיע 0.5-0.6, ואת הצפיפות האופטית נמדדת באמצעות קורא microplate כדי להעריך את הרעילות של התרופות כלפי תאי שמרים. צלחת זכוכית שקופה נוספת בעלת 96 בארות צופתה מראש בקונקנאבלין A, להדבקת תאי שמרים. צלחת זו בת 96 בארות שימשה להדמיה ורכישת תמונה באמצעות מיקרוסקופ אפיפלואורסצנטי. התמונות שהתקבלו נותחו לאחר מכן. אנא לחץ כאן כדי להציג גרסה גדולה יותר של איור זה.

figure-results-2
איור 2: סכמה של תוכנת רכישת התמונה להדמיה אוטומטית של לוח בעל 96 בארות. באמצעות הנווט בתוכנת רכישת תמונות, לוח 96 בארות יושר על ידי סימון הקצוות. פרמטרים של כיסוי באר כמו מספר התמונות שיש לצלם מכל באר ומיקומה (אקראי או ממרכז הבאר) נבחרו כרצונך. לבסוף, פרמטרי תמונה כגון המסנן מוגדר לשימוש (DIC ו- FITC-filter; לדוגמה 475/28 ננומטר ו-Em 525/48 ננומטר), נקבעו אחוזי עוצמת תאורה, מיקוד אוטומטי וזמן חשיפה ללכידת תמונה. אנא לחץ כאן כדי להציג גרסה גדולה יותר של איור זה.

figure-results-3
איור 3: הדמיה של ההשפעה של תרופות PC190723 ו-A22 על SaFtsZ-GFP המבוטאת ב-S . pombe. תרבית S. pombe המבטאת SaFtsZ-GFP גודלה בהיעדר תיאמין במשך 8 - 9 שעות ב- 30 מעלות צלזיוס לפני DMSO וטיפול תרופתי. התרבות גדלה עוד יותר בצלחת 96 בארות במשך 7 - 9 שעות ב 30 מעלות צלזיוס בנוכחות או היעדר הסמים. (A) בבקרת DMSO, שבה נוספה כמות שווה של DMSO, התאים הציגו כמה מבנים פולימריים. (B) בנוכחות PC190723 (56.2 מיקרומטר), SaFtsZ מבטא תאי שמרים המראים עלייה ניכרת במבנים הפולימריים מאשר זו של בקרת DMSO. (C) מעכב MreB, A22 (72.6 מיקרומטר), לא השפיע על מבני SaFtsZ-GFP. (D) שעות ארוכות יותר של ביטוי חלבונים היו נחוצות להרכבת SaFtsZ-GFP בהיעדר PC190723, ולכן, תרביות ביקורת שגדלו ב-30°C במשך 12-15 שעות לאחר תת-תרבית בצלחת 96 בארות המכילה DMSO מציגות גם פולימרים FtsZ. סרגל קנה המידה הוא 5 מיקרומטר. לחץ כאן כדי להציג גרסה גדולה יותר של איור זה.

figure-results-4
איור 4: הדמיה של ההשפעה של תרופות PC190723 ו-A22 על GFP-EcMreB המתבטאת ב-S . pombe. תרבית S. pombe המבטאת GFP-EcMreB גודלה בהיעדר תיאמין במשך 9 - 11 שעות ב 30 ° C לפני הוספת DMSO או התרופות (A22 או PC190723). התרבית גדלה עוד יותר בצלחת 96 בארות במשך 8 - 10 שעות ב 30 מעלות צלזיוס עם וללא תרופות כבקרה. (A) בתרביות שבהן נוספה כמות שווה ערך של DMSO כבקרה, התאים הציגו חוטים ליניאריים של EcMreB המכוונים לאורך ציר האורך של תאי השמרים. (B) הרכבה של GFP-EcMreB לא הושפעה בתרביות שטופלו ב-PC190723 (56.2 מיקרומטר). (C) המולקולה הקטנה A22 (72.6 מיקרומטר), מעכבת ידועה של פילמור MreB, מנעה הרכבה של GFP-EcMreB בתאי שמרים בביקוע. סרגל קנה המידה הוא 5 מיקרומטר. לחץ כאן כדי להציג גרסה גדולה יותר של איור זה.

טבלה 1: זנים ופלסמידים ששימשו במחקר זה. אנא לחץ כאן כדי להוריד טבלה זו.

טבלה 2: הרכב המדיה והמאגרים ששימשו במחקר זה. אנא לחץ כאן כדי להוריד טבלה זו.

דיון

עמידות מיקרוביאלית (AMR) היא איום בריאותי עולמי רציני, ויש צורך דחוף באנטיביוטיקה חדשה עם מטרות חדשות. שלד הציטו-שלד החיידקי התגלה כיעד אטרקטיבי לפיתוח אנטיביוטיקה חדשה, עם מעכבי מולקולות קטנות של חלבון חלוקת התא FtsZ, כגון TXA709, שכבר נמצא בשלב I של ניסויים קליניים30. מספר שיטות פותחו לזיהוי מעכבי פילמור FtsZ 7,31. לאחרונה השתמשנו בשמרי ביקוע אאוקריוטים בבדיקה מבוססת תאים כדי להראות שהתרופה המייצבת FtsZ, PC190723, יכולה להתמקד ב-HpFtsZ17. יתר על כן, הראינו גם כי למרות שתרופות כגון ברברין וסנגווינרין השפיעו על פילמור FtsZ, הן השפיעו גם על המורפולוגיה של תאי שמרים17. בעקבות מחקרים ותצפיות אלה, יצאנו לפתח בדיקה חד-שלבית מבוססת תאים כדי לסנן מודולטורים של מולקולות קטנות של שלד הציטוקלטון החיידקי באמצעות פלטפורמת ביטוי שמרי הביקוע. מאחר שהמסך מסתמך על עיכוב הרכבה של חלבונים ציטו-שלדיים המתויגים ב-GFP, מולקולות קטנות בעלות תכונות פלואורופוריות דומות עשויות לגרום לתוצאות חיוביות שגויות. הימנעות ממסננים בעלי מעבר ארוך ובחירה במסנני פסים צרים עשויים לעזור להפחית את התוצאות החיוביות הכוזבות הנובעות ממולקולות קטנות פלואורסצנטיות. כאן, אנו מראים את השלבים הכרוכים בהגדרת מסך תפוקה בינונית באמצעות מיקרוסקופ אפיפלואורסצנטי המצויד במחזיק שלב צלחת 96 בארות שניתן להשתמש בו כדי לסנן תרופות המכוונות ל- SaFtsZ או EcMreB. זרימת העבודה כוללת רכישה וניתוח תמונה אוטומטיים למחצה, אשר ניתן בקלות לשנות את קנה המידה שלהם למסכים בעלי תפוקה גבוהה בעתיד באמצעות מערכות רובוטיות לטיפול בנוזלים וצינורות עיבוד תמונה.

יתר על כן, המסך צריך להיות שימושי עבור חלבונים ציטו-שלד חיידקיים אחרים, כגון אקטין קפל המכיל חלבון תחזוקה פלסמיד ParM32 ונגד כל חלבון המתכנס למבנים פולימריים בשמרי ביקוע. עם זאת, רמות ביטוי אופטימליות עבור כל חלבון מעניין יצטרכו להיות סטנדרטיות לפני השימוש בכל מסכי סמים. בעוד שעבור FtsZs, מצאנו ש-nmt41 הוא מקדם אופטימלי, עבור חלבונים אחרים בעלי עניין, גרסה חזקה או חלשה יותר של מקדם nmt1 (חוזק מקדם (ודליפה): nmt1 > nmt41 >-nmt81) או מקדמים מכוננים אחרים כגון שמרים adh1 או act118,33 ניתן לנסות להשיג רמות אופטימליות של ביטוי והרכבה של מבנים פולימריים. יתר על כן, בעת שימוש בפלסמידים אפיזומליים, שינויים במספר העתקים מתא לתא מהווים גם בעיות לביטוי גנים אחיד. כדי לעקוף בעיות אלה, פותחו לאחרונה מספר וקטורים שניתן לשלב בגנום שמרי הביקוע (SIVs עבור וקטורי אינטגרציה יציבים) הנושאים מקדמים בעוצמות שונות34. השימוש בווקטורים אלה עשוי להציע תוצאות אחידות וכמותיות יותר בהשוואה לווקטורים האפיזומליים המשמשים במחקר זה כאן. השימוש ב- SIV יכול למנוע את ההטרוגניות הגדולה ברמות הביטוי, הנתפסת כשונות בעוצמות הפלואורסצנטיות על פני התאים וצריכה להתאים יותר למסכים בעלי תפוקה גבוהה.

יתר על כן, תרופות כמו PC190723 פועלות לייצוב פולימרי FtsZ, וכתוצאה מכך הרכבה מוקדמת של חוטי FtsZ בהשוואה לתאים לא מטופלים. בעוד המסך מתאים לסינון תרופות המעכבות פילמור של חלבוני שלד ציטו-שלד חיידקיים, בגלל הערכה חזותית של פלואורסצנטיות מפוזרת בנקודת הקצה, סינון של תרופות המייצבות פולימרים FtsZ דורש אופטימיזציה נוספת של רמות ביטוי החלבונים והזמן הדרוש להשגת מספר מקסימלי של תאים בעלי פולימרים. לכן קריטי לקבל הערכה סבירה של הזמן הדרוש לביטוי חלבון כדי להשיג את הריכוז הקריטי הדרוש להרכבה ולהחליט על נקודת הסיום של הבדיקה בהתאם. במקרה של תרופות שעשויות לפעול להפחתת הריכוז הקריטי הדרוש לפילמור החלבון, בחירת נקודת הקצה תהיה בדרך כלל זמן, שבו אוכלוסייה ניכרת של תאים לא מטופלים מציגה פלואורסצנטיות מפוזרת, אך תרביות המטופלות בתרופות יציגו מכלולים פולימריים.

אחת המגבלות, שהיא גם שלב גוזל זמן של זרימת העבודה, היא הדרישה לזהות ולפלח תאים בודדים לצורך ניתוח תמונה כמותי. נכון לעכשיו, בתכנית המוצעת, זהו צעד ידני לזיהוי תאי שמרים בודדים ולהקצות את אזור העניין (ROIs) לכימות ההשפעה של התרופות. עם זאת, אנו צופים כי אלגוריתמי למידת המכונה שפותחו לאחרונה באמצעות ערכות אימון כגון אלה הניתנים ליישום ב- ilastik35 צריכים למזער את הצורך בהתערבות ידנית.

בעוד שהגישה שלנו כאן באמצעות פלטפורמת השמרים שימושית לזיהוי פגיעות ומולקולות קטנות פוטנציאליות המכוונות לשלד החיידק, בסופו של דבר יהיה צורך לבחון את פעילותם האנטיבקטריאלית באמצעות בדיקות ריכוז מעכב מינימלי סטנדרטיות ויעילות במודלים של בעלי חיים. עם זאת, האתגר הגדול ביותר לעלייה העולמית בעמידות מיקרוביאלית (AMR) עדיין טמון בחדירות הקרום החיצוני של חיידקי הגראם שלילי ובמשאבות השטף הרבות במינים רבים של חיידקים פתוגניים. יתר על כן, משאבות אפלוקס בשמרי ביקוע עשויות גם הן להוות בעיות דומות וייתכן שיידרשו ריכוזי תרופות גבוהים יותר לתהליך הסינון. לחילופין, זני שמרי ביקוע הרגישים יתר על המידה לתרופות (S. pombe MDR-supML), כתוצאה ממחיקת שבעת גני העמידות הרב-תרופתית, כולל ארבעה גנים טרנספורטרים וגורם שעתוק, עשויים לשמש כפונדקאים לסינון32,33. פיתוחים עתידיים בטכנולוגיות המשלבות את הגילוי האנטיבקטריאלי הממוקד ומטפלות בעמידות עקב תופעות כלליות כגון חדירות הממברנה יהיו נחוצים כדי להתמודד עם העמידות האנטי-מיקרוביאלית הגוברת.

גילויים

כל המחברים מצהירים כי אין ניגודי עניינים.

תודות

SMP, SR ו-AKS מכירים במלגות שהתקבלו מהמכון הלאומי לחינוך מדעי ומחקר, המחלקה לאנרגיה אטומית. RS מכירה בתמיכה במימון פנימי מהמחלקה לאנרגיה אטומית, ועבודה זו נתמכת באמצעות מענק מחקר ל-RS (BT/PR42977/MED/29/1603/2022) מהמחלקה לביוטכנולוגיה (DBT). המחברים גם מודים ל- V Badireenath Konkimalla על הערותיו, הצעותיו ודיוניו לאורך פיתוח הפרוטוקול.

חומרים

רשימת החומרים שנעשה בהם שימוש במאמר זה
שםחברהמספר קטלוגהערות
96 באר CC2 אופטי CVG סטרילי, עם מכסה. בלאקתרמו סיינטיפיק וסחר;
160376 צלחת 96בארות קורנינג  
A22 הידרוכלורידסיגמא SML0471מומס ב-DMSO
אדניןFormediumTMDOC0229-225 מ"ג/ליטר של מדיה 
Concanavalin A סיגמא C5275-5MG
DMSOסיגמא 
אדינבורג מינימלי בינוני (EMM אגר או מרק EMM)FormediumTMPMD0210ראה להלן להרכב
EDTA סיגמא EDS-500G
epMotion® 96 עם מחוון דו-מצביEppendorf5069000101
HistidineFormediumTMDOC0144225 מ"ג/ליטר מדיה 
מיקרוסקופ פלואורסצנטי הפוך Leica DMi8Leica Microsystemsהחברה הגרמנית
LeucineFormediumTMDOC0157225 מ"ג/ליטר של מדיה 
ליתיום אצטט סיגמא 517992-100G
PC190723Merck 344580מומס
בפוליאתילן גליקול DMSO (PEG)סיגמא 
ThiamineSigmaT4625מסנן מעוקר
Tris-HydrochlorideMP194855
UracilFormediumTMDOC0214225 מ"ג/ליטר של מדיה, יש לאחסן את התמיסה ב-36&dg; C
כן (תמצית שמרים + תוספי מזון) AgarFormediumTMPCM0410ראו להלן להרכב
כן (תמצית שמרים + תוספי מזון) BrothFormediumTMPCM0310ראו להלן את הרכב
<חזקים>שמרים (S. pombe) מדיה  תמצית שמרים <
><חזקה>תמצית שמרים + תוספי תזונה (כן)<
חזקה>הרכב<><חזקה>גרם/ליטר
5
דקסטרוז30
אגר17
אדנין0.05
L-היסטידין0.05
L-לאוצין0.05
L-ליזין הידרוכלוריד0.05
Uracil0.05
<חזק>אדינבורג מינימלי בינוני (EMM)
<חזק>הרכב<חזק>גרם/ליטר<חזק>ריכוז חזק
אשלגן מימן פתלט 314.7 מ"מ
Na2HPO4 2.215.5 מ"מ
NH4Cl 593.5 מ"מ
גלוקוז2% (w/v) או 20 גרם/ליטר  111 מ"ל
מלחים (מלאי x 50)20 מ"ל/ליטר (אנכי/נני)
ויטמינים (מלאי x 1000)1 מ"ל/ליטר (אנכי/נני)
מינרלים (מלאי x 10,000)0.1 מ"ל/ליטר (אנכי/נני)
<חזק>מלחים x 50  52.5 גרם/ליטר MgCl2.6H20 (0.26 מ') 52.50.26 מ'
0.735 מ"ג/ליטר CaCl2.2H20 (4.99 מ"מ) 0.0007354.99 מ"מ
50 גרם/ליטר KCl (0.67 מ') 500.67 M
2 גרם/ליטר Na2SO4 (14.l mM)214.1
mM<חזק>ויטמינים x 1000  1 גרם/ליטר חומצה פנטותנית 14.20 מ"מ
10 גרם/ליטר חומצה ניקוטינית 1081.2 מ"מ
10 גרם/ליטר אינוזיטול 1055.5 מ"מ
10 מ"ג/ליטר ביוטין 0.0140.8 ומיקרו; M
<חזק>מינרלים x 10,000  חומצה חזקה>בורית580.9 מ"מ
MnSO4   423.7 מ"מ
ZnSO4.7H2O413.9 מ"מ
FeCl2.6H2O   27.40 מ"מ
חומצה מוליבדית 0.42.47 מ"מ
KI 16.02 מ"מ
CuSO4.5H2O 0.41.60 מ"מ
חומצת לימון 1047.6 מ"מ
<חזק>זנים/ פלסמידים
<חזקים>זנים><חזקים>תיאור<חזק>התייחסות
CCD190Escherichia coli DH10β  Invitrogen
CCDY4 MBY3532; CCDY346/pREP42- GFP-EcMreBSrinivasan et al., 2007
CCDY340CCDY346/pREP42- SaFtsZ-GFPSharma et al., 2023
CCDY346MBY192; Schizosaccharomyces pombe [ura4-D18, leu1-32, h-]Dr. Mithilesh Mishra (DBS, TIFR)
Plasmids
pCCD3pREP42-GFP-EcMreBSrinivasan et al., 2007
pCCD713pREP42-SaFtsZ-GFPשארמה ואחרים, 2023
CLS3370317275202398

מקורות

  1. Antimicrobial Resistance Collaborators. Global burden of bacterial antimicrobial resistance in 2019: a systematic analysis. Lancet. 399 (10325), 629-655 (2022).
  2. Haselbeck, R., et al. Comprehensive essential gene identification as a platform for novel anti-infective drug discovery. Curr Pharma Des. 8 (13), 1155-1172 (2002).
  3. Wang, J., et al. Discovery of a small molecule that inhibits cell division by blocking FtsZ, a novel therapeutic target of antibiotics. J Biol Chem. 278 (45), 44424-44428 (2003).
  4. Sanchez, S., Demain, A. L. Antibiotics: current innovations and future trends. , Caister Academic Press. (2015).
  5. Vollmer, W. The prokaryotic cytoskeleton: a putative target for inhibitors and antibiotics. Appl Microbiol Biotechnol. 73 (1), 37-47 (2006).
  6. Vollmer, W. Targeting the bacterial Z-ring. Chem Biol. 15 (2), 93-94 (2008).
  7. Kusuma, K. D., Payne, M., Ung, A. T., Bottomley, A. L., Harry, E. J. FtsZ as an antibacterial target: status and guidelines for progressing this avenue. ACS Infect Dis. 5 (8), 1279-1294 (2019).
  8. Kaul, M., Zhang, Y., Parhi, A. K., Lavoie, E. J., Pilch, D. S. Inhibition of RND-type efflux pumps confers the FtsZ-directed prodrug TXY436 with activity against Gram-negative bacteria. Biochem Pharmacol. 89 (3), 321-328 (2014).
  9. Casiraghi, A., Suigo, L., Valoti, E., Straniero, V. Targeting bacterial cell division: A binding site-centered approach to the most promising inhibitors of the essential protein FtsZ. Antibiotics. 9 (2), 69(2020).
  10. Piddock, L. J. V. Multidrug-resistance efflux pumps - not just for resistance. Nat Rev. Microbiol. 4 (8), 629-636 (2006).
  11. Käufer, N. F., Simanis, V., Nurse, P. Fission yeast Schizosaccharomyces pombe correctly excises a mammalian RNA transcript intervening sequence. Nature. 318 (6041), 78-80 (1985).
  12. Vyas, A., Freitas, A. V., Ralston, Z. A., Tang, Z. Fission yeast Schizosaccharomyces pombe: A unicellular micromammal model organism. Curr Prot. 1 (6), e151(2021).
  13. Edwards, D. H., Thomaides, H. B., Errington, J. Promiscuous targeting of Bacillus subtilis cell division protein DivIVA to division sites in Escherichia coli and fission yeast. EMBO J. 19 (11), 2719-2727 (2000).
  14. Srinivasan, R., Mishra, M., Murata-Hori, M., Balasubramanian, M. K. Filament formation of the Escherichia coli actin-related protein, MreB, in fission yeast. Curr Biol. 17 (3), 266-272 (2007).
  15. Srinivasan, R., Mishra, M., Wu, L., Yin, Z., Balasubramanian, M. K. The bacterial cell division protein FtsZ assembles into cytoplasmic rings in fission yeast. Gene Dev. 22 (13), 1741-1746 (2008).
  16. TerBush, A. D., Osteryoung, K. W. Distinct functions of chloroplast FtsZ1 and FtsZ2 in Z-ring structure and remodeling. J Cell Biol. 199 (4), 623-637 (2012).
  17. Sharma, A. K., et al. A mechanism of salt bridge-mediated resistance to FtsZ inhibitor PC190723 revealed by a cell-based screen. Mol Biol Cell. 34 (3), ar16(2023).
  18. Basi, G., Schmid, E., Maundrell, K. TATA box mutations in the Schizosaccharomyces pombe nmt1 promoter affect transcription efficiency but not the transcription start point or thiamine repressibility. Gene. 123 (1), 131-136 (1993).
  19. Moreno, M. B., Durán, A., Carlos Ribas, J. A family of multifunctional thiamine-repressible expression vectors for fission yeast. Yeast. 16 (9), 861-872 (2000).
  20. Green, M. R., Sambrook, J. Caring for Escherichia coli. Cold Spring Harb Protoc. , (2018).
  21. Green, M. R., Sambrook, J. Isolation and quantification of DNA. Cold Spring Harb Protoc. , (2018).
  22. Bähler, J., et al. Heterologous modules for efficient and versatile PCR-based gene targeting in Schizosaccharomyces pombe. Yeast. 14 (10), 943-951 (1998).
  23. Pande, V., Mitra, N., Bagde, S. R., Srinivasan, R., Gayathri, P. Filament organization of the bacterial actin MreB is dependent on the nucleotide state. J Cell Biol. 221 (5), e202106092(2022).
  24. Schindelin, J., et al. Fiji: an open-source platform for biological-image analysis. Nat Meth. 9 (7), 676-682 (2012).
  25. Zhang, L. Machine learning for enumeration of cell colony forming units. Vis Comput Ind Biomed Art. 5 (1), 26(2022).
  26. Moen, E., et al. Deep learning for cellular image analysis. Nat Meth. 16 (12), 1233-1246 (2019).
  27. Higaki, T. Quantitative evaluation of cytoskeletal organizations by microscopic image analysis. Plant Morphol. 29 (1), 15-21 (2017).
  28. Henty-Ridilla, J. L., Li, J., Day, B., Staiger, C. J. ACTIN DEPOLYMERIZING FACTOR4 regulates actin dynamics during innate immune signaling in Arabidopsis. Plant Cell. 26 (1), 340-352 (2014).
  29. Boudaoud, A., et al. an ImageJ plug-in to quantify fibrillar structures in raw microscopy images. Nat Protoc. 9 (2), 457-463 (2014).
  30. Butler, M. S., Paterson, D. L. Antibiotics in the clinical pipeline in October 2019. J Antibio. 73 (6), 329-364 (2019).
  31. Andreu, J. M., Huecas, S., Araújo-Bazán, L., Vázquez-Villa, H., Martín-Fontecha, M. The search for antibacterial inhibitors targeting cell division protein ftsz at its nucleotide and allosteric binding sites. Biomedicines. 10 (8), 1825(2022).
  32. Vještica, A., et al. A toolbox of stable integration vectors in the fission yeast Schizosaccharomyces pombe. J Cell Sci. 133 (1), jcs240754(2020).
  33. Berg, S., et al. ilastik: interactive machine learning for (bio)image analysis. Nat Meth. 16 (12), 1226-1232 (2019).
  34. Shaevitz, J. W., Gitai, Z. The structure and function of bacterial actin homologs. Cold Spring Harb Pers Biol. 2 (9), a000364(2010).
  35. Hoffman, C. S., Wood, V., Fantes, P. A. An ancient yeast for young geneticists: A primer on the Schizosaccharomyces pombe model system. Genetics. 201 (2), 403-423 (2015).
  36. Aoi, Y., et al. Dissecting the first and the second meiotic divisions using a marker-less drug-hypersensitive fission yeast. Cell Cycle. 13 (8), 1327-1334 (2014).
  37. Zhang, J., et al. Improving drug sensitivity of HIV-1 protease inhibitors by restriction of cellular efflux system in a fission yeast model. Pathogens. 11 (7), 804(2022).

הדפסות חוזרות והרשאות

תגיות

סריקות של שמרים נסדקיםגילוי תרופות אנטיבקטריאליותפולימריזציית FtsZפולימריזציית MreBבדיקה מבוססת תאסריקה בקיבולת גבוההמיקרוסקופיה פלואורסצנטיתפלטת 96 בארותמערכת ביטוי אוקריוטית
שמרי ביקוע כפלטפורמה למסכי תרופות אנטיבקטריאליים המכוונים לחלבוני שלד ציטו-בקטריאלי
צרו קשר
המליצו לספרייה

פרטיות

תנאי שימוש

מדיניות

זכויות יוצרים © 2026 MyJoVE Corporation. כל הזכויות שמורות.