אפיתל פיגמנט ברשתית (RPE) פועל כמחסום מכריע בין הכורואיד לרשתית, ומקדם את בריאותם ותפקודם של סוגי תאי רשתית, כגון פוטורצפטורים. במאמר זה אנו מתארים פרוטוקול פשוט ויעיל לבידוד וטיפוח RPE של מורין בוגר.
Method Article
אפיתל פיגמנט ברשתית (RPE) פועל כמחסום מכריע בין הכורואיד לרשתית, ומקדם את בריאותם ותפקודם של סוגי תאי רשתית, כגון פוטורצפטורים. במאמר זה אנו מתארים פרוטוקול פשוט ויעיל לבידוד וטיפוח RPE של מורין בוגר.
תאי אפיתל פיגמנט ברשתית (RPE) הם קריטיים לתפקוד תקין של הרשתית. תפקוד לקוי של RPE מעורב בפתוגנזה של מחלות רשתית חשובות, כגון ניוון מקולרי הקשור לגיל, רטיניטיס פיגמנטוזה ורטינופתיה סוכרתית. אנו מציגים גישה יעילה לבידוד RPE מעיניים בוגרות. בניגוד לשיטות שדווחו בעבר, גישה זו מאפשרת בידוד ותרבית של RPE טהור ביותר מעכברים בוגרים. שיטה פשוטה ומהירה זו אינה דורשת מיומנות טכנית נרחבת והיא ניתנת להשגה באמצעות כלים מדעיים בסיסיים וריאגנטים. RPE ראשוני מבודד מעכברי רקע C57BL/6 בגילאי 3 עד 14 שבועות על ידי שאיבה של העין ואחריה הסרת המקטע הקדמי. טריפסיניזציה אנזימטית וצנטריפוגה משמשים לניתוק ולבידוד RPE מכוס העין. לסיכום, גישה זו מציעה פרוטוקול מהיר ויעיל לניצול RPE בחקר תפקוד הרשתית ומחלות.
אפיתל פיגמנט הרשתית (RPE) הוא חד-שכבתי תאי מיוחד המצפה את קרום ברוך הממוקם בין פוטורצפטורים לבין כורואיד1. תאי RPE ממלאים תפקיד קריטי בתפקוד תקין של הרשתית. תאי RPE מובילים גלוקוז וויטמין A לקולטני אור, מקדמים ראייה על ידי איזומריזציה מחדש של רשתית all-trans לתוך רשתית 11-cis ושומרים על מקטעים חיצוניים של photoreceptor באמצעות phagocytosis של מקטעים חיצוניים שנשפכו, להסיר מים מהחלל subretinal, ליצור את מחסום הדם-רשתית החיצוני באמצעות נוכחות של צמתים הדוקים להפריש גורמי גדילה נוירוטרופיים (כגון פיגמנט אפיתל נגזר פקטור, ו-Basic Fibroblast Growth Factor) התומכים בפוטורצפטורים2. תפקוד לקוי של תאי RPE מעורב בפתוגנזה של רטינופתיות שונות, כולל ניוון מקולרי הקשור לגיל, רטיניטיס פיגמנטוזה ורטינופתיה סוכרתית 3,4,5. מחקרי מבחנה המשתמשים בתאי RPE הם קריטיים לשיפור הבנתנו את הפתוגנזה של מחלות אלה. תאי RPE ראשוניים מועדפים בהרבה עבור מחקרים אלה מכיוון שקווי תאי RPE, בעוד שהם זמינים, חסרים מאפיינים עיקריים של תאי RPE ראשוניים.
בעוד שמינים שונים שימשו כמקורות לתאי RPE ראשוניים, לעכברים יש את היתרון של שימוש בשינויים גנטיים כדי לעזור להבין את הפתוגנזה של רטינופתיות. פרוטוקולים שתוארו בעבר לבידוד תאי RPE ממכרסמים דורשים שימוש בבעלי חיים בילודים, הם ארוכים, דורשים מיומנות טכנית, או אינם מתאימים לתרבית 6,7,8,9,10,11,12. אנו מתארים שיטה פשוטה ומהירה לבידוד תאי RPE מעכברים בוגרים המניבים תרביות טהורות ביותר של תאים אלה.
השימוש בבעלי חיים במחקר זה אושר על ידי הוועדה המוסדית לטיפול ושימוש בבעלי חיים (IACUC) של אוניברסיטת קייס ווסטרן ריזרב.
1. הכנת ריאגנטים
2. חילוץ עין עכבר
3. בידוד RPE ראשוני
4. טיפוח RPE
הפרוטוקול המתואר שימש בעכברי רקע C57BL/6. נראה כי מגדר אינו משנה את היכולת לתרבות RPE. עכברים מתחת לגיל 6 שבועות מניבים יריעות RPE מוגבלות בהשוואה לעכברים מבוגרים, וייתכן שיהיה צורך ביותר עיניים כדי להגיע למפגש אופטימלי. לאחר הבידוד, לתאי RPE לוקח בערך 3 ימים להתייצב ולהתחבר לצלחת תרבית התא. כ-24 שעות לאחר הבידוד, תאים עגולים ופיגמנטיים שנראים אנוקלאט החלו לשקוע אך לא נצמדו באופן מלא לצלחת (איור 1A). במהלך 48-72 השעות הבאות, התאים מתחילים להיצמד ולהתפשט תוך שמירה על פיגמנטציה כהה וגרעין שקוף (איור 1B,C). לאחר 5 ימים, RPE הגביר את המפגש והחל ליצור מגעים בין תאים שמזכירים שכבה חד-שכבתית מקוטבת עם צורה משושה (איור 1D).
RPE מבודדים הוערכו לטוהר ותקינות צומת הדוקה לאחר 6 ימים בתרבית. RPE הוערך לראשונה עבור נוכחות של רטינואיד איזומרוהידרולאז או חלבון פיגמנט רשתית אפיתל 65 kDA (RPE65), סמן ספציפי עבור RPE (איור 2, ירוק). בנוסף, כדי ש-RPE ייצור שכבה אחת של תאים פיגמנטיים ובצורת משושה, הצמתים בין תאים חייבים להישאר שלמים. חלבון צומת הדוק -1 או zonula occludens-1 (ZO-1) הם חלבוני פיגומים החיוניים לתחזוקה ולשלמות של הצמתים הצפופים בין תאי RPE בודדים14. תרביות RPE מבודדות שמרו על חלבוני הצומת הבין-תאיים שלהן, שהודגמו על-ידי צביעה של ZO-1 שנמצא בשולי התא (איור 2, אדום). ברגע שתאים אלה מגיעים למפגש ביריעות גדולות, הם שומרים על מגעים בין תאים מבלי לגדול יתר על המידה במשך עד שבועיים. מחקרים קודמים הראו כי ZO-1 מתבטא בצורה גבוהה עד 9 ימים בתרבית15. סמנים נוספים המשמשים בתרביות של RPE ראשוני כוללים קולגן IV, CRALBP ו-OTX211.

איור 1. מורפולוגיה של RPE ראשוני עכבר בתרבית על צלחת פוליסטירן סטנדרטית 24 בארות. (A) RPE ראשוני שבודד משתי עיניו של עכבר C57BL/6 ותורבת בבאר אחת של צלחת פוליסטירן 24 בארות תרבית רקמה לא מצופה מיד לאחר הבידוד. (ב,ג) לאחר 48 שעות ו -72 שעות, RPE ראשוני מתחיל להיצמד לצלחת וליצור תאים פיגמנטיים, דו-חיים. (D) לאחר 5 ימים, מיקרוסקופ שדה בהיר מראה שהתאים ההיפרפיגמנטיים בצורת משושה מגבירים את המפגש ומתחילים ליצור מגעים בין תאים. סרגל קנה מידה: 100 מיקרומטר. לחץ כאן כדי להציג גרסה גדולה יותר של איור זה.

איור 2. סמן ספציפי ל-RPE, RPE-65, וסמן צומת בין-תאי, ZO-1, נשמרים ב-RPE מורין ראשוני מבודד. RPE ראשוני משלושה עכברי C57BL/6 תורבתו במשך 6 ימים לפני הקיבוע עם 4% פרפורמלדהיד. התאים היו חדורים עם 0.1% Triton-X ב-PBS למשך 5 דקות, נחסמו עם 5% סרום עיזים רגיל, והודגרו עם נוגדנים נגד RPE-65 (ירוק) או ZO-1 (אדום). סרגל קנה מידה: 50 מיקרומטר. לחץ כאן כדי להציג גרסה גדולה יותר של איור זה.

איור 3. ייצוג סכמטי פשוט של פרוטוקול בידוד אפיתל פיגמנט ברשתית. לאחר הסרת גלגל העין מהעכבר, לעקר את העין על ידי טבילתה קצרה באתנול 70% לפני המעבר למאגר השטיפה. בחיץ השטיפה, חותכים לאורך האורה-סראטה ומסירים את המקטע הקדמי. הסר את הרשתית והנח את המשקפיים בצינור עם טריפסין/EDTA. טפחו בעדינות על הצינור שעל הדלפק כל 2 דקות למשך 10 דקות בסך הכל, העבירו את הסופרנאטנט לצינור חרוטי של 15 מ"ל, וצנטריפוגו את גלולת RPE. מרחפים מחדש את התאים ואת הצלחת על צלחת 24 או 48 בארות. גרפיקה שנוצרה באמצעות BioRender. אנא לחץ כאן כדי להציג גרסה גדולה יותר של איור זה.
במאמר זה, תיארנו פרוטוקול פשוט לבידוד ולתרבית של אפיתל פיגמנט רשתית מורין. תאי RPE שבודדו מעיניהם של עכברים בוגרים ביטאו סמן ספציפי ל-RPE, RPE65, וסמן צומת בין-תאי, ZO-1. בנוסף, התאים בתרבית התפתחו ליריעות פיגמנטיות משושות בתרבית.
מספר שיטות לבידוד RPE במכרסמים פורסמו בעבר 6,7,8,9,10,11,12. פרוטוקולים רבים מקלפים את שכבות ה-RPE מממברנת הברוך, דורשים מיומנות טכנית ומעלים את הסיכון לנזק ל-RPE או למוות תאי 6,7,9,11,12,16. לפיכך, פרוטוקול זה משתמש בניתוק אנזימטי של שכבת RPE, ולא בדיסוציאציה מכנית, כדי לקדם הישרדות ולשמור על שלמות יריעות RPE בתרבית. שיטה זו מניבה RPE עכברי בתרבית השומרת על מורפולוגיית RPE עם תאים בעלי פיגמנט גבוה ובצורת משושה המשמרים את הביטוי של חלבוני צומת הדוק. בנוסף, פרוטוקול זה חסר שימוש בריאגנטים מורכבים או בחומרים המשמשים בפרוטוקולים אחרים, כגון תוספות קרום חדירות, חלבוני ציפוי מטריצה חוץ-תאיים נוספים, או ריאגנטים מיוחדים לדיסוציאציה של רקמות. במקום זאת, פרוטוקול זה משתמש בעיכול אנזימטי פשוט באמצעות 0.25% טריפסין-EDTA בשילוב עם תסיסה רקמתית כדי לנתק את שכבת RPE מהקרום של ברוך. פרוטוקול זה בוצע בהצלחה על עכברים בגילאי 3 עד 14 שבועות; עם זאת, ייתכן שיהיה צורך בעיניים נוספות כדי להשיג בהצלחה תרבות משולבת בעכברים צעירים.
מספר אתגרים עשויים להתעורר במהלך ביצוע פרוטוקול זה. נדרשת מיומנות טכנית כדי לחתוך במדויק סביב האורה-סראטה ולהסיר בזהירות את הרשתית מבלי להפריע לשכבת ה-RPE. הרשתית עלולה להיות מופרעת בעת חיתוך היקף הסקלרה, אשר יכול לשנות את הכדאיות RPE. חידוד טכניקה זו יכול להתבצע רק באמצעות תרגול חוזר ומתמשך. בנוסף, יריעות RPE עשויות להישאר מחוברות לשכבת הרשתית לאחר ההסרה. כדי למנוע אובדן עודף של RPE, לעורר היפרדות רשתית באמצעות מזרק או להעביר פיפטה מלאה במדיום חיץ כביסה כדי להרים בעדינות את הקצוות של הרשתית מן העין. דגירה היאלורונידאז יכולה גם להקל על ניתוק16. במידה ו-RPE אינם מתנתקים כראוי מהקרום והכורואיד של הברוך, יש להגדיל את זמן הדגירה עם טריפסין באמבט המים. בנוסף, יש להקפיא אליציטוטים של טריפסין טרי בטמפרטורה של -20°C ולהפשיר ישירות לפני השימוש כדי לשמור על פעילות אנזימטית אופטימלית. כישלון של RPE להיצמד לצלחת הבאר לאחר בידוד יכול להתרחש אם תאים נזרעים בצפיפות נמוכה מדי או אם RPE ניזוקו במהלך תהליך הבידוד. בנוסף, הפרוטוקול שלנו אינו דורש ציפוי של חלבוני מטריצה חוץ-תאיים (ECM) לתרבית. עם זאת, חלבוני ECM, כגון פיברונקטין (fibronectin), קולגן IV, למינין (laminin) או קולגן I (collagen I) הוכחו כמגבירים את ההתקשרות של תאים, ויש לשקול אותם אם ההיענות לקויה11.
כדי להגדיל את התשואה של חד-שכבות בתרבית RPE, אגרו לפחות 2-3 עיניים של עכברים תואמי גיל עם אותו רקע גנטי; תאים יכולים לאבד את צורת המשושה והפיגמנט שלהם עם הזמן אם לא נזרעים בצפיפות גבוהה מספיק. עבור עכברים מעל גיל 8 שבועות, 2 עיניים לכל צלחת 24 באר צריך להיות מספיק עבור מפגש אופטימלי. אם עכברים הם מתחת לגיל 8 שבועות, 3-4 עיניים יביא להיצמדות טובה יותר ומפגש. עם הזמן, תאים עשויים להיות רגישים למעבר אפיתל-מזנכימלי (EMT) עם אובדן פיגמנטציה ורכישת צורה מוארכת. תוספת של מעכבי Rho-Kinase ו-TGFβR-1/ALK5, כגון Y27632 ו-Repsox, בהתאמה, יכולה למנוע EMT של תאי RPE בתרבית12. בעוד פרוטוקול הבידוד קצר, ודורש רק שעה אחת לבידוד של 2-4 עיניים, התרבית הראשונית עשויה להימשך עד 7-10 ימים כדי להגיע למפגש מלא. בנוסף, RPE עובר מוגבל, עם סיכון מוגבר של EMT בכל מעבר עוקב.
תאי אפיתל פיגמנט ברשתית הם תאים קריטיים לשמירה על הומאוסטזיס בעין. RPE פועלים כפגוציטים כדי לסייע בתחזוקה של פוטורצפטורים, למנוע נזק לשכבות עצביות מאור, ולפעול כמחסום אפיתל הדוק כדי לווסת את התחבורה17. מחלות המשפיעות ישירות על RPE, כגון ניוון מקולרי הקשור לגיל, רטיניטיס פיגמנטוזה ורטינופתיה סוכרתית, יכולות להחמיר דלקת, להגביר אפופטוזיס ולשבש צמתים תאיים, מה שמוביל להסתברות מוגברת לניוון רשתית ועיוורון17. טיפוח RPE ראשוני מאפשר את המחקר של הפתוגנזה של מחלות עיניים המשפיעות על RPE. לסיכום, הפרוטוקול שלנו מקצר את משך הבידוד ומפשט את הטכניקות והריאגנטים הדרושים תוך שמירה על תרבית תאים ברמת טוהר גבוהה.
אין גילויים כספיים או לא פיננסיים רלוונטיים.
המחקר שדווח בפרסום זה נתמך על ידי NIH Grants R01EY018341 and R01EY019250 (C.S.S.), NIH Grant F31EY035156 (A.H.) ו-P30 EY011373. לארגון המממן לא היה כל תפקיד בעיצוב המחקר או בניהולו.
| Name | Company | Catalog Number | Comments |
|---|---|---|---|
| 0.009 RD Single-Edge Blades | Personna | 941202 | |
| Dulbecco's Modified Eagle's Medium (DMEM) | Corning | 10-013-CV | עם 4.5 גרם/ליטר גלוקוז, L-גלוטמין, סודיום פירובט |
| סרום בקר עוברי | Corning | 35010CV | |
| GlutaMAX, 100x | Gibco | 35050061 | |
| Hank's Balanced Salt Solution | Gibco | 14175095 | ללא סידן, ללא מגנזיום, ללא פנול אדום |
| HEPES תמיסת חיץ (1M) | של Gibco | ||
| MEM, 100x | Gibco | 11140050 | |
| סכין מיקרו-Unitome | BVI Beaver | 377546 | |
| תמיסת פניצילין-סטרפטומיצין, 100x | Corning | 30-002-CI | |
| Microstyrene Microplates | Falcon | 08-772-1 | 24-well או 48-well |
| סרום בקר עוברי | רגיל קורנינג | 35-010-CV | |
| Trypsin-EDTA (0.25%) | Gibco | 25200056 | עם פנול אדום |
| Vannas מספריים | Fine Science | Tools 10091-12 |
Request permission to reuse the text or figures of this JoVE article
Request Permission