הרשמה ל-JoVE נדרשת לצפייה בתוכן זה. התחברו או התחילו בגרסת ניסיון בחינם.

מאמר שיטה

בידוד, הרחבה והבחנה של אב פיברו-אדיפוגני ממודל העכבר הקוצני

2.8K צפיות

⸱

DOI:

10.3791/66717

⸱

15 בנובמבר 2024

 ,  ,  , 
1School of Biomedical Engineering and Department of Medical Genetics, University of British Columbia, 2Aspect Biosystems

במאמר זה

סיכום

פרוטוקול זה מתאר את הבידוד של אבות פיברו-אדיפוגניים של שרירי השלד והלב (FAPs) מעכבר קוצני (Acomys) באמצעות דיסוציאציה אנזימטית ומיון תאים המופעלים על ידי פלואורסצנציה. FAPs המתקבלים מפרוטוקול זה ניתן להרחיב ביעילות ולהבדיל למיופיברובלסטים ואדיפוציטים.

תקציר

בשל תוכנית התיקון יוצאת הדופן שלו, העכבר הקוצני הוא מודל מחקר מתפתח לרפואה רגנרטיבית. אבות פיברו-אדיפוגניים הם תאים שוכנים ברקמה המסוגלים להתמיין לאדיפוציטים, פיברובלסטים וכונדרוציטים. אבות פיברו-אדיפוגניים הם בסיסיים לתיאום התחדשות רקמות מכיוון שהם אחראים לעיצוב מחדש של מטריצה חוץ-תאית לאחר פציעה. מחקר זה מתמקד בחקירת התפקיד הספציפי של אבות פיברו-אדיפוגניים בתיקון לב עכבר קוצני ובהתחדשות שרירי השלד. לשם כך, פרוטוקול הותאם לטיהור אבות פיברו-אדיפוגניים של עכבר קוצני על ידי ציטומטריית זרימה משרירי השלד והלב המנותקים אנזימטית. האוכלוסייה המתקבלת מפרוטוקול זה מסוגלת להתרחב במבחנה, וניתן להבדיל אותה למיופיברובלסטים ואדיפוציטים. פרוטוקול זה מציע כלי רב ערך לחוקרים לבחון את התכונות הייחודיות של עכבר קוצני, ולהשוות אותן לשרירי Mus. זה יספק תובנות שיכולות לקדם את ההבנה של מנגנוני התחדשות במודל מסקרן זה.

מבוא

עכבר קוצני, שהוכר בתחילה בזכות עורו השברירי במיוחד ויכולתו יוצאת הדופן לתקן פציעות עור, הוכיח יכולת התחדשות מעולה במערכות איברים שונות, כגון שרירים ושלד, כליות, מערכת העצבים המרכזית ולב וכלי דם, בהשוואה לשרירי Mus 1,2.

אבות פיברו-אדיפוגניים (FAPs) הם תת-קבוצה של תאי סטרומה השוכנים ברקמות שונות, כולל שרירי השלד והלב. תאים אלה הם בעלי יכולת ייחודית להתחייב לשושלות פיברוגני ואדיפוגניות in vivo ו-in vitro 3,4. FAPs ממלאים תפקיד מכריע בהתחדשות רקמות על ידי אפנון המטריצה החוץ תאית ותמיכה בתפקודים של סוגי תאים אחרים המעורבים בתהליך התיקון. בשרירי השלד, FAPs מופעלים בתגובה לפציעה ומקלים על התמיינות תאי גזע שריר ומיוגנזה 5,6. בפגיעה איסכמית בלב, FAPs מניחים רקמת צלקת כדי לשמור על שלמות שריר הלב. בניגוד לשרירים, FAPs לב להיות מופעל באופן כרוני ולתרום שיפוץ פתולוגי 7,8.

מחקרים קודמים הראו כי למטריצה חוץ-תאית של עכבר קוצני יש הרכב, מבנה ותכונות שונים התומכים בהתחדשות בהשוואה לשרירי Mus 9,10. בפציעות שרירים ולב, FAPs הודגם כתורם לריפוי מעולה בעכבר קוצני 11,12,13. הבנת ההתנהגות והבקרה הרגולטורית של עכברים קוצניים וסטרומה עשויה לשפוך אור על המנגנון שמאחורי יכולות ההתחדשות שלהם. בעוד FAPs נחקרים בהרחבה במודלים אחרים של בעלי חיים, כגון Mus musculus14,15, נכון לעכשיו, אין פרוטוקולים שפורסמו לבידוד FAPs עכבר קוצני. פיתוח פרוטוקול כזה ימלא פער משמעותי בתחום ויאפשר לחוקרים לבחון את המנגנונים התאיים והמולקולריים העומדים בבסיס פוטנציאל ההתחדשות של העכבר הקוצני.

פרוטוקול זה מתאר פרוטוקול חזק וניתן לשחזור לבידוד, הרחבה והבחנה בין FAPs של שרירי השלד והלב לבין עכבר קוצני. הפרוטוקול המתואר כאן מניב מתלים חד-תאיים באיכות גבוהה המתאימים למיון תאים המופעלים על ידי פלואורסצנטיות (FACS). על-ידי שימוש ב-rh-TGFβ1 או במדיה מסחרית תואמת, שתי שיטות שנמצאות בשימוש נרחב כדי להבדיל בין שרירי שריר FAPs 16, ה-FAPs הקוצניים הממוינים שומרים על יכולתם להתמיין לאורך השושלת הפיברוגנית והשושלת האדיפוגנית, בהתאמה (איור 1).

הגישה מוגבלת. התחברו או התחילו תקופת ניסיון כדי לצפות בתוכן זה.

פרוטוקול

כל הליכי התחזוקה והניסויים בבעלי חיים נערכו בהתאם לאישור הוועדה לטיפול בבעלי חיים של אוניברסיטת קולומביה הבריטית והתקנות באוניברסיטת קולומביה הבריטית. בעלי החיים שוכנו במתקן סגור ללא פתוגן בתנאים סטנדרטיים (מחזור אור-חושך 12:12, 21-23 מעלות צלזיוס ורמת לחות של 40%-60%) וסיפקו תזונת עכברים עשירה בחלבון ומים עד לליביטום. במחקר זה נעשה שימוש בעכברי Acomys dimidiatus בוגרים (בני 4 עד 6 חודשים, 50-60 גרם). הפרטים של כל הריאגנטים והציוד שנעשה בהם שימוש מפורטים בטבלת החומרים.

1. הכנת תמיסה וחיץ

  1. הכינו 1x מלח חיץ פוספט (PBS).
  2. הכן PBS-EDTA על ידי ערבוב 4 מ"ל של 0.5 M EDTA (2 mM) ו- 996 מ"ל של 1x PBS, pH = 7.4.
  3. הכן 250 mM CaCl2 על ידי הוספת 2.7745 גרם של CaCl2 עד 100 מ"ל של מים ללא נוקלאז.
  4. הכינו את מאגר העיכול: יש לערבב 50 מיקרוגרם/מ"ל ליבראז, 2.5 מ"מ CaCl2 וסרום בקר עוברי 5% (FBS) ב-DMEM/F12.
  5. הכן מאגר FACS על-ידי ערבוב של 488 מ"ל של 1x PBS, 2 מ"ל של 0.5M EDTA ו-10 מ"ל של FBS.
  6. הכן את מאגר הכדאיות על-ידי ערבוב מאגר FACS עם יודיד פרופידיום (PI; 1 מיקרוגרם/מ"ל).
  7. הכן מדיה בסיסית על-ידי ערבוב DMEM/F12 עם 5% FBS ו-1% (v/v) עט/סטרפ.
  8. הכן מדיית התפשטות על-ידי ערבוב DMEM/F12 עם 10% FBS, 1% (v/v) pen/strep ו-2.5 ng/mL bFGF.
  9. הכן מדיה פיברוגנית על ידי ערבוב מדיה בסיסית ו 10 ng/mL rh-TGFβ1,
  10. הכן מדיה אדיפוגנית (1x) על ידי ערבוב DMEM/F12 עם 1% עט/סטרפטוקוקוס ותוסף בידול אדיפוגני של עכבר 10x הזמין מסחרית.
  11. הכינו 4% PFA על ידי הוספת 4% Paraformaldehyde (w/v) ל-1x PBS.
  12. הכינו 0.3% PBS-Triton על ידי ערבוב 498.5 מ"ל של 1x PBS ו-1.5 מ"ל של TritonX-100.
  13. הכינו חיץ חוסם חמור על ידי ערבוב 5% (v/v) נסיוב חמור, 1% BSA (w/v) ו-0.3% PBS-Triton.
  14. הכינו חיץ חוסם חמור + MOM על ידי ערבוב 2.5 מ"ל של חיץ חסימת חמור ו -2 טיפות של בלוק MOM.
  15. הכן תמיסת צביעה DAPI על ידי ערבוב 600 ננומטר של 4′,6-diamidino-2-phenylindole (DAPI) ב 1x PBS.

2. איסוף רקמות

  1. יש להרדים את בעל החיים בהתאם להנחיות הוועדה המוסדית לטיפול ושימוש בבעלי חיים. עבור עכברים קוצניים, isoflurane ואחריוCO2 (20% מנפח הכלוב / דקה) ונקע בעמוד השדרה כדי להבטיח מוות מומלץ.
  2. הניחו את העכבר על שלב הדיסקציה במצב שכיבה, ורססו ביסודיות באתנול 70% כדי למנוע זיהום בפרוות עכבר.
  3. בצע חתך אנכי של 2-3 ס"מ בקו האמצע הגחוני וחשף את כלוב הצלעות ושריר הבטן. חותכים דרך השריר בתהליך הקסיפואיד עם מספריים לרקמות וחושפים את הסרעפת. חותכים את הסרעפת ואת כלוב הצלעות משני הצדדים. השתמש hemostat כדי להדק ולקלף בחזרה את הצלעות החתוכות.
  4. ניקבו את האטריום הימני עם מספריים לרקמות, הניחו מחט 23 G המחוברת למזרק 20 מ"ל בקודקוד הלב, וחוררו אותה על ידי הזרקה איטית של 20 מ"ל של 2 mM PBS-EDTA.
  5. מוציאים את הלב, שוטפים בקור 1x PBS בצלחת פטרי 60 מ"מ על קרח, מסירים אטריה ומנקים דם ככל האפשר.
  6. הסר את העור מעל מפרק הברך. השתמשו במלקחיים עדינים כדי להסיר את הפאשיה ולבודד את שריר הארבע ראשי בעזרת מספריים על ידי שימוש בעצם הירך כקו מנחה. מניחים בצלחת פטרי נפרדת עם 1x PBS קר.
  7. חזור על שלב 2.6 עבור הרגל השנייה.

3. עיכול רקמות

  1. הוסף 2 מ"ל של חיץ עיכול לבקבוקון הובלה של 5 מ"ל ללב, ו -4 מ"ל של חיץ עיכול לצינור צנטריפוגה של 15 מ"ל לשני שרירים ארבע ראשיים.
  2. טחנו את הרקמה עם מספריים רקמה על מכסה צלחת פטרי לתוך קטן מ 1 מ"מ3 חתיכות.
  3. הוסיפו רקמה טחונה לצינורות העיכול המתאימים. מערבול במשך 2 שניות במהירות נמוכה כדי לערבב.
  4. יש לדגור בטמפרטורה של 37°C עם סיבוב עדין וניעור.
  5. לאחר 20 דקות, הסר את הצינורות מהמסובב ואפשר לחתיכות הרקמה לשקוע. הורידו את הסופרנאטנט עם פיפטה P1000 לתוך 20 מ"ל של חיץ FACS קר כקרח בצינורות צנטריפוגות של 50 מ"ל.
  6. מלאו את צינורות העיכול ב-2 מ"ל ו-4 מ"ל של חיץ עיכול לעיכול הלב והשריר בהתאמה, והחזירו אותם לטמפרטורה של 37°C עם סיבוב ורעד עדינים.
  7. חזור על שלבים 3.5 עד 3.6 פעם נוספת לאחר 20 דקות נוספות. הכנס את הסופרנאטנט לצינור הצנטריפוגה המתאים של 50 מ"ל משלב 3.5.
  8. עצור את העיכול לאחר 60 דקות על ידי הרוות את מאגר העיכול עם מאגר FACS קר כקרח.
  9. מסננים את מתלה העיכול ואת הסופרנאטנט דרך מסננת תאים של 40 מיקרומטר על גבי צינורות צנטריפוגות של 50 מ"ל. מלא עד 40 מ"ל עם מאגר FACS.
  10. צנטריפוגה את תרחיף התא ב 500 x גרם במשך 8 דקות ב 4 ° C. דקנט את הסופרנאטנט והשהה מחדש את גלולת התא ב 3 מ"ל של חיץ ליזה ACK. יש לדגור על קרח במשך 5 דקות ולמלא עד 40 מ"ל עם חיץ FAC.
  11. צנטריפוגה ב 500 x גרם במשך 5 דקות ב 4 ° C. דקנט את הסופר-נטנט.
  12. יש להשהות מחדש ב-0.5 מ"ל של מאגר FACS, תוך צנרת מעלה ומטה כדי להבטיח פיזור אחיד של התאים.
  13. סנן את המתלה דרך מסנן 40 מיקרומטר על צינורות פוליסטירן עגולים בעלי תחתית עגולה של 5 מ"ל עם מכסה מסננת תאים.

4. צביעה למיון תאים המופעלים על ידי פלואורסצנטיות (FACS)

  1. לבקרות צבע יחיד ופלואורסצנטיות מינוס אחד (FMO), יש להכין 30 μL של חיץ צביעה (נוגדנים מדוללים במאגר FACS) בריכוז עבודה פי 2 בצינורות צנטריפוגות 1.5 מ"ל שסומנו מראש. עיין בטבלה 1 עבור הגדרת מאגר צביעת נוגדנים.
  2. הכינו צבעים בודדים ופקדי FMO לשרירים וללב בנפרד.
  3. מעבירים 30 μL של צבע יחיד וחיץ צביעה של בקרת FMO לצלחת של 96 בארות. מלא 20 μL של מאגר FACS.
  4. לצביעת FACS לדוגמה, יש להכין 0.5 מ"ל של חיץ צביעה (נוגדן מדולל במאגר FACS) בריכוז עבודה פי 2 בצינורות צנטריפוגות של 1.5 מ"ל.
  5. הוסף 10 μL של תרחיף התא לצבע יחיד ולבארות בקרת FMO. הוסף חיץ צביעה לשאר מתלה התא והשעיה מחדש.
  6. יש לדגור בטמפרטורה של 4°C, מוגן מפני אור למשך 30 דקות.
  7. מלא את הבארות עם 100 μL של חיץ FACS, ואת צינור הדגימה עם 2 מ"ל של חיץ FACS.
  8. צנטריפוגה ב 500 x גרם במשך 5 דקות ב 4 ° C ולהסיר את supernatant.
  9. חזור על שלבים 4.7 ו- 4.8.
  10. השהה מחדש את גלולת התא במאגר הכדאיות. 100 μL עבור צבע יחיד ופקדי FMO, 1 מ"ל עבור דוגמאות מיון FACS.
  11. הכן את צינורות האיסוף על ידי הוספת 300 μL של אמצעי התפשטות בצינורות צנטריפוגות 1.7 מ"ל.

5. מיון תאים המופעלים על ידי פלואורסצנטיות

  1. אסטרטגיית Gating: השתמש ב- FSC לעומת . SSC (יומן) לפינוי פסולת. השתמש ב- FSC-H לעומת . FSC-A לסינגלטים שערים. השתמש CD31 לעומת PI כדי שער על תאים קיימא ושושלת שלילית. השתמשו ב-PDGFRα כדי להגיע לשער עבור FAPs (איור 2).
  2. מיין לתוך צינורות איסוף שהוכנו בעבר.

6. תרבות רקמות

  1. צנטריפוגה את התאים שנאספו ב 800 x גרם במשך 10 דקות ב 4 ° C.
  2. מוציאים את הסופרנאטנט עם פיפטה P1000. היזהר לא להפריע את כדור התא.
  3. יש להשהות מחדש את הגלולה בתרבית (250 מיקרוליטר/באר) ולזרוע ב-25,000 תאים/באר בצלחת תרבית רקמה של 48 בארות.
  4. תרבות באינקובטור (37 מעלות צלזיוס, 5% CO2). שנה מדיה כל 3 ימים עד שהתאים מגיעים למפגש של 80%.

7. הבחנה פיברוגנית

  1. ברגע שהתאים מוכנים לטיפול, הניחו מדיה בסיסית ו-1x DPBS באמבטיה חמה או בטמפרטורת החדר לפני השימוש בהם.
  2. שאפו לתקשורת התרבות.
  3. יש לשטוף עם 200 μL של DPBS אחד פעמיים.
  4. יש לשטוף עם 200 מיקרוליטר של חומר בסיסי פעם אחת.
  5. הוסף 250 μL של מדיה פיברוגנית או בסיסית לבארות המתאימות.
  6. להחזיר את התאים לאינקובטור (37 ° C, 5% CO2).
  7. עצור את ההבחנה לאחר 48 שעות.

8. הבחנה אדיפוגנית

  1. ברגע שהתאים מוכנים לטיפול, הניחו מדיה בסיסית, מדיה אדיפוגנית ו-DPBS 1x באמבטיה חמה או בטמפרטורת החדר לפני השימוש בהם.
  2. שאפו לתקשורת התרבות.
  3. יש לשטוף עם 200 μL של DPBS אחד פעמיים.
  4. יש לשטוף עם 200 מיקרוליטר של חומר בסיסי פעם אחת.
  5. הוסף 400 μL של מדיה אדיפוגנית או בסיסית לבארות המתאימות.
  6. חזרה לאינקובטור (37°C, 5% CO2).
  7. כל יומיים, להסיר 200 μL מדיה עם פיפטה מן הבארות ולהוסיף 200 μL של מדיה אדיפוגנית טרייה או בסיסית.
  8. עצור את ההבחנה ביום ה- 6 עבור FAPs שרירי השלד, וביום ה- 14 עבור FAPs לב.

9. Immunostaining

  1. עצור את בדיקת הבידול על ידי שאיפה מדיה ושטיפה עם 250 μL של 1x PBS פעמיים. בצע את כל השטיפות עם מחט 18 G המחוברת מזרק 3 מ"ל כדי למנוע ניתוק התא.
  2. יש להוסיף 250 μL של 4% PFA לבאר ולדגור בטמפרטורת החדר למשך 7 דקות.
  3. יש להסיר את ה-PFA ולשטוף 3 פעמים במשך 5 דקות בכל פעם עם 250 μL של 1x PBS.
  4. בשטיפה האחרונה, שאפו 1x PBS והוסיפו 250 μL של חיץ חוסם חמור + MOM.
  5. יש לדגור בטמפרטורת החדר במשך 60 דקות.
  6. הכינו תמיסת צביעת נוגדנים ראשונית בחיץ חוסם חמור (אנטי-SMA ואנטי-פריליפין) לנפח סופי של 100 מיקרוליטר לבאר.
  7. שאפו את בארות הצביעה. השאר את חיץ החסימה חמור + MOM בשליטה היטב אם רלוונטי.
  8. הוסף תמיסת צביעת נוגדנים ראשונית בבארות המתאימות.
  9. יש לדגור על 4 מעלות צלזיוס למשך הלילה.
  10. למחרת, שטפו 3 פעמים במשך 5 דקות בכל פעם עם 1x PBS.
  11. הכינו תמיסת צביעת נוגדנים משנית בחיץ חוסם חמור בנפח סופי של 100 מיקרוליטר לבאר.
  12. שאפו את השטיפה האחרונה והוסיפו תמיסת צביעת נוגדנים משנית בכל הבארות.
  13. יש לדגור בטמפרטורת החדר במשך 45 דקות (הדגימות צריכות להיות מוגנות מפני אור מנקודה זו ואילך).
  14. שטפו 3 פעמים במשך 5 דקות בכל פעם עם 1x PBS.
  15. שאפו את הכביסה האחרונה והוסיפו 250 מיקרוליטר של תמיסת צביעה DAPI.
  16. יש לדגור בטמפרטורת החדר למשך 5 דקות.
  17. הסר את תמיסת הצביעה DAPI ושטוף פעם אחת במשך 5 דקות עם PBS אחד.
  18. הוסף 100 μL של Fluoromount-G בכל באר.
  19. אטמו את הצלחת עם המכסה וסרט הפרפין כדי למזער אידוי. יש לאחסן בטמפרטורה של 4°C, מוגן מפני האור עד להדמיה.
  20. תמונה במיקרוסקופ (איור 3 ואיור 4).
    הערה: סרום חמור משמש לחסימת חיץ כבלוק ספציפי למין כנגד נוגדנים משניים הגדלים על חמור המשמשים בפרוטוקול זה. מגיב חסימת עכבר על עכבר משמש נגד נוגדן אנטי SMA הראשוני כי הוא גדל בעכבר.

הגישה מוגבלת. התחברו או התחילו תקופת ניסיון כדי לצפות בתוכן זה.

תוצאות

הסכמה של פרוטוקול זה לבידוד ותרבית של שרירי השלד והלב מסוכמת באיור 1. עבור איסוף רקמות, הכבד משנה את צבעו מאדום כהה לצהוב בהיר בדרך כלל מעיד על זילוח מוצלח. עם טווחי הגילאים שצוינו של עכבר קוצני, משקל הלב הוא בדרך כלל סביב 200 מ"ג, בעוד שריר ארבע ראשי הוא סביב 350 מ"ג.

במהלך כל שינוי בחיץ העיכול בשלבים 3.5-3.7, מאגר העיכול בצינורות העיכול נראה אטום כאשר התאים משתחררים מהרקמה. בסוף העיכול, הפתרון חייב להיות slurry הומוגני יחסית עם כמה חתיכות רקמה נותרו. הקפד לסיים ...

הגישה מוגבלת. התחברו או התחילו תקופת ניסיון כדי לצפות בתוכן זה.

דיון

רקמות עכבר קוצני רגישות יותר ללחצים בדיסוציאציה של רקמות, וישנם מספר היבטים של פרוטוקול זה שמטרתם למזער את הלחץ כדי לשפר את יכולת הקיום של התא. טכניקת דיסוציאציה אנזימטית סדרתית משמשת להכנת דגימה כדי להוריד את ריכוז האנזים הדרוש. ככל שהעיכול האנזימטי מתקדם, הפעילות האנזימטית פוחתת. על ידי החלפתו באנזימים טריים, ניתן להשיג טוב יותר פעילות אנזימטית עקבית לאורך כל העיכול, ולהימנע מריכוזים גבוהים של האנזים. יתר על כן, נמנע שינוי חיץ העיכול לעיכול יתר על המידה של התאים שכבר שוחררו בתמיסה. שני...

הגישה מוגבלת. התחברו או התחילו תקופת ניסיון כדי לצפות בתוכן זה.

גילויים

למחברים אין ניגוד עניינים לחשוף.

תודות

ברצוננו להודות לאנדי ג'ונסון וג'סטין וונג, ליבת הזרימה של UBC, על מומחיותם ועזרתם במיטוב פרוטוקול FACS, כמו גם לצוות מתקן בעלי החיים של מרכז המחקר הביו-רפואי של UBC לטיפול בעכברים קוצניים. איור 1 נוצר באמצעות Biorender. איור 2 נוצר באמצעות תוכנת FlowJo.

הגישה מוגבלת. התחברו או התחילו תקופת ניסיון כדי לצפות בתוכן זה.

חומרים

רשימת החומרים שנעשה בהם שימוש במאמר זה
שםחברהמספר קטלוגהערות
0.5 מיליון EDTAInvitrogen15575– 038
צינורות מיקרוצנטריפוגה 1.7 מ"לVWR87003-294
15  צינור צנטריפוגה מ"לFalcon352096
1x Dulbecco' s פוספט חוצץ מלח (DPBS)Gibco14190-144
מזרק 20 מ"לBD309661
4′,6-diamidino-2-phenylindole (DAPI)InvitrogenD3571
40  μ מסננת תאיםm Falcon352340
48 צלחת תרבית רקמות שטוחההיטב Falcon53078
5 מ"ל פוליפרופילןפלקון352063
5 מ"ל צינור פוליסטירן עגול תחתון עם מכסה מסננת תאיםFalcon352235
מזרק 5 מ"לBD309646
50  צינור צנטריפוגה מ"לFalcon352070
צלחת פטרי 60 מ"מFalcon353002
96 באר צלחת תרבית רקמות תחתונה VCorning3894
Acomys dimidiatus עכברים (עכברים קוצניים)במתנה של ד"ר אשלי ו. סייפרט (אוניברסיטת קנטקי).
מאגר אמוניום-כלוריד-אשלגן (ACK)GibcoA10492-01
אנטי-פריליפין (1:100)SigmaP1873
Anti-SMA (1:100)Invitrogen14-9760-82
APC PDGFRa (1:800)Abcamab270085
BD מחט PrecisionGlide 18 גרםBD305195
BD מחט PrecisionGlide 23 גרםBD305145
אלבומין סרום בקרסיגמאA7906-100 גרם
BV605 CD31 (1:500)BD biosciences744359
CaCl2Sigma-AldrichC4901
צנטריפוגהEppendorf5810R
DMEM/F12Gibco11320033
חמור נגד עכבר Alexa 555 (1:1000)InvitrogenA31570
חמור נגד ארנב Alexa 647 (1:1000)InvitrogenA31573
סרום חמורSigmaS30-100ML
סדרן FACS - MoFlo Astrios 5 לייזריםבקמן קולטרB52102
סרום בקר עובריתאומים100-500
מספריים עדיניםFST14058-11
Fluoromount-GSouthernBiotech0100-01
מלקחייםFST11051-10
HemostatFST91308-12
חלבון רקומביננטי בסיסי FGF אנושי (bFGF)Gibco13256029
חלבון רקומביננטי TGF בטא 1 אנושי (TGFb1)eBiosciences14-8348-62
אינקובטור - Heracell 160i CO2ThermoFisher51033557
מיקרוסקופ הפוך - RevolveECHOn/a
LiberaseRoche5401127001
Mouse MesenCult Adipogenic Differentiation 10x SupplementSTEMCELL technologies5507
עכבר על עכבר (MOM) חוסם ריאגנטיםמעבדותוקטורMKB-2213
ParaformaldehydeSigmaP1648-500g
פניצילין-סטרפטומיציןGibco15140– 122
PicoLab דיאטת עכבר 20LabDiet3005750-220
פרופידיום יודיד (PI)InvitrogenP3566
בקבוקון הובלה 5 מ"ל צינורCaplugs ירוק עד222-3005-080
Triton X-100Sigma9036-19-5

מקורות

  1. Gaire, J., et al. Spiny mouse (Acomys): An emerging research organism for regenerative medicine with applications beyond the skin. NPJ Regen Med. 6, 1(2021).
  2. Sandoval, A. G. W., Maden, M. Regeneration in the spiny mouse, Acomys, a new mammalian model. Curr. Opin. Genet. Dev. 64, 31-36 (2020).
  3. Judson, R. N., Zhang, R. H., Rossi, F. M. A. Tissue-resident mesenchymal stem/progenitor cells in skeletal muscle: Collaborators or saboteurs. FEBS J. 280 (17), 4100-4108 (2013).
  4. Uezumi, A., et al. Fibrosis and adipogenesis originate from a common mesenchymal progenitor in skeletal muscle. J Cell Sci. 124, 3654-3664 (2011).
  5. Joe, A. W. B., et al. Muscle injury activates resident fibro/adipogenic progenitors that facilitate myogenesis. Nat Cell Biol. 12, 153-163 (2010).
  6. Uezumi, A., Fukada, S. I., Yamamoto, N., Takeda, S., Tsuchida, K. Mesenchymal progenitors distinct from satellite cells contribute to ectopic fat cell formation in skeletal muscle. Nat Cell Biol. 122 (12), 143-152 (2010).
  7. Soliman, H., et al. Pathogenic Potential of Hic1-Expressing Cardiac Stromal Progenitors. Cell Stem Cell. 26 (2), 205-220 (2020).
  8. Hall, C., Gehmlich, K., Denning, C., Pavlovic, D. Complex relationship between cardiac fibroblasts and cardiomyocytes in health and disease. J Am Heart Assoc. 10, 1-15 (2021).
  9. Gawriluk, T. R., et al. Comparative analysis of ear-hole closure identifies epimorphic regeneration as a discrete trait in mammals. Nat Commun. 71 (7), 1-16 (2016).
  10. Seifert, A. W. Skin shedding and tissue regeneration in African spiny mice (Acomys). Nature. 489, 561(2012).
  11. Koopmans, T., et al. Ischemic tolerance and cardiac repair in the spiny mouse (Acomys). NPJ Regen Med. 6, 78(2021).
  12. Peng, H., et al. Adult spiny mice (Acomys) exhibit endogenous cardiac recovery in response to myocardial infarction. NPJ Regen Med. 6, 74(2021).
  13. Maden, M., et al. Perfect chronic skeletal muscle regeneration in adult spiny mice, Acomys cahirinus. Sci Rep. 8, 8920(2018).
  14. Riparini, G., Simone, J. M., Sartorelli, V. FACS-isolation and culture of fibro-adipogenic progenitors and muscle stem cells from unperturbed and injured mouse skeletal muscle. J Vis Exp. (184), e63983(2022).
  15. Low, M., Eisner, C., Rossi, F. Fibro/adipogenic progenitors (FAPs): Isolation by FACS and culture. Methods Mol Biol. 1556, 179-189 (2017).
  16. Molina, T., Fabre, P., Dumont, N. A. Fibro-adipogenic progenitors in skeletal muscle homeostasis, regeneration and diseases. Open Biol. 11 (12), 210110(2021).
  17. Contreras, O., Rossi, F. M. V., Theret, M. Origins, potency, and heterogeneity of skeletal muscle fibro-adipogenic progenitors-time for new definitions. Skelet Muscle. 111 (11), 1-25 (2021).
  18. Fitzgerald, G., et al. MME+ fibro-adipogenic progenitors are the dominant adipogenic population during fatty infiltration in human skeletal muscle. Commun Biol. 61 (6), 1-21 (2023).
  19. Babaeijandaghi, F., et al. DPPIV+ fibro-adipogenic progenitors form the niche of adult skeletal muscle self-renewing resident macrophages. Nat Commun. 141 (14), 1-10 (2023).
  20. Schutz, P. W., Cheung, S., Yi, L., Rossi, F. M. V. Cellular activation patterns of CD10+ fibro-adipogenic progenitors across acquired disease states in human skeletal muscle biopsies. Free Neuropathol. 5, 3-3 (2024).

הגישה מוגבלת. התחברו או התחילו תקופת ניסיון כדי לצפות בתוכן זה.

הדפסות חוזרות והרשאות

גלה מאמרים נוספים

פרוגניטורים פיברו-אדיפוגנייםציטומטריה של זרימהעיכול אנזימטירגנרציה של שריר הלברגנרציה של שריר שלדמיון תאיםדיסוציאציה של רקמההרחבת תאי פרוגניטורעיצוב מחדש של המטריקס החוץ-תאי
בידוד, הרחבה והבחנה של אב פיברו-אדיפוגני ממודל העכבר הקוצני
צרו קשר
המליצו לספרייה

פרטיות

תנאי שימוש

מדיניות

זכויות יוצרים © 2026 MyJoVE Corporation. כל הזכויות שמורות.