הרשמה ל-JoVE נדרשת לצפייה בתוכן זה. התחברו או התחילו בגרסת ניסיון בחינם.

מאמר שיטה

עיבוד יעיל של תאי עזר זקיקי T שקדים וניתוח פונקציונלי באמצעות ציטומטריית זרימה בממדים גבוהים

957 צפיות

⸱

DOI:

10.3791/67188

⸱

11 ביולי 2025

 ,  ,  ,  ,  ,  , 
1Cell Signaling and Immunity Section, Laboratory of Immune System Biology, National Institute of Allergy and Infectious Diseases, National Institutes of Health, 2Laboratory of Immunogenetics, National Institute of Allergy and Infectious Diseases, National Institutes of Health, 3Rheumatology Fellowship Training Program, National Institute of Arthritis and Musculoskeletal and Skin Diseases, National Institutes of Health, 4Division of Pediatric Otolaryngology, Children's National Hospital, 5Division of Otolaryngology, Department of Surgery, George Washington University School of Medicine and Health Sciences

במאמר זה

סיכום

כאן, אנו מציגים פרוטוקול לאיסוף ועיבוד דגימות שקדים, פנוטיפ באמצעות ציטומטריית זרימה ספקטרלית בממדים גבוהים וביצוע אנליזה ללא פיקוח.

תקציר

תאי עזר זקיקי T (Tfh) הם תת-קבוצה של תאי עזר CD4+ T המסייעים בהחלפת איזוטיפ של תאי B, היווצרות מרכז נבט (GC), היפרמוטציה סומטית והבשלת זיקה, ובכך עוזרים לתאם תגובות חיסוניות הומורליות אדפטיביות ברקמות לימפה משניות במהלך זיהום, אוטואימוניות וחיסון. הבנת ההתפתחות והתפקוד של תאי Tfh חיונית לתכנון חיסונים יעילים ולפיתוח אסטרטגיות טיפול ממוקדות למחלות הכוללות אוכלוסייה זו. תאי שקדים אנושיים הם איברי לימפה ריריים נגישים. הם מציעים הזדמנות ייחודית ליצור פרופיל של אוכלוסיות חיסוניות שונות כמו תאי Tfh ו-GC, לחקור אינטראקציות בין תאים, להעריך תפקודים תאיים דינמיים ולחשוף את מנגנוני הבקרה שלהם ברמת האיברים. בנוסף, תרביות מבחנה של תאי שקדים פשוטות לעיבוד ומאפשרות הערכה של הביולוגיה של תאי Tfh בתנאים שונים. כאן, אנו מציגים פרוטוקול לאיסוף, בידוד, שימור ותרבית של תאי שקדים אנושיים. אנו מתארים גם שני לוחות ציטומטריית זרימה ספקטרלית אופטימליים המיועדים לאפיון מעמיק של תאי Tfh. לבסוף, תוך שימוש בטיפול במעכב חלבון פוספטאז 2A (PP2A) כדוגמה, אנו מדגימים את היעילות והעוצמה של ניתוחים לא מפוקחים של נתוני ציטומטריית זרימה בממדים גבוהים, וחושפים ביעילות הבדלים הנגרמים על ידי טיפול בקנה מידה רב-ממדי.

מבוא

תאי עזר זקיקי T (Tfh) הם תת-קבוצה מובחנת של תאי T מסייעים CD4+ החיוניים להיווצרות ותפקוד של מרכזי נבט (GCs) וייצור נוגדנים של תאי B. תאי Tfh מקורם בתאי CD4+ T נאיביים באמצעות אינטראקציות עם תאים מציגי אנטיגן ושילוב של גורמים פנימיים וחיצוניים, כולל איתות קולטני תאי T, אינטראקציות קוסטימולטוריות עם תאי B, ציטוקינים וכימוקינים1. תאי Tfh מבטאים CXCR5 ו-PD-1, המנחים את מיקומם בתוך ה-GC או בקרבתו. BCL-6 הוא גורם השעתוק הראשי הקריטי להתפתחות, תחזוקה ותפקוד Tfh 1,2. תאי Tfh הם חיוניים להגברת תגובות חיסוניות הומורליות, במיוחד בתגובות חיסון ובהגנה מפני פתוגנים חיידקיים וויראליים. תגובות חריגות של תאי Tfh מעורבות בהפרעות שונות, כולל מחלות אוטואימוניות, כשל חיסוני ופוטנציאל לצורות מסוימות של סרטן 3,4,5,6. הבנת תפקודם והרגולציה שלהם, אם כן, חשובה לפיתוח אסטרטגיות חיסון וטיפוליות יעילות7.

בניגוד לתאי CD4+ T מסייעים אחרים כמו Th1, Treg ו-Th17, שעבורם מערכות התמיינות במבחנה מבוססות היטב 8, תאי Tfh מורכבים יותר למחקר מכיוון שהתפתחותם כרוכה באינטראקציות דינמיות בין תאים ומבנים אנטומיים מיוחדים7. לפיכך, מחקרים על תאי Tfh הסתמכו במידה רבה על פנוטיפ ex vivo של תאי Tfh במחזור היקפי אנושי (cTfh) ומודלים של עכברים in vivo . לכן חקירת הוויסות של מולקולות ספציפיות על תאי Tfh היא מאתגרת, במיוחד עבור תאי Tfh אנושיים9. לפיכך, מחקר מעמיק ex vivo של תאי Tfh שמקורם ברקמות לימפה חיוני לשיפור ההבנה שלנו לגבי תאי Tfh אנושיים.

שקדים, כאיברי לימפה משניים, מכילים אוכלוסיות תאים ייחודיות שאינן קיימות בדם היקפי, כגון תאי קדם-Tfh (CXCR5intPD-1int CD4+) ו-GC-Tfh (CXCR5hiPD-1hi CD4+), שניהם חיוניים ביצירת GCs. יתר על כן, השקדים הפלאטיניים הם חלק מהרקמות הנפוצות ביותר שהוסרו בניתוחי ילדים והם נגישים בקלות, מה שהופך אותם למקור רקמות אנושיות שלא יסולא בפז לחקר מנגנונים חיסוניים מורכבים הכוללים תאי Tfh. מכיוון שהם ממוקמים בדרכי הנשימה העליונות, אתר עיקרי לזיהומים נגיפיים בדרכי הנשימה, השקדים מציעים רקמה מועילה לחקירת תגובות חיסוניות לזיהומים נגיפיים כאלה. לדוגמה, המעבדה שלנו אפיינה בעבר תאי Tfh בשקדים ואדנואידים של ילדים שהחלימו מ-COVID-19 והשוותה את הרקמות הללו לאלו מבקרות לא נגועות10. כאן, אנו מתארים את הפרוטוקול שלנו לעיבוד ואחסון תאי שקדים. באמצעות שקדים שטופלו במעכב PP2A כדוגמה, אנו מפרטים כיצד לאפיין תאים אלה באמצעות ציטומטריית זרימה ספקטרלית בממדים גבוהים ומנתחים את הנתונים באמצעות ניתוח לא מפוקח.

הגישה מוגבלת. התחברו או התחילו תקופת ניסיון כדי לצפות בתוכן זה.

פרוטוקול

הקוד האתי של ההסתדרות הרפואית העולמית (הצהרת הלסינקי) בוצע בכל המחקר בבני אדם במחקר זה. דגימות שקדים אנושיים התקבלו מחולים עם היפרטרופיה של אדנוטונסילר הגורמת להפרעות נשימה בשינה או דום נשימה חסימתי בשינה, שמקורם במחלקה לרפואת אף אוזן גרון ילדים, בית החולים הלאומי לילדים, וושינגטון די.סי., ארה"ב. מחקר זה קיבל אישור מועצת הביקורת המוסדית (IRB) בבית החולים הלאומי לילדים (פרוטוקול IRB מספר 00009806). הסכמה מדעת נחתמה על ידי ההורים או האפוטרופוסים של כל המשתתפים הרשומים, והסכמה התקבלה ממשתתפים קטינים בני 7 ומעלה.

1. איסוף שקדים אנושיים ובידוד ואחסון של תאים בודדים

  1. בידוד של תאים בודדים בשקדים
    1. איסוף דגימות כירורגיות
      1. השג שקדים ממטופלים שעברו כריתת שקדים ואסוף את חלקי הרקמה הטרייה בחדר הניתוח בצינור צנטריפוגה של 50 מ"ל מלא ב-25-35 מ"ל של מדיום שקדים סטרילי קר כקרח: RPMI בתוספת 5% סרום בקר עוברי מומת בחום (FBS), 0.05 מ"ג/מ"ל גנטמיצין, 10 מ"מ גלוטמין ותערובת אנטיביוטיקה-אנטי-פטריית (100 יחידות/מ"ל סטרפטומיצין, 100 יחידות/מ"ל פניצילין, ו-0.25 מיקרוגרם/מ"ל אמפוטריצין B).
        הערה: ניתן לאחסן שקדים במדיום הנ"ל בטמפרטורה של 4 מעלות צלזיוס למשך הלילה ולעבד אותם למחרת. אובדן מינימלי של כדאיות התאים נצפה עם אחסון לילה לעומת עיבוד באותו יום (איור 1A). ניתן לשלוח שקדים גם בן לילה על קרח.
    2. עיבוד שקדים
      הערה: כל המדיה, המאגרים וכלי הניתוח חייבים להיות סטריליים, ובידוד תאי השקד צריך להתבצע על קרח במכסה מנוע ביולוגי.
      1. מניחים את השקדים על צלחת תרבית תאי פלסטיק בגודל 60 מ"מ המכילה 5 מ"ל של מדיום שקדים צונן. עבדו על קרח. בעזרת פינצטה סטרילית ומספריים או אזמל, הסירו בזהירות את כל קרישי הדם, השומן ורקמת החיבור הנראים לעין (איור 1B,C).
      2. העבירו את השקדים לצלחת תרבית תאים חדשה בגודל 60 מ"מ עם 5 מ"ל של מדיום שקדים קר כקרח. פורסים את חתיכות השקד לשברים של 3-5 מ"מ.
      3. מכינים צלחת תרבית תאים חדשה בגודל 60 מ"מ עם 10 מ"ל מדיום שקדים קרים ומניחים מסננת תאים של 70 מיקרומטר בתבשיל.
      4. העבירו את שברי השקדים למסננת ומרסקים את שברי השקדים באמצעות קצה הבוכנה של מזרק סטרילי של 3 מ"ל דרך המסננת.
      5. אוספים את המדיום המכיל תאים מחוץ למסננת בצלחת ומעבירים לצינור חרוטי של 50 מ"ל.
      6. מוסיפים לתבשיל עוד 10 מ"ל מדיום שקדים עם המסננת, מרסקים את שברי השקדים בעזרת הבוכנה ואוספים את המדיום בצינור החרוטי. עבור שקדים גדולים, חזור על שלב זה 2-3 פעמים יותר עד שנשארים רק שברי רקמת חיבור במסננת. הכניסו את הרקמה הנותרת והצלחות המשומשות לשקית ביולוגית ולפסולת הרפואית.
      7. מלאו את הצינור החרוטי של 50 מ"ל למעלה במדיום שקדים.
      8. צנטריפוגה בטמפרטורה של 400 × גרם למשך 5 דקות בטמפרטורה של 4 מעלות צלזיוס.
        הערה: הארכת הצנטריפוגה ל-20 דקות עשויה להגדיל את התשואה.
      9. הסר את הסופרנטנט על ידי יניקה בזהירות או פיפטינג החוצה והשהה מחדש את הכדור ב-5 מ"ל של מאגר אמוניום-כלוריד-אשלגן (ACK) בטמפרטורת החדר (RT) כדי ליז כדוריות דם אדומות. דגירה למשך 5 דקות ב-RT, ולאחר מכן הוסף 35 מ"ל של PBS צונן כדי למנוע ליזה נוספת. צנטריפוגה בחום של 400 × גרם למשך 5 דקות בטמפרטורה של 4 מעלות צלזיוס.
      10. שוטפים פעם אחת עם 50 מ"ל PBS צונן וצנטריפוגה. השעו מחדש עם 10 מ"ל PBS ותאי מתח דרך מסננת פלסטיק של 70 מיקרומטר. ספירת תאים.
  2. שימור בהקפאה של תאי שקדים
    1. הכן מדיום הקפאה (90% FBS מומת חום ו-10% דימתיל סולפוקסיד (DMSO)).
      הערה: ניתן לאחסן בטמפרטורה של 4 מעלות צלזיוס עד חודש.
    2. צנטריפוגה את מתלה התאים (שלב 1.1.2.10) ב-400 × גרם למשך 5 דקות ב-4 מעלות צלזיוס. השלך את הסופרנטנט והשהה מחדש את כדור התא עם מדיום הקפאה.
      הערה: אנו ממליצים להקפיא את התאים בצפיפות של 10 × 106 עד 50 × 106 תאים/מ"ל של מדיום הקפאה11.
    3. Aliquot 0.5-1 מ"ל של תרחיף התאים לקריובילים סטריליים. הקפיאו את הבקבוקונים במיכלי הקפאה מבוקרי קצב במקפיא של -80 מעלות צלזיוס. העבירו את הבקבוקונים למיכל אחסון המכיל חנקן נוזלי תוך שבוע לשימור לטווח ארוך.
  3. הפשרת תאים קפואים
    הערה: גישת הפשרה בדילול רציף המוזכרת מפרוטוקול הכנת דגימה לריצוף RNA של תא בודד מתוארת להלן12. שיטות הפשרה אחרות עשויות גם הן לעבוד, אולם מצאנו כדאיות תאים גדולה יותר בגישה הזו בהשוואה להכנסת תאים מיד למאגר הפשרה חם (איור 1D). ניתן להכין את מאגר הכביסה מבעוד מועד. מאגר ההפשרה מורכב ממאגר כביסה בתוספת 0.1 מ"ג/מ"ל DNase I (DNase I יש להוסיף ממש לפני תחילת ההפשרה). הגדלת זמן הצנטריפוגה לדקה / מ"ל (עבור צינורות של 15 מ"ל) היא אופציונלית כדי להגדיל את תפוקת התא.
    1. יש לחמם אמבט מים ל-37 מעלות צלזיוס. מחממים מראש את ההפשרה ואת מאגר הכביסה באמבט המים של 37 מעלות צלזיוס.
      הערה: כל שטיפת התאים מבוצעת ב-RT.
    2. הפשירו את הקריוביאלים באמבט המים של 37 מעלות צלזיוס למשך 2-3 דקות מיד לאחר הוצאתם מהאחסון. הימנע מטבילה מלאה של הבקבוקון באמבט המים. הוציאו את הבקבוקון מאמבט המים בזמן שגביש קרח קטן נשאר גלוי.
    3. העבירו בעדינות תאים מופשרים לצינור חרוטי של 15 מ"ל באמצעות קצה פיפטה רחב קדח במכסה המנוע של בטיחות ביולוגית. שטפו את הקריוביאל עם 0.5 מ"ל של מאגר הפשרה שחומם מראש, והוסיפו את השטיפה טיפה אחר טיפה (טיפה אחת כל 5 שניות) לצינור החרוטי של 15 מ"ל, תוך נער בעדינות את הצינור לערבוב.
    4. לדלל תאים ברצף בצינור החרוטי של 15 מ"ל על ידי הוספה הדרגתית של 2 מ"ל ולאחר מכן 4 מ"ל של מדיום עם זמן המתנה של ~1 דקה בין תוספות. מוסיפים בינוני בקצב של 1 מ"ל כל 3-5 שניות לשפופרת, מסתחררים בעדינות לערבוב.
    5. צנטריפוגה ב 400 × גרם למשך 5 דקות ב- RT.
    6. הסר את הסופרנטנט; להשעות מחדש את גלולת התא ב-300 מיקרוליטר של מאגר הפשרה; ודגירה ב-RT למשך 5 דקות.
    7. הוסף 10 מ"ל של מאגר כביסה (ללא DNase I). שוב צנטריפוגה ב -400 × גרם למשך 5 דקות ב- RT.
    8. שטפו פעם נוספת: הסירו את חומר העל והשעו מחדש את כדור התא ב-10 מ"ל של מאגר כביסה. צנטריפוגה ב-400 × גרם למשך 5 דקות ב-RT.
    9. מסננים את התאים דרך מסננת של 70 מיקרומטר. צנטריפוגה שוב למשך 5 דקות ב-400 × גרם ב-RT וספרו את התאים. השעיה במדיום תרבותי.

2. מדידת ביטוי של ציטוקינים תוך-תאיים וגורמי שעתוק לאחר טיפול ex vivo

הערה: כאן, אנו מפרטים את השיטה שלנו לאפיון פנוטיפי של תאי Tfh שקדים באמצעות שני לוחות ציטומטריית זרימה בממדים גבוהים. בהתחשב בכך שפעילות PP2A חיונית לביטוי אופטימלי של חלבון BCL-6 ולהתמיינות Tfh4, אנו מדגימים את הערכתנו לגבי תחזוקת תאי Tfh ותפקודם באמצעות בחינת תאי שקדים שטופלו במעכב PP2A קנתרדין (CAN).

  1. צביעה ציטומטרית זרימה
    1. צביעת ציטוקינים תוך-תאיים
      הערה: הדגירה מבוצעת בחושך. ריאגנטים, נוגדנים והכמויות שלהם לכל באר המשמשת בשני הפאנלים מפורטים בטבלת החומרים. כדי להעריך דה-גרנולציה של תאי T, הנוגדן נגד CD107a מתווסף במהלך שלב הטיפול כדי למזער תוצאות שליליות כוזבות הנגרמות על ידי הפנמתו13.
      1. לוח 2 × 106 תאי שקדים עם 200 מיקרוליטר של מדיום תרבית (1 × 107 תאים/מ"ל) בבאר צלחת תחתונה U של 96 בארות עם הכמויות הבאות של מעכב PP2A CAN למשך 16 שעות: בקרת רכב, 3 מיקרומטר ו-6 מיקרומטר.
        הערה: CAN הורכב מחדש ב-0.1 מיליון עם 1% DMSO.
      2. הוסף מוננסין (0.7 מיקרוליטר/מ"ל), ברפלדין (1:1,000), פורבול מיריסטט אצטט (50 ננוגרם/מ"ל, PMA), יונומיצין (1,000 ננוגרם/מ"ל) ו-2 מיקרוליטר אנטי-CD107a לכל באר למשך 2.5 שעות בחממה של 5% CO2 ב-37 מעלותצלזיוס.
      3. צנטריפוגה מכתים נוגדנים ב-~16,000 × גרם למשך 3-5 דקות ב-4 מעלות צלזיוס להסרת אגרגטים של נוגדנים. הכן את תערובת הנוגדנים על פני השטח לשלב 2.1.1.8, הכולל את כל הנוגדנים על פני השטח למעט קולטני הכימוקין, Brilliant Stain Buffer Plus ומאגר FACS (נפח כל אחד מהם מצוין בטבלת החומרים, סה"כ 112 מיקרוליטר תערובת לכל תגובה).
      4. לאחר השלמת 2.5 שעות בתרבית, שטפו את התאים פעמיים עם 200 מיקרוליטר PBS קר כקרח על ידי צנטריפוגה ב-400 × גרם למשך 2 דקות ב-4 מעלות צלזיוס. בין כביסות, השליכו את הסופרנטנט על ידי היפוך הצלחת במהירות. בצע צביעה באותה צלחת.
      5. דגרו את התאים ב-100 מיקרוליטר לבאר של 1:800 צבע כחול חי/מת מדולל ב-PBS למשך 15 דקות ב-RT. שטפו פעמיים עם 200 מיקרוליטר של מאגר FACS.
      6. השעו מחדש את התאים עם חוסם מונוציטים כתמים אמיתיים (חוסם מונוציטים של 5 μL + מאגר FACS של 45 μL לבאר) למשך 5 דקות ב-RT.
      7. הוסף ברצף נוגדנים לקולטן כימוקין ישירות לתגובת הצביעה (תחילה, anti-CXCR3 ו-anti-CCR7 למשך 10 דקות כל אחד, ולאחר מכן תערובת של anti-CXCR5 ו-anti-CCR6 יחד עם 10 μL של Brilliant Stain Buffer Plus למשך 5 דקות ב-RT). מערבבים היטב לאחר כל הוספה על ידי פיפטינג למעלה ולמטה מספר פעמים. ראה טבלת החומרים לנפח נוגדנים.
      8. הוסף את תערובת הנוגדנים על פני השטח שהוכנה בשלב 2.1.1.3 ישירות לתגובת הצביעה ודגירה למשך 30 דקות ב-RT. נפח הצביעה הכולל לתגובה הוא 180 מיקרוליטר: חוסם מונוציטים של 50 מיקרוליטר במאגר (ראה שלב 2.1.1.6) + 18 מיקרוליטר של נוגדנים לקולטן אנטי-כימוקין (ראה שלב 2.1.1.7) + 112 מיקרוליטר של תערובת נוגדנים על פני השטח (ראה שלב 2.1.1.3).
      9. שטפו פעמיים עם 200 מיקרוליטר של מאגר FACS קר.
      10. השעו מחדש את התאים ודגרו עם 80 מיקרוליטר/באר של מאגר קיבוע מבוסס פרפורמלדהיד ב-RT למשך 20 דקות.
      11. הוסף 160 מיקרוליטר של מאגר חדירות 1x לכל באר, שכבר מכיל מאגר קיבוע. צנטריפוגה את הצלחת ב-400 × גרם למשך 2 דקות ב-RT ושטיפה 1x עם 200 מיקרוליטר של מאגר חדירה.
      12. הכן תערובת נוגדנים לציטוקינים תוך-תאיים (ICS), הכוללת נוגדנים נגד ציטוקינים, Brilliant Stain Buffer Plus ומאגר חדירות (נפח כולל 50 מיקרוליטר לבאר, טבלת חומרים). דגרו את התאים עם תערובת נוגדנים ציטוקינים תוך-תאית זו ב-RT למשך 30 דקות.
      13. יש לשטוף פעמיים עם מאגר חדירות של 200 מיקרוליטר לבאר. השעיה מחדש עם 200 μL/באר של חוצץ FACS.
      14. אחסן את התאים המוכתמים ב-4 מעלות צלזיוס בחושך ורכוש נתונים על ציטומטר זרימה ספקטרלי תוך 24 שעות כדי למזער את אובדן עוצמת הצביעה14.
    2. צביעת גורם שעתוק גרעיני
      1. תרבית התאים עם CAN כמו בשלב 2.1.1.1 (מבלי לגרות את התאים).
      2. הוסף נוגדן CD40 אנטי אנושי (0.5 מיקרוגרם/מ"ל) למדיום התרבית ותרבית עם תאים למשך 15 דקות לפני תחילת הצביעה. אם תאים מגורים, הוסף נוגדן זה 15 דקות לפני תחילת הגירוי כדי למנוע הפנמה של CD40L עם ההפעלה15,16.
      3. צנטריפוגה של הנוגדנים המכתימים והכנת תערובת הנוגדנים על פני השטח בדומה לשלב 2.1.1.3: נוגדנים על פני השטח בטבלת החומרים, 10 מיקרוליטר/באר של Brilliant Stain Buffer Plus, ו-54.1 מיקרוליטר/באר של מאגר FACS.
        הערה: נפח הצביעה הכולל לבאר הוא 180 מיקרוליטר: 50 מיקרוליטר של חוסם מונוציטים במאגר + 13 מיקרוליטר של נוגדנים לקולטן כימוקין + 117 מיקרוליטר של תערובת נוגדנים על פני השטח.
      4. שטפו את התאים ובצעו צביעה LIVE/DEAD Blue וצביעה ושטיפות על פני השטח כמו בשלבים 2.1.1.5-2.1.1.8.
        הערה: הנוגדן נגד CXCR3 אינו כלול בפאנל זה.
      5. תקן את התאים עם 80 מיקרוליטר של מאגר קיבוע גורם שעתוק גרעיני מ-FoxP3/Transcription Factor Staining Buffer. דגירה למשך 30 דקות ב-RT.
      6. שטפו את התאים עם מאגר חדירות כמו בשלב 2.1.1.11.
      7. הכן את תערובת הנוגדנים של גורם השעתוק התוך-תאי (TF), הכוללת נוגדנים לגורם אנטי-שעתוק המפורטים בטבלת החומרים, 10 מיקרוליטר של מאגר כתמים מבריק פלוס, ו-16 מיקרוליטר של מאגר חדירות (נפח כולל 40 מיקרוליטר לבאר). דגרו את התאים בתערובת זו למשך שעה בטמפרטורה של 4 מעלות צלזיוס.
      8. לשטוף ולרכוש על ציטומטר ספקטרלי כמו בשלבים 2.1.1.13-2.1.1.14.

3. ניתוח ללא פיקוח של נתוני ציטומטריית זרימה בממדים גבוהים

הערה: תוכנות, חבילות והגרסאות שלהן המשמשות לניתוח מפורטות בטבלת החומרים. לכידות מסך משלבים 3.2 עד 3.4 נמצאות בקובץ משלים 1. קבצי Script לדוגמה משלבים 3.5 עד 3.7 נמצאיםבקובץ השלמה S 2 ובקובץ משלים 3, שלבים 3.8 עד 3.9 נמצאים בקובץ משלים 4 ובקובץ משלים 5. קבצי ICS גולמיים וקבצי TF גולמיים עבור הסקריפטים מסופקים בקובץ משלים 6 ובקובץ משלים 7, בהתאמה.

  1. פתח את סביבת העבודה של תוכנת ניתוח ציטומטריית הזרימה שבה מאוחסנים קבצי ".fcs" והשלם את השער כפי שמוצג באיור 1E.
  2. לחץ לחיצה ימנית על צומת היעד (תאי CD4+ T במקרה זה). בחר בחר צמתים שווי ערך.
  3. לחץ שוב באמצעות לחצן העכבר הימני על צומת היעד. בחר ייצוא/שרשור אוכלוסיות.
  4. המתן לפתיחת החלון אוכלוסיות: ייצוא או שרשור , בחר ערכי ערוץ CSV ובחר את היעד עבור קבצים מיוצאים. כלול את כל התאים בתיבה כלול אירועים ובחר את כל הפרמטרים בתשלום בתיבה פרמטרים . הרחיבו את האפשרויות המתקדמות, הקלידו קידומת לשינוי שמות הקבצים ולחצו על 'ייצוא' כדי לייצא את הקבצים לתיקיית היעד (ייצאו קובץ .csv אחד לכל דוגמה).
  5. קרא את קבצי "*.csv" המיוצאים עם R (אחד לכל דוגמה). הקצה מזהה לדוגמה לכל תא ושלב תאים מכל הדגימות למסגרת נתונים אחת.
  6. הוסיפו או מזגו מטא-נתונים (מידע נוסף על דוגמאות) למסגרת הנתונים.
  7. דגימה אקראית של מספר שווה של תאים לדגימה עבור הניתוח הבא. שלב זה הוא אופציונלי.
    הערה: בדוגמה זו, 8,000 תאי CD4+ T עברו דגימת הפחתה מסך תאי CD4+ T של כל תנאי, המייצגים לפחות 1/7 מהמספר הכולל של תאי CD4+ T.
  8. צור אובייקט Seurat: פרש ערכי ערוץ עבור סמני נוגדנים כרמות ביטוי גנים בעת יצירת אובייקט Seurat.
    1. צור אובייקט Seurat עם מסגרת הנתונים שנוצרה משלב 3.6. דלג על שלב NormalizeData ושמור אותם ישירות כבדיקת "נתונים".
    2. בחר את סמני פני השטח מלוח הזרימה לשימוש כתכונות משתנות באשכולות ללא פיקוח.
    3. הפעל את ScaleData, RunPCA, FindNeighbors, FindClusters, RunUMAP כצינור הסטנדרטי שהוצג מ-Seurat למעט שלב17 של NormalizeData.
    4. התאם את פרמטר הרזולוציה בשלב FindClusters כדי לשנות את מספר האשכולות, ולהבטיח שהם משקפים בצורה מדויקת יותר את ההקשר הביולוגי הבסיסי.
  9. השתמש בכלי תצוגה חזותית כגון DimPlot ו- FeaturePlot התואמים לחבילת Seurat. להשוואת קבוצות המכילות מספר מדגמים לכל קבוצה, חישבו את האחוז של כל אשכול על בסיס כל נושא ובצעו השוואות סטטיסטיות. לאחר מכן, השתמש במודלים מתמטיים לניתוחים סטטיסטיים מתוחכמים יותר10.

הגישה מוגבלת. התחברו או התחילו תקופת ניסיון כדי לצפות בתוכן זה.

תוצאות

כדי להשוות את הכדאיות הכוללת של התאים, חתכנו את השקד לשלושה חלקים דומים ועיבדנו אותם באמצעות הפרוטוקול שלנו בשלושה תנאים: (1) עיבוד באותו יום, (2) אחסון לילה ב-4 מעלות צלזיוס, ו-(3) אחסון לילה על קרח. הכדאיות בין שלושת המצבים האלה הייתה די דומה ללא כל הבדל משמעותי (איור 1A). הערכנו גם את ההשפעה של תהליך ההפשרה על כדאיות התאים. שיטת ההפשרה הטיפה בה השתמשנו הביאה לכדאיות תאים גבוהה יותר באופן משמעותי בהשוואה לשיטת ההפשרה הישירה לאחר הפשרת דגימות שקדים קפואות מאותו תורם (אי...

הגישה מוגבלת. התחברו או התחילו תקופת ניסיון כדי לצפות בתוכן זה.

דיון

בניגוד לדיווחים קודמים על כך שיש לעבד שקדים טריים תוך 3 שעות לאחר הניתוח19, מצאנו שדגימות שקדים טריות יכולות לשמור על כדאיותן כאשר הן מאוחסנות ב-4 מעלות צלזיוס ומעובדות תוך 24 שעות. כדי לייעל את כדאיות התאים מרקמת השקדים בעת ההפשרה מאחסון חנקן נוזלי, אימצנו את שיטת ההפשרה הטיפה המומלצת בריצוף תא בודד, שבו כדאיות תאים גבוהה מוערכת מאוד12. גישה זו אפשרה התאוששות אופטימלית של תאים חיים בהשוואה לשיטות הפשרה ישירות ומהירות נפוצות (

הגישה מוגבלת. התחברו או התחילו תקופת ניסיון כדי לצפות בתוכן זה.

גילויים

למחברים אין ניגודי אינטרסים לחשוף.

תודות

מחקר זה נתמך על ידי המחלקה למחקר תוך-כיתתי של NIAID, NIH.

הגישה מוגבלת. התחברו או התחילו תקופת ניסיון כדי לצפות בתוכן זה.

חומרים

רשימת החומרים שנעשה בהם שימוש במאמר זה
שםחברהמספר קטלוגהערות
<חזק>מכונות ומכשירים
3 מ"ל מזרק פלסטיקBD309657
96 Well U צלחת תחתונהThermo Scientific163320
1.2 מ"ל בקבוקונים קריוגנייםקורנינג430487
מסננת תאים 70 ומיקרו; m ניילוןפלקון352350
צלחת תרבית תאים (60 מ"מ)VWR10062-890
צנטריפוגהתרמו מדעיתSorvall Legend XTR
Benchmark B2000-2 MyBath 2L מדד אמבט מים דיגיטליB2000-2
מספריים עדינים - SharpFST14060-11
מארזי מכשירי פלסטיקFST20830-05
ציטומטר זרימה ספקטרלית, AuroraCytek5L 16UV-16V-14B-10YG-8R
מלקחיים דפוס סטנדרטיFST11000-13
מלקחיים דפוס סטנדרטיFST11000-20
מנתח כדאיות תאי Blu Vi-cell בקמן קולטרC19201
<חזק>ריאגנטים
0.5 מ' EDTA pH 8.0ביולוגיה איכותית351-027-101
2-מרקפטואתנולGibco21985-023
מאגר ליזינג ACKGibcoA10492-01
תערובת אנטיביוטית-אנטי-פטרייקוטית (תרחיף פניצילין-סטרפטומיצין-אמפוטריצין B, 100x)Gibco15240-062
מאגר כתמים מבריק פלוס (RUO)BD566385
CantharidinSigmaC7632-25MG
מאגר קיבוע ציטופקסBD554655
דימתיל סולפוקסיד (DMSO)SigmaD8418-250 מ"ל
DNAase IRoche10104159001
עוברי סרום בקר (FBS)VWR97068-085
FoxP3/סט חיץ צביעת גורם שעתוקeBioscience00-5523-00
ג'נטמיצין (50 מ"ג/מ"ל)Gibco15750-060
GolgiplugBD555029
GolgiSTOPBD 554724
HEPES (1 מ')Gibco15630-080
יונומיציןסיגמא  I0634-1 מ"ג
L-גלוטמין (200 מ"מ)Gibco25030-081
MEM NEAA (100x)Gibco11140-050
תמיסת פרפורמלדהיד 16%, דרגת EM (PFA)מיקרוסקופ אלקטרונים
  Science		15710לדלל עם PBS
PBS, pH 7.4Gibco10010072
פניצילין-סטרפטומיצין (10,000 יח'/מ"ל)Gibco15140-122
Phorbol 12-Myristate 13-אצטט (PMA)SigmaP8139-1mg
מיכלי הקפאה מבוקרי קצבMilliporeCorning CoolCell FTS30
RPMI (+L-גלוטמין)Gibco11875-085
נתרן פירובט (100 מ"מ)Gibco11360-070
חוסם מונוציטים כתמים אמיתייםBioLegend426103
<חזק>חוצצים
תרבית בינונית10% FBS מומת בחום (VWR),
2 ננומטר גלוטמין,
0.055 מ"מ 2-מרקפטואתנול,
1% פניצילין/ סטרפטומיצין,
1 מ"מ נתרן פירובט,
10 מ"מ HEPES,
1% חומצות אמינו לא חיוניות
ב-RPMI (+L-גלוטמין)מאגר
FACS2 מ"מ EDTA ו-2% FBS מומת בחום ב-PBS
מדיום90% FBS מומת חום ו-10% מאגר
הפשרהמאגר כביסה + 0.1 מ"ג/מ"ל DNaseI
מדיוםשקדיםRPMI בתוספת 5% FBS מומת בחום,
10 מ"מ גלוטמין,
0.05 מ"ג/מ"ל גנטמיצין,
1% תערובת אנטיביוטיקה-אנטי-פטריית
  (פניצילין, סטרפטומיצין ואמפוטריצין B).
חוצץRPMI (+L-גלוטמין) בתוספת 10%  FBS מומת בחום ו-10 מ"מ HEPES
נוגדנים חזקים>נוגדנים וחומרים אחרים עבור פאנל ציטוקינים 
ביוטין אנטי-אנושי CD107a (LAMP-1) נוגדןBioLegend3286042 μ L ב-200 μ L מדיום תרבית מלא לבאר.
נוגדן זה נוסף עם תאים במהלך גירוי PMA/יונומיצין.
Live Dead staining100 μ L לערבב לכל באר
LIVE DEAD BlueThermoL23105  1 : 800, 0.125 μ L ב-100 μ L PBS לבאר. 
<חזק>בלוק מונוציטים50 μ L לערבב לכל באר
חוסם מונוציטים מאגרBioLegend4261035 μ L חוסם מונוציטים True Stain ו-45 μ L מאגר FACS לכל <
בארנוגדנים חזקים>פני השטח עבור פאנל ציטוקינים
תערובתμ L/באר 
אנטי אנושי CCR6-BV711BioLegend3534361
אנטי אנושי CCR7-BV421BioLegend3532081
אנטי אנושי CXCR3-PE-Cy5BD5511285
אנטי אנושי CXCR5-BV750BD7471111
מאגר כתמים מבריק פלוס (RUO)BD56638510
             18 μ תערובת L לבאר לקולטני כימוקין;
הוסף מכוון לתאים עם מאגר
<חזק>תערובת נוגדנים אחרים על פני השטח μ L/באר 
אנטי אנושי CD103-BUV661BD7499932.5
אנטי אנושי CD14-Spark Blue 550BioLegend3671482.5
אנטי אנושי CD19-Spark NIR 685BioLegend3022702.5
אנטי אנושי CD25-BB515 BD56446710
אנטי אנושי CD27- סופר בהיר 436תרמו62-0279-425
אנטי אנושי CD3-BV510BioLegend3448282.5
אנטי אנושי CD38 APC-Fire810BioLegend3035501
אנטי אנושי CD4 CF YG584CytekR7-200412.5
אנטי אנושי CD45RA-BUV395BD7403150.6
אנטי אנושי CD56-BUV737BD6127663.5
אנטי אנושי CD57-FITCBioLegend3596041.2
אנטי אנושי CD69-BUV563BD7487641
אנטי אנושי CD8-BUV805BD6128891.2
אנטי אנושי FAS-BB700BD5665420.6
אנטי אנושי HLA-DR APC-FIRE 750BioLegend3076582
אנטי אנושי PD1-BV785BioLegend3299291.2
אנטי-אנושי-CD45-PerCPתרמוMHCD45311.2
מאגר כתמים מבריק פלוס (RUO)BD56638510
מאגר61
                                       112 μ מערבבים L לכל באר עבור נוגדנים אחרים על פני השטח;
הוסף ישירות למאגר בלוק המונוציטים (50 μ L) ותערובת קולטני כימוקין (18 μ L, 50+18+112 = 180 μ L בסך הכל לבאר)
<נוגדנים ציטוקינים חזקים>תוך-תאיים לפאנל ציטוקיניםμ L/באר 
אנטי אנושי Granzyme B-PEBD1
אנטי אנושי IL10-PE-Dazzle 594BioLegend5068121
אנטי אנושי IL17A-BV605BioLegend5123261
אנטי אנושי IL2-BV650BioLegend500334 3
אנטי אנושי IL21- Alexa Fluor 647BD56049310
אנטי אנושי IL4-PerCP Cy5.5BD5612341
אנטי אנושי פרפורין-APCBioLegend353312 2.5
אנטי אנושי TNFa-PE-Cy7BioLegend5029300.1
אנטי-IFN&גמא;-פסיפיק כחולBioLegend5025221
SAv-BUV615BD613013 0.25
מאגר כתמים מבריק פלוס (RUO)BD566385 10
מאגר חדירות 1x eBioscience00-5523-0019.15
         (50 μ L תערובת לבאר)
<נוגדנים חזקים>נוגדנים ואחרים עבור פאנל גורם שעתוק
CD40 נוגדן, אנטי אנושיMiltenyi Biotec130-094-1330.5 μ גרם/מ"ל של מדיום תרבית לעבודה ריכוז
<חזק>צביעת מת חי100 μ L לערבב לכל באר
LIVE DEAD BlueThermoL23105  1 : 800, 0.125 μ L ב-100 μ L PBS לבאר. 
חוסם מונוציטים מאגרBioLegend4261035 μ L חוסם מונוציטים True Stain ו-45 μ L מאגר FACS לכל
נוגדנים <חזקים>פני השטח עבור פאנל גורם שעתוק
<חזק>קולטני כימוקין ערבובμ L/באר 
אנטי אנושי CCR6-BV711BioLegend3534361
אנטי אנושי CCR7-BV421BioLegend3532081
אנטי אנושי CXCR5-BV750BD7471111
מאגר כתמים מבריק פלוס (RUO)BD56638510
               13 μ תערובת L לכל תערובת
נוגדנים <חזקה>אחרת על פני השטחμ L/באר 
אנטי אנושי 4-1BB-PE-CY7BioLegend3098182.5
אנטי אנושי CD14-Spark Blue 550BioLegend3671482.5
אנטי אנושי CD19-Spark NIR 685BioLegend3022702.5
אנטי אנושי CD200-PerCP-eFluor 710ThermoFisher46-9200-422.5
אנטי אנושי CD25-PE-Cy5BioLegend3026085
אנטי אנושי CD3-BV510BioLegend3448282.5
אנטי אנושי CD38-APC-Fire810BioLegend3035501
אנטי אנושי CD4-Pacific BlueBioLegend3174231
אנטי אנושי CD40L-PEBD557299 15
אנטי אנושי CD45RA-BUV395BD7403150.6
אנטי אנושי CD56-BUV737BD6127663.5
אנטי אנושי CD69-BUV650BioLegend3109342.5
אנטי אנושי CD8-BUV805BD6128891.2
אנטי אנושי HLA-DR APC-FIRE 750BioLegend3076582
אנטי אנושי ICOS-BUV563BD7414211.2
אנטי אנושי OX40-APCBioLegend3500085
אנטי אנושי PD1-BV785BioLegend3299291.2
אנטי-אנושי-CD45-PerCPתרמוMHCD45311.2
מאגר כתמים מבריק פלוס (RUO)BD56638510
מאגר54.1
                 117  μ מערבבים L לכל באר עבור נוגדנים אחרים על פני השטח;
הוסף ישירות לבלוק המונוציטים  חוצץ (50 μ L) ותערובת קולטני כימוקין (13 μ L, 50+13+117 = 180 μ L בסך הכל לבאר)
<נוגדנים חזקים>פקטור שעתוק לפאנל גורם שעתוקμ L/באר 
אנטי אנושי T-bet-BV605BioLegend6448174
אנטי אנושי Bcl6-PE-CF594BD5624014
אנטי אנושי FoxP3-Alexa Fluor 488BD5608871.6
אנטי אנושי GATA3-BB700BD5666422
אנטי אנושי Ki67-Alexa Fluor 700BD5612770.4
אנטי אנושי Rorgt-Alexa Fluor 647BD5636202
מאגר כתמים מבריק פלוס (RUO)BD566385
10 1 x מאגר פרמיביליזציה eBioscience00-5523-0016
                         40 μ L mix לכל באר
<חזק>תוכנה וחבילות לניתוח לא מפוקח
<חזק>תוכנה/חבילה<חזק>גרסה<חזק>מקור
1data.table1.16.2רשת ארכיון R המקיפה
2FlowJO10.9.0Becton, דיקינסון ושות'
3pheatmap1.0.12רשת ארכיון R המקיפה
4R4.3.2רשת ארכיון R המקיפה
5readxl1.4.3רשת ארכיון R המקיפה
6Rstudio2023.12.1+402Posit PBC
7Seurat5.1.0רשת ארכיון R המקיפה
8SeuratData0.2.2.9001רשת ארכיון R המקיפה
9SpectroFlo3.0Cytek
10tidyverse2.0.0רשת ארכיון R המקיפה
11viridis0.6.5רשת ארכיון R המקיפה
הקפאה DMSO כביסה < קולטני כימוקין בלוק מונוציטים FACS 561142 FACS

מקורות

  1. Crotty, S. T follicular helper cell biology: A decade of discovery and diseases. Immunity. 50 (5), 1132-1148 (2019).
  2. Choi, J., et al. Bcl-6 is the nexus transcription factor of t follicular helper cells via repressor-of-repressor circuits. Nat Immunol. 21 (7), 777-789 (2020).
  3. Goubet, A. G., et al. Escherichia coli-specific CXCL13-producing TFH are associated with clinical efficacy of neoadjuvant PD-1 blockade against muscle-invasive bladder cancer. Cancer Discov. 12 (10), 2280-2307 (2022).
  4. Jiang, Y., et al. Protein phosphatase 2A propels follicular T helper cell development in lupus. J Autoimmun. 136, 103028(2023).
  5. Overacre-Delgoffe, A. E., et al. Microbiota-specific T follicular helper cells drive tertiary lymphoid structures and anti-tumor immunity against colorectal cancer. Immunity. 54 (12), 2812-2824.e4 (2021).
  6. Patel, P. S., et al. Translational regulation of TFH cell differentiation and autoimmune pathogenesis. Sci Adv. 8 (25), eabo1782(2022).
  7. Alameh, M. G., et al. Lipid nanoparticles enhance the efficacy of mRNA and protein subunit vaccines by inducing robust T follicular helper cell and humoral responses. Immunity. 55 (6), 1136-1138 (2022).
  8. Sekiya, T., Yoshimura, A. In vitro Th differentiation protocol. Methods Mol Biol. 1344, 183-191 (2016).
  9. Ueno, H., Banchereau, J., Vinuesa, C. G. Pathophysiology of T follicular helper cells in humans and mice. Nat Immunol. 16 (2), 142-152 (2015).
  10. Xu, Q., et al. Adaptive immune responses to SARS-CoV-2 persist in the pharyngeal lymphoid tissue of children. Nat Immunol. 24 (1), 186-199 (2023).
  11. Higdon, L. E., Lee, K., Tang, Q. Z., Maltzman, J. S., Stee, V. G. T. L. Virtual global transplant laboratory standard operating procedures for blood collection, PBMC isolation, and storage. Transplant Direct. 2 (9), e101(2016).
  12. 10x Genomics. Cell thawing protocols for single cell assays. CG000447. , https://cdn.10xgenomics.com/image/upload/v1710525012/CG000447_Handbook_CellThawingProtocols_SingleCellAssays_Rev_B.pdf (2024).
  13. Betts, M. R., et al. Sensitive and viable identification of antigen-specific CD8+T cells by a flow cytometric assay for degranulation. J Immunol Methods. 281 (1-2), 65-78 (2003).
  14. Diks, A. M., et al. Impact of blood storage and sample handling on quality of high dimensional flow cytometric data in multicenter clinical research. J Immunol Methods. 475, 112616(2019).
  15. Poloni, C., et al. T-cell activation-induced marker assays in health and disease. Immunol Cell Biol. 101 (6), 491-503 (2023).
  16. Dan, J. M., et al. Immunological memory to SARS-CoV-2 assessed for up to 8 months after infection. Science. 371 (6529), eabf4063(2021).
  17. Hao, Y., et al. Dictionary learning for integrative, multimodal and scalable single-cell analysis. Nat Biotechnol. 42 (2), 293-304 (2024).
  18. Ditoro, D., et al. Differential IL-2 expression defines developmental fates of follicular versus nonfollicular helper T cells. Science. 361 (6407), eaao2933(2018).
  19. Assadian, F., et al. Efficient isolation protocol for B and T lymphocytes from human palatine tonsils. J Vis Exp. (105), e53374(2015).
  20. Florek, M., et al. Loss of CD62L expression in CD4+FoxP3+regulatory T cells following freeze-and-thaw prevents protection against gvhd in murine models. Blood. 124 (21), 2427-2427 (2014).
  21. Frigyesi, I., et al. Robust isolation of malignant plasma cells in multiple myeloma. Blood. 123 (9), 1336-1340 (2014).
  22. Anselmo, A., et al. Flow cytometry applications for the analysis of chemokine receptor expression and function. Cytometry Part A. 85 (4), 292-301 (2014).
  23. Berhanu, D., Mortari, F., De Rosa, S. C., Roederer, M. Optimized lymphocyte isolation methods for analysis of chemokine receptor expression. J Immunol Methods. 279 (1-2), 199-207 (2003).
  24. Den Braanker, H., Bongenaar, M., Lubberts, E. How to prepare spectral flow cytometry datasets for high dimensional data analysis: A practical workflow. Front Immunol. 12, 768113(2021).

הגישה מוגבלת. התחברו או התחילו תקופת ניסיון כדי לצפות בתוכן זה.

הדפסות חוזרות והרשאות

תגיות

In VitroPP2AB

מאמר זה פורסם

הסרטון יגיע בקרוב

צרו קשר
המליצו לספרייה

פרטיות

תנאי שימוש

מדיניות

זכויות יוצרים © 2026 MyJoVE Corporation. כל הזכויות שמורות.