מאמר שיטה

הכנה וניתוח של שקופיות היסטולוגיות של גלגלי עיניים של חולדה ועכבר להערכת הרשתית

4K צפיות

⸱

DOI:

10.3791/66663

⸱

23 באוגוסט 2024

 ,  ,  ,  ,  , 
1Chair and Department of Experimental and Clinical Physiology, Laboratory of Centre for Preclinical Research, Medical University of Warsaw, 2Department of Pathology, Medical University of Warsaw

* These authors contributed equally

במאמר זה

סיכום

כתב יד זה מציג פרוטוקול להכנה היסטולוגית של שקופיות מגלגלי עיניים של מכרסמים. בשיטה המוצעת, ניתן לדמיין בקלות את הרשתית הפנימית ולהעריך אותה תחת מיקרוסקופ אור. ההליך מוצג עבור גלגלי העיניים של עכברים וחולדות.

תקציר

גלגל עין מכרסם הוא כלי רב עוצמה לחקר הפתומנגנונים של מחלות עיניים רבות, כגון גלאוקומה, רטינופתיה יתר לחץ דם, ועוד רבים. ניסויים פרה-קליניים מאפשרים לחוקרים לבחון את יעילותן של תרופות חדשות, לפתח שיטות טיפול חדשות או לחפש פתומנגנונים חדשים המעורבים בהתפרצות המחלה או בהתקדמותה. בדיקה היסטולוגית מספקת מידע רב הדרוש כדי להעריך את ההשפעות של הניסויים שנערכו ויכולה לחשוף ניוון, שיפוץ רקמות, חדירה ופתולוגיות רבות אחרות. במחקר קליני, אין כמעט סיכוי לקבל רקמת עין המתאימה לבדיקה היסטולוגית, ולכן החוקרים צריכים לנצל את ההזדמנות שמציעה בדיקת גלגלי עיניים ממכרסמים. כתב יד זה מציג פרוטוקול להכנה היסטולוגית של קטעי גלגלי עיניים של מכרסמים. ההליך מוצג עבור גלגלי עיניים של עכברים וחולדות ויש לו את השלבים הבאים: (i) קצירת גלגל העין, (ii) שימור גלגל העין לניתוח נוסף, (iii) עיבוד הרקמה בפרפין, (iv) הכנת שקופיות, (v) צביעה עם hematoxylin ו eosin, (vi) הערכת הרקמה תחת מיקרוסקופ אור. עם השיטה המוצעת, הרשתית ניתן לדמיין בקלות ולהעריך בפירוט.

מבוא

גלגל העין הוא מבנה דמוי גלובוס המהווה את איבר הראייה. ניתן לחלק את החלק הפנימי של גלגל העין לשני מקטעים: החלק הקדמי, הכולל את הקרנית, הקשתית, הגוף הריסי, העדשה, החדר הקדמי והחדר האחורי, והמקטע האחורי, הכולל את גוף הזגוגית, הרשתית, כורואיד, סקלרה, ראש עצב הראייה. החדר הקדמי ממוקם בין הקרנית לבין הקשתית 1,2. הקשתית היא מבנה מעגלי עם פתח במרכז שנקרא אישון. בצומת הקרנית והקשתית, יש את זווית הניקוז, שם מערכת מיוחדת של trabeculae מנקזת את ההומור המימי מגלגל העין למערכת הוורידית. החדר האחורי קשור בקשתית, בגוף הריסי ובעדשה, כמו גם ברצועות המתח המחזיקות את העדשה במקומה. מאחורי העדשה נמצא גוף הזגוגית, שהוא המבנה הגדול ביותר של גלגל העין. גוף הזגוגית נצמד לרשתית ומייצב את מיקומה. הרשתית מוקפת בכורואיד ובסקלרה1. האנטומיה של גלגל העין מסוכמת באיור 1.

דופן גלגל העין מהווה שלוש שכבות. השכבה החיצונית ביותר היא הסקלרה, המגנה על גלגל העין מפני פציעה ושומרת על צורתו. בקוטב הקדמי של גלגל העין, לובן העין הופך לקרנית שקופה. מתחת לסקלרה, קיים מבנה כלי דם הנקרא uvea, שתפקידו העיקרי הוא להזין את מבני העין. האובה יוצרת את הכורויד, ובתוך הקוטב הקדמי, הגוף הריסי והקשתית1. השכבה הפנימית ביותר היא הרשתית, שהיא מבנה מיוחד מאוד של העין, המורכב מנוירונים, תאי גלייה ותאי אפיתל פיגמנטיים. תאי העצב ברשתית כוללים את תאי קולטני האור (מוטות ומדוכים), תאים אופקיים, תאים דו-קוטביים, תאים אמקריניים ותאי גנגליון רשתית (RGCs). תאים אלה מאורגנים בשכבות מורכבות, ותפקידם לקבל ולעבד גירויי אור 2,3. תאי הגליה של הרשתית מרכיבים את תאי מילר, אסטרוציטים ומיקרוגליה, הנמצאים בכל שכבות הרשתית. התפקודים הרבים של תאי גליה כוללים תזונה של נוירונים, תמיכה במחסום הדם-רשתית, תמיכה מבנית של תאי עצב לשמירה על המבנה השכבתי של הרשתית, ויסות חילוף החומרים של נוירונים, הפרשת חלבונים פעילים ביולוגית המווסתים תפקוד, גדילה והישרדות של נוירונים, וויסות התהליכים האימונולוגיים בתוך הרשתית4. תאי אפיתל פיגמנט מהווים את השכבה החיצונית ביותר של הרשתית ופועלים כמחסום בין הכורואיד לבין הפוטורצפטורים. תאים אלה מווסתים את ההובלה הדו-כיוונית של מוצרי פסולת וחומרי מזון וגם מגנים על הרשתית מפני נזק מוגזם הנגרם על ידי אור על ידי ספיגת אנרגיית אור ונטרול מיני חמצן תגובתי שנוצר מאור5.

ניתן לחלק את הרשתית לעשר שכבות: (i) אפיתל פיגמנט הרשתית, (ii) שכבת מקטע קולטני האור (מוטות ומדוכים), (iii) קרום מגביל חיצוני (ELM), (iv) שכבה גרעינית חיצונית (ONL), (v) שכבת פרספקס חיצונית (OPL), (vi) שכבה גרעינית פנימית (INL), (vii) שכבת פרספקס פנימית (IPL), (viii) שכבת תאי גנגליון (GCL), (ix) שכבת סיבי עצב רשתית (RNFL), ו-(x) קרום מגביל פנימי (ILM)2. שכבות הגרעין של הרשתית כוללות את ONL, INL ו-GCL, בעוד שהשכבות עם קשרים סינפטיים בין תאים כוללות את OPL ו-IPL6. גרעיני המוטות והמדוכים יוצרים את ה-ONL, והאקסונים שלהם מתרחבים לתוך ה-OPL, שם הם מתחברים לדנדריטים של תאים דו-קוטביים ואופקיים. בתוך ה-INL נמצאים גרעיני התאים האופקיים, הדו-קוטביים והאמקריניים. בתוך IPL, טרמינלים אקסונים של תאים דו קוטביים ו amacrine סינפסה עם דנדריטים של RGCs. בתוך GCL, RGCs מהווים את רוב גופי התא, אבל גם כמה תאים amacrine נקע ניתן למצוא שם. האקסונים של RGCs יוצרים את RNFL, ועוד - עצב הראייה 7,8,9.

מחלות עיניים רבות, כגון הפרעות נוירודגנרטיביות ברשתית, מובילות לעיוורון בלתי הפיך וחשוך מרפא10. ראייה נחשבת לאחד החושים החשובים ביותר11, ועיוורון קבוע מפחית משמעותית את איכות החיים של המטופל. כדי לקדם את ההבנה של מנגנוני הפתו-מנגנונים של מחלות רבות, מחקר פרה-קליני באמצעות תרביות תאים או מודלים של בעלי חיים מתבצע באופן נרחב. מחקרים פרה-קליניים המשתמשים בחיות ניסוי מספקים הזדמנות להעריך את הפתומנגנונים העומדים בבסיס מחלות עיניים ולפתח אסטרטגיות טיפוליות חדשות. מחלות עיניים יכולות להיות מודלות הן בבעלי חיים גדולים (קופים, פרות, כלבים וחתולים) והן בחיות קטנות (ארנבות, חולדות, עכברים ודגי זברה). השימוש בבעלי חיים גדולים יותר מאפשר גישה טובה יותר לעין בשל גודלה. ניסויים המבוצעים עם מכרסמים, לעומת זאת, בשל הרבייה המהירה יחסית שלהם, מאפשרים רבייה של זנים גזעיים המאופיינים ברגישות למחלות מסוימות12,13.

במודלים של בעלי חיים מתאפשרת אינקולציה, המאפשרת ביצוע בדיקה היסטופתולוגית מפורטת של גלגל העין, תוך הערכת פתולוגיות קלות המופיעות במבנים מסוימים של העין במהלך התפתחות המחלה - בדיקה שניתן לבצע לעיתים רחוקות מאוד בקרב בני אדם. הערכה היסטופתולוגית היא כלי בעל ערך רב בעת חקר הפתומנגנונים של הפרעות עיניות. בספרות שפורסמה, תיאורי המתודולוגיה לבדיקה היסטולוגית של גלגלי העיניים מוגבלים מאוד, ומדריכים שלב אחר שלב חסרים, מה שמקשה על מתחילים לשחזר. מחקר זה נועד לספק שיטה פשוטה ותמציתית להכנת שקופיות היסטולוגיות והערכת הרשתית של חולדה ועכבר.

פרוטוקול

המחקר בוצע בהתאם להנחיות המוסדיים. גלגלי העיניים ששימשו במחקר זה התקבלו מבעלי חיים שנכללו בניסוי שנערך על בסיס אישור המחקר מספר WAW2/122/2020 שהונפק על ידי ועדת האתיקההמקומית השנייה באוניברסיטת ורשה למדעי החיים בוורשה, פולין. הפרוטוקול שלנו פותח על ידי בדיקת עכברים בגילאי 11 ו-44 שבועות וחולדות בגילאי 6, 12 ו-16 שבועות.

1. הכנת גלגלי עיניים של עכבר

הערה: פרוטוקול זה מציג את השיטה להכנת מקטעים של גלגלי עיניים של עכברים ופותח באמצעות גלגלי עיניים שנקטפו מ: נקבות עכברי C57Bl/6 בנות 11 שבועות (משקל ממוצע 21 גרם), נקבות עכברי C57Bl/6 בנות 44 שבועות (משקל ממוצע 25 גרם), נקבות DBA/2 עכברים בנות 11 שבועות (משקל ממוצע 21.5 גרם), ונקבות DBA/2 עכברים בגילאי 44 שבועות עם גלאוקומה (משקל ממוצע 25 גרם).

  1. חינוך
    1. השתמש במלקחיים קטנים כדי לפתוח את העפעפיים. לחץ על העפעפיים כדי שגלגל העין יצנח.
    2. נתחו את גלגל העין מהשקע על ידי חיתוך הרקמה שמאחורי גלגל העין בעזרת מספריים קטנים וחדים. לאחר הסרת גלגל העין מהמסלול, חתכו את רקמת החיבור הבולטת ואת השרירים הפריוקולריים.
      1. סמן את גלגלי העיניים להתמצאות טובה יותר, למשל, על ידי קשירת תפר קטן על גדם הגיד של שריר הרקטוס הלטרלי של גלגל העין כדי לסמן את הצד הטמפורלי של גלגל העין.
  2. קיבוע רקמות
    1. הניחו את גלגל העין המושמע בצינורות מיקרוצנטריפוגות בנפח 1.5 מ"ל והניחו לו לנוח בתמיסה של 4% של פרפורמלדהיד (PFA) המומס במי מלח חיץ פוספט (PBS) למשך 24 שעות.
    2. לאחר מכן, לטפל גלגל העין במשך 24 שעות בתמיסה 10% של סוכרוז, ולאחר מכן להסיר ולהניח אותו במשך 24 שעות בתמיסה 20% של סוכרוז, ולבסוף, להסיר ומניחים במשך 24 שעות בתמיסה 30% של סוכרוז.
      הערה: לאורך כל התהליך, שמור על גלגל העין בטמפרטורה נמוכה של 4 ° C. יש להימנע מנקבי מחטים לחדירת סוכרוז כדי למזער את הסיכון לנזק לגלגל העין.
  3. הקפאת רקמות ואחסונן
    1. הסר את גלגל העין מתמיסת הסוכרוז וייבש אותו על ידי טבילה קלה במגבת נייר.
    2. מניחים את גלגל העין בצינור מיקרוצנטריפוגה נקי של 1.5 מ"ל ומקפיאים ב - 80 מעלות צלזיוס לעיבוד עתידי.
      הערה: אם הוא מאוחסן ב- 80°C, גלגל העין יכול להישאר בר קיימא עד 12 חודשים עד לעיבוד עתידי.
  4. הכנת שקופיות
    1. הפשירו את גלגל העין בטמפרטורת החדר. העבירו אותו מצינור המיקרוצנטריפוגה לקסטה ושטפו תחת מים זורמים במשך 20 דקות כדי לשטוף את הסוכרוז.
    2. יש לייבש את גלגל העין על ידי הכנסתו לתוכו, ולאחר מכן הוצאתו מהתמיסות הבאות תחת מכסה אדים: 70% תמיסה של אלכוהול אתילי (EtOH) למשך 10 דקות, 80% תמיסה של EtOH למשך 10 דקות, 96% תמיסה של EtOH למשך 10 דקות, 99.9% תמיסה של EtOH למשך 10 דקות ואצטון למשך 5 דקות.
    3. נקה את גלגל העין על ידי הנחתו בקסילן למשך 5 דקות מתחת למכסה אדים.
    4. ממיסים את הפרפין על ידי הכנסת פרפין מוצק לתוך והכנסתו לאינקובטור מעבדה המוגדר לטמפרטורה גבוהה מטמפרטורת ההתכה שצוינה על ידי יצרן הפרפין (טמפרטורת ההתכה של פרפין היא בין 46 ° C ל 68 ° C). לאחר הפרפין נמס לחלוטין (הזמן תלוי בכמות הפרפין המשומש), להעביר את גלגל העין לתוך הכד עם פרפין ולשמור חם באינקובטור במשך 1 שעות. במהלך 1 שעה של חדירת פרפין לתוך הרקמה, מערבבים את הפרפין כל 10 - 15 דקות.
      הערה: בשלב זה ניתן להשתמש במעבד רקמות המאפשר חדירת פרפין תוך כדי ערבוב התמיסה בשלב זה.
    5. הטמע את גלגל העין בבלוק פרפין כמתואר להלן.
      1. פתח את הקלטת והסר את הכיסוי העליון. בחרו תבנית מתכת ושפכו כמות קטנה של פרפין כדי לכסות את תחתית התבנית. מוציאים את גלגל העין מהקלטת בעזרת מלקחיים ומניחים אותו על הפרפין בתבנית. הניחו את גלגל העין על צידו כדי להבטיח חיתוך במישור הקשת.
        הערה: הנחת גלגל העין על צידו (עם הקוטב הקדמי לצד אחד והקוטב האחורי לצד השני) תאפשר חיתוך במישור הקשת. בדרך זו יתקבלו חתכים דרך הקרנית, הקשתית, הגוף הרירי, האישון, הפריפריה והרשתית המרכזית.
      2. מצננים בקצרה את התבנית על צלחת קירור המוגדרת ל - 15 מעלות צלזיוס כדי שהפרפין יתמצק מעט כדי לעגן את הרקמה למקומה. בזהירות לכסות את הרקמה עם פרפין ואת תחתית קלטת כדי ליצור בלוק. הניחו את הבלוק על צלחת קירור כדי להתמצק באופן מלא. לאחר מכן, הסירו את הבלוק מתבנית המתכת והחזירו את קוביות הפרפין לצלחת הקירור למשך 15 דקות לפחות כדי להתקרר לפני החיתוך.
    6. אבטחו בלוק פרפין במיקרוטום. הגדר את microtome כדי לחתוך את הפרפין עודף מן הבלוק (אנחנו להגדיר אותו לחתוך 15 מיקרומטר) ולחתוך עד למרכז גלגל העין. שנו את הגדרות המיקרוטום כדי לחתוך מקטעים דקים יותר (הגדרנו אותו לחתוך 3.5 מיקרומטר) והניחו את המקטע על שקופית. אם אתם משתמשים במיקרוטומה עם אמבט מים צמוד, הסירו את עודפי המים מהמגלשה בעזרת רקמה לחה.
      הערה: המטרה היא להשיג לפחות 3 חתכים דרך האישון. ככל שהחוקר פחות מנוסה, כך יש להשיג יותר קטעים כדי להבטיח חלוקה ברמת התלמיד. מקם כמה מקטעים בשקופית אחת. כמו כן, עבור חוקרים פחות מנוסים, לחתוך את הרקמה עבה יותר, למשל, למקטעים 4 מיקרומטר או 5 מיקרומטר עובי. השימוש במיקרוטום עם אמבט מים צמוד הופך את תהליך העברת חלקי הרקמה למגלשות להרבה יותר קל בהשוואה לשימוש במיקרוטומים ללא אמבטיות מים. נקודה נוספת שראוי לציין היא כי העדשה עשויה להיות קשה לחתוך דרך. כדי למזער את הסיכון לנזק לרקמות על ידי העדשה הפריכה, השתמשו רק בלהבי מיקרוטום חדים המיועדים לחתוך רקמות קשות. שקול להשתמש בלהב אחד לחיתוך ואחר לחיתוך חלקים כדי למזער את הקהות הלהב.
    7. הכניסו את המגלשה לחממת מעבדה לטמפרטורה של 56°C למשך 30 דקות.
    8. הסר את השקופית מהאינקובטור והתחל להכתים אותה עם המטוקסילין ואאוזין (H&E) באופן ידני על ידי הצבה והסרה ברצף של השקופית אל ומהתמיסות הבאות. התחילו עם 7 דקות קסילן, 5 דקות קסילן (עוד עם תמיסה נקייה), ו-5 דקות קסילן (עוד עם תמיסה נקייה). לאחר מכן עם 2 דקות 96% EtOH, 1 דקות 96% EtOH (עוד עם תמיסה נקייה), 1 דקות 96% EtOH (עוד עם תמיסה נקייה).
    9. לשטוף 5 דקות מים זורמים, ואז 2 דקות hematoxylin של מאייר, 2 דקות hematoxylin של Mayer (עוד עם פתרון נקי), 5 דקות מים זורמים, 5 דקות מים זורמים (אחר, נקי).
    10. הוסף 1% אאוסין למשך 2 דקות, ואחריו 1 דקות 96% EtOH, 30 s 96% EtOH (עוד עם תמיסה נקייה), 30 s 96% EtOH (עוד עם תמיסה נקייה), 2 דקות קסילן, 1 דקות קסילן (עוד עם תמיסה נקייה), 2 דקות קסילן (עוד עם תמיסה נקייה).
      הערה: לחלופין, השתמש במכתים אוטומטי של שקופיות.
    11. אטם את המגלשה באמצעות אוטם שקופיות אוטומטי. השקופית מוכנה לאחסון והערכה תחת מיקרוסקופ אור.
      הערה: לחלופין, בצע איטום שקופיות באופן ידני על ידי הנחת שכבה דקה של תושבת פוליסטירן על הרקמה המוכתמת וכיסויה בכיסוי זכוכית.
      אזהרה: צעדים הכוללים PFA, EtOH, אצטון וקסילן צריכים להתבצע תחת מכסה אדים במעבדה.

2. הכנת קטע גלגלי עיניים של חולדות והרכבה של שקופיות

הערה: פרוטוקול זה מציג את שיטת הכנת המקטעים של גלגלי העיניים של חולדות ופותח באמצעות גלגלי העיניים שנקטפו מ: חולדות SHR זכרים בני 6 שבועות (משקל ממוצע 115.5 גרם), חולדות SHR זכרים בני 12 שבועות עם יתר לחץ דם עורקי (משקל ממוצע 262.5 גרם), חולדות WKY זכרים בני 6 שבועות (משקל ממוצע 143.5 גרם), חולדות WKY זכרים בני 12 שבועות (משקל ממוצע 265 גרם), חולדות לואיס זכרים בני 12 שבועות (משקל ממוצע 310 גרם), וחולדות לואיס זכרים בני 16 שבועות עם סוכרת מושרית (משקל ממוצע 259 גרם).

  1. חינוך
    1. השתמש במלקחיים קטנים כדי לפתוח את העפעפיים. לחץ על העפעפיים כדי לצנוח את גלגל העין.
    2. נתחו את גלגל העין מהשקע על ידי חיתוך הרקמה שמאחורי גלגל העין בעזרת מספריים קטנים וחדים.
      הערה: סמן את גלגלי העיניים להתמצאות טובה יותר, לדוגמה, על ידי קשירת תפר קטן על גדם הגיד של שריר הרקטוס הלטרלי של גלגל העין כדי לסמן את הצד הרקתי של גלגל העין.
  2. קיבוע רקמות
    1. הניחו את גלגל העין בצינור מיקרוצנטריפוגה בנפח 1.5 מ"ל והניחו לו לנוח בתמיסה של 4% של פרפורמלדהיד (PFA) המומס במי מלח חיץ פוספט (PBS) למשך 24 שעות.
    2. לאחר מכן, לטפל גלגל העין במשך 24 שעות בתמיסה 10% של סוכרוז, ולאחר מכן להסיר ומניחים אותו במשך 24 שעות בתמיסה 20% של סוכרוז, ולבסוף להסיר ולהניח אותו במשך 24 שעות בתמיסה 30% של סוכרוז.
      הערה: לאורך כל התהליך, שמור על גלגל העין בטמפרטורה נמוכה של 4 ° C. יש להימנע מנקבי מחטים לחדירת סוכרוז כדי למזער את הסיכון לנזק לגלגל העין.
  3. הקפאת רקמות ואחסונן
    1. הסר את גלגל העין מתמיסת הסוכרוז וייבש אותו על ידי טבילה קלה במגבת נייר.
    2. הניחו את גלגל העין בצינור מיקרוצנטריפוגה נקי של 1.5 מ"ל והקפיאו בטמפרטורה של -80°C לעיבוד עתידי.
      הערה: אם הוא מאוחסן בטמפרטורה של -80°C, גלגל העין יכול להישאר בר קיימא עד 12 חודשים עד לעיבוד עתידי.
  4. הכנת שקופיות
    1. מוציאים את גלגל העין מהמקפיא ומצינור המיקרוצנטריפוגה. חותכים את גלגל העין לשניים לאורך מישור הקשת בעזרת אזמל חד. הסר והשלך את העדשה.
      הערה: שלב זה הוא הקל ביותר לביצוע על גלגל עין קפוא, שנלקח טרי מהמקפיא. במהלך חיתוך גלגל העין, העדשה עלולה לפגוע ברקמה שמסביב. כדי למזער את הסיכון לנזק, השתמש באזמל חד מאוד והישאר זהיר.
    2. הפשירו את גלגל העין בטמפרטורת החדר. מעבירים את שני החצאים לקסטה ושוטפים תחת מים זורמים במשך 20 דקות כדי לשטוף את הסוכרוז.
    3. יש לייבש את גלגל העין על ידי הכנסתו לתמיסות הבאות ולאחר מכן הוצאתו מתחת למכסה אדים: 70% תמיסה של אתיל אלכוהול (EtOH) למשך 15 דקות, 80% תמיסה של EtOH למשך 15 דקות, 96% תמיסה של EtOH למשך 15 דקות, 99.9% תמיסה של EtOH למשך 15 דקות ואצטון למשך 7 דקות.
    4. נקה את גלגל העין על ידי הנחתו בקסילן למשך 7 דקות מתחת למכסה אדים.
    5. ממיסים את הפרפין על ידי הכנסת פרפין מוצק לתוך והכנסתו לאינקובטור מעבדה המוגדר לטמפרטורה גבוהה מטמפרטורת ההתכה שצוינה על ידי יצרן הפרפין (טמפרטורת ההתכה של פרפין היא בין 46 ° C ל 68 ° C). לאחר הפרפין נמס לחלוטין (הזמן תלוי בכמות הפרפין המשמש), להעביר את גלגל העין לתוך הכד עם פרפין ולשמור חם באינקובטור במשך 1 שעות. במהלך 1 שעה של חדירת פרפין לתוך הרקמה, מערבבים את הפרפין כל 10 - 15 דקות.
      הערה: בשלב זה ניתן להשתמש במעבד רקמות המאפשר חדירת פרפין תוך כדי ערבוב התמיסה בשלב זה.
    6. הטמע את גלגל העין בבלוק פרפין כמתואר להלן.
      1. פתח את הקלטת והסר את הכיסוי העליון. בחרו תבנית מתכת ושפכו כמות קטנה של פרפין כדי לכסות את תחתית התבנית. מוציאים את גלגל העין מהקלטת בעזרת מלקחיים ומניחים אותו על הפרפין בתבנית. מניחים חצי גלגל עין אחד עם החלק התחתון של הכוס למעלה, ואת השני - למטה.
        הערה: הנחת חצאי גלגל העין כאשר חצי אחד עם החלק התחתון של הכוס למעלה, והשני - למטה יאפשר חיתוך רקמות במישור הקשת. בדרך זו יתקבלו חתכים דרך הקרנית, הקשתית, הגוף הרירי, האישון, הפריפריה והרשתית המרכזית.
      2. מצננים בקצרה את התבנית על צלחת קירור מוגדרת ל - 15 מעלות צלזיוס כדי שהפרפין יתמצק מעט ויעגן את גלגל העין למקומו. בזהירות לכסות את גלגל העין עם פרפין ואת תחתית קלטת כדי ליצור בלוק. הניחו את הבלוק על צלחת קירור כדי להתמצק באופן מלא. לאחר מכן, הסירו את הבלוק מתבנית המתכת והחזירו את קוביות הפרפין לצלחת הקירור למשך 15 דקות לפחות כדי להתקרר לפני החיתוך.
    7. אבטחו בלוק פרפין במיקרוטום. הגדר את microtome כדי לחתוך את הפרפין עודף מן הבלוק (אנחנו להגדיר אותו לחתוך 15 מיקרומטר) ולחתוך עד שאתה מגיע למרכז גלגל העין. שנו את הגדרות המיקרוטום כדי לחתוך מקטעים דקים יותר (הגדרנו אותו לחתוך 3.5 מיקרומטר) והניחו את המקטע על שקופית. אם אתה משתמש במיקרוטום עם אמבט מים סמוך, הסר את עודפי המים מהמגלשה עם רקמה לחה.
      הערה: המטרה היא להשיג לפחות 3 חתכים דרך האישון. ככל שהחוקר פחות מנוסה, כך יש להשיג יותר קטעים כדי להבטיח חלוקה ברמת התלמיד. מקם כמה מקטעים בשקופית אחת. כמו כן, עבור חוקרים פחות מנוסים, לחתוך את הרקמה עבה יותר, למשל, למקטעים 4 מיקרומטר או 5 מיקרומטר עובי. השימוש במיקרוטום עם אמבט מים צמוד הופך את תהליך העברת חלקי הרקמה למגלשות להרבה יותר קל בהשוואה לשימוש במיקרוטומים ללא אמבטיות מים.
    8. הסר את השקופית והתחל להכתים עם המטוקסילין ואאוזין (H&E) באופן ידני על-ידי הצבה והסרה ברצף של השקופית אל הפתרונות הבאים ומהם. התחילו עם 7 דקות קסילן, 5 דקות קסילן (עוד עם תמיסה נקייה), ו-5 דקות קסילן (עוד עם תמיסה נקייה). לאחר מכן עם 2 דקות 96% EtOH, 1 דקות 96% EtOH (עוד עם תמיסה נקייה), 1 דקות 96% EtOH (עוד עם תמיסה נקייה).
    9. לשטוף 5 דקות מים זורמים, ואז 2 דקות hematoxylin של מאייר, 2 דקות hematoxylin של Mayer (עוד עם פתרון נקי), 5 דקות מים זורמים, 5 דקות מים זורמים (אחר, נקי).
    10. הוסף 1% אאוסין למשך 2 דקות, ואחריו 1 דקות 96% EtOH, 30 s 96% EtOH (עוד עם תמיסה נקייה), 30 s 96% EtOH (עוד עם תמיסה נקייה), 2 דקות קסילן, 1 דקות קסילן (עוד עם תמיסה נקייה), 2 דקות קסילן (עוד עם תמיסה נקייה).
      הערה: לחלופין, השתמש במכתים אוטומטי של שקופיות.
    11. אטם את המגלשה באמצעות אוטם שקופיות אוטומטי. השקופיות שהוכנו מוכנות לאחסון והערכה תחת מיקרוסקופ אור.
      הערה: לחלופין, בצע איטום שקופיות באופן ידני, על ידי הנחת שכבה דקה של תושבת פוליסטירן על הרקמה המוכתמת וכיסוי על ידי כיסוי זכוכית.
      אזהרה: צעדים הכוללים PFA, EtOH, אצטון וקסילן צריכים להתבצע תחת מכסה אדים במעבדה.

3. הערכת קטעי גלגל העין

  1. סריקת שקופיות
    1. הכנס את השקופית לסורק שקופיות היסטופתולוגי וסרוק את המקטעים באמצעות מצב הסריקה: 40x. שמור את התמונות כקבצים דיגיטליים ברזולוציה גבוהה.
  2. ניתוח שקופיות
    1. פתח את הקובץ הסרוק באמצעות תוכנת הצגת תמונות. מצא חתכי אישונים ונתח שלושה חתכים עוקבים.
    2. מצא את החלק העבה ביותר של הרשתית והגדל את התמונה ל- 20x על ידי לחיצה על תיבת ההגדלה בפינה השמאלית העליונה ובחירת 20x. הזז את העכבר לרמה של ELM בחלק העבה ביותר של הרשתית ולחץ על הלחצן הימני בעכבר, בחר הוסף הערות וסרגל.
    3. הזז את העכבר לכיוון ILM ולחץ על הלחצן הימני. תן כותרת למדידת RT וסמן את התיבות הצג כותרת והצג אורך. בדרך זו יימדד עובי הרשתית (RT), והמדידה תוצג במיקרומטר. תוצאות מייצגות מוצגות באיור 2 ובאיור 3.
    4. השתמש בסרגל, מדוד את העובי של כל שכבת רשתית, כולל ONL, OPL, INL ו- IPL, ותייג אותם. תוצאות מייצגות מוצגות באיור 4 ובאיור 5.
    5. כדי לספור את מספר התאים בתוך GCL, לקבוע אורך קבוע מראש של הרשתית. לדוגמה, עבור רשתית העכבר, השתמש בקטע אחד של 500 מיקרומטר, ועבור רשתית החולדה, השתמש בחמישה חתכים של 100 מיקרומטר.
    6. בעזרת הסרגל, מדדו את המרחק שנבחר לאורך ה-GCL. לחץ על הלחצן הימני בעכבר ובחר הוסף הערות > נשמר > RBC אחד. לחץ על כל תא המזוהה כגוף עגול ומוכתם בהמטוקסילין לאורך ה- GCL לאורך הרשתית שנקבע מראש. ספירת מספר התאים המוקפים. תוצאות מייצגות מוצגות באיור 6 ובאיור 7.
    7. לאחר ניתוח שלושה מקטעים עוקבים, ציירו את הממוצע עבור כל המדידות.

תוצאות

עם השימוש בפרוטוקול המוצג, ניתן להעריך בפירוט את האנטומיה והמורפולוגיה של מבנים ספציפיים של גלגל העין. הצוות שלנו מתמקד בחקר הפתומנגנונים של ניוון עצבי בהפרעות רשתית, כגון גלאוקומה, רטינופתיה סוכרתית ורטינופתיה יתר לחץ דם. כדי להעריך את המאפיינים של ניוון עצבי ברשתית, הערכנו את RT (גלגל עין של עכבר -איור 2, גלגל עין של חולדה -איור 3), ONL, OPL, INL ו-IPL (גלגל עין של עכבר -איור 4, גלגל עין של חולדה -איור 5), ואת מספר התאים של GCL (גלגל עין של עכבר -איור 6, גלגל עין של חולדה -איור 7). RT ותאי GCL צפויים להיות הגבוהים ביותר ברשתית המרכזית והנמוכים ביותר בפריפריה. על ידי חיתוך גלגל העין בגובה האישון, חתכים דרך הרשתית המרכזית (בקוטב האחורי של גלגל העין) וההיקפית (קרוב לגוף הרירי) מושגות בשקופית אחת.

בעוד שספירת תאי GCL יכולה להיחשב אובייקטיבית למדי, הטיה הנגרמת על ידי חתך מוטה עשויה להשפיע על תוצאות מדידת שכבות הרשתית הספציפיות. כדי למנוע הטיה, ניתן להציג את המדידות כיחס בין עובי שכבה נתונה לערך RT: ONL/RT, OPL/RT, INL/RT ו- IPL/RT.

תרשים אנטומיה של העין המציג חלקים מסומנים: רשתית, סקלרה, עדשה, קרנית, עצב הראייה, מקולה.
איור 1: אנטומיה של גלגל העין. חתך קשת של גלגל עין עם תיוג המבנים הגדולים ביותר שלו. אנא לחץ כאן כדי להציג גרסה גדולה יותר של איור זה.

תמונת מיקרוסקופ של חתך רשתית, המציגה שכבות רקמה, מדידת עובי 125 מיקרומטר.
איור 2: עובי הרשתית בעכבר. מדידת עובי הרשתית (RT) מהקרום המגביל החיצוני לקרום המגביל הפנימי בנקודה הרחבה ביותר, המסומנת בסרגל הירוק. גלגל עין עכבר (מתח: C57Bl/6, גיל: 44 שבועות). סרגל קנה המידה בפינה השמאלית מראה את האורך של 100 מיקרומטר. לחץ כאן כדי להציג גרסה גדולה יותר של איור זה.

חתך היסטולוגי המציג שכבות רשתית, בעובי 53.4 מיקרומטר; תמונת מיקרוסקופיה, מחקר רקמות.
איור 3: עובי הרשתית בחולדה. מדידת עובי הרשתית (RT) מהקרום המגביל החיצוני לקרום המגביל הפנימי בנקודה הרחבה ביותר, המסומנת בסרגל הירוק. גלגל עין עכברוש (זן: לואיס, גיל: 16 שבועות). סרגל קנה המידה בפינה השמאלית מראה את האורך של 100 מיקרומטר. לחץ כאן כדי להציג גרסה גדולה יותר של איור זה.

דיאגרמת חתך רקמת רשתית; שכבות שנמדדו: IPL, INL, OPL, ONL; ניתוח מיקרוסקופיה.
איור 4: שכבות רשתית בעכבר. מדידת העובי של שכבות רשתית בודדות: שכבה גרעינית חיצונית (ONL), שכבת פרספקס חיצונית (OPL), שכבה גרעינית פנימית (INL) ושכבת פרספקס פנימית (IPL), המסומנות בפסים ירוקים. גלגל עין עכבר (מתח: C57Bl/6, גיל: 44 שבועות). סרגל קנה המידה בפינה השמאלית מראה את האורך של 100 מיקרומטר. לחץ כאן כדי להציג גרסה גדולה יותר של איור זה.

תמונת מיקרוסקופ של חתך רשתית עם שכבות מסומנות: OPL, ONL, IPL, INL; סרגל קנה מידה 100 מיקרומטר.
איור 5: שכבות רשתית בחולדה. מדידת העובי של שכבות רשתית בודדות: שכבה גרעינית חיצונית (ONL), שכבת פרספקס חיצונית (OPL), שכבה גרעינית פנימית (INL) ושכבת פרספקס פנימית (IPL), המסומנות בפסים ירוקים. גלגל עין עכברוש (זן: לואיס, גיל: 16 שבועות). סרגל קנה המידה בפינה השמאלית מראה את האורך של 100 מיקרומטר. לחץ כאן כדי להציג גרסה גדולה יותר של איור זה.

קטע היסטולוגיה המציג מבנה סלולרי שכבתי, תמונת מיקרוסקופ, ניתוח רקמות, קנה מידה של 500 מיקרומטר.
איור 6: ספירת תאים של שכבת תאי גנגליון בעכבר. שיטת ספירת התאים של שכבת תאי הגנגליון (GCL) לאורך הרשתית באורך של 500 מיקרומטר. גופים חד-תאיים זוהו כגופים עגולים, מוכתמים בהמטוקסילין, הממוקמים בתוך שכבת תאי הגנגליון. התאים מסומנים בעיגולים שחורים. גלגל עין עכבר (מתח: DBA/2, גיל: 44 שבועות). סרגל קנה המידה בפינה השמאלית מראה את האורך של 100 מיקרומטר. לחץ כאן כדי להציג גרסה גדולה יותר של איור זה.

שקופית היסטולוגיה, חתך רשתית; שכבות רקמה גלויות; בדיקה מיקרוסקופית, סולם 100 מיקרומטר.
איור 7: ספירת תאים של שכבת תאי גנגליון בחולדה. שיטת ספירת התאים של שכבת תאי הגנגליון (GCL) לאורך הרשתית באורך של 100 מיקרומטר. גופים חד-תאיים זוהו כגופים עגולים, מוכתמים בהמטוקסילין, הממוקמים בתוך שכבת תאי הגנגליון. התאים מסומנים בעיגולים שחורים. גלגל עין עכברוש (זן: לואיס, גיל: 16 שבועות). סרגל קנה המידה בפינה השמאלית מראה את האורך של 100 מיקרומטר. לחץ כאן כדי להציג גרסה גדולה יותר של איור זה.

דיון

בדיקה היסטולוגית של גלגל העין של העכבר והחולדה היא כלי רב עוצמה בתחום רפואת העיניים הניסויית. זה יכול לספק מידע חדש הקשור לשינויים במבני העין במהלך מחלות עיניים, אשר אחרת לא היה נצפה בהגדרות קליניות. הפרוטוקולים המתוארים מציגים שיטה פשוטה לביצוע ניתוח היסטולוגי של הרשתית. הדקויות של ההליך הדרוש לעיבוד רקמות קדמיות, כגון הקרנית, אינן מתוארות כאן.

במחקר המוצג, החניכה בוצעה לאחר המתת חסד של בעלי החיים מכיוון שמלבד גלגלי העיניים נקצרו רקמות אחרות (דם, כליות) למטרות מחקר. עם זאת, enucleation יכול להתבצע גם על בעלי חיים תחת הרדמה. וילדינג ואחרים תיארו את נוהל14, וברצוננו להפנות את הקוראים לעבודה זו כדי לראות תמונות של הליך החינוך.

למרות שהפרוטוקולים להכנת שקופיות של עכבר וחולדה דומים, ההבדל העיקרי בין גלגלי עיניים של עכבר וחולדה שיש לקחת בחשבון בעת הכנת שקופיות הוא גודלן. נפחם של גלגלי העיניים של החולדות גדול פי 8 - פי 10 בהשוואה לעכברים, בעוד שהאורך הצירי הממוצע של גלגל עין עכבר הוא כ-3.2 מ"מ, והאורך הצירי של גלגל עין של חולדה מתנדנד בדרך כלל סביב 6.91 מ"מ15,16. זה מקל על הצורך לחתוך את גלגלי העיניים של החולדות לשניים לחדירת מגיב טוב יותר לתוך הרקמה במהלך העיבוד. כמו כן, הזמן הדרוש לחדירת מגיב לרקמת החולדה ארוך יותר מאשר לגלגלי עיניים של עכבר. בעת חיתוך גלגלי העיניים של החולדה לשניים, חשוב להשתמש בלהב חד, שכן העדשה המוצקה והקפואה עלולה להתגלות כמכשול.

נקודה נוספת שראוי לדון בה היא קיבוע רקמות לאחר הקציר מהחיות. בפרוטוקול המוצג, גלגלי עיניים, לאחר enucleation, תוקנו עם PFA ושקוע בתמיסות של סוכרוז. סוכרוז פועל כמגן קריוגן, שכן הוא מגן על תאים של רקמות גדולות מפני נזק על ידי גבישי קרח הנוצרים במהלך הקפאה17. הקפאת הרקמה מאפשרת לחוקרים לאחסן את הרקמה זמן רב יותר וגם להשתמש בה לבדיקות שונות בעתיד, כולל אנליזה היסטופתולוגית עם מיקרוטום (כמו שהוצג), אנליזה היסטופתולוגית עם קריוטום ותיוג חיסוני להערכה באמצעות מיקרוסקופ קונפוקלי. לדוגמה, כאשר חותכים גלגל עין של חולדה לשניים (שלב 2.4.1), אם החתך מבוצע ביעילות ובמהירות (תוך 5 - 10 שניות), ולעין אין זמן להפשיר, אז חצי אחד של גלגל העין עשוי לשמש להיסטופתולוגיה, ואחר עשוי להיות מוחזר למקפיא עבור תיוג חיסוני עתידי. אנו לא ממליצים לבצע תיוג חיסוני על רקמות שהוחדרו בעבר לפרפין עקב שינויים אפשריים בקונפורמציה של אפיטופים חלבונים לאחר קיבוע פרפין. עם זאת, אם קבוצת חוקרים מתכננת רק לבצע ניתוח היסטופתולוגי באמצעות מיקרוטום, ניתן להשתמש בשיטה פשוטה וסטנדרטית יותר לתיקון רקמות להטמעת פרפין - לדוגמה, במקום לבצע שלבים 1.2.1 - 1.4.1 לעכברים או שלבים 2.2.1 - 2.4.2 לחולדות, מקם את הרקמות בתמיסה של 10% של PFA למשך 24 שעות, ולאחר מכן לאחסן אותם PBS ב 4 ° C עד לעיבוד. סוכרוז אז לא יהיה צורך כמו cryoprotectant, כמו הרקמות לא יהיה קפוא. באמצעות שיטה מוצעת זו יימנע תהליך ההקפאה, אשר עשוי להיות מועיל ולהוביל לקבלת שקופיות באיכות גבוהה יותר. הקפאה של גלגלי העיניים, למרות שהיא מעניקה לחוקרים חופש רב יותר בבחירת הזמן לביצוע הבדיקה ההיסטופתולוגית, היא צעד שעלול לפגוע באיכות הדגימה ולהוביל להיפרדות רשתית. עם זאת, יש לזכור כי אם אחסון רקמות ב 4 ° C, היציבות הביולוגית שלהם יהיה קצר יותר, ואת הרקמות יש לנתח בתוך 4 שבועות. כמו כן, בזמן עבודה עם גלגלי עיניים של חולדות, שלב 2.4.1 (חיתוך גלגלי העיניים לשניים) יהיה הרבה יותר קשה לביצוע על גלגל עין לא קפוא.

המתודולוגיה המוצגת פותחה על בסיס המתודולוגיה שתוארה על ידי Chai et al.18, Igarashi et al.19, Zhang et al.20 ו- Dorfman et al.21, על ניסיון אישי, ושיטה של ניסוי וטעייה. שיטת מדידת עובי הרשתית והשכבות הבודדות מתוארת על סמך המתודולוגיה שהוצגה על ידי Chai et al.16 ו- Barber et al.18,22. שיטת ספירת RGC ברשתית פותחה מתוך סקירה של עבודתם של Chai et al.16, Zhang et al.18, Steinle et al.19, and Dorfman et al.18,20,21,23. באופן כללי, הכנת שקופיות היסטופתולוגיות של גלגלי עיניים שונה מהכנת שקופיות רקמה סטנדרטיות משובצות פרפין קבועות בפורמלין מכיוון שגלגל העין הוא כדורי, ולכן קשה יותר לטפל, לחתוך ולחתך. כמו כן, לובן העין מהווה מחסום לחדירת מגיב לרקמות. בעת הכנת שקופיות היסטולוגיות של גלגלי העין, יש לעבוד בצורה עדינה ומדויקת יותר תוך זהירות שלא לפגוע במבנים העדינים של החלק הפנימי של גלגל העין. שינויים בפרוטוקול זה עשויים לכלול שימוש בטכניקת הטבעה של מתקרילט במקום הטבעה של פרפין, מה שעשוי לספק תוצאות מורפולוגיות טובות יותר. עם זאת, מעט מאוד חוקרים השתמשו בשיטה זו להערכת הרשתית24,25.

פרוטוקול זה אינו חף מהטיות. הבעיה הגדולה ביותר שהצוות שלנו נאבק איתה הייתה קריעת רשתית והיפרדות רשתית. מועדת במיוחד לקריעה הייתה הרשתית של גלגלי העיניים של חולדות, שכן היה צורך לחתוך אותם לשניים לפני הכנת ההחלקה, ולכן הרשתית הייתה מועדת יותר לנזק. עקב היפרדות רשתית, לא ניתן להשתמש בפרוטוקול זה להערכת הכורואיד, אפיתל פיגמנט הרשתית או שכבת מקטע קולט האור. עם זאת, הצוות שלנו מאמין כי פרוטוקול זה יכול לשמש כדי להעריך את הרשתית הפנימית (מ ILM ל ELM). כדי למזער את כמות הקריעה והניתוק ברשתית, יש לבצע כל שלב בפרוטוקול בזהירות, לאט ובתנועות מדויקות.

ניתוח היסטופתולוגי של הרשתית אינו חלק מהאבחון האנושי הסטנדרטי, אך הוא שיטה נפוצה במחקר פרה-קליני. תוצאות ההערכה ההיסטופתולוגית של הרשתית במחקרים פרה-קליניים יכולות להיות קשורות ונדונות עם תוצאות טומוגרפיה קוהרנטית אופטית (OCT)26, שהיא בדיקה המראה חתך רוחב דרך הרשתית במהלך בדיקת in vivo שניתן לבצע במסגרת קלינית, בקרב בני אדם בניסויים קליניים. OCT, לעומת זאת, היא בדיקה פחות מפורטת. לכן, המידע שאנו יכולים לשאוב ממחקרים היסטולוגיים הנערכים במסגרת מחקר פרה-קליני הוא חסר תחליף והכרחי לפיתוח הידע הרפואי.

גילויים

המחברים מצהירים כי אין ניגוד עניינים.

תודות

העבודה, כולל חולדות, מומנה כחלק מפרויקט TIME 2 MUW - מצוינות בהוראה כהזדמנות לפיתוח האוניברסיטה הרפואית של ורשה במימון משותף של הקרן החברתית האירופית במסגרת התוכנית האופרטיבית פיתוח חינוך ידע לשנים 2014-2020, מספר הסכם המימון המשותף: POWR.03.05.00-00-Z040/18-00. העבודה, כולל עכברים, בוצעה כחלק מפרויקט שיושם בשנים 2020 עד 2022, במימון סובסידיה למדעים שהושגה על ידי האוניברסיטה הרפואית של ורשה.

חומרים

רשימת החומרים שנעשה בהם שימוש במאמר זה
שםחברהמספר קטלוגהערות
אצטון צ'מפור 
פינצטה של דומונט #5, 11 ס"מ, 0.05 x 0.01 מ"מ טיפיםמכשירים מדויקים בעולם14095מלקחיים קטנים ומיקרו-כירורגיים
EosinMar-Four4P.05.2001/Lתמיסה
מימית אלכוהול אתילי 96Chempur CH.ET. AL.96% CZDA.
CH אלכוהול אתילי 99.9Chempur ח. אטיל. ALK.99,9% BWהשתמש להכנת תמיסות של 70% ו-80% של
קרחון EtOH - 86 & deg; C מקפיא בטמפרטורה נמוכה במיוחד NU-9483ENuAire13027D0034טמפרטורת הקפאה - 80 & deg; מגלשות זכוכית
C Mar-FourMI.15.01673מגלשות זכוכית קרקע עם שדה מט דו צדדי לתיאור
Leica CV5030 כיסוי זכוכית אוטומטי לחלוטין LeicaBiosystems 14,04,78,80,101אוטם שקופיות אוטומטי 
המטוקסילין מאיירChempur 
תבניות בסיס מתכת 15 מ"מ  x 15 מ"מLeica Biosystems 
Microme HM 340 EThermo Scientific90-519-0
סכיני גילוח Microtome MicrotomeMar-FourHI. N.35זווית חיתוך 35°
קלטת ביופסיה Micro-TwinMar-FourLN.13874550
מעבד רקמות היברידי למיקרוגלMilestone
Multistainer Leica ST5020Leica Biosystems מכתים שקופיות אוטומטיים 
סורק שקופיות NanoZoomer 2.0-HTHamamatsuC9600סורק שקופיות היסטופתולוגי
NDP.view2 תוכנת צפייה בתמונותHamamatsuU12388-01תוכנת צפייה בתמונות
Paraffin Pathowax PlusMar-Four4P. PWP.010טמפרטורת התכה 56 מעלות; C - 58 ° C
ParaformaldehydeSigma - Aldrich441244-1KGהכן תמיסה של 4% בטבליות PBS
PBSMerck Millipore524650-1EAהשתמש להכנת תמיסה של מי מלח חוצץ פוספט, לפי הוראות היצרן
צינורות מיקרוצנטריפוגה פירס, 1.5 מ"לThermo Scientific69715
מקרר-מקפיא EN14000AWאלקטרולוקס925032562-00קירור 4 ° להב
אזמלSwann-MortonT.OST. SKAL00.024
סוכרוזצ'מפור 
מספריים קפיציים SuperCut, 12.5 ס"מ,מכשירי דיוק עולמייםמעוקלים 501925 מספריים מיקרוכירורגיים מעוקלים וקטנים
סרט לאוטמים אוטומטייםMar-FourKP-3020 / SMRH001
קסילןChempur ח. KSYL.5l.METAL.OP 
111024800% % 1246874023803081 C 427720906

מקורות

  1. Kels, B. D., Grzybowski, A., Grant-Kels, J. M. Human ocular anatomy. Clin Dermatol. 33 (2), 140-146 (2015).
  2. Gupta, M. P., Herzlich, A. A., Sauer, T., Chan, C. C. Retinal anatomy and pathology. Dev Ophthalmol. 55, 7-17 (2016).
  3. Masland, R. H. Neuronal diversity in the retina. Curr Opin Neurobiol. 11 (4), 431-436 (2001).
  4. Vecino, E., Rodriguez, F. D., Ruzafa, N., Pereiro, X., Sharma, S. C. Glia-neuron interactions in the mammalian retina. Prog Retin Eye Res. 51, 1-40 (2016).
  5. Boulton, M., Dayhaw-Barker, P. The role of the retinal pigment epithelium: Topographical variation and ageing changes. Eye (Lond). 15 (Pt 3), 384-389 (2001).
  6. Baden, T., Euler, T., Berens, P. Understanding the retinal basis of vision across species. Nat Rev Neurosci. 21 (1), 5-20 (2020).
  7. Nguyen-Ba-Charvet, K. T., Chédotal, A. Development of retinal layers. C R Biol. 337 (3), 153-159 (2014).
  8. Adams, T., Chernoff, E., Wilson, J., Dharmarajan, S. Reactive muller glia as potential retinal progenitors. InTech. , (2013).
  9. Salman, A., Mcclements, M. E., Maclaren, R. E. Insights on the regeneration potential of müller glia in the mammalian retina. Cells. 10 (8), 1957(2021).
  10. Marchesi, N., Fahmideh, F., Boschi, F., Pascale, A., Barbieri, A. Ocular neurodegenerative diseases: Interconnection between retina and cortical areas. Cells. 10 (9), 2394(2021).
  11. Enoch, J., Mcdonald, L., Jones, L., Jones, P. R., Crabb, D. P. Evaluating whether sight is the most valued sense. JAMA Ophthalmol. 137 (11), 1317-1320 (2019).
  12. Struebing, F. L., Geisert, E. E. What animal models can tell us about glaucoma. Prog Mol Biol Transl Sci. 134, 365-380 (2015).
  13. Bouhenni, R. A., Dunmire, J., Sewell, A., Edward, D. P. Animal models of glaucoma. J Biomed Biotechnol. 2012, 692609(2012).
  14. Wilding, L. A., Uchihashi, M., Bergin, I. L., Nowland, M. H. Enucleation for treating rodent ocular disease. J Am Assoc Lab Anim Sci. 54 (3), 328-332 (2015).
  15. Lin, C. H., et al. A protocol to inject ocular drug implants into mouse eyes. STAR Protoc. 3 (1), 101143(2022).
  16. Lozano, D. C., Twa, M. D. Development of a rat schematic eye from in vivo biometry and the correction of lateral magnification in sd-oct imaging. Invest Ophthalmol Vis Sci. 54 (9), 6446-6455 (2013).
  17. Castro, G., Navajas, E., Farah, M. E., Maia, M., Rodrigues, E. B. Migration, integration, survival, and differentiation of stem cell-derived neural progenitors in the retina in a pharmacological model of retinal degeneration. ISRN Ophthalmol. 2013, 752161(2013).
  18. Chai, G. R., Liu, S., Yang, H. W., Chen, X. L. Quercetin protects against diabetic retinopathy in rats by inducing heme oxygenase-1 expression. Neural Regen Res. 16 (7), 1344-1350 (2021).
  19. Igarashi, T., et al. Tyrosine triple mutated aav2-bdnf gene therapy in a rat model of transient iop elevation. Mol Vis. 22, 816-826 (2016).
  20. Zhang, W., et al. Therapeutic efficacy of neural stem cells originating from umbilical cord-derived mesenchymal stem cells in diabetic retinopathy. Sci Rep. 7 (1), 408(2017).
  21. Dorfman, D., Aranda, M. L., Rosenstein, R. E. Enriched environment protects the optic nerve from early diabetes-induced damage in adult rats. PLoS One. 10 (8), e0136637(2015).
  22. Barber, A. J., et al. Neural apoptosis in the retina during experimental and human diabetes. Early onset and effect of insulin. J Clin Invest. 102 (4), 783-791 (1998).
  23. Steinle, J. J., Kern, T. S., Thomas, S. A., Mcfadyen-Ketchum, L. S., Smith, C. P. Increased basement membrane thickness, pericyte ghosts, and loss of retinal thickness and cells in dopamine beta hydroxylase knockout mice. Exp Eye Res. 88 (6), 1014-1019 (2009).
  24. Polley, E. H., Walsh, C. A technique for flat embedding and en face sectioning of the mammalian retina for autoradiography. J Neurosci Method. 12 (1), 57-64 (1984).
  25. Turner, K. W. Hematoxylin toluidine blue-phloxinate staining of glycol methacrylate sections of retina and other tissues. Stain Technol. 55 (4), 229-233 (1980).
  26. Cheng, J., et al. Correlation of optical coherence tomography and retinal histology in normal and pro23his retinal degeneration pig. Transl Vis Sci Technol. 7 (6), 18(2018).

הדפסות חוזרות והרשאות

תגיות

הכנה וניתוח של שקופיות היסטולוגיות של גלגלי עיניים של חולדה ועכבר להערכת הרשתית
צור קשר
המלצה לספרייה

פרטיות

תנאי שימוש

מדיניות

2026 © זכויות יוצרים MyJoVE Corporation. כל הזכויות שמורות.