מאמר שיטה

גישה מובנית להוצאת צינורות בחולדות מאווררות מכנית

761 צפיות

⸱

DOI:

10.3791/68510

⸱

18 ביולי 2025

 ,  ,  ,  ,  ,  , 
1Department of Neurosurgery, Department of Anesthesiology, Sanbo Brain Hospital, Capital Medical University, 2Department of Neurosurgery, Department of Intensive Care Medicine, Sanbo Brain Hospital, Capital Medical University, 3Laboratory of In Vivo Electrophysiology, Core Facility Center of Capital Medical University, 4Laboratory for Clinical Medicine, Capital Medical University

במאמר זה

סיכום

מחקר זה מציע גישת הוצאת צינורות מובנית המותאמת למודלים של חולדות של אוורור מכני (MV). הגישה מאפשרת מעבר חלק מ-MV לנשימה ספונטנית תוך מזעור סיבוכים הקשורים להוצאת צינורות. סטנדרטיזציה של גמילה, ניהול דרכי הנשימה וטיפול לאחר הוצאת הצינורות משפרת את האמינות והשחזור של מחקרים ניסיוניים.

תקציר

הנשמה מכנית (MV) נמצאת בשימוש נרחב בטיפול נמרץ אך קשורה לסיבוכים שונים המשפיעים על תוצאות לטווח הקצר והארוך, כולל פגיעה ריאתית הנגרמת על ידי מכונת הנשמה, תפקוד לקוי של הסרעפת הנגרמת על ידי מכונת הנשמה ופגיעה מוחית הקשורה למכונת הנשמה. אלה הם מרכיבי המפתח של תסמונת היחידה לטיפול נמרץ (PICS). מודלים של מכרסמים חיוניים לחקירת ההשפעות הממושכות והמנגנונים הבסיסיים של MV, אך מודלים סטנדרטיים לאחר הוצאת הצינורות נותרו מוגבלים. הוצאת צינורות היא שלב מעבר קריטי שלעתים קרובות מבוצע באופן לא עקבי במודלים קיימים של חולדות, מה שמוביל לכשלים וסיבוכים. מחקר זה מציג גישת הוצאה מובנית בת ארבעה שלבים עבור מודלים של חולדות Sprague-Dawley של MV, שנועדה לייעל את המעבר מ-MV לנשימה ספונטנית תוך מזעור סיבוכים הקשורים להוצאה. הגישה כללה: (1) התחלת הגמילה על ידי הפחתת טשטוש פרופופול ל-50% והערכת המוכנות באמצעות קצב נשימה, תזוזה של בית החזה, גזי דם עורקיים ורפלקסים; (2) הכנה להוצאה באמצעות פינוי דרכי הנשימה ושמירה על חמצון; (3) ביצוע הוצאת צינורות עם טשטוש נשמר והסרת צינור מבוקרת; ו-(4) מתן טיפול לאחר הוצאת הצינור, הכולל ניטור רציף ותמיכה בחמצן. מודל זה, שאומת באמצעות 20 הוצאות מוצלחות לאחר כישלונות ראשוניים, מציע פלטפורמה רבת ערך לחקר ההשפעות ארוכות הטווח של MV, במיוחד בהקשר של PICS. גישה זו מותאמת ל-6 שעות של MV ומניחים שהיא ניתנת להרחבה לזנים אחרים ולמשכי אוורור ארוכים יותר, אם כי התאמות כאלה דורשות אימות וניטור קפדני כדי להבטיח אמינות ורווחת בעלי חיים.

מבוא

הנשמה מכנית (MV) נותרה אבן פינה של טיפול נמרץ, מספקת תמיכה נשימתית חיונית לאי ספיקת נשימה חריפה ומשמשת כתוספת חיונית במהלך ההרדמה להליכים כירורגיים1. עם זאת, MV קשור למגוון סיבוכים, כגון פגיעה ריאתית הנגרמת על ידי מכונת הנשמה2, סרעפת הנגרמת על ידי אוורור ותפקוד לקוי של שרירי הנשיפה 3,4,5,6 ופגיעה מוחית הקשורה למכונת הנשמה 7,8. סיבוכים אלה תורמים לכשל בהוצאת צינורות, שהייה ממושכת ביחידות טיפול נמרץ (ICU) ובבתי חולים, ותמותה מוגברת9. ככל ששיעורי ההישרדות בטיפול נמרץ משתפרים, תשומת הלב עברה יותר ויותר להשלכות ארוכות הטווח של MV, כאשר תסמונת פוסט-טיפול נמרץ (PICS) מתגלה כדאגה קריטית10. המנגנונים הפתופיזיולוגיים העומדים בבסיס PICS נותרו לא ברורים, בין היתר בשל היעדר מודלים אמינים של בעלי חיים כדי ללכוד את הניואנסים של התאוששות לאחר הוצאת צינורות והשלכות ארוכות טווח של MV11.

מודלים של חולדות היו מרכזיים בקידום ההבנה של פציעות הנגרמות על ידי MV, והציעו מדרגיות, שחזור ותובנות מכניסטיות. עם זאת, רוב המודלים הקיימים מתמקדים בהשפעות החריפות של MV, כאשר טרכאוסטומיה היא השיטה השולטת ל-MV במסגרות ניסוי 12,13,14. בעוד שטרכאוסטומיה מקלה על MV וגמילה אחריו, היא עוקפת את דרכי הנשימה העליונות, מחסום אנטומי ותפקודי קריטי. זה מגביר את הרגישות לסיבוכים ריאתיים כגון דלקת ריאות הקשורה למכונת הנשמה15,16. בנוסף, היעדר זרימת אוויר באף במודלים של טרכאוסטומיה משבש את סנכרון רשת המוח. זה מסבך את החקירה של תוצאות קוגניטיביות ונוירולוגיות17,18. לעומת זאת, מודלים של אינטובציה אנדוטרכיאלית / הוצאת צינורות שומרים על שלמות דרכי הנשימה העליונות. הם נמנעים מהחסרונות המובנים של טרכאוסטומיה ודומים יותר למסלול הקליני של גמילה מ-MV.

עם זאת, מודלים קיימים של הוצאת צינורות לרוב חסרים סטנדרטיזציה, מה שמוביל לשונות ניכרת במעבר מ-MV לנשימה ספונטנית19,20. חוסר מבנה זה מציג סיכונים לסיבוכים הקשורים להוצאת צינורות, כולל חסימת דרכי הנשימה, מצוקה נשימתית ושאיפה, שעלולים לגרום לתמותת בעלי חיים. כשלים כאלה לא רק פוגעים ביכולת לחקור תוצאות ארוכות טווח, אלא גם הופכים את מודל ה-MV הראשוני ללא יעיל, ומבזבזים זמן יקר, משאבים והשקעה כספית. נושאים אלה מדגישים את הצורך הקריטי בגישת הוצאת צינוריות מובנית כדי להבטיח הישרדות מוצלחת לאחר הוצאת הצינוריות ומחקרים ארוכי טווח חזקים.

כדי להתמודד עם אתגרים אלה, פותחה גישת הוצאה מובנית עבור מודלים של חולדות Sprague-Dawley (SD) התואמת באופן הדוק את הפרקטיקות הקליניות לגמילה מ-MV. גישה זו כוללת ארבעה שלבים מרכזיים: גישה לגמילה, הכנה להוצאה, ביצוע הוצאת צינור, וטיפול לאחר הוצאת צינור. ההמלצות הפרוצדורליות העיקריות כוללות שמירה על טשטוש קל עד בינוני במהלך הגמילה, במיוחד הפחתת עירוי פרופופול ל-50% מהמינון המשמש במהלך MV מלא - כדי לאפשר נשימה ספונטנית תוך מניעת תסיסה. יש להעריך את המוכנות להוצאת צינורות על סמך קצב נשימה יציב של 60-70 נשימות לדקה ונפחי גאות ספונטניים נאותים, אותם ניתן להעריך באמצעות סולם ביתי פשוט ומכויל. אין צורך בחזרה מלאה של ההכרה לפני הוצאת הצינור. יש להפסיק את עירוי הפרופופול בזמן ההוצאה כדי להפחית עוד יותר את הסיכון לתסיסה הנגרמת על ידי אינטובציה. על ידי סטנדרטיזציה של תהליך הוצאת הצינור, גישה זו צמצמה את השונות, נמנעה מסיבוכים הקשורים להוצאת צינורות, ושיפרה את שיעורי ההישרדות. דגם זה עבר אופטימיזציה למשכי MV של עד 6 שעות; הארכת MV מעבר לתקופה זו עשויה לדרוש פרוטוקולי הרגעה מותאמים, אסטרטגיות גמילה מצטברות וניטור פיזיולוגי קפדני כדי להבטיח הישרדות ותוצאות אמינות. למרות שתוקף בחולדות SD, ניתן להתאים את הפרוטוקול לזנים אחרים על ידי התאמת הגדרות האוורור כדי לקחת בחשבון את מכניקת הנשימה הספציפית לזן ורגישויות שונות לפגיעה בריאות. עם שינויים מתאימים, הגישה המובנית עשויה גם לתמוך במחקרי אוורור ארוכי טווח, ולשפר הן את יכולת השחזור והן את הרלוונטיות התרגומית על פני מודלים ניסיוניים.

הגישה מוגבלת. התחברו או התחילו תקופת ניסיון כדי לצפות בתוכן זה.

פרוטוקול

המחקר התמקד בבדיקות התנהגותיות לאחר הוצאת צינוריות ואושר על ידי הוועדה לניסויים בבעלי חיים ורווחת בעלי חיים ניסיוניים של אוניברסיטת קפיטל מדיקל (No. AEEI-2024-391). כל החולדות בגילאי 8 שבועות (SD, זכר, 200-250 גרם) התאקלמו במתקן בעלי חיים באוניברסיטה הרפואית קפיטל במשך 3 ימים לפני הניסוי. החולדה שוכנת בסביבה מבוקרת, כולל מחזור אור/חושך של 12 שעות החל מהשעה 8:00 בבוקר, טמפרטורה של 25 מעלות צלזיוס ±-1 מעלות צלזיוס, ולחות שנשמרה על 50% ±-10%. מזון ומים סופקו אד ליביטום. כל ההליכים הכוללים הרדמה, יניקה וטיפול בדם בוצעו באמצעי בטיחות מתאימים, כולל שימוש בציוד מגן אישי, טכניקות סטריליות והקפדה על פרוטוקולי בטיחות ביולוגית מוסדיים. כל ההליכים בוצעו בהתאם להנחיות ARRIVE. כל הציוד ששימש במחקר הנוכחי מוצג באיור 1. רשימת הריאגנטים והציוד המשמש מסופקים בטבלת החומרים.

1. אינטובציה אוראלית בסיוע לרינגוסקופיה בווידאו

  1. הכן את מכשיר האינטובציה.
    1. השתמש במכשיר אינטובציה מותאם אישית, המותאם ממכשיר להסרת שעוות אוזניים (קוטר כף 5.5 מ"מ, מעוקל למדכא לשון). מכשיר זה מצויד במקור אור ומצלמה, המקושרים ל-Bluetooth לסמארטפון עבור הדמיה בזמן אמת (איור 2A).
  2. בחר צינור אנדוטרכיאלי.
    1. בחר צינור אנדוטרכיאלי 16-G על סמך משקל החולדה.
  3. לגרום להרדמה (בהתאם לפרוטוקולים שאושרו על ידי המוסד).
    1. יש להזריק פרופופול (2 מ"ג/100 גרם) דרך וריד הזנב. אשר את ההרדמה על ידי אימות היעדר תגובות ראייה וצביטה בבהונות. עקוב אחר צבע העור הדיסטלי כאינדיקטור למצב החמצון.
  4. מקם את החולדה.
    1. אבטח את החולדה המורדמת על שולחן של בעלי חיים קטנים. קבעו גפיים וחותכות, ושמרו על טמפרטורת הגוף על 37-38 מעלות צלזיוס באמצעות שמיכת חימום קטנה לבעלי חיים.
  5. בצע אינטובציה.
    1. משוך בעדינות את הלשון לפינת הפה הימנית. הכנס את מכשיר האינטובציה בבסיס הלשון וקדם אותו לכיוון האפיגלוטיס.
    2. הרם את קצה המכשיר כדי לחשוף את הגלוטיס. הכנס את הצינור האנדוטרכיאלי במהלך השאיפה (איור 2-C). לאחר האינטובציה, החולדה תחובר למכונת ההנשמה.

2. אוורור מכני

  1. חבר את רכז החמצן.
    1. התאם את ריכוז החמצן המתאים והתחבר למכונת ההנשמה (בדרך כלל 80%).
  2. הגדר פרמטרים של מאוורר.
    1. אווררו את החולדה למשך 6 שעות באמצעות מאוורר לבעלי חיים קטנים עם הגדרות הגנה על הריאות: נפח גאות ושפל: 4-6 מ"ל/ק"ג, PEEP: 0 ס"מ H2O.
  3. שמור על הרדמה: החדירו פרופופול (4 מ"ג/ק"ג/שעה) באמצעות משאבת מזרק.
  4. עקוב אחר גזי דם.
    1. בדוק גזי דם עורקיים כל 3 שעות באמצעות מנתח גזי דם. עקוב באופן רציף אחר צבע העור הדיסטלי בין ניתוחי גזי הדם כאינדיקטור למצב החמצון.

3. נוהל הוצאת צינורות בקרת לחץ דרכי הנשימה (APEC).

הערה: לאחר השלמת משך ההנשמה המכנית המתוכנן, המשיכו עם פרוטוקול הוצאת הצינורית בן ארבעת השלבים: (1) התקרבות לגמילה, (2) הכנת הוצאת צינור, (3) ביצוע הוצאת צינור, ו-(3) טיפול לאחר הוצאת הצינורית (איור 3). גישה שיטתית זו מבטיחה מעבר חלק לנשימה ספונטנית תוך מזעור סיבוכים הקשורים להוצאת צינורות ושמירה על שלמות המודל הניסיוני.

  1. לקראת הגמילה
    1. הפחתת עירוי פרופופול: הפחת את קצב עירוי הפרופופול ב-50% כדי לאפשר הפעלה מחדש של הסרעפת תוך מזעור תנועות הגפיים והראש.
    2. הערכת מוכנות לגמילה: בדוק את הפרמטרים הבאים לפני ניתוק מכונת ההנשמה - קצב נשימה: 60-70 נשימות לדקה; תזוזה בחזה: ≥1 מ"מ (למדוד באמצעות מחט פלדה המונחת על תהליך ה-xiphoid); PaCO2: 35-45 מ"מ כספית; pH: 7.35-7.45; נוכחות של רפלקסים בשפם ובלשון (לא חובה).
      הערה: רפלקסי השפם והלשון הוגדרו כאינדיקטורים בינאריים (נעדרים או קיימים). רפלקס השפם מתייחס לתנועה או עוויתות לא רצוניות של הוויבריסה בתגובה לגירוי מישוש קל. רפלקס הלשון התאפיין בנסיגה של הלשון או בתנועה בגירוי עדין.
    3. נתק את מכונת ההנשמה: נתק את מכונת ההנשמה לאחר עמידה בכל הקריטריונים, והמשך להכין את החולדה להוצאה.
  2. הכנה להוצאת צינורות
    1. הקפידו על חמצון: השתמשו במסכת פנים מתוצרת עצמית כדי לשמור על חמצון נאות (בדרך כלל 80%), והשתמשו בצבע העור כאינדיקטור למצב החמצון.
    2. הפרשות נקיות של דרכי הנשימה: השתמשו במכשיר יניקה מתוצרת עצמית (קטטר אפידורלי מקוצר [~5.5 ס"מ] המחובר למזרק של 10 מ"ל). שלוט במהירות היניקה ב-~2 מ"ל/שנייה למשך 3-4 שניות לכל מפגש.
    3. לאחר הכנה נאותה ופינוי דרכי הנשימה, ההליך ממשיך לביצוע הוצאת צינורות.
      הערה: נפח ההפרשה האופייני הוא <0.5 מ"ל לכל יניקה. היניקה מתבצעת כל 30 דקות במהלך MV כדי למזער הצטברות. בזמן ההוצאה, תדירות היניקה הייתה בדרך כלל 5-8 פעמים, עם כמות מוערכת של 2-4 מ"ל בסך הכל.
  3. ביצוע הוצאת צינוריות
    1. שמירה על טשטוש: יש לשמור על פרופופול בחצי מינון כדי למנוע תסיסה במהלך הוצאת הצינור.
    2. הסר את הצינור האנדוטרכיאלי: השתמש בטכניקה בשתי ידיים וייצב את ראש החולדה עם האצבע המורה השמאלית והאגודל. הסר בעדינות את הצינור בעזרת האצבע המורה והאגודל הימנית.
    3. יש להפסיק את צריכת הפרופופול: יש להפסיק את עירוי הפרופופול מיד לאחר הוצאת הצינור.
      הערה: הוצאת צינורית מוצלחת לא אמורה לגרום להיפוקסמיה או היפרקפניה. ולאחר הוצאת צינורית מוצלחת, טיפול חרוץ לאחר הוצאת הצינורית הוא חיוני.
  4. טיפול לאחר הוצאת הצינור
    1. עקוב אחר סימנים חיוניים: עקוב אחר קצב הנשימה, משרעת השאיפה וצבע העור הדיסטלי.
    2. לספק חמצון: השתמש במסכת פנים מתוצרת עצמית כדי להבטיח אספקת חמצן מספקת (בדרך כלל ~80%).
    3. התכוננו לאינטובציה חוזרת: שמרו את כל מכשירי האינטובציה (איור 1) בהישג יד ומוכנים לשימוש מיידי במידת הצורך.
      הערה: זמן התצפית הממוצע עד לשיקום רפלקס יישור הוא 48.5 דקות ± 10.4 דקות. ניתוח גזי דם עורקי בוצע בחציון של 20 דקות, כאשר PaO2 של 73.2 מ"מ כספית ± 4.6 מ"מ כספית ו-PaCO2 של 48.3 מ"מ כספית ± 3.6 מ"מ כספית.

הגישה מוגבלת. התחברו או התחילו תקופת ניסיון כדי לצפות בתוכן זה.

תוצאות

גישת הוצאת צינורות מובנית זו פותחה על ארבע הוצאות כושלות ו-20 הוצאות מוצלחות לאחר מכן. בארבעת הניסיונות הראשונים, הוצאת הצינור בוצעה על סמך החוויה או השיפוט האישי. הסיבות לכישלון ההוצאה של ארבע החולדות כללו תסיסה במהלך הוצאת הצינור (n = 2), אי ספיקת נשימה לאחר הוצאת הצינור (n = 1) וחסימת דרכי הנשימה על ידי הפרשות (n = 1). כשלים אלה הדגישו כי הרגעה אופטימלית, נתיב אוויר נקי וחמצון מספיק הם מרכיבי מפתח להוצאה מוצלחת (טבלה 1). כתוצאה מכך, תהליך ההוצאה נבנה לארבעה שלבים: (1) ...

הגישה מוגבלת. התחברו או התחילו תקופת ניסיון כדי לצפות בתוכן זה.

דיון

במחקר זה, הוקמה גישת הוצאת צינוריות מובנית של APEC עבור מודל חולדה של MV, בהשראת ארבעת הצינורות הכושלים הראשונים והגורמים הבסיסיים. כל 20 החולדות שהוצאו בגישה זו הצליחו והשלימו את הבדיקות ההתנהגותיות הבאות בשלושת הימים הבאים. הגישה, המורכבת מארבעה שלבים מרכזיים - גישה לגמילה, הכנת צינור, ביצוע הוצאת צינור, וטיפול לאחר הוצאת הצינוריות - נועדה להבטיח מעבר חלק מנשימה מכנית לספונטנית תוך מזעור סיבוכים הקשורים להוצאת צינור. מודל מובנה זה מספק פלטפורמה רבת ערך לבחינת ההשלכות ארוכות הטווח של MV...

הגישה מוגבלת. התחברו או התחילו תקופת ניסיון כדי לצפות בתוכן זה.

גילויים

לא מוצהרים ניגודי עניינים, כספיים או אחרים, על ידי המחברים.

חומרים

רשימת החומרים שנעשה בהם שימוש במאמר זה
שםחברהמספר קטלוגהערות
צינור אנדוטרכיאלי 16GNJKEWBIOנהצינור אנדוטרכיאלי
מנתח גזי דםאפוקל בע"מקורא EPOCניטור גזי דם
קטטר תוך ורידיבטיחות אינטרוקניתברקוד 4254074בשוכן בעורקים ובוורידים
משאבת מיקרו-מזרקSLGO טכנולוגיה רפואיתCP-1000עירוי תרופות
רכז חמצן לחיות מחמדבייג'ינג zhongshidichuang מדע וטכנולוגיה פיתוח ושות', בע"מZS-MVאספקת חמצן
שמיכת חימום לבעלי חיים קטניםבייג'ינג zhongshidichuang מדע וטכנולוגיה פיתוח ושות', בע"מZS-Tשמור על טמפרטורה
מאוורר לבעלי חיים קטניםNJKEWBIOKW-100לספק נשימה

מקורות

  1. Dasta, J. F., Mclaughlin, T. P., Mody, S. H., Piech, C. T. Daily cost of an intensive care unit day: The contribution of mechanical ventilation. Crit Care Med. 33 (6), 1266-1271 (2005).
  2. Slutsky, A. S. History of mechanical ventilation. From Vesalius to ventilator-induced lung injury. Am J Respir Crit Care Med. 191 (10), 1106-1115 (2015).
  3. Reynolds, S. C., et al. Mitigation of ventilator-induced diaphragm atrophy by transvenous phrenic nerve stimulation. Am J Respir Crit Care Med. 195 (3), 339-348 (2017).
  4. Shi, Z. H., et al. Changes in respiratory muscle thickness during mechanical ventilation: Focus on expiratory muscles. Anesthesiology. 134 (5), 748-759 (2021).
  5. Shi, Z. H., et al. Expiratory muscle dysfunction in critically ill patients: Towards improved understanding. Intensive Care Med. 45 (8), 1061-1071 (2019).
  6. Van Den Berg, M., et al. Super-relaxed myosins contribute to respiratory muscle hibernation in mechanically ventilated patients. Sci Transl Med. 16 (758), eadg3894(2024).
  7. González-López, A., et al. Mechanical ventilation triggers hippocampal apoptosis by vagal and dopaminergic pathways. Am J Respir Crit Care Med. 188 (6), 693-702 (2013).
  8. Pun, B. T., Ely, E. W. The importance of diagnosing and managing ICU delirium. Chest. 132 (2), 624-636 (2007).
  9. Trudzinski, F. C., et al. Risk factors for prolonged mechanical ventilation and weaning failure: A systematic review. Respiration. 101 (10), 959-969 (2022).
  10. Voiriot, G., et al. Chronic critical illness and post-intensive care syndrome: From pathophysiology to clinical challenges. Ann Intensive Care. 12 (1), 58(2022).
  11. Brück, E., et al. Plasma HMGB1 levels and physical performance in ICU survivors. Acta Anaesthesiol Scand. 65 (7), 921-927 (2021).
  12. Bruells, C. S., et al. Influence of weaning methods on the diaphragm after mechanical ventilation in a rat model. BMC Pulm Med. 16 (1), 127(2016).
  13. Gayan-Ramirez, G., et al. Intermittent spontaneous breathing protects the rat diaphragm from mechanical ventilation effects. Crit Care Med. 33 (12), 2804-2809 (2005).
  14. Thomas, D., et al. Time course of diaphragm function recovery after controlled mechanical ventilation in rats. J Appl Physiol. 115 (6), 775-784 (2013).
  15. Henrich, D. E., Blythe, W. R., Weissler, M. C., Pillsbury, H. C. 3rd Tracheotomy and the intensive care unit patient. Laryngoscope. 107 (7), 844-847 (1997).
  16. Hsu, C. L., et al. Timing of tracheostomy as a determinant of weaning success in critically ill patients: A retrospective study. Crit Care. 9 (1), R46-R52 (2005).
  17. Gretenkord, S., et al. Coordinated electrical activity in the olfactory bulb gates the oscillatory entrainment of entorhinal networks in neonatal mice. PLoS Biol. 17 (1), e2006994(2019).
  18. Salimi, M., et al. Disrupted connectivity in the olfactory bulb-entorhinal cortex-dorsal hippocampus circuit is associated with recognition memory deficit in Alzheimer's disease model. Sci Rep. 12 (1), 4394(2022).
  19. Bruells, C. S., et al. Recovery of diaphragm function following mechanical ventilation in a rodent model. PLoS One. 9 (1), e87460(2014).
  20. Dénervaud, V., Gremlich, S., Trummer-Menzi, E., Schittny, J. C., Roth-Kleiner, M. Gene expression profile in newborn rat lungs after two days of recovery of mechanical ventilation. Pediatr Res. 78 (6), 641-649 (2015).
  21. De Souza, A. B. F., et al. Effects in vitro and in vivo of hesperidin administration in an experimental model of acute lung inflammation. Free Radic Biol Med. 180, 253-262 (2022).
  22. Almeida, M. R., et al. The effects of different ventilatory modes in female adult rats submitted to mechanical ventilation. Respir Physiol Neurobiol. 284, 103583(2021).
  23. Cândido, L. D. S., et al. Different tidal volumes may jeopardize pulmonary redox and inflammatory status in healthy rats undergoing mechanical ventilation. Oxid Med Cell Longev. 2021, 5196896(2021).
  24. Da Silva, A. C. L., et al. Sigh maneuver protects healthy lungs during mechanical ventilation in adult Wistar rats. Exp Biol Med (Maywood). 245 (15), 1404-1413 (2020).

הגישה מוגבלת. התחברו או התחילו תקופת ניסיון כדי לצפות בתוכן זה.

הדפסות חוזרות והרשאות

בקש הרשאה לשימוש חוזר בטקסט או באיורים של מאמר JoVE זה

בקש הרשאה

תגיות

Propofol

מאמרים קשורים