היכולת למדוד אינטראקציות בין חלבונים לדנ"א גנומי היא בסיסית להבנת הביולוגיה של ויסות הכרומטין. בדיקות יעילות המודדות את תפוסת הכרומטין עבור חלבון נתון מספקות לפחות שתי פיסות מידע עיקריות: i) לוקליזציה גנומית ו-ii) שפע חלבונים באזור גנומי נתון. מעקב אחר שינויי גיוס ולוקליזציה של חלבון בעל עניין בכרומטין יכול לחשוף מוקדי מטרה ישירים של החלבון ולחשוף תפקידים מכניסטיים של חלבון זה בתהליכים ביולוגיים מבוססי כרומטין, כגון ויסות שעתוק, תיקון DNA או שכפול DNA. הטכניקות הזמינות כיום לפרופיל אינטראקציות חלבון-דנ"א מאפשרות לחוקרים לחקור רגולציה ברזולוציה חסרת תקדים. התקדמות טכנית כזו התאפשרה באמצעות הכנסת טכניקות פרופיל כרומטין חדשות הכוללות פיתוח של מחשוף תחת מטרות ושחרור באמצעות נוקלאז (CUT&RUN) על ידי מעבדת הניקוף. CUT&RUN מציעה מספר יתרונות טכניים על פני משקעים חיסוניים קונבנציונליים של כרומטין (ChIP) הכוללים דרישות קלט תאים נמוכות יותר, דרישות עומק ריצוף נמוכות יותר ורגישות מוגברת עם אות רקע מופחת עקב מחסור בחומרים צולבים המסווים אפיטופים של נוגדנים. אימוץ טכניקה זו לחקר ויסות הכרומטין דורש הבנה מעמיקה של העיקרון העומד בבסיס הטכניקה, והבנה כיצד לנתח, לאמת ולפרש נתוני CUT&RUN.
הליך CUT&RUN מתחיל בקשירת תאים ל- Concanavalin A מצומדים לחרוזים מגנטיים כדי לאפשר מניפולציה של מספרי תאים נמוכים לאורך כל ההליך. תאים מבודדים עוברים חדירה באמצעות חומר ניקוי עדין כדי להקל על החדרת נוגדן המכוון לחלבון המעניין. לאחר מכן מגויסים נוקלאז מיקרוקוקלי (MNase) לנוגדן הקשור באמצעות חלבון A או תג חלבון A/G הקשור לאנזים. סידן הוא הציג כדי ליזום פעילות אנזימטית. עיכול MNase גורם לקומפלקסים מונו-נוקלאוזומליים של חלבוני DNA. לאחר מכן סידן עובר תצבית כדי לסיים את תגובת העיכול, ומקטעי דנ"א קצרים מעיכול MNase משתחררים מגרעינים, ואז נתונים לטיהור דנ"א, הכנת ספרייה וריצוף בתפוקה גבוהה1 (איור 1).
בסיליקו , גישות למיפוי וכימות תפוסת חלבונים ברחבי הגנום התפתחו במקביל לגישות המעבדה הרטובות המשמשות להעשרת אינטראקציות דנ"א-חלבון אלה. זיהוי אזורים של אותות מועשרים (פסגות) הוא אחד השלבים הקריטיים ביותר בניתוח ביואינפורמטיקה. שיטות ניתוח ChIP-seq ראשוניות השתמשו באלגוריתמים כגון MACS2 ו- SICER3, שהשתמשו במודלים סטטיסטיים כדי להבחין בין אתרי קישור חלבון-DNA בתום לב לרעשי רקע. עם זאת, רעשי הרקע הנמוכים יותר והרזולוציה הגבוהה יותר של נתוני CUT&RUN הופכים חלק מתוכניות שיחות השיא המופעלות בניתוח ChIP-seq ללא מתאימות לניתוח CUT&RUN4. אתגר זה מדגיש את הצורך בכלים חדשים המתאימים יותר לניתוח נתוני CUT&RUN. SEACR4 מייצג כלי אחד כזה שפותח לאחרונה כדי לאפשר שיחות שיא מנתוני CUT&RUN תוך התגברות על מגבלות הקשורות לכלים המשמשים בדרך כלל לניתוח ChIP-seq.
פרשנויות ביולוגיות מנתוני ריצוף CUT&RUN נלקחות מהתפוקות במורד הזרם של שיחות שיא בצנרת הניתוח. ניתן ליישם מספר תוכניות ביאור פונקציונליות כדי לחזות את הרלוונטיות הביולוגית הפוטנציאלית של הפסגות הנקראות מנתוני CUT&RUN. לדוגמה, פרויקט אונטולוגיה גנטית (GO) מספק זיהוי פונקציונלי מבוסס היטב של גנים בעלי עניין 5,6,7. כלי תוכנה ומשאבים שונים מאפשרים ניתוח GO כדי לחשוף גנים ומערכי גנים המועשרים בין פסגות CUT&RUN 8,9,10,11,12,13,14. יתר על כן, תוכנות ויזואליזציה כגון Deeptools15, Integrative genomics viewer (IGV)16 ו-UCSC Genome Browser17 מאפשרות ויזואליזציה של התפלגות אותות ודפוסים באזורים מעניינים ברחבי הגנום.
היכולת להסיק פרשנויות ביולוגיות מנתוני CUT&RUN תלויה באופן קריטי באימות איכות הנתונים. רכיבים קריטיים לאימות כוללים הערכה של: i) איכות רצף ספריית CUT&RUN, ii) דמיון לשכפל, ו- iii) התפלגות אותות במרכזי שיא. השלמת האימות של כל שלושת הרכיבים חיונית כדי להבטיח את האמינות של דוגמאות ספריית CUT&RUN ותוצאות ניתוח במורד הזרם. לכן, חיוני להקים מדריכי ניתוח CUT&RUN ראשוניים כדי לאפשר למתחילים ביואינפורמטיקה ולחוקרי מעבדה רטובים לבצע שלבי אימות כאלה כחלק מצינורות ניתוח CUT&RUN הסטנדרטיים שלהם.
לצד הפיתוח של ניסוי CUT&RUN במעבדה רטובה, פותחו צינורות ניתוח שונים בסיליקו CUT&RUN, כגון CUT&RUNTools 2.018,19, nf-core/cutandrun20 ו-CnRAP21, לתמיכה בניתוח נתוני CUT&RUN. כלים אלה מספקים גישות רבות עוצמה לניתוח ערכות נתונים של CUT&RUN ו- CUT&Tag של תא בודד וצובר של CUT&TAG. עם זאת, מבנה התוכנית המודולרי המורכב יחסית וההיכרות הנדרשת עם שפות תכנות מרובות לביצוע צינורות ניתוח אלה עלולים לעכב אימוץ על ידי מתחילים בתחום הביואינפורמטיקה המבקשים להבין לעומק את שלבי הניתוח של CUT&RUN ולהתאים אישית את הצינורות שלהם. עקיפת מחסום זה דורשת צינור ניתוח CUT&RUN מבוא חדש המסופק בסקריפטים פשוטים שלב אחר שלב המקודדים באמצעות שפת תכנות יחידה פשוטה.
במאמר זה, אנו מתארים פרוטוקול צינור ניתוח CUT&RUN פשוט בשפה אחת המספק סקריפטים שלב אחר שלב הנתמכים עם תיאורים מפורטים כדי לאפשר למשתמשים חדשים ומתחילים לבצע ניתוח רצף CUT&RUN. תוכניות המשמשות בצינור זה זמינות לציבור על-ידי קבוצות המפתחים המקוריות. השלבים העיקריים המתוארים בפרוטוקול זה כוללים יישור קריאה, קריאת שיא, ניתוח פונקציונלי, ובאופן הקריטי ביותר, שלבי אימות להערכת איכות הדגימה כדי לקבוע התאמה ואמינות של נתונים לפענוח ביולוגי (איור 2). יתר על כן, צינור זה מספק למשתמשים את ההזדמנות להצליב תוצאות ניתוח עם ערכות נתונים CUT&RUN הזמינות לציבור. בסופו של דבר, פרוטוקול צינור ניתוח CUT&RUN זה משמש כמדריך מבוא והפניה למתחילים בניתוח ביואינפורמטי ולחוקרי מעבדה רטובה.