Method Article

נורמליזציה מבוססת MTT של שחרור גליצרול לכימות מדויק של ליפוליזה באדיפוציטים אפידידימליים ראשוניים של חולדות

DOI:

10.3791/68853

September 9th, 2025

In This Article

Summary

Loading...
$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

חפצים ניסיוניים, כולל תנודות בכדאיות התאים והפרעות בדיקה, מעכבים כימות מדויק של שחרור גליצרול באדיפוציטים ראשוניים עשירים בשומנים. כדי להפחית את האתגרים הללו, נעשה שימוש באסטרטגיית נורמליזציה מבוססת MTT להתאמת מדידות הגליצרול לפעילות מטבולית בתאים, ובכך לשפר את האמינות של כימות הליפוליזה.

Abstract

Loading...
$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

ליפוליזה, מסלול מטבולי קריטי, כרוך בהידרוליזה של טריגליצרידים מאוחסנים לחומצות שומן חופשיות וגליצרול. עם זאת, כימות מדויק של תפוקת הגליצרול באדיפוציטים ראשוניים עשירים בשומנים מבולבל לעתים קרובות על ידי חפצים ניסיוניים, כגון שונות בכדאיות התאים והפרעות בדיקה. כדי להתמודד עם מגבלות אלה, נקבעה שיטה פשוטה לנרמל את מדידות שחרור הגליצרול באמצעות בדיקת כדאיות התאים המבוססת על 3-(4,5-dimethylthiazol-2-yl)-2,5-diphenyltetrazolium bromide (MTT). פרוטוקול זה ממנף את ההבדל במשקל הסגולי בין אדיפוציטים לתמיסות מימיות, ומאפשר כימות בו-זמני של התפוקה הליפוליטית וכדאיות התא. בניסויי סינון תרופות, פראבסטטין וסימבסטטין שיפרו באופן משמעותי את שחרור הגליצרול מאדיפוציטים בטניים, בעוד שאטורבסטטין ולובסטטין לא שינו באופן משמעותי את תפוקת הגליצרול. ממצאים אלה מצביעים על כך שנורמליזציה מבוססת MTT מציעה גישה חזקה ונוחה לכימות מדויק של ליפוליזה, עם יישומים פוטנציאליים בגילוי תרופות המכוונות להשמנת יתר ותסמונת מטבולית. מחקר זה מדגיש את הצורך להעריך מחדש מבחני ליפוליזה קונבנציונליים כדי להבחין בין תגובות מטבוליות אמיתיות לבין דליפת ממברנה לא ספציפית.

Introduction

Loading...
$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

ניתן לחלק את רקמת השומן לרקמת שומן לבנה (WAT) ולרקמת שומן חומה (BAT)1. WAT מבצע את הפונקציה של אחסון אנרגיה עודף כטריגליצרידים, בעוד של-BAT יש את הפונקציה של ייצור חום לשמירה על טמפרטורת הגוף, הממירה אנרגיה כימית לאנרגיית חום תחת גירוי קור1. לרקמת השומן יש גם תפקוד אנדוקריני2. הוא יכול להפריש מגוון הורמונים, ציטוקינים ומטבוליטים (המכונים ביחד אדיפוקין), ולשלוט במאזן האנרגיה של הגוף על ידי ויסות התנהגות חיפוש מזון ממערכת העצבים המרכזית והפעילות המטבולית של הרקמות הסובבות2.

ליפוליזה היא תהליך הידרוליזה שלב אחר שלב של שומנים תוך תאיים תחת פעולת סדרה של אנזימים ליפוליטיים 3,4. באדיפוציטים, שומנים מאוחסנים בעיקר בטיפות שומנים בצורת טריגליצרידים5. טיפות השומנים מכוסות במשפחת פריליפין החלבון הקשורה לטיפות שומנים, המונעת הידרוליזה של טריגליצרידים על ידי אנזימים ליפוליטיים 6,7. עם זאת, כאשר אות הליפוליזה מוגבר, רמות הביטוי של משפחת הפריליפינים באדיפוציטים יורדות, ואנזימים ליפוליטיים נכנסים לטיפות שומנים 3,4. כתוצאה מכך, טריגליצרידים מתפרקים לגליצרול וחומצות שומן חופשיות 3,4,5.

ליפוליזה, פירוק הטריגליצרידים המאוחסנים לגליצרול וחומצות שומן חופשיות, היא תהליך בסיסי בחילוף החומרים של אדיפוציטים8. בעוד שמדידה ישירה של תוצרי ליפוליזה כגון גליצרול מספקת תובנות חשובות, כימות מדויק היה מאתגר, במיוחד באדיפוציטים ראשוניים תלויים עקב טעויות תפעוליות הנובעות מהבדלים במספר התאים בין קבוצות הניסוי. מחקר זה נועד להתמודד עם אתגר זה על ידי שימוש בבדיקת כדאיות תאים כדי לנרמל את כימות שחרור הגליצרול מאדיפוציטים ראשוניים בבטן של חולדות. על ידי סטנדרטיזציה של שיטת המדידה, בדיקת שחרור הגליצרול המנורמל יושמה ככלי פוטנציאלי לגילוי תרופות המכוונות להשמנת יתר ותסמונת מטבולית באדיפוציטים.

Access restricted. Please log in or start a trial to view this content.

Protocol

Loading...
$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

פרוטוקול זה ממנף את ההבדל במשקל הסגולי בין אדיפוציטים לתמיסות מימיות כדי לאפשר מדידה בו-זמנית של שחרור גליצרול (כאינדיקטור לליפוליזה) ו-3-(4,5-dimethylthiazol-2-yl)-2,5-diphenyltetrazolium bromide (MTT) באותן בארות של צלחת של 96 בארות, ובכך לייעל את זרימת העבודה הניסיונית ולשפר את היעילות.

כל ההליכים בבעלי חיים עמדו בהנחיות ARRIVE ונערכו בהתאם למדריך המכונים הלאומיים לבריאות לטיפול ושימוש בחיות מעבדה (פרסום NIH מס' 8023, מתוקן 1978). פרוטוקול המחקר אושר על ידי הוועדה המוסדית לטיפול ושימוש בבעלי חיים (מספר אישור 202112, אושר ב-5 במאי 2021). חולדות הוויסטאר הזכרים ששימשו במחקר זה היו בני 8 שבועות לפחות עם משקל גוף של ≥200 גרם בתנאי דיור סטנדרטיים. רקמת שומן לבנה אפידידימלית נאספה עם תפוקות אופייניות של 0.6-0.8 גרם לחולדה. יש לציין כי חולדות מבוגרות יותר או אלה שניזונו מתזונה עתירת שומן הראו עלייה משמעותית במסת רקמת השומן הלבנה (לעתים קרובות 1.5-3 גרם), מה שדרש התאמה פרופורציונלית של ריכוזי אנזימי העיכול (למשל, קולגנאז) כדי לשמור על יעילות עקבית של דיסוציאציה של רקמות. השימוש הבלעדי בחולדות זכרים מנע השפעות מבלבלות פוטנציאליות מתנודות הורמונליות במחזור הייחום הנקבי. בחירת הזנים (למשל, Sprague-Dawley, Wistar או Long-Evans) נשמרה באופן עקבי בניסויים כדי להבטיח אחידות גנטית בתגובות רקמת השומן. הריאגנטים והציוד המשמש מפורטים בטבלת החומרים.

1. בידוד אדיפוציטים ראשוניים בבטן של חולדה

  1. להרדים חולדת Wistar בוגרת זכר עם הזרקה תוך-צפקית של 7% כלורל הידרט (מומס ב-H2O מזוקק) (בהתאם לפרוטוקולים שאושרו על ידי המוסד).
  2. אשר הרדמה מלאה על ידי בדיקת היעדר תגובות רפלקס, ולאחר מכן בצע חתך בקו האמצע בבטן באמצעות מספריים כירורגיים סטריליים.
  3. הסר בזהירות רקמת שומן קרביים מהצד השמאלי והימני של כרית השומן האפידידימלית.
    הערה: אדיפוציטים אפידידימליים הם גדולים וצפים יחסית, מה שמקל על הפרדה וניתוח.
  4. העבירו את הרקמה שנאספה לתמיסת מלח עם חוצץ פוספט (PBS; איור 1A).
  5. שטפו את הטישו פעמיים עם PBS כדי להסיר זיהומים, כולל כלי דם דבוקים וקרישי דם.
  6. חותכים את הרקמה השטופה לחתיכות קטנות.

2. טיהור אדיפוציטים ראשוניים בבטן של חולדות

  1. דגרו על רקמת השומן המנותחת עם טריפסין וקולגנאז מסוג II (10 מ"ג בתמיסת טריפסין של 10 מ"ל) בטמפרטורה של 37 מעלות צלזיוס למשך שעתיים תחת טלטול.
  2. סננו את רקמת השומן המעוכלת דרך מסננת תאים (איור 1A).
  3. צנטריפוגה את המסנן ב-120 × גרם למשך 3 דקות בטמפרטורת החדר כדי להסיר פעילות אנזימטית שיורית.
  4. העבירו את השומנים התלויים (השכבה הלבנה העליונה) לצינור נקי ושטפו אותם עם PBS.
  5. צנטריפוגה את המסנן בחום של 120 × גרם למשך 3 דקות בטמפרטורת החדר להסרת PBS.
  6. דגרו את האדיפוציטים המסוננים (השכבה הלבנה העליונה) במדיום הנשר המותאם (DMEM) של Dulbecco בתוספת 10% סרום בקר עוברי (FBS) ותמיסת 1% פניצילין-סטרפטומיצין למשך לא יותר מ-30 דקות.

3. ניתוח שחרור גליצרול

  1. זרעו את האדיפוציטים המסוננים (10 4-105 תאים לבאר; 200 מיקרוליטר) בצלחת תרבית תאים של 96 בארות.
    הערה: אדיפוציטים כומתו באמצעות המוציטומטר סטנדרטי. בשל השונות הגדולה בגודל השומן, לא ניתן היה לספור במדויק כמה תאים גדולים יותר. לכן, ייתכן שספירת התאים לא תשקף במדויק את המספר האמיתי של אדיפוציטים. המטרה העיקרית הייתה להשיג פיזור שווה של תאים על פני בארות ולא כימות מדויק.
  2. טפל באדיפוציטים עם 0.05% דימתיל סולפוקסיד (DMSO; כקבוצת ביקורת) ו-50 מיקרומטר אטורבסטטין, פראבסטטין, לובסטטין וסימבסטטין למשך 4 שעות ב-37 מעלות צלזיוס תחת ניעור עדין.
    הערה: תנאי טיפול אלה ניתנים כהתייחסות ועשויים להיות מותאמים לפי הצורך על סמך המטרות הספציפיות והתכנון של הניסוי.
  3. אספו את מדיום תרבית התאים (השכבה האדומה התחתונה) כדי לנתח את שחרור הגליצרול, מה שמעיד על תחילת הליפוליזה (איור 1B).
  4. השתמש בערכת בדיקה מסחרית לשחרור גליצרול כדי להעריך ליפוליזה של אדיפוציטים בתגובה לטיפולים שונים.
  5. מדוד את הספיגה ב-570 ננומטר באמצעות קורא מיקרו-פלטות.

4. ניתוח כדאיות התאים

  1. ממיסים אבקת MTT בריכוז של 5 מ"ג/מ"ל ב-H₂O מזוקק ומעקרים דרך מסנן של 0.22 מיקרומטר לפני השימוש.
  2. לאחר ניתוח שחרור גליצרול, הוסף תמיסת MTT (ל-0.5 מ"ג/מ"ל סופי) לתאים ודגירה ב-37 מעלות צלזיוס למשך שעתיים.
  3. העבירו את האדיפוציטים המרחפים (השכבה הסגולה העליונה) לתוך שפופרת נקייה המכילה DMSO לניתוח כדאיות התא (איור 1B).
  4. מערבולת קצרה כדי להמיס גבישי פורמזן סגולים שנוצרו.
  5. מדוד את הספיגה ב-570 ננומטר באמצעות קורא מיקרו-פלטות.

5. חישוב נורמליזציה

  1. ערכו את כל הניסויים בשלוש פעמים וחזרו על הפעולה ארבע פעמים (n = 4).
    הערה: עבור כל ניסוי עצמאי (n = 4), בודדו אדיפוציטים משלוש חולדות, וכל מצב טיפול בוצע בשלוש עותקים.
  2. עבור כל קבוצת טיפול, חלקו את ערך הספיגה של שחרור הגליצרול בערך הספיגה של כדאיות התא המתאים.
  3. הצג את הנתונים כממוצע ± סטיית תקן (SD).
    הערה: ממוצע ו-SD חושבו באמצעות Microsoft Excel עם הפונקציות =AVERAGE(range) ו-=STDEV. S(טווח). עבור השוואות קבוצתיות, מבחני t דו-זנביים לא מזווגים בוצעו באמצעות GraphPad Prism 6 עם מבחן הפונקציה t של אמצעי השוואה.
  4. קבע את המובהקות הסטטיסטית של ההבדלים בין קבוצות באמצעות מבחן t של סטודנט, כאשר ערך P קטן מ-0.05 נחשב מובהק סטטיסטית.

Access restricted. Please log in or start a trial to view this content.

Results

Loading...
$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

לאחר סינון ראשוני של תרופות, נעשה שימוש בתרופה האנטי-היפרליפידמית סטטינים כדי לחקור את ההשפעות הליפוליטיות באדיפוציטים בשיטת שחרור גליצרול מנורמל9.

השפעת הסטטינים על שחרור גליצרול מאדיפוציטים ראשוניים בבטן של חולדות
השפעת הסטטינים על ליפוליזה באדיפוציטים בטניים ראשוניים של חולדות הוערכה על ידי טיפול בתאים עם 50 מיקרומטר של פראבסטטין, סימבסטטין, אטורבסטטין, לובסטטין ו-0.5% DMSO במשך 4 שעות. ניתוח שחרור הגליצרול הצביע על כך שטיפול בפרבסטטין וסימבסטטין ...

Access restricted. Please log in or start a trial to view this content.

Discussion

Loading...
$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

מחקר זה מספק שיטה מדויקת יותר למדידת ליפוליזה באדיפוציטים ראשוניים עמוסי שומנים. נמצא כי פראבסטטין וסימבסטטין גורמים לשחרור גליצרול ומפחיתים את הכדאיות של אדיפוציטים אפידידימליים בחולדות, בעוד שאטורבסטטין ולובסטטין לא הראו השפעות משמעותיות. מתן סימבסטטין הביא לעלייה מינימלית בשחרור הגליצרול מאדיפוציטים. כדי לטפל בבעיה זו, נעשה שימוש בבדיקת MTT כדי לתקנן את מדידת הליפוליזה. גישה זו הראתה שיפור משמעותי בהערכת ההשפעה הליפוליטית הנגרמת על ידי פראבסטטין וסימבסטטין, ככל הנראה מיוחסת להשפעתם על...

Access restricted. Please log in or start a trial to view this content.

Disclosures

Loading...
$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

המחברים מצהירים שאין אינטרסים כלכליים או אישיים מתחרים שיכולים להשפיע על העבודה המדווחת במחקר זה.

Acknowledgements

Loading...
$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

עבודה זו נתמכה על ידי אוניברסיטת פוג'יאן לחקלאות ויערנות ואוניברסיטת פוטיאן (שתיהן מליאו צוי).

Access restricted. Please log in or start a trial to view this content.

Materials

List of materials used in this article
NameCompanyCatalog NumberComments
0.22-ומיקרו; מסנן Mסנגון ביוטק בע"מF513165-0001מסנן מזרק, מערכת אקו, סטרילי
3-(4,5-דימתילתיאזול-2-יל)-2,5-דיפניל טטרזוליום ברומיד סנגון ביוטק בע"מA600799-00011 גרם
צלחות תרבית תאים 96 בארות סנגון ביוטק בע"מF603204-0001עקר
מלח סידן אטורבסטטיןקיימן כימיקלים10493-55 מ"ג
מסננת סלולרית סנגון ביוטק בע"מF513450-000180 רשת מסך
כלורל הידרטסנגון ביוטק בע"מA500288-0250250 גרם
דימתיל סולפוקסידסנגון ביוטק בע"מA460700-0100100 מ"ל
מדיום הנשר השונה של דולבקו סנגון ביוטק בע"מE600003500 מ"ל, גלוקוז גבוה, סטרילי
סרום בקר עובריסנגון ביוטק בע"מE600001100 מ"ל, סטרילי
ערכת בדיקה קולורימטרית של גליצרולקיימן כימיקלים10010755-9696 בארות
לובסטטיןקיימן כימיקלים10010338-55 מ"ג
חולדות בוגרות זכרים אוניברסיטת פוטיאןוויסטארכ-10-12 שבועות
תמיסת פניצילין-סטרפטומיצין סנגון ביוטק בע"מB540732-001010 מ"ל, סטרילי
מי מלח חוצץ פוספטסנגון ביוטק בע"מE607009-0500500 מ"ל, סטרילי, ללא סידן או מגנזיום
מלח נתרן פרבסטטיןקיימן כימיקלים10010343-55 מ"ג
סימבסטטין קיימן כימיקלים10010344-55 מ"ג
תמיסת טריפסין סנגון ביוטק בע"מE607003-0100100 מ"ל, ללא EDTA ופנול אדום, סטרילי
קולגנאז סוג II סנגון ביוטק בע"מA004174-0100100 מ"ג

References

Loading...
$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,
  1. Saely, C. H., Geiger, K., Drexel, H. Brown versus white adipose tissue: A mini-review. Gerontology. 58 (1), 15-23 (2012).
  2. Ahima, R. S., Flier, J. S. Adipose tissue as an endocrine organ. Trends Endocrinol Metab. 11 (8), 327-332 (2000).
  3. Lass, A., Zimmermann, R., Oberer, M., Zechner, R. Lipolysis - A highly regulated multi-enzyme complex mediates the catabolism of cellular fat stores. Prog Lipid Res. 50 (1), 14-27 (2011).
  4. Zechner, R., et al. FAT SIGNALS - lipases and lipolysis in lipid metabolism and signaling. Cell Metab. 15 (3), 279-291 (2012).
  5. Duncan, R. E., Ahmadian, M., Jaworski, K., Sarkadi-Nagy, E., Sul, H. S. Regulation of lipolysis in adipocytes. Annu Rev Nutr. 27, 79-101 (2007).
  6. Blanchette-Mackie, E. J., et al. Perilipin is located on the surface layer of intracellular lipid droplets in adipocytes. J Lipid Res. 36 (6), 1211-1226 (1995).
  7. Sztalryd, C., Brasaemle, D. L. The perilipin family of lipid droplet proteins: Gatekeepers of intracellular lipolysis. Biochim Biophys Acta Mol Cell Biol Lipids. 1862 (10 Pt B), 1221-1232 (2017).
  8. Schweiger, M., et al. Measurement of lipolysis. Methods Enzymol. 538, 171-193 (2014).
  9. Mangione, C. M., et al. Statin use for the primary prevention of cardiovascular disease in adults: us preventive services task force recommendation statement. Jama. 328 (8), 746-753 (2022).
  10. Grabner, G. F., Xie, H., Schweiger, M., Zechner, R. Lipolysis: cellular mechanisms for lipid mobilization from fat stores. Nat Metab. 3 (11), 1445-1465 (2021).
  11. Roh, E., Yoo, H. J. The role of adipose tissue lipolysis in diet-induced obesity: Focus on vimentin. Diabetes Metab J. 45 (1), 43-45 (2021).
  12. Vaughan, M. The production and release of glycerol by adipose tissue incubated in vitro. J Biol Chem. 237, 3354-3358 (1962).
  13. Ghasemi, M., Turnbull, T., Sebastian, S., Kempson, I. The MTT assay: Utility, limitations, pitfalls, and interpretation in bulk and single-cell analysis. Int J Mol Sci. 22 (23), 12827(2021).
  14. Miller, C. N., et al. Isoproterenol increases uncoupling, glycolysis, and markers of beiging in mature 3T3-L1 adipocytes. PLoS One. 10 (9), e0138344(2015).
  15. Ghaben, A. L., Scherer, P. E. Adipogenesis and metabolic health. Nat Rev Mol Cell Biol. 20 (4), 242-258 (2019).
  16. Dias, S., Paredes, S., Ribeiro, L. Drugs involved in dyslipidemia and obesity treatment:Focus on adipose tissue. Int J Endocrinol. 2018, 2637418(2018).
  17. Redberg, R. F. Statins and weight gain. JAMA Intern Med. 174 (7), 1046(2014).
  18. Ferrieres, J., et al. Body mass index impacts the choice of lipid-lowering treatment with no correlation to blood cholesterol - Findings from 52,916 patients in the Dyslipidemia International Study (DYSIS). Diabetes Obes Metab. 20 (11), 2670-2674 (2018).
  19. Chait, A., Jden Hartigh, L. J. Adipose tissue distribution, inflammation and its metabolic consequences, including diabetes and cardiovascular disease. Front Cardiovasc Med. 7, 22(2020).
  20. Kahn, C. R., Wang, G., Lee, K. Y. Altered adipose tissue and adipocyte function in the pathogenesis of metabolic syndrome. J Clin Invest. 129 (10), 3990-4000 (2019).
  21. Reiter-Brennan, C., et al. ACC/AHA lipid guidelines: Personalized care to prevent cardiovascular disease. Cleve Clin J Med. 87 (4), 231-239 (2020).
  22. Sahebkar, A., et al. Statin therapy and plasma free fatty acids: a systematic review and meta-analysis of controlled clinical trials. Br J Clin Pharmacol. 81 (5), 807-818 (2016).
  23. Zhai, W., et al. Increased lipolysis in adipose tissues is associated with elevation of systemic free fatty acids and insulin resistance in perilipin null mice. Horm Metab Res. 42 (4), 247-253 (2010).
  24. Teusink, B., et al. Contribution of fatty acids released from lipolysis of plasma triglycerides to total plasma fatty acid flux and tissue-specific fatty acid uptake. Diabetes. 52 (3), 614-620 (2003).

Access restricted. Please log in or start a trial to view this content.

Reprints and Permissions

Request permission to reuse the text or figures of this JoVE article

Request Permission

Tags

Lipolysis QuantificationGlycerol ReleaseMTT AssayCell ViabilityPrimary AdipocytesRat Epididymal AdipocytesTriglyceride HydrolysisDrug ScreeningStatin EffectsMetabolic Syndrome

Related Articles