הרשמה ל-JoVE נדרשת לצפייה בתוכן זה. התחברו או התחילו בגרסת ניסיון בחינם.

מאמר שיטה

תיוג בתאי גזע עם צבעי ניאון על איתור פולשני עם דימות אופטי

13K צפיות

⸱

DOI:

10.3791/686

⸱

2 באפריל 2008

 ,  ,  , 
1Contrast Agent Research Group at the Center for Molecular and Functional Imaging, Department of Radiology, University of California San Francisco

במאמר זה

סיכום

וידאו זה מציג טכניקות תיוג של אדם בתאי גזע עובריים ותאי גזע mesenchymal עם צבעי ניאון. טכניקה זו יכולה לשמש in vivo מעקב בתאי גזע המושתלים עם הדמיה אופטית עבור מתאמים histopathological עם מיקרוסקופ פלואורסצנטי.

תקציר

דימות אופטי (OI) היא כלי קל, מהיר וזול עבור ניטור vivo של טיפולים בתאי גזע חדש מבוסס. הטכניקה מבוססת על תיוג vivo לשעבר בתאי גזע עם פלורסנט לצבוע, הזרקה תוך ורידית הבאים של התאים שכותרתו ויזואליזציה של הצטברות שלהם אברי המטרה או פתולוגיות ספציפיות. הטכניקה הציג מדגים כיצד אנו תווית אדם בתאי גזע mesenchymal (hMSC) הדגירה על ידי פשוט עם צבע פלואורסצנטי lipophilic האם (C67H103CIN2O3S) ואיך אנחנו תווית אנושי לתאי גזע עובריים (hESC) עם ה-FDA אישר צבע פלואורסצנטי Indocyanine גרין (ICG). מנגנון ספיגת היא דרך הדבקות ואת דיפוזיה של צבען lypophilic ברחבי bilayer קרום התא פוספוליפידים. יעילות תיוג משופר בדרך כלל אם התאים מודגרת עם הצבע בסרום ללא מדיה להבדיל הדגירה בנסיוב המכיל התקשורת. יתר על כן, תוספת של סולפט סוכן transfection protamine משפר משמעותית את ספיגת חומר ניגוד.

פרוטוקול

תיוג של בתאי גזע mesenchymal עם צבע פלואורסצנטי האם

  1. כדי להתחיל את הליך תיוג בתאי גזע mesenchymal, trypsinize ולספור את התאים כדי לקבל השעיה עם מספר מוגדר של תאים.
  2. קח את התאים מתוך החממה לשאוב את התקשורת הישנה של צלוחיות המכילות את התאים להיות מתויג
  3. לשטוף את התאים עם 10 מ"ל של Mg / Ca ללא PBS. לשאוב את PBS. מ"ג ו Ca היה לעכב את טריפסין, ולכן אנו משתמשים PBS בלי אלה.
  4. הוסף טרום חימם טריפסין 0.05%, עבור בקבוק T75 נשתמש 5 מ"ל. ודא כי כל שטח הבקבוק מכוסה.
  5. לדגור על 37 מעלות צלזיוס בחממה כ -5 דקות.
  6. אשר את ניתוק מתחת למיקרוסקופ. אם התאים עדיין דבקים הבקבוק, הקש את זה כמה פעמים ולחכות עוד קצת עד trypsinization הוא מוצלח.
  7. כעת, יש צורך לנטרל את טריפסין על ידי הוספת מדיה FCS המכיל 10%. אנו משתמשים מידה שווה של התקשורת כפי שיש טריפסין.
  8. פיפטה למעלה ולמטה כמה פעמים על מנת להבטיח כי כל התאים מחדש מושעה בתקשורת.
  9. מעבירים את פתרון התא צינור פוליפרופילן 15 מ"ל סטרילי כתרים.
  10. צנטריפוגה ב RCF 400 במשך 5 דקות.
  11. לשאוב את supernatant הבטחת לא להפריע תא גלולה.
  12. Resuspend התאים DMEM וכדי להמשיך לספור את התא.
  13. להשעות את התאים להיות מתויג בצפיפות של 1x10 ^ 6 מ"ל לכל במדיום סרום ללא תרבות (DMEM).
  14. זה היה כל הכנה של השעיה התא. עכשיו, הוא מוכן להתחיל את התוויות.
  15. ראשית, להוסיף 5 μL של חומר ניגוד האם לכל מ"ל של השעיה התא.
  16. לאחר מכן, לערבב בעדינות את הפתרון על ידי pipetting.
  17. דגירה התאים עם פתרון תיוג על 37 מעלות צלזיוס במשך 20 דקות בכלי התקשרות נמוך-6-היטב.
  18. לאחר דגירה הפשוטה היא מלאה, יש צורך להעביר את פתרון התא צינור פוליפרופילן כתרים 15 מ"ל.
  19. צנטריפוגה זה למטה RCF 400 במשך 5 דקות.
  20. לשאוב את המדיום תיוג, כדי להבטיח שלא להפריע תא גלולה.
  21. לשטוף את התאים עם PBS. פיפטה התאים מעלה ומטה, כדי לוודא לפרק את התא גלולה.
  22. חזור על שני השלבים האחרונים עוד פעמיים, כך שיש סך של 3 שלבים כביסה.
  23. ספירת התאים ולבצע בדיקה כחול Trypan לקבוע כדאיות התא. אלה מקובלים תרבית תאים פרוטוקולים שאנו לא הולך להסביר כאן.
  24. התאים שלך מוכנים כעת להיות הדמיה imager אופטי.

תיוג של בתאי גזע עובריים אנושיים עם ICG את צבע פלואורסצנטי

  1. כדי להתחיל את הליך תיוג בתאי גזע עובריים אנושיים, להכין את חומר ניגוד Indocyanine הירוק. מערבבים אותו עם protamine הסוכן transfection.
  2. מדוד את 1mg של אבקת Indocyanine הירוק. ממיסים את אבקת ICG ב 100 μL של Sulfoxide דימתיל (DMSO).
  3. הוספת 400 μL של השתנה Dulbecco של הנשרים בינוני (DMEM + עגל עוברית 10% סרום) מדיה לתערובת ולנער אותו היטב. התוצאה היא ריכוז סופי של 2mg/ml של Indocyanine הירוק.
  4. מוסיפים את protamine סוכן transfection. מעשים protamine כמו מעבורת עבור הסוכן לעומת זאת, כך שהוא מקבל לתוך התא בצורה יעילה יותר.
  5. מערבבים 5 סולפט protamine μL, אשר סיפקה בריכוז של 10mg/ml, עם ICG 300 ו - 300 μL השתנה μL בסרום חינם של Dulbecco בינוני הנשרים.
  6. נער בעדינות את הפתרון transfection חדש למשך 5 דקות כדי לאפשר מורכבים הטופס.
  7. הפתרון תיוג מוכן.
  8. לשאוב את התקשורת הישנה של צלחת פטרי hESC 10mm.
  9. הוסף 5 מ"ל של טרום חימם סרום ללא DMEM.
  10. מוסיפים את פתרון protamine / ICG מוכן בעבר את התאים. הפעל את הדגירה 1 שעה על ידי הנחת צלחת באינקובטור ב 37 ° C.
  11. לאחר דגירה תושלם, להסיר את צלחת מן החממה לשאוב את הפתרון תיוג.
  12. לשטוף את התאים על ידי שטיפת צלחת עם 5 מ"ל PBS.
  13. לשאוב את PBS ולהחליף עם 5 מ"ל של טריפסין 0.25%. דגירה את המנה ב 37 מעלות צלזיוס למשך 5 דקות כדי לאפשר trypsinization להתרחש. זה עוזר לנער את המנה קצת מדי פעם.
  14. פיפטה בעדינות מעלה ומטה, כדי לשבור את המושבות שנותרו.
  15. לנטרל את טריפסין על ידי הוספת סכום השווה ל KSR של המנה.
  16. מעבירים את פתרון התא שפופרת 15 מ"ל ו צנטריפוגות הפתרון ב RCF 400 במשך 5 דקות.
  17. Resuspend התאים התקשורת מלאה.
  18. אם עדיין יש גושים בשלב זה, trypsinize ו צנטריפוגות שוב.
  19. פעם גוש ללא פתרון תא מושגת, לשאוב את המדיה הישנה resuspend את הכדור ב 10 מ"ל של טרום חימם בתקשורת מלא ESC.
  20. בשלב זה, יש צורך להפריד את העכבר מזין תאים hESCs. הדבר נעשה על מנת להבטיח כי, מאוחר יותר, רק בתאי גזע הדמיה מתרחשת.
  21. לשם כך, העברת הדואר פתרון התא צלחת מצופה ג'לטין 10 ס"מ.
  22. שים את המנה לתוך 37 ° C חממה ולתת לו לשבת במשך 45 דקות. במהלך תקופה זו, ודא שלא להפריע את המנה. עכשיו, ניזונים תדבק המנה ואת בתאי גזע לא.
  23. מעבירים את הפתרון מתוך צלחת פטרי. ועכשיו יש לנו פתרון אחד של תאים שכותרתו בתאי גזע עובריים אנושיים.
  24. התאים כעת ניתן לספור ובדיקת כחול Trypan ניתן לבצע אותם.
  25. התאים מוכנים להיות צילמו!

הגישה מוגבלת. התחברו או התחילו תקופת ניסיון כדי לצפות בתוכן זה.

דיון

הו, היא טכניקת דימות חדשה יחסית, מבוססת על זיהוי של הקרינה. הו, הוא רגיש כמו radiotracer מבוססי טכניקות הדמיה, אך לא קשורה לחשיפה בכל הקרנה. הו, מספק אמצעי יעיל של תאים מעקב פולשני ו שוב ושוב, ובכך לספק תובנה נדידת תאים לאתר היעד. מגבלה אחת גדולה של הטכניקה היא חדירה לרקמות מוגבל של בדיקות ניאון in vivo. לכן, הצטברות נותב ברקמות עמוקות יותר על 50-10 ס"מ מעל פני העור, לא ניתן לזהות. יישומים קליניים נוכחי מוגבלים טכניקות שטחיות כגון הדמיה אנדוסקופית, לב וכלי דם רשתיות (Funovics et al. 2003) אבל זה ...

הגישה מוגבלת. התחברו או התחילו תקופת ניסיון כדי לצפות בתוכן זה.

תודות

פרויקט זה מומן על ידי מענק ג'יי טל! SEED ליאון ממכון קליפורניה עבור רפואה רגנרטיבית. טוביאס הנינג המחקר מומן על ידי מענק מן האגודה הגרמנית למחקר (DFG, HE 4578/1-2). אנחנו רוצים להכיר תודה Meneses חואניטו את עצתו על תרבות בתאי גזע עובריים אנושיים.

הגישה מוגבלת. התחברו או התחילו תקופת ניסיון כדי לצפות בתוכן זה.

חומרים

רשימת החומרים שנעשה בהם שימוש במאמר זה
שםחברהמספר קטלוגהערות
אינדוציאנין גרין (IR-125)ריאגנטFisher ScientificAC41254-1000
DMSOריאגנטSigma-AldrichD-2650
D-MEM עם ריכוז גבוה של גלוקוז ריאגנטSigma-AldrichD5648
ג'לטיןריאגנטSigma-AldrichG1890דלל לריכוז סופי של 0.1% ב-PBS
PBS, ללא Mg ו-CaריאגנטGIBCO, מבית Life Technologies14190-144
Trypsin-EDTA 0.05% ריאגנטInvitrogen25300-120
Trypsin-EDTA 0.25% ריאגנטInvitrogen25200-114
FCS, מאופייןריאגנטHycloneSH30071.03
מסנן תאים (40 μניילון (Nylon)ריאגנטBD Biosciences352340
הבדלים בהבדלים (DiD)ריאגנטMolecular Probes, Life TechnologiesV-22887
DMEM KnockoutריאגנטGIBCO, מבית Life Technologies10829018
תחליף סרום KnockoutריאגנטGIBCO, by Life Technologies10828028
בטא-מרקפטואטול (β-Mercaptoethanol)–אתנול ריאגנטSigma-Aldrich7522
חומצות אמינו שאינן חיוניות ריאגנטGIBCO, מבית Life Technologies11140050
FGF-2ריאגנטR&D&S Systems233-FB-025
גלוטמין 200mM ריאגנטGIBCO, מבית Life Technologies25030081
פניצילין/סטריפטומייציןריאגנטGIBCO, מבית Life Technologies15140-122
פרוטמין סולפטריאגנטAmerican Pharmaceutical Partners

מקורות

  1. Daldrup-Link, H. E., Rudelius, M., Metz, S., Piontek, G., Settles, M., Pichler, B., Heinzmann, U., Weinmann, H. J., Schlegel, J., Link, T. M., Rummeny, E. J., Oostendorp, R. A. J. Stem cell tracking with Gadophrin-2 -- a bifunctional contrast agent for MR imaging, optical imaging and fluorescence microscopy. Eur J Nucl Med Mol Imaging. 31, 1312-1321 (2004).
  2. Simon, G. H., Daldrup-Link, H. E., Kau, J., Metz, S., Schlegel, J., Piontek, G., Saborowski, O., Demos, S., Duyster, J., Pichler, B. J. Optical imaging of experimental arthritis using allogeneic leukocytes labeled with a near-infrared fluorescent probe. Eur J Nucl Med & Mol Imaging. 33, 998-1006 (2006).
  3. Sutton, E., Henning, T., Pichler, B., Bremer, C., Daldrup-Link, H. E. Cell Tracking with Optical imaging. Eur Radiol. 2, 350-357 (2003).
  4. Funovics, M. A., Alencar, H., Su, H. S., Khazaie, K., Weissleder, R., Mahmood, U. Miniaturized multichannel near infrared endoscope for mouse imaging. Mol Imaging. 2, 350-357 (2003).

הגישה מוגבלת. התחברו או התחילו תקופת ניסיון כדי לצפות בתוכן זה.

הדפסות חוזרות והרשאות

תגיות

סימון בצבע פלואורסצנטיסימון תאי גזעצבע DiDאינדוציאנין גריןפרוטמין סולפטבדיקת חיוניות תאיםשטיפה באמצעות צנטריפוגהמצע ללא סרוםמסנן תאים
תיוג בתאי גזע עם צבעי ניאון על איתור פולשני עם דימות אופטי
צרו קשר
המליצו לספרייה

פרטיות

תנאי שימוש

מדיניות

זכויות יוצרים © 2026 MyJoVE Corporation. כל הזכויות שמורות.