מאמר שיטה

חקר שריר הלונגיסימוס: חשיפת הקשר שלו לאיכות הבשר אצל Bos indicus ו-Crossbred Bulls

1.5K צפיות

⸱

DOI:

10.3791/66764

⸱

12 ביולי 2024

 ,  ,  ,  ,  , 
1School of Veterinary Medicine and Animal Science, São Paulo State University, Botucatu (São Paulo), 2School of Agricultural and Veterinary Sciences, São Paulo State University, Jaboticabal (São Paulo)

במאמר זה

סיכום

חקרנו רקמת שרירי שלד ב-Bos indicus וב-crossbred bulls כדי להסביר הבדלים באיכות הבשר. כוח הגזירה של וורנר-ברצלר (WBSF) נמצא בטווח שבין 4.7 ק"ג ל-4.2 ק"ג. איזופורמים של שרשרת כבדה של מיוזין חשפו הבדלים בין בעלי חיים, ומדד הפיצול של מיופיבריל סיפק תובנות נוספות לגבי וריאציות של רגישות (WBSF).

תקציר

מחקר זה חקר רקמת שריר ב- Bos indicus ו- crossbred bulls כדי להסביר הבדלים בתכונות איכות הבשר. מתוארות תכונות פגרים, פרמטרים של איכות בשר וחקירות ביוכימיות ומולקולריות של חלבונים מיופיברילריים. תוארו שיטות להערכת pH, שומן תוך שרירי (IMF), צבע בשר (L*, a*, b*), הפסדי מים, רגישות ומבחני ביולוגיה מולקולרית. מתוארים נהלים ספציפיים המפרטים כיול, הכנת דגימות וניתוח נתונים עבור כל שיטה. אלה כוללים טכניקות כגון ספקטרוסקופיה אינפרא אדומה עבור תוכן IMF, הערכת רגישות אובייקטיבית, והפרדה אלקטרופורטית של איזופורמים MyHC.

פרמטרים של צבע סומנו ככלים פוטנציאליים לחיזוי רכות בשר בקר, תכונה איכותית מכרעת המשפיעה על החלטות צרכנים. המחקר השתמש בשיטת כוח הגזירה וורנר-ברצלר (WBSF), וחשף ערכים של 4.68 ו-4.23 ק"ג עבור נלורה ואנגוס-נלור (P <-0.01), בהתאמה. סך כל הפסדי הבישול והניתוחים הביוכימיים, כולל מדד פיצול מיופיבריל (MFI), סיפקו תובנות לגבי שינויים ברכות. סוגי סיבי שריר, במיוחד איזופורמים של שרשרת כבדה מיוזין (MyHC), נחקרו, עם היעדר בולט של איזופורם MyHC-IIb בחיות זבו שנחקרו. הקשר בין MyHC-I לבין רכות בשר חשף ממצאים שונים בספרות, המדגישים את המורכבות של קשר זה. בסך הכל, המחקר מספק תובנות מקיפות לגבי הגורמים המשפיעים על איכות הבשר בשוורים מסוג Bos indicus ו-crossbred (Bos taurus × Bos indicus), ומציע מידע רב ערך לתעשיית הבקר.

מבוא

לברזיל יש את עדר הבקר המסחרי הגדול ביותר בעולם, המונה כ -220 מיליון בעלי חיים ומדורג כיצרן הבשר השני בגודלו, המניב מעל 9 מיליון טון מטרי של פגר שווה ערך בשנה1. מגזר ייצור בקר בקר תורם באופן משמעותי למערכת החקלאית הלאומית, כאשר סך המכירות השנתיות עולה על 55 מיליארד R$. מאז 2004, ברזיל היא שחקנית מפתח בסחר הבשר העולמי, ומייצאת ליותר מ -180 מדינות, המייצאות ~ 50% מסחר הבשר העולמי2.

רכות הבשר בולטת כתכונת האיכות העליונה המשפיעה על שביעות רצון הצרכנים וצריכת הבשר3. על ידי שימוש בשיטות ביוכימיות ואובייקטיביות למדידת רגישות בשר, החוקרים שואפים לספק תובנות חשובות לגבי גורמים כגון גנטיקה של בעלי חיים, טכניקות עיבוד ותנאי אחסון, ובסופו של דבר לשפר את האיכות והעקביות של מוצרי בשר עבור הצרכנים. מידע זה שימושי מכיוון שרכות הבשר צברה חשיבות מוגברת בקבלת החלטות צרכניות במהלך רכישות. יתר על כן, הערכת רגישות בשר מספקת מידע רב ערך לבקרת איכות בתעשיות הייצור והעיבוד של בשר. על ידי ניטור עקבי של הרכות, היצרנים יכולים להבטיח שמוצרי בשר עומדים בתקנים ובמפרטים הרצויים. בהקשר זה, יצרני בקר בקר ברזילאים מאמצים בהדרגה מערכות הזנה אינטנסיביות עם בעלי חיים הכלואים כדי להגדיל את מחזור ההון. מערכת זו מהווה כ -10% טון פגר המיוצר מדי שנה בברזיל 4,5.

הביקוש הגובר לשיפור איכות הבשר על ידי הצרכנים גרם ליצרני בקר בקר להכליא עם גזעים אירופיים, בעיקר אברדין אנגוס6. אסטרטגיה זו שואפת לייצר הכלאות F1 אנגוס-נלור, הידועות בביצועים מעולים, תכונות פגר רצויות ואיכות בשר משופרת בהשוואה לחיות זבו טהורות 7,8. באזורים הטרופיים של ברזיל, מקובל להשתמש בבעלי חיים לא מסורסים (שוורים) בעלי בגרות מתקדמת בחוות גימור, מה שעלול לפגוע בתכונות איכות בשר כגון צבע, שיש ורכות. יש לציין כי סקר מגלה כי 95% מבעלי החיים שסיימו את דרכם במגרשי ההאכלה בברזיל הם זכרים, כאשר 73% הם נלור, אחריהם 22% בעלי חיים מוצלבים ו-5% גנוטיפים אחרים 9,10.

הבנת המנגנונים הביוכימיים העומדים בבסיס רכות הבשר חיונית לשיפור איכות הבשר. היבט מרכזי אחד הוא פרוטאוליזה לאחר המוות, המשפיעה על השלמות המבנית של סיבי שריר11. מדד פיצול המיופיבריל (MFI) הוא מחקר ביוכימי נפוץ המכמת את מידת השפלת המיופיבריל, ומספק תובנות לגבי רכות הבשר12. שיטת MFI כוללת מדידת פיצול של חלבונים myofibrillar, אשר בקורלציה ישירה עם רכות בשר. בדיקה זו משלימה את הערכות איכות הבשר המסורתיות ומציעה הבנה מעמיקה יותר של התהליכים הביוכימיים התורמים לשינויים ברכותיות הבשר.

בהקשר זה, המחקר הנוכחי חקר את שרירי השלד של שוורי Bos indicus לעומת crossbred (Bos taurus × Bos indicus) שסיימו במספוא, במטרה להסביר הבדלים בתכונות איכות הבשר.

פרוטוקול

כל הנהלים עם בעלי חיים עמדו בתקני המחקר האתי שנקבעו על ידי ועדת האתיקה לשימוש בבעלי חיים (CEUA) של "Universidade Estadual Paulista Júlio de Mesquita Filho" - קמפוס בוטוקאטו של UNESP, תחת פרוטוקול 0171/2018.

1. חיות ניסוי

  1. סיימו 30 שוורי נלור (Bos indicus) ו-30 שוורי F1 אנגוס-נלור (Bos taurus × Bos indicus), בני 20-24 חודשים, במגרש האכלה. אכלס את שתי קבוצות בעלי החיים במכלאות קולקטיביות בגודל 5 מ 'x 6 מ' עם רצפת בטון ומצוידות בשקתות מים מסוג צדפה, המאכלסות עד חמישה בעלי חיים בכל מכלאה. ודא שכל בעלי החיים שייכים לאותה קבוצת ניהול (נולדו וגדלו באותה חווה) ונשלחים לאותה תקופת האכלה.
    הערה: במחקר זה, לשוורי נלור היה משקל גוף התחלתי ממוצע של 370.7 ק"ג ואילו לשוורי F1 אנגוס-נלור היה משקל גוף התחלתי ממוצע של 380.8 ± 17 ק"ג.
  2. דיאטת Feedlot
    1. ודאו שהתזונה הסופית מורכבת מ-11.3% חספוס (חציר טיפטון ושקית קנה סוכר) ו-88.7% תרכיזים (גרגרי תירס יבשים טחונים, קמח סויה, דגנים של מזקקות תירס רטובות, מזון גלוטן תירס יבש וליבה מינרלית). האכילו את בעלי החיים במשך 120 יום וספקו את התזונה פעמיים ביום (בשעות 10:00 בבוקר ו-16:00 אחר הצהריים).
  3. שחיטה
    1. רשום את משקל הגוף הסופי (BWf) בסוף תקופת הניסוי. יש לעבד את כל בעלי החיים בבית מטבחיים סמוך, תוך הקפדה על נהלי פיקוח סטנדרטיים. לפני השחיטה, יש לוודא שבעלי החיים עוברים צום של 16 שעות לפחות, תוך הימנעות הן ממזון והן ממים.
      הערה: שוורי F1 אנגוס-נלור הציגו משקל גוף סופי של 615.09 ± 57.53 ק"ג, בעוד שוורי נלור היו במשקל של 545.47 ± 11.45 ק"ג.
  4. הערכת תכונות הפגר
    1. לשקול את פגרי בקר בתחילה ולאחר מכן לחשוף אותם לתקופת קירור ב 2-4 ° C במשך 48 שעות. המדידות כוללות משקל פגר חם (HCW), אזור עין צלעות (REA) ועובי שומן גב (BFT) בממשק הצלעות ה -12/ 13, כפי שהומלץ13. קבע את REA באמצעות שיטת הרשת עם רשת קטנה (18 ס"מ x 13 ס"מ) ולמדוד את BFT במילימטרים באמצעות קליפר.
      1. מדוד את ה- REA בכל פגר באמצעות רשת מרושתת (זהה לזו המשמשת במערכת סיווג התשואה של USDA), המחולקת לריבועים בגודל 1 סמ"ר עם נקודה אחת באמצע. הוסף את כל הריבועים בתוך היקף העקיבה של הצלעות ואת הריבועים לאורך קווי המתאר של העקיבה העוברת דרך הנקודה האמצעית.
      2. מדוד את ה- BFT במיקום ספציפי באתר ההערכה בכל מקום בין הצלעות ה-12 / 13. כדי לקבוע מיקום זה, למדוד את אורך עין הצלעות; לאחר מכן, החל מהגבול המדיאלי "A", קבע נקודה שלושת רבעי הדרך לאורך עין הצלעות ובאמצע הדרך על פני "B". קח קליפר דרך נקודה זו ובזוויות ישרות לצלע שצוינה לממשק בין השומן התת עורי והשומן הבין-שרירי. מדדו את השומן התת עורי על-ידי מיקום הקליפר בזווית ישרה לקו השומן התת עורי, מנקודת הממשק (איור משלים S1).
  5. דגימה
    1. דגמו Longissimus thoracis (LT) מחצי הפגר השמאלי (חלק של ± 12.0 ס"מ בשר), בין הצלעותה-11 וה-13 בכיוון הגולגולת. במעבדה מחלקים את דגימות הבשר לסטייקים של 2.54 ס"מ.
  6. הזדקנות
    1. להעריך את תכונות איכות הבשר לאחר תקופת יישון רטוב של 14 יום בטמפרטורה של 0-2 מעלות צלזיוס באינקובטור ביקוש חמצן ביולוגי (BOD). השתמש סטייקים בעובי 2.54 ס"מ לניתוח צבע בשר, pH, שומן תוך שרירי, אובדן טיהור, יכולת אחיזת מים, רכות אובייקטיבית והפסדי בישול. ארזו את הסטייקים בנפרד בשקיות ניילון לואקום גבוה וחדירות חמצן נמוכה ולאחר שיגיע זמן היישון, שמרו אותם קפואים בטמפרטורה של -20 מעלות צלזיוס עד למועד הניתוח. הפשירו את דגימות הבקר בטמפרטורה של 4°C למשך 24 שעות וחשפו אותן לחמצן למשך 30 דקות ב-4°C (זמן פריחה).

2. pH בשר

  1. למדוד את ה- pH של הבשר באמצעות מד pH דיגיטלי המצויד בבדיקת חדירה. כייל אותו עם מאגרי pH 4.0 ו-7.0 בטמפרטורת חדר של 25°C. מדדו את רמת החומציות של הבשר בשלושה מיקומים של דגימת שריר LT. להקליט באופן ידני את קריאות הנתונים ולאחר מכן לייצא את גליון הנתונים; חשב את הממוצע של שלוש קריאות עבור pH בשר.

3. שומן תוך שרירי

הערה: תכולת השומן התוך-שרירי (IMF) נקבעה באמצעות ספקטרוסקופיית אינפרא אדום קרוב (NIR)14 ובשיטה גרבימטרית15.

  1. הסר את השומן התת עורי משריר LT באמצעות אזמל. לאחר מכן, לטחון הומוגניזציה של הסטייק במשך 5 דקות באמצעות מיקסר, שילוב של כ 180 גרם של המדגם. מניחים את הדגימה בכוס, מקמים אותה בתוך תא הדגימה, ומבצעים תת-סריקה של אזורים שונים בדגימת הבדיקה על ידי סיבוב הדגימה; מזג את האזורים לקבלת התוצאה הסופית.
  2. קח שלוש קריאות עבור כל מדגם. לאחר הומוגניזציה, מניחים את הדגימות בצלחת לקריאה הבאה. הגדר את המכשיר לשידור NIR, עם מונוכרומטור סורג נע הסורק את האזור מ- 850 ננומטר ל- 1050 ננומטר.
  3. יצא את גיליון הנתונים ולאחר מכן חשב את ממוצע שלוש הקריאות עבור קרן המטבע. בטא את התוצאות באחוזים, באמצעות הנוסחה: [(ממוצע ÷ משקל המדגם) × 100].
  4. שלבו הומוגניות של דגימות שריר LT (3.0 גרם) עם תמיסת כלורופורם/מתנול מתנול/כלורופורם (2:1) למשך 2 דקות והעבירו אותן לצנטריפוגה (700 × גרם; 10 דקות; 20°C) כדי להפריד את הפאזה ההידרופילית (העליונה), המוצקה (האמצעית) וההידרופובית (התחתונה).
  5. מסננים את השלב ההידרופובי המתקבל לאחר הצנטריפוגה באמצעות נייר סינון על משפך עם יניקה קלה. מעבירים את התסנין (השלב התחתון; שומנים בכלורופורם) לבקבוק המסומן כשלב השומנים ומעבירים לפחות 5 מ"מ של תסנין לבקבוק שוקל מראש לאחר שנותנים לו לעמוד מספר דקות. לאחר מכן, לרשום את נפח שכבת כלורופורם (לפחות 150 מ"ל) ולשאוף את השכבה האלכוהולית.
    1. הומוגנזה 100 גרם aliquots של המדגם של רקמה טרייה או קפואה במשך 2 דקות עם תערובת של 100 מ"ל של כלורופורם ו 200 מ"ל של מתנול. מוסיפים 100 מ"ל כלורופורם לתערובת, מערבבים 30 שניות, מוסיפים 100 מ"ל מים מזוקקים ומערבבים עוד 30 שניות.
    2. סנן את ההומוגנט דרך נייר סינון על משפך עם יניקה קלה. הפעילו לחץ עם תחתית הכד כאשר השאריות מתייבשות כדי להבטיח התאוששות מקסימלית של הממס.
    3. מעבירים את התסנין לגליל מדורג 500 מ"ל ומניחים לו לעמוד מספר דקות כדי לאפשר הפרדה והבהרה. רשום את נפח שכבת הכלורופורם (לפחות 150 מ"ל) ושאפו את השכבה האלכוהולית.
    4. הקפד להסיר לחלוטין את השכבה העליונה; שכבת הכלורופורם מכילה את השומנים המטוהרים. עבור מיצוי שומנים כמותי, לשחזר את השומנים לכודים בשאריות הרקמה על ידי ערבוב שאריות נייר מסנן עם 100 מ"ל של כלורופורם.
    5. מסננים את התערובת דרך המשפך ושוטפים את צנצנת הבלנדר ושאריות עם סך של 50 מ"ל כלורופורם. מערבבים את התסנין עם התסנין המקורי לפני הסרת שכבת האלכוהול.
      הערה: הסינון הוא בדרך כלל מהיר; הפעל לחץ עם תחתית על השאריות היבשות כדי להבטיח התאוששות מקסימלית של הממס.
  6. יבשו את הדגימות בתנור, קררו אותן במייבש למשך 24 שעות לפחות, הכניסו אותן לתנור בטמפרטורה של 110 מעלות צלזיוס עד לאידוי ממס מלא, קררו אותן עוד יותר במייבש למשך הלילה, ולבסוף שקלו אותן מחדש.
  7. קבע את תוכן קרן המטבע הבינלאומית על ידי חישוב ההפרש בין המשקולות הראשוניות והסופיות של הכד.

4. צבע בשר

  1. כייל את ההתקן באמצעות לוח סטנדרטי שחור ולבן. הניחו את לוחית הכיול הלבנה קרוב למרכז הצלחת. בעת ביצוע כיול, השתמש באזור הסמוך למרכז הצלחת. הכיול הושלם לאחר שהמנורה מהבהבת שלוש פעמים.
  2. בצע מדידות לאחר 30 דקות ב 4 °C (זמן פריחה). קבל קריאות צבע משלושה מיקומים שונים על דגימת שריר LT, בזהירות הימנעות רקמת חיבור ושומן.
  3. בטמפרטורת החדר (20 מעלות צלזיוס), יש לחשב ממוצע ממדידות אלה, כמומלץ16.

5. הפסדי מים

  1. הערכת אובדן טיהור (PL) עבור כל הדגימות. קבע את PL של חלקי ירך בקר על ידי מדידת השונות בין המשקל ההתחלתי לפני ההקפאה לבין המשקל הסופי לאחר הקפאה/הפשרה.
    הערה: אין להעריך את PL של חלצי בקר בקר שלא הוקפאו מעולם.
  2. מדדו את יכולת החזקת המים (WHC) לפי הפרש המשקל של דגימת בשר (כ-1.0 גרם) לפני ואחרי שהייתה נתונה ללחץ של 10 ק"ג במשך 5 דקות17.

6. רכות בשר אובייקטיבית

הערה: מדידת כוח הגזירה של וורנר-ברצלר (WBSF) נערכה כמתואר18,19.

  1. מקמו דגימות על רשת המחוברת לזכוכית עקשנית ומבשלים אותן בתנור חשמלי תעשייתי עד שיגיעו לטמפרטורה סופית של 71 מעלות צלזיוס. לאחר הבישול, מצננים, שוקלים ומקררים את הדגימות בטמפרטורה של 4°C למשך 24 שעות.
  2. קבע הפסדי בישול (CL) באמצעות הנוסחה figure-protocol-1.
    1. לקבוע אובדן טפטוף על ידי שקילת עקשן לפני ואחרי בישול הדגימה. לשם כך, הניחו את הדגימות על רשת מעל זכוכית עקשנית כדי לאפשר ניקוז של מיצי בשר ושומן במהלך הבישול.
    2. קבע את אובדן האידוי על ידי שקילת הדגימה בלבד לפני ואחרי הבישול.
    3. רשום משקלים גולמיים ומבושלים וחשב את אחוז DL כמשקל הטפטוף לאחר הבישול חלקי משקל דגימת הבשר המופשר.
    4. חשב את אחוז אובדן האידוי (EVP) באמצעות הנוסחה [100 - (משקל לאחר בישול) ÷ משקל גולמי × 100].
  3. לקביעת WBSF, חתך שמונה ליבות בקוטר של 1.27 ס"מ באמצעות מנתח מרקם, מצויד להב Warner-Bratzler Shear Force 3.07 מ"מ וקצה חיתוך בצורת V (זווית 60°).
    1. דווח על התוצאות כממוצע של שישה ערכים לדגימה, בקילוגרמים (ק"ג), לאחר ניכוי הקיצוניות הנמוכה והגבוהה19.

7. בדיקה ביוכימית

הערה: פרוטאוליזה לאחר המוות הוערכה על ידי הערכת מדד פיצול המיופיבריל (MFI), בעקבות ההליך המקורי שתואר על ידי Culler et al.20 והותאם לבקר Bos indicus על ידי Borges et al.21.

  1. הומוגנזה של שברים של כ-3 גרם דגימות LT (רקמת שריר נטולת שומן ורקמת חיבור) בתמיסת חיץ המכילה 100 מילימטר אשלגן כלורי, 20 מ"מ אשלגן פוספט ב-pH 7, 1 מילימטר חומצה אתילאנדיאמיןטטראצטית (EDTA), 1 מ"מ מגנזיום כלורי ו-1 מ"מ נתרן אזיד ב-2 מעלות צלזיוס, ואחריו צנטריפוגה (1,000 × גרם למשך 15 דקות ב-4 מעלות צלזיוס).
    1. מרחפים מחדש את המשקע ב-10 נפחים (v/w) של תווך מבודד באמצעות מוט ערבוב, ואז משקעים אותו שוב ב-1,000 × גרם למשך 15 דקות ומרוקנים את הסופרנטנט.
    2. השהה מחדש את המשקע ב -2.5 נפחים (v/w) של תווך מבודד והפרד את רקמת החיבור והפסולת על ידי העברתו דרך מסננת פוליאתילן (18 רשת). השתמש באמצעי אחסון נוספים של 2.5 (v/w) כדי לאפשר למיופיברילים לעבור דרך המסננת.
    3. לקבוע את ריכוז החלבון של ההשעיה של myofibrils באמצעות שיטת biuret של Gornall et al.22. לדלל aliquot של תרחיף myofibril עם מדיום בידוד לריכוז חלבון של 0.5 ± 0.05 מ"ג / מ"ל.
    4. מיד למדוד את הספיגה של מתלה זה ב 540 ננומטר. קבע MFI באמצעות ספקטרופוטומטריה ב- 540 ננומטר. הכפל את הספיגה ב- 200 כדי לקבל את ה- MFI עבור כל דגימה (ודווח עליה כאינדקס ללא יחידת מידה).

8. בדיקת ביולוגיה מולקולרית

הערה: לצורך ניתוח של מיוזין כבד שרשרת (MyHC), החלבון הנפוץ ביותר בשרירי שלד בקר, דגימות LT משתי הקבוצות עובדו בהתאם לפרוטוקול המתואר בספרות23,24.

  1. השג הפרדה אלקטרופורטית באמצעות ג'ל SDS-PAGE הדרגתי (7-10%) וג'ל ערימה 4%. יש למרוח 25 μL מכל דגימה על הג'ל ולהריץ אותו ב-70 V, 28 mA ו-4°C למשך שעה אחת, ולאחר מכן ריצה ב-180 V, 12 mA ו-4°C למשך 29 שעות.
  2. השתמשו בשני חוצצים שונים בריצות: חיץ הג'ל העליון הכולל גליצין, בסיס Tris(hydroxymethyl)aminomethane, נתרן דודציל סולפט (SDS) ומים מזוקקים, ואילו חיץ הג'ל התחתון זהה למאגר העליון, בתוספת מרקפטואתנול.
  3. הכתימו את הג'לים עם Coomassie Blue וצלמו תמונות באמצעות תוכנה מתאימה.
  4. זהה איזופורמים של MyHC (MyHC-I, MyHC-IIa, MyHC-IIx/d) בהתבסס על משקלם המולקולרי (223.900, 224.243 ו- 223.875 kDa, בהתאמה). ביצוע ניתוח כמותי למחצה על ידי צפיפות של הפסים המתאימים לכל איזופורם, תוך שימוש בתוכנה מתאימה.
  5. השתמשו בשריר Rat soleus ובשריר Extensor digitorum longus (EDL) כאמצעי בקרה חיוביים לסיווג איזופורמים של MyHC, תוך שמירת באר אחת בכל ג'ל להעמסת 40 μL של הדגימה המעובדת.
  6. עבור כל הנתונים, בצע את ניתוח השונות (ANOVA) על ידי מבחן F, באמצעות המודל הבא:
    Yij = μ + ti + Ɛij
    כאשר Yij הוא הערך הנצפה של יחידת הניסוי המתייחסת לטיפול i בחזרה j; μ היא ההשפעה הכללית של הממוצע; T הוא אפקט הטיפול (הקבוצה הגנטית), ו-ε הוא הטעות הניסויית.
  7. השווה את האמצעים באמצעות מבחן t של התלמיד ואמץ ערך P < 0.05 כהסתברות הקריטית.

תוצאות

טבלה 1 מציגה את תכונות הפגר של שתי הקבוצות הגנטיות שנחקרו במחקר זה. יש לציין כי זוהו הבדלים (P < 0.01) ב- HCW, REA ו- BFT, כאשר בעלי חיים מוצלבים הציגו ערכים גדולים יותר, מה שמרמז על אפקט הטרוזיס.

משתנה¹נלורהF1 אנגוס x נלורהSEMערך P
BW גמר, ק"ג545.47ב615.09א7.32<.0001
HCW, ק"ג286.87ב325.12א3.26<.0001
REA, סמ"ר75.17ב90.48אמפר1.66<.0001
BFT, מ"מ5.72ב9.16אמפר0.620.001

טבלה 1: תכונות פגר של שוורי נלורה (Bos indicus) ו-F1 אנגוס-נלור (Bos taurus × Bos indicus). a-b אותיות קטנות שונות מציינות הבדלים ב-P < 0.05. קיצורים: BW = משקל גוף; HCW = משקל פגר חם; REA = אזור הצלעות; BFT = עובי שומן גב; SEM = שגיאת תקן של ממוצע.

כמו כן בוצעו השוואות של תכונות איכות הבשר (טבלה 2) ולא נמצאו הבדלים עבור pH בשר, אדמומיות, PL, EVP ו- CL (P > 0.05) בין שוורי נלורה לעומת F1 אנגוס-נלור. עם זאת, שוורים מוצלבים היו בעלי IMF, צהובות, WHC ו- MFI גדולים יותר מאשר שוורי נלור (P < 0.05). כתוצאה מכך, תכונות איכות הבשר של שוורי נלור הושפעו לרעה במונחים של רכות, עם WBSF ו- DL גדולים יותר (בשר קשה יותר), כמו גם WHC נמוך יותר ולחות רבה יותר.

משתנה¹נלורהF1 אנגוס x נלורהSEMערך P
pH5.585.630.060.122
לחות, %74.51 א73.65 ב0.210.017
קרן המטבע הבינלאומית NIRS, %3.79אמפר5.11 ב0.250.002
השיטה הגרבימטרית של קרן המטבע הבינלאומית, %1.95 אמפר3.11 ב0.340.005
קלילות (L*)31.57 אמפר30.98 ב0.580.008
אדמומיות (a*)14.9115.590.370.061
צהבהבות (b*)5.61 אמפר6.19 ב0.170.003
טיהור אובדן, %23.1721.031.220.176
אובדן טפטוף, %3.96 אמפר3.67 ב0.050.039
אובדן אידוי, %22.924.221.150.122
אובדן בישול כולל, %26.828.081.040.764
WHC, %61.363.51.010.042
WBSF, ק"ג4.68 אמפר4.23 ב0.170.002
MFI64.95 א81.76 ב1.540.005

טבלה 2: תכונות איכות בשר של נלורה (Bos indicus) ו-F1 אנגוס-נלור (Bos taurus × Bos indicus).  a-b אותיות קטנות שונות מציינות הבדלים ב- P < 0.05. קיצורים: IMF = תכולת שומן תוך שרירי; WBSF = כוח גזירה וורנר-בלצלר; MFI = אינדקס פיצול myofibril; WHC = יכולת אחיזת מים.

ההבדלים ברכותיות הבשר יכולים להיות קשורים גם להבדלים ב-MyHC IIa (P < 0.01) בין קבוצות ניסוי (איור 1). שוורי F1 אנגוס-נלור הציגו שפע גבוה יותר של MyHC IIa בהשוואה לשוורי נלור. ממצאים אלה מצביעים על כך שעבור בעלי חיים של נלור, התרחש אפנון מסיבים גליקוליטיים מהירים (MyHC IIx) לסיבים גליקוליטיים חמצוניים מהירים (MyHC IIa). לעומת זאת, עבור בעלי חיים F1 אנגוס-נלור, אפנון זה התרחש בעוצמה פחותה, והראה צמיחה היפרטרופית ניכרת של סיבים גליקוליטיים מהירים (MyHC IIx). לפיכך, הביטוי של איזופורמים MyHC-IIa השתנה באופן מובהק בין קבוצות אלה.

figure-results-1
איור 1: אלקטרופורזה של איזופורמים של שרשרת מיוזין כבדה של שריר החזה Longissimus . (A) שוורי נלורה (Nellore) ו-(B) שוורי אנגוס-נלור (Angus-Nellore). (C) אחוז יחסי של איזופורמים MyHC בשריר החזה Longissimus של שתי קבוצות ניסוי (SDS-PAGE gel 7-10%). קיצורים: MyHC = שרשרת כבדה מיוזין; SDS-PAGE = נתרן דודצילסולפט-פוליאקרילאמיד ג'ל אלקטרופורזה. אנא לחץ כאן כדי להציג גרסה גדולה יותר של איור זה.

איור משלים S1: שיטה למדידת עובי השומן האחורי (BFT) בממשק שבין השומן התת עורי לשומן הבין-שרירי. התהליך כולל זיהוי ציוני דרך אנטומיים ספציפיים, כולל הגבול המדיאלי "A" ונקודה שלושת רבעי לאורך עין הצלעות ובאמצע הדרך לרוחב "B". לאחר מכן הקליפר ממוקם בניצב לצלע שצוינה בנקודה B, ומשתרע עד לממשק שבין השומן התת עורי והשומן הבין-שרירי. עובי השומן התת עורי נמדד על ידי מיקום הקליפר בזווית ישרה לקו השומן התת עורי מנקודת הממשק. אנא לחץ כאן כדי להוריד קובץ זה.

דיון

במהלך הערכת פגרים, חיוני למדוד במדויק את תכונות הצמיחה והאיכות לאחר תקופת קירור של 48 שעות כדי לקבל נתונים עקביים וברי השוואה. שני המודלים הביולוגיים הציגו תכונות פגר שונות, במיוחד HCW, REA ו-BFT, אשר עולות בקנה אחד עם ממצאים שדווחו במחקרים אחרים. HCW הממוצע של שוורי נלור מיישר קו עם העדפות השוק הברזילאי, אשר נותן עדיפות לייצור בשר גדול יותר ליחידה מן החי עם תכולת שומן פחותה25. לעומת זאת, בקר מוצלב (Bos taurus × Bos indicus) הוא בעל משקל פגר גבוה יותר וציוני שיש גבוהים יותר, המניבים בשר באיכות חושית מעולה. זה עונה על הביקוש בשוק לבשר בקר עם ערך מוסף גבוה, שכן תכונות אלה קשורות למוצרי בשר פרימיום26.

ערכי ה- pH הממוצעים המתקבלים, הנעים בין 5.3 ל- 5.5, תואמים מאוד את ערכי הספרות המדווחים עבור בשר בקר27, אשר בדרך כלל נעים בין 5.3 ל -5.6. משתני הצבע L*, a*, b* עקביים עם הערכים הממוצעים של בקר בקר שנצפו במחקרים אחרים 7,28. מחקרים אלה דיווחו על משתנים b*, a* ו-L* בטווח שבין 4.0 ל-7.0, 13 עד 16 ו-30.0 עד 32.0, בהתאמה. במבחני איכות בשר אלה, הכנת הדגימות חייבת להיות קפדנית, הכוללת טיפול נכון בדגימות שריר, כולל תהליך יישון סטנדרטי וזמן פריחה לפני הניתוח, כדי להבטיח אחידות. פרוטוקולי כיול ומדידה דורשים שכל המכשירים, כגון מדי pH ומדי צבע, יכוילו במדויק לפני השימוש כדי לשמור על שלמות המדידות.

צבע הבשר נובע מהאינטראקציה של חמצן עם מיוגלובין בשריר, וריכוז המיוגלובין נראה פרופורציונלי לגודל החיה29. ממצאים דומים דווחו על ידי Purchas et al.30 עבור בעלי חיים אירופיים (Bos taurus), שם הם הבחינו באדמומיות וצהבהבות גבוהות יותר בבשר של בקר אנגוס הגדל במהירות בהשוואה לבעלי חיים הגדלים לאט. מחקרים קודמים דיווחו על התועלת הפוטנציאלית של פרמטרי צבע (L*, a*, b*) ככלי לחיזוי רכות בשר בקר הן בחיות אירופה31 והן בחיות זבו32.

בחינת צבע הבשר היא מרכזית, שכן היא מדורגת בין הגורמים העיקריים שנלקחים בחשבון על ידי הצרכנים בעת רכישת בשר, לצד שיקולים של בטיחות מזון (מקור המוצר וסחר), סוג וגודל החתוך, כמו גם שומן ושומן תוך שרירי (שיש). כתוצאה מכך, כדי לשפר את הסבירות של בשר להיות רך ועסיסי, מומלץ לצרכנים להעריך את צבע הבשר, גודל החתוך, ובעיקר, שיש או שומן תוך שרירי ותת עורי33. עם זאת, ניכר כי לצבע יש את ההשפעה המשמעותית ביותר על קבלת ההחלטות במהלך רכישת בשר.

ערך WBSF הממוצע שהתקבל נפל בטווח של 4.0 עד 4.7 ק"ג. ניתוח רגישות אובייקטיבי נעשה שימוש נרחב כדי להעריך את רכות הבשר, שכן הוא נחשב חסכוני יחסית ואינו מחייב פאנליסטים או בדיקות חושיות34. בהתחשב באופי הסובייקטיבי של הערכות צרכנים לגבי מכרז בשר בקר, המושפע מקרן המטבע הבינלאומית35, שיטות אינסטרומנטליות חיוניות לחיזוי דירוגי רכות. בנוסף, רגישותן של שיטות מסוימות, כגון ספקטרוסקופיה תת-אדומה קרובה, מחייבת כיול מדויק ועקביות בהכנת הדגימה; כל סטייה עלולה לגרום לקריאות לא מדויקות.

הרעיון המקורי של מכשיר WBSF עבר כמה שינויים מאז שנות ה-60 36. בהקשר של בשר בקר, שיטה זו תוקנה על ידי Wheeler et al.37. לדברי המחברים, הכנת הדגימות ובישולן חייבות להיות מבוקרות בקפידה: הדגימות ממוקמות על רשת מעל זכוכית עקשנית ומבושלות עד שהן מגיעות לטמפרטורה פנימית של 71 מעלות צלזיוס. לאחר הבישול, הדגימות מקוררות, נשקלות, ומקרר ב 4 ° C במשך 24 שעות כדי לייצב אותם לפני ניתוח נוסף. הפסדי בישול מחושבים באמצעות נוסחאות לאובדן טפטוף ואובדן אידוי, מה שמבטיח שהשינויים במשקל כתוצאה מהבישול מכומתים במדויק. מדידת WBSF היא שלב מכריע, הכולל חתך של שמונה ליבות לדגימה, כאשר הממוצע של שישה ערכי כוח גזירה מדווח לאחר ניכוי קיצוניות, ומספק מדד אמין של רכות בשר. סך הפסדי הבישול במחקר הנוכחי, המיוצגים על ידי הסכום של EL ו-DL, היו דומים לאלה שדווחו בבקר בקר38 שסיים את ההאכלה. יתר על כן, מקובל כי שינויים הנגרמים על ידי חום ברקמת החיבור תורמים לאפקט רגיש. מחקרים הדגימו את ההשפעה של טמפרטורת הבישול הסופי על הרכות, וחשפו שינויים במבנה המיופיברילרי, לפיו גם רכות וגם CL מושפעים מדנטורציה של חלבון39,40. אירועים כימיים או מולקולריים כאלה עשויים להשפיע על תכונות חושיות עקב שינויים ב- WHC.

התוצאות שנצפו לגבי CL ו-WHC תואמות את הציפיות, שכן ידוע היטב שפיזור המים וזמינותם בשרירים ממלאים תפקיד מרכזי בעסיסיות, רכות וטעם41. כתוצאה מכך, DL גבוה יותר ו-WHC נמוך יותר מובילים לבשר קשה יותר ועסיסי פחות, כפי שנצפה במחקר זה עבור שוורי נלור.

ניתוחים ביוכימיים כגון MFI משמשים אינדיקטור לרכות בשר. התוצאות שהתקבלו במחקר הנוכחי מאשרות כי MFI בבשר בקר יורד ככל שערך WBSF עולה, מה שעשוי להצביע על פיצול מיופיברילרי מופחת בבשר קשה יותר. לפיכך, MFI משמש אינדיקטור של proteolysis סיבי שריר, גדל עם ירידה WBSF42. חוקרים דיווחו כי שיעור גבוה יותר של פרוטאוליזה מיופיברילרית הוביל לרכות מוגברת בבשר בקר43 וכבש44. בדיקה ביוכימית זו עבור פרוטאוליזה לאחר המוות כוללת הומוגניזציה של דגימות LT בתמיסת חיץ ספציפית, ואחריה צנטריפוגה ותרחיף, כאשר ריכוז החלבון נקבע בשיטת biuret. לאחר מכן נמדד ה-MFI באמצעות ספקטרופוטומטריה, ומספק מדד המשקף את מידת הפיצול המיופיברילרי. צעדים מבוקרים בקפידה אלה מבטיחים את שלמות ואמינות הנתונים, החיוניים להערכת האיכות ושווי השוק של מוצרי בשר.

יתר על כן, MFI יכול להסביר יותר מ -50% מהשונות ברכות, בבשר מיושן. כאשר חוקרים גזעים או קבוצות שונות, שינויים ברכותם של בשר אינם תלויים אך ורק בגורמים גנטיים. במיוחד עבור שריר LT, כפי שצוין במחקר זה, שונות רגישות מיוחסת בעיקר פרוטאוליזה של חלבונים myofibrillar, ובמידה פחותה, אורך sarcomere ותכולת רקמת חיבור45. עם זאת, הקשר בין WBSF ו- MFI יכול לשמש כלי רב ערך לאיתור בעיות ברכותך בשר הנגרמות על ידי תהליכי אחסון קר לאחר המוות בתעשיית הבשר. חשוב לציין כי בעוד המחקר שלנו מספק תובנות לגבי הבדלים בין סוגי גזעים, הוא אינו מהווה הערכה גנטית מקיפה בשל גודל המדגם וההיקף של המחקר שלנו.

אנליזה מולקולרית דורשת בקרה קפדנית של תנאי אלקטרופורזה וניתוח עוקב של איזופורמים MyHC כדי להבטיח את אמינות ההפרדה והזיהוי של חלבונים. הקפדה על צעדים קריטיים אלה מבטיחה את החוסן והשחזור של ממצאי המחקר. סוג סיבי השריר ממלא תפקיד בסיסי בוויסות הצמיחה ותכונות הרגישות של בשר בקר. חלבוני MyHC הם החלבונים הנפוצים ביותר בשרירי בקר46 והם נחקרים בדרך כלל לזיהוי מולקולרי של סוגי סיבים בכל שריר. כמה איזופורמים של MyHC, כגון MyHC-IIx, הוצעו כסמנים ביולוגיים של רכות בשר בשור בוס47. עם זאת, היו מחקרים מוגבלים שהעריכו את הגנים המקודדים MyHC וכימות האיזופורמים שלהם בחיות זבו (Bos indicus). היעדר איזופורם MyHC-IIb בבעלי החיים הנחקרים תואם את הממצאים שדווחו במחקרים על זיהוי וביטוי MyHC בשרירי השלד של בקר בוגר48. באופן ספציפי, בבקר נלור, מחקרים קודמים לא הצליחו לזהות נוכחות של איזופורם MyHC-IIb על ידי אלקטרופורזה בשריר LT. איזופורם זה נפוץ יותר בגזעי שור בוס בעלי שרירים כפולים, כגון Blonde d'Aquitaine49.

הקשר בין סוג סיבי השריר לבין רגישות בשר בקר היה נושא לוויכוח מתמשך. שונות הדגימה היא גורם משמעותי, שכן הבדלים בהרכב השרירים ובסוגי הסיבים בקרב בעלי חיים יכולים להוביל לתוצאות לא עקביות. גורמים סביבתיים, כולל תזונה ותנאי טיפול, ממלאים גם הם תפקיד מכריע בהשפעה על תכונות איכות הבשר. מגבלות אלה מדגישות את הצורך בבקרה ותקינה מחמירים לאורך כל תהליך המדידה כדי להבטיח תוצאות אמינות והשוואה. בדומה לממצאים במחקר הנוכחי, השפעה שלילית של MyHC-I על רגישות שריר LT דווחה עבור בקר Charolais50,51. לעומת זאת, מחקרים אחרים תיארו השפעה חיובית של MyHC-I על רכות בשר בגזעים שונים, כולל אוברק, סאלרס, לימוזין, שארולה, מונטבליאר, הולשטיין ובלונד ד'אקיטן 52,53,54. ניתן לייחס תוצאות שונות שנמצאו בספרות להבדלי גנוטיפ ולמגבלות של השיטות המשמשות להפרדה וזיהוי של איזופורם זה בשריר LT בקר. חוץ מזה, סביבות רקע שונות ודיאטות שונות יכולות להשפיע גם על איכות הבשר ותכונות סוג השריר.

ניתוחים ביוכימיים, במיוחד MFI, שופכים אור על מנגנוני רגישות בשר לאחר המוות, ומראים את תפקיד המפתח של סוגי סיבי שריר, איזופורמים של שרשרת כבדה מיוזין, והשפעתם על רגישות בשר בקר. היעדרם של איזופורמים מסוימים של MyHC בבקר Bos indicus הוא ציין, עם השלכות על שונות רכות הבקר. בסך הכל, יחסי הגומלין המורכבים של גורמים גנטיים וביוכימיים מווסתים את רכות בשר הבקר ומדגישים את הצורך במחקר נוסף בתחום זה. השילוב של שיטות מרובות כגון מדידת WBSF, ניתוח תוכן IMF ואלקטרופורזה איזופורמית MyHC מסייע להסביר שינויים באיכות הבשר. הפרוטוקולים המפורטים המתוארים מציעים צעדים מדויקים להערכת איכות הבשר, ומבטיחים כי הנהלים יכולים להיות משוכפלים או מותאמים במדויק על ידי חוקרים אחרים. בנוסף, הממצאים מציעים תובנות גנטיות חשובות על ידי הדגשת הבדלים משמעותיים בתכונות איכות הבשר בין Bos indicus לבין שוורים מוצלבים.

גילויים

למחברים אין מה לחשוף. למממנים לא היה כל תפקיד בעיצוב המחקר, באיסוף הנתונים ובניתוחם, בהחלטה על פרסומם או בהכנת כתב היד.

תודות

מחקר זה מומן על ידי FAPESP (מענקים 2023/05002-3; 2023/02662-2 ו- 2024/09871-9), CAPES (קוד מימון 001), CNPq (304158/2022-4), ועל ידי PROPE (מענק IEPe-RC מספר 149) של בית הספר לרפואה וטרינרית ומדעי בעלי חיים, אוניברסיטת סאו פאולו.

חומרים

רשימת החומרים שנעשה בהם שימוש במאמר זה
שםחברהמספר קטלוגהערות
אצטוןמרק, דרמשטדט, גרמניהCAS 67-64-1 | 100014פתרונות המשמשים להפרדות אלקטרופורטיות נוגדן
Anti-MYH-1 Merk, דרמשטדט, גרמניהMABT846נוגדן נגד מיוזין סוליית חולדה
Abcam, מסצ'וסטס, ארצות הבריתab37484שרשרת כבדה מיוזין
נוגדן Anti-Myosin-2 (MYH2)Merk, דרמשטדט, גרמניהMABT840Extensor digitorum longus (EDL)
חממת דרישת חמצן ביולוגית (BOD)TECNAL, Sã o פאולו, ברזילTE-371/240Lיישון בשר
כלורופורם; מגיב אנליטי מוחלטסיגמא-אולדריץ', מיזורי, ארצות הברית67-66-3שומן תוך שרירי
מערכת CIELabKonica Minolta Sensing, טוקיו, יפןCR-400 קולורימטרצבע בשר
Coomassie Blueסיגמא-אולדריץ', מיזורי, ארצות הבריתC.I. 42655)שרשרת כבדה מיוזין
חשמלית תנורVenâ ncio Aires, ריו גרנדה דו סול, ברזילרכות בשר
אתנולמרק, דרמשטדט, גרמניה64-17-5פתרונות המשמשים להפרדות אלקטרופורטיות
חומצה אתילנדיאמינטטראצטיתסיגמא-אולדריץ', מיזורי, ארצות הברית60-00-4פרוטאוליזה לאחר המוות
צלוחיות זכוכיתסיגמא-אולדריץ', מיזורי, ארצות הבריתפתרונות המשמשים ל הפרדות אלקטרופורטיות
גליציןסיגמא-אולדריץ', מיזורי, ארצות הבריתG6761מיוזין שרשרת כבדה
ספקטרוסקופיה אינפרא אדום - FoodScanFoss NIRSystems, Madson, ארצות הבריתFoodScan™ 2שומן תוך שרירי
מגנזיום כלורידסיגמא-אולדריץ', מיזורי, ארצות הברית  7786-30-3פרוטאוליזה לאחר המוות
מרקפטואטנולסיגמא-אולדריץ', מיזורי, ארצות הבריתM6250מיוזין שרשרת כבדה
מתנול, מגיב אנליטי מוחלטסיגמא-אולדריץ', מיזורי, ארצות הברית67-56-1pH שומן תוך שרירי
LineLab, Sã o פאולו, ברזילAKLA 71980Meat pH
PlusOne 2-D Quant KitHealthcare קוד מוצר80-6483-56פרוטאוליזה לאחר המוות
פוליפרופילןסיגמא-אולדריץ', מיזורי, ארצות הבריתפתרונות המשמשים להפרדות אלקטרופורטיות
אשלגן כלוריסיגמא-אולדריץ', מיזורי, ארצות הברית7447-40-7פרוטאוליזה
לאחר המוותאשלגן פוספטסיגמא-אולדריץ', מיזורי, ארצות הבריתP0662פרוטאוליזה לאחר המוות
תוכנת Rוינה, אוסטריהגרסה 3.6.2ניתוח נתונים
נתרן אזידסיגמא-אולדריץ', מיזורי, ארצות הברית26628-22-8פרוטאוליזה לאחר המוות
נתרן דודציל סולפט ( SDS)Sigma-Aldrich, מיזורי, ארצות הברית822050Myosin כבד
שרשרת ספקטרופוטומטרPerkin Elmer, שלטון, ארצות הבריתPerkin Elmer
Lambda 25 UV/Vis		Post-mortem proteolysis
static Analysis SystemSAS, קארי, צפון קרוליינה, ארצות הבריתגרסה 9.1,ניתוח
נתונים מנתח מרקםAMETEK ברוקפילד, מסצ'וסטס, ארצות הברית
מדינות		CTXרכות בשר
טריס (הידרוקסימתיל) אמינומתאןסיגמא-אולדריץ', מיזורי, ארצות הברית77-86-1שרשרת כבדה מיוזין
UltrafreezerIndrel Scientific, Londrina, Paraná, ברזיל.INDREL IULT 335 D -אחסון דגימות
מים טהורים במיוחדElga PURELAB פתרונות מערכת אולטרה יונייםהמשמשים להפרדות אלקטרופורטיות
מערבל גזירה גבוהה Ultra-TurraxMarconi – MA102/E, פיראקיקבה, Sã o Paulo, ברזילפרוטאוליזה לאחר המוות
מד GE LCD

מקורות

  1. Nunes, C. L. deC., Pflanzer, S. B., Rezende-de-Souza, J. H., Chizzotti, M. L. Beef production and carcass evaluation in Brazil. Anim Front. 14 (2), 15-20 (2024).
  2. MAPA. Projeções Do Agronegócio: Brasil 2017/18 a 2027/28 Projeções de Longo Prazo / Ministério Da Agricultura, Pecuária e Abastecimento. Biblioteca Nacional de Agricultura. , BINAGRI. Brasília-DF. (2018).
  3. Bernués, A., Ripoll, G., Panea, B. Consumer segmentation based on convenience orientation and attitudes towards quality attributes of lamb meat. Food Qual Prefer. 26, 211-220 (2012).
  4. Andrade, T. S., et al. Perception of consultants, feedlot owners, and packers regarding management and marketing decisions on feedlots: A national survey in Brazil (Part II). Can J Anim Sci. 100 (4), 759-770 (2020).
  5. de Andrade, T. S., et al. Perception of consultants, feedlot owners, and packers regarding the optimal economic slaughter endpoint in feedlots: A national survey in Brazil (Part I). Can J Anim Sci. 100 (4), 745-758 (2020).
  6. Santiago, B., et al. Comparison of dental carcass maturity in non-castrated male F1 Angus-Nellore cattle finished in feedlot. Food Sci Anim Resour. 41 (3), 554-562 (2021).
  7. Miguel, G. Z., et al. Immunocastration improves carcass traits and beef color attributes in Nellore and Nellore×Aberdeen Angus crossbred animals finished in feedlot. Meat Sci. 96 (2), 884-891 (2014).
  8. Costa, N. V., et al. Carcass and meat quality traits in Nellore and F1 Nellore-Araguaia crosses. Genet Mol Res. 14 (2), 5379-5389 (2015).
  9. Pinto, A. C. J., Millen, D. D. Nutritional recommendations and management practices adopted by feedlot cattle nutritionists: the 2016 Brazilian survey. Can J Anim Sci. 99 (2), 392-407 (2019).
  10. Costa Junior, C., et al. Brazilian beef cattle feedlot manure management: A country survey. J Anim Sci. 91 (4), 1811-1818 (2013).
  11. Huang, C., et al. Proteomics discovery of protein biomarkers linked to meat quality traits in post-mortem muscles: Current trends and future prospects: A review. Trends Food Sci Technol. 105, 416-432 (2020).
  12. Muniz, M. M. M., et al. Use of gene expression profile to identify potentially relevant transcripts to myofibrillar fragmentation index trait. Funct Integr Genomics. 20, 609-619 (2020).
  13. Official United States Standards for Grades of Carcass Beef. United States Standards for Grades of Carcass Beef. USDA. , Available from: https://www.ams.usda.gov/sites/default/files/media/CarcassBeefStandard.pdf 1-20 (1997).
  14. Anderson, S. Determination of fat, moisture, and protein in meat and meat products by using the FOSS FoodScan near-infrared spectrophotometer with FOSS artificial neural network calibration model and associated database: Collaborative study. J AOAC Int. 90 (4), 1073-1083 (2007).
  15. Bligh, E. G., Dyer, W. J. A rapid method of total lipid extraction. Can J Biochem Physiol. 37 (8), 911-917 (1959).
  16. Hernández Salueña, B., Sáenz Gamasa, C., Diñeiro Rubial, J. M., Alberdi Odriozola, C. CIELAB color paths during meat shelf life. Meat Sci. 157, 107889(2019).
  17. Rao, M. V., Gault, N. F. S., Kennedy, S. Variations in water-holding capacity due to changes in the fibre diameter, sarcomere length and connective tissue morphology of some beef muscles under acidic conditions below the ultimate pH. Meat Sci. 26 (1), 19-37 (1989).
  18. Wheeler, T. L., Koohmaraie, M., Cundiff, L. V., Dikeman, M. E. Effects of cooking and shearing methodology on variation in Warner-Bratzler shear force values in beef. J Anim Sci. 72 (9), 2325-2330 (1994).
  19. AMSA. Research Guidelines for Cookery, Sensory Evaluation, and Instrumental Tenderness Measurements of Meat. American Meat Science Association Educational Foundation. , (2015).
  20. Culler, R. D., Parrish, F. C., Smith, G. C., Cross, H. R. Relationship of myofibril fragmentation index to certain chemical, physical and sensory characteristics of bovine longissimus muscle. J Food Sci. 43 (4), 1177-1180 (1978).
  21. Borges, B. O., et al. Polymorphisms in candidate genes and their association with carcass traits and meat quality in Nellore cattle. Pesqui Agropecu Bras. 49 (5), 364-371 (2014).
  22. Gornall, A. G., Bardawill, C. J., David, M. M. Determination of serum proteins by means of the biuret reaction. J Biol Chem. 177 (2), 751-766 (1949).
  23. Chardulo, L. A. L., et al. Gene and protein expression of myosin heavy chain in Nellore cattle comparing growth or meat tenderness traits. Anim Biotechnol. 32 (3), 300-309 (2019).
  24. Vechetti-Júnior, I. J., et al. NFAT isoforms regulate muscle fiber type transition without altering can during aerobic training. Int J Sports Med. 34 (10), 861-867 (2013).
  25. Ferraz, J. B. S., de Felício, P. E. Production systems - An example from Brazil. Meat Sci. 84, 238-243 (2010).
  26. Liang, R. R., et al. Tenderness and sensory attributes of the longissimus lumborum muscles with different quality grades from Chinese fattened yellow crossbred steers. Meat Sci. 112, 52-57 (2016).
  27. Viljoen, H. F., De Kock, H. L., Webb, E. C. Consumer acceptability of dark, firm and dry (DFD) and normal pH beef steaks. Meat Sci. 61 (2), 181-185 (2002).
  28. Lopes, L. S. F., et al. Application of the principal component analysis , cluster analysis , and partial least square regression on crossbreed Angus-Nellore bulls feedlot finished. Trop Anim Health Prod. 52 (6), 3655-3664 (2020).
  29. Oddy, V. H., Harper, G. S., Greenwood, P. L., McDonagh, M. B. Nutritional and developmental effects on the intrinsic properties of muscles as they relate to the eating quality of beef. Aust J Exp Agric. 41 (7), 921-942 (2001).
  30. Purchas, R. W., Burnham, D. L., Morris, S. T. Effects of growth potential and growth path on tenderness of beef longissimus muscle from bulls and steers. J Anim Sci. 80 (12), 3211-3221 (2002).
  31. Wulf, D. M., O’Connor, S. F., Tatum, J. D., Smith, G. C. Using objective measures of muscle color to predict beef Longissimus tenderness. J Anim Sci. 75 (3), 684-692 (1997).
  32. Baldassini, W. A., et al. Meat quality traits of Nellore bulls according to different degrees of backfat thickness: A multivariate approach. Anim Prod Sci. 57 (2), 363-370 (2017).
  33. Chardulo, L. A. L., Silveira, A. C., Vianello, F. Analytical aspects for tropical meat quality assessment. Food Quality, Safety and Technology. Lima, G. P. P., Vianello, F. , Springer-Verlag Wien. 53-62 (2013).
  34. Chen, L., Opara, U. L. Texture measurement approaches in fresh and processed foods - A review. Food Research International. 51 (2), 823-835 (2013).
  35. Luo, L., Guo, D., Zhou, G., Chen, K. An investigation on the relationship among marbling features, physiological age and Warner–Bratzler Shear force of steer longissimus dorsi muscle. J Food Sci Technol. 55 (4), 1569-1574 (2018).
  36. Essex, E. Objective measurements for texture in foods. J Texture Stud. 1, 19-37 (1969).
  37. Wheeler, T. L., Koohmaraie, M., Shackelford, S. D. Standardized Warner-Bratzler shear force procedures for meat tenderness measurement. , Available from: https://www.ars.usda.gov/ARSUserFiles/30400510/protocols/shearforceprocedures.pdf (1995).
  38. Severino, M., et al. Proteomics unveils post-mortem changes in beef muscle proteins and provides insight into variations in meat quality traits of crossbred young steers and heifers raised in feedlot. Int J Mol Sci. 23 (20), 12259(2022).
  39. Bertola, N. C., Bevilacqua, A. E., Zaritsky, N. E. Heat treatment effect on texture changes and thermal denaturation of proteins in beef muscle. J Food Process Preserv. 18 (1), 31-46 (1994).
  40. Palka, K., Daun, H. Changes in texture, cooking losses, and myofibrillar structure of bovine M. semitendinosus during heating. Meat Sci. 51 (3), 237-243 (1999).
  41. Pearce, K. L., Rosenvold, K., Andersen, H. J., Hopkins, D. L. Water distribution and mobility in meat during the conversion of muscle to meat and ageing and the impacts on fresh meat quality attributes - A review. Meat Sci. 89 (2), 111-124 (2011).
  42. Muniz, M. M. M., et al. Use of gene expression profile to identify potentially relevant transcripts to myofibrillar fragmentation index trait. Funct Integr Genomics. 20 (4), 609-619 (2020).
  43. Baldassini, W., et al. Meat quality and muscle tissue proteome of crossbred bulls finished under feedlot using wet distiller grains by-product. Foods. 11 (20), 3233(2022).
  44. della Malva, A., et al. In-depth characterization of myofibrillar muscle proteome changes in lambs fed hazelnut skin by-products. Food Biosci. 53, 102836(2023).
  45. Koohmaraie, M., Kent, M. P., Shackelford, S. D., Veiseth, E., Wheeler, T. L. Meat tenderness and muscle growth: Is there any relationship. Meat Sci. 62 (3), 345-352 (2002).
  46. Lefaucheur, L., et al. Muscle characteristics and meat quality traits are affected by divergent selection on residual feed intake in pigs. J Anim Sci. 89 (4), 996-1010 (2011).
  47. Picard, B., et al. Inverse relationships between biomarkers and beef tenderness according to contractile and metabolic properties of the muscle. J Agric Food Chem. 62 (40), 9808-9818 (2014).
  48. Chikuni, K., Muroya, S., Nakajima, I. Myosin heavy chain isoforms expressed in bovine skeletal muscles. Meat Sci. 67 (1), 87-94 (2004).
  49. Picard, B., Cassar-Malek, I. Evidence for expression of IIb myosin heavy chain isoform in some skeletal muscles of Blonde d’Aquitaine bulls. Meat Sci. 82 (1), 30-36 (2009).
  50. Crouse, J. D., Koohmaraie, M., Seideman, S. D. The relationship of muscle fibre size to tenderness of beef. Meat Sci. 30 (4), 295-302 (1991).
  51. Zamora, F., et al. Predicting variability of ageing and toughness in beef M. Longissimus lumborum et thoracis. Meat Sci. 43 (3-4), 321-333 (1996).
  52. Strydom, P. E., Naude, R. T., Smith, M. F., Scholtz, M. M., Van Wyk, J. B. Characterisation of indigenous African cattle breeds in relation to meat quality traits. Meat Sci. 55 (1), 79-88 (2000).
  53. Renand, G., Picard, B., Touraille, C., Berge, P., Lepetit, J. Relationships between muscle characteristics and meat quality traits of young Charolais bulls. Meat Sci. 59 (1), 49-60 (2001).
  54. Chriki, S., et al. Meta-analysis of the comparison of the metabolic and contractile characteristics of two bovine muscles: Longissimus thoracis and semitendinosus. Meat Sci. 91 (4), 423-429 (2012).

הדפסות חוזרות והרשאות

תגיות

שומן תוך-שריריגזירת וורנר-בראטזלרפרגמנטציה מיופיברילריתסוגי סיבי שריררכות הבשרהפרדה אלקטרופורטית
חקר שריר הלונגיסימוס: חשיפת הקשר שלו לאיכות הבשר אצל Bos indicus ו-Crossbred Bulls
צרו קשר
המליצו לספרייה

פרטיות

תנאי שימוש

מדיניות

זכויות יוצרים © 2026 MyJoVE Corporation. כל הזכויות שמורות.