מאמר שיטה

הערכת דופלר בגל פולס לתפקוד לקוי דיאסטולי במודל ZSF-1 Rat של יתר לחץ דם ריאתי עקב מחלת לב שמאל

DOI:

10.3791/69341

⸱

22 במאי 2026

 ,  , 
1Department of Anesthesiology and Critical Care Medicine, Johns Hopkins University, 2Department of Anesthesiology and Critical Care Medicine, Department of Biomedical Engineering, Department of Chemical and Biomolecular Engineering, Johns Hopkins University

במאמר זה

סיכום

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

מוצג פרוטוקול להערכת תפקוד דיאסטולי באמצעות אולטרסונוגרפיית דופלר במודל פרה-קליני של יתר לחץ דם ריאתי עקב מחלת לב שמאל.

תקציר

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

תפקוד לקוי ואי ספיקת לב עם שבר פליטה משומר (HFpEF) הם גורמים משמעותיים ליתר לחץ דם ריאתי (PH) הנובע ממחלת לב שמאל. הערכה סטנדרטית של חריגות הרפיה במודלים פרה-קליניים כוללת אקו-לב דו-ממדי (2D) עם הערכת דופלר של זרימת העברה והרפיית רקמות, שהיא מורכבת, יקרה ודורשת ציוד אקו לב מתקדם. כאן, שיטה מחליפה חשובה להערכת תפקוד לקוי ב-PH עקב מחלת לב שמאל מוצגת במודל מכרסמים מבוסס היטב המשתמש באולטרסאונד דופלר בגל פולסי ללא אקו לב דו-ממדי. דפוס הזרימה השידורי הדיאסטולי מזוהה מחלון האפיקלי ומקושר למעקב ECG שנרשם בו-זמנית. נאספים אינדקסים של פונקציה דיאסטולית, וזיהוי האינדקסים הללו מתואר בפרוטוקול זה. טכניקה זולה זולה ומיושמת בקלות מזהה סמנים רלוונטיים לתפקוד לקוי הדיאסטולי הקשורים ל-PH, מחלות לב וכלי דם ו-HFpEF. יתרה מזאת, הוא מזהה באופן שכפולי את התקדמותו לאורך זמן, כאשר אקו לב דו-ממדי אינו מועדף או זמין. המגבלות העיקריות של שיטה זו קשורות להיעדר הדגשה של מבני הלב, הסיכון לאי-דיוקים עקב תלות בזווית אות דופלר, וכן להבטת הגוף של בעל החיים, שניתן להקל עליה על ידי התאמת מיקום הגלאי ואופטימיזציה של יישורו עם זרימת הדם.

מבוא

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

יתר לחץ דם ריאתי (PH) היא מחלה קטלנית ללא ריפוי, המאופיינת בעלייה בלחץ דם ריאתי1. מחלת לב שמאל (LHD) היא הגורם השכיח ביותר ל-PH בעולם וקשורה לעלות גבוהה ותחלואה משמעותית 2,3. הגורמים הלביים ל-PH-LHD כוללים מספר גורמים שונים שגורמים לתפקוד לקוי סיסטולי או דיאסטולי, כגון אי ספיקת לב, שהיא תסמונת קלינית רב-ממדית שממשיכה להיות בין הגורמים המובילים לתמותהברחבי העולם. בקרב חולים עם אי ספיקת לב, HFpEF מהווה יותר ממחצית מהאשפוזים המבוססים על אירועים, 4,5. תפקוד לקוי דיאסטולי זוהה כאחד הגורמים החשובים ביותר ותכונות יסודיות באינטראקציה בין HFpEF ל-PH בשל LHD (PH-LHD)6,7. עקב היעדר מודלים פרה-קליניים מתאימים שמסכמים את רוב התכונות הקליניות והתת-קליניות של PH ו-HFpEF, ההבנה של המנגנונים שמאחורי מחלות אלואינה שלמה.

דיספונקציה דיאסטולית היא סימן ההיכר של PH-LHD וניתן להעריך אותה באמצעות אקו לב דו-ממדיודופלר 8. שיטות דו-ממדיות ודופלר להערכת פונקציה דיאסטולית של החדר השמאלי כוללות, בין היתר, את מהירות הגל E השיא המוקדם בדיאסטוליה, שיא גל A דיאסטולי מאוחר, משך A של שסתום המיטרלי (מרווח זמן מהתחלת גל A ועד סוף גל A בקו בסיס אפס), יחס E/A של שסתום מיטרלי, זמן האטה בגל E (DT, מרווח זמן מגל E שיא מוערך לקו הבסיס של מהירות אפס), הדמיית דופלר רקמתי (TDI) של טבעת מסתם המיטרלי המחיצי (e', פרמטר אקו-לב של הרפיית רקמת טבעת המסתם המיטרלי), ו-IVRT (זמן הרפיה איזווולומי, הזמן בין סגירת מסתם האאורטה לפתיחת המסתם המיטרלי). סמנים אקו-לביים של הרפיה פגומה כוללים שילוב של יחס E/A מופחת או הפוך במסגרת הגברת גל A והפחתת גל E, IVRT ממושך, הפחתת זמן האטת גל E, עיכוב במדדי דופלר רקמתי (מהירות e' ממושכת, E/e' ממוצע מחיצתי מוגבר), וערך מוחלט נמוך יותר של עיוות אורך גלובלי (GLS)9. מחקרים המשווים בין מדידות אקו-לב למדידות המודינמיות פולשניות הראו כי מדידות אקו-לב ומדידות פולשניות דומות והן שיטה אמינה להערכת המודינמיקה לבבית. עם זאת, אקו לב דו-ממדי הוא מורכב, יקר ודורש ציוד אקו לב מתקדם וכוח אדם. גורמים אלו מהווים מגבלה משמעותית במעקב אחר התקדמות המחלה בבעלי חיים. כתוצאה מכך, החוקרים מסתמכים או על שני מדדים (התחלה וסיום המחקר) למחקרים אורך או על מדידות בודדות בעיצוב מחקר חתך רוחבי.

מבין הפרמטרים הללו של תפקוד לקוי דיאסטולי, ניתן להעריך את E, A, E/A, A משך, DT ו-IVRT באמצעות אקו לב דופלר בגל פולס, מה שמבטל את הצורך באקולרדיוגרפיה דו-ממדית. במאמר זה מוצג פרוטוקול להערכת דופלר של תפקוד דיאסטולי במודל העכברוש המוכר ZSF-1 של PH-LHD11. בסך הכול 25 (10 זכרים בעלי השמנת יתר גנטית ו-15 רזים גנטית) נעקבו לאורך זמן והוערכו באופן סונוגרפי להתפתחות תפקוד לקוי דיאסטולי במשך שישה עשר שבועות בין 8 ל-24 שבועות. אותם פרמטרים אקוקרדיוגרפיים הוערכו בין שתי הקבוצות. כל בעלי החיים הוערכו בבסיס (גיל 8 שבועות). ראיות דופלר לתפקוד לקוי דיאסטולי הופיעו בגיל 16 שבועות, כאשר נלקחו המדידות הביניים. מדידות נקודת הקצה נלקחו בגיל 24 שבועות. בעוד שהחוקר שאסף נתונים לא הצליח להיות עיוור בשל העלייה הברורה במשקל בקבוצת ההשמנה, החוקר שביצע את ניתוח הנתונים היה עיוור לפנוטיפ של בעלי החיים. בעוד ששיטה זו ניתנת ליישום מציעה מסלול להערכה אורכית של התקדמות המחלה אצל מכרסמים, מגבלות טכניקה זו כוללות תלות בזווית של אות דופלר איכותי, שעשוי להיות מאתגר להשגה בהתאם ליישור הגשוש ולגודל החיה.

הגישה מוגבלת. התחברו או התחילו תקופת ניסיון כדי לצפות בתוכן זה.

פרוטוקול

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

כל ההליכים בוצעו בהתאם לאישור ועדת טיפול ושימוש בבעלי חיים של אוניברסיטת ג'ונס הופקינס (ACUC) לפרוטוקול RA21M273. לא נחשפו בעלי חיים לאי נוחות לצורך איסוף נתונים או למטרות המדידות. החומרים והציוד בהם משתמשים מופיעים בטבלת החומרים.

1. הכנת הציוד והחיה

  1. נקה את תא ההרדמה עם אלכוהול אתילי של 70% ומנגב את כל המשטחים.
  2. ריפוד את התא עם מזרן החלפה חד-פעמי ומגבות נייר. ודא שפתחי הכניסה והיציאה של הגז אינם חסומים.
  3. נקוטו באמצעי זהירות בטיחות והרדמה הבאים:
    1. ודאו שתחנת ההרדמה ממוקמת באזור מאוורר היטב.
    2. בדוק את ציוד ההרדמה לאיתור נזילות ותקינות.
    3. הימנעו מהדלקת המאייד עד שהמעגל מחובר לחיה.
    4. שמור על זרימת חמצן רציפה לאורך כל הניסוי.
    5. ודא שמערכת האיסוף רציפה עם מערכת מעגל ההרדמה.
    6. חסום את הפער בין חרוט האף לאף של בעל החיים עם חתיכת סרט דבק כדי להפחית את שפיכת ההרדמה ולמנוע בריחה של מזהמים לאוויר.
    7. הפחת את קצב זרימת הגז הטרי במערכת מעגלי ההרדמה במהלך שלב התחזוקה של ההרדמה. מומלץ להשתמש בקצב זרימת הגז הטרי הנמוך ביותר האפשרי.
    8. בסיום הניסוי, יש להמשיך להזריק חמצן בקצב זרימה גבוה כדי לשטוף כל חומר הרדמה שנותר ואת מערכת הנשימה.
  4. פתח מיכל חמצן (100%) ואפשר זרימה חופשית של חמצן לתא ההרדמה.
  5. פתח את כלוב החיות והניח אותו בתא ההרדמה.
  6. נעל את התא היטב.
  7. פתח את האידוי האיזופלוראן ואפשר זרימה חופשית של 2% עד 3% איזופלוראן לתא ההרדמה, מעורבב עם חמצן (2 ליטר לדקה).
  8. אפשרו לבעל החיים לשאוף את תערובת גז החמצן-איזופלוראן למשך עד 3 דקות, או עד להשגת עומק הרדמה כללי מספק.
    הערה: ההרדמה נחשבת מספקת כאשר החיה אינה מגיבה לגירויים לא רעילים או רעילים לפני תחילת הניסוי, תוך המשך נשימה ספונטנית וללא מאמץ.

2. קבלת מעקב ECG

  1. הפעל את הטאבלט שמחובר לפד המעקב של ה-ECG. בחר RSMonitor מתוך האפליקציות הזמינות. הפעל את משטח ה-ECG על ידי לחיצה על כפתור העגול שלפניו.
    הערה: אור ירוק מהבהב מציין שה-ECG Pad מתחבר לטאבלט. אור ירוק קבוע מציין את סיום הזוגיות.
  2. לחץ על הגדרות בפינה הימנית התחתונה של ממשק המשתמש.
  3. בחר PRESETS מתפריט הנפתח של הגדרות ניסיוניות.
  4. הקש על תפריט הנפתח תחת הגדרות שמורות.
  5. בחר Rat CV ולחץ על אישור בפינה הימנית התחתונה.
    הערה: הפד צריך להיות במצב "עכברוש" כדי לאפשר זיהוי ה-ECG באמצעות הכפות.
  6. נקה את כרית הא.ק.ג עם אלכוהול אתילי של 70% כדי להסיר שאריות ג'ל אקג.
  7. קבל ג'ל אלקטרודה מוליך מאוד ל-ECG, וג'ל אולטרסאונד היפואלרגני מסיס במים לדופלר.
  8. פתח את תערובת הגז וזרימה לקונוס האף.
  9. הניחו את החיה המורדמת על גב על כרית הא.ק.ג הלא פולשנית, כאשר האף נמצא בקונוס האף בגודל מתאים. הגדר את פלט האידוי בין 1.5%-2% (זרימת חמצן של 1 ליטר לדקה). ודא זרימה חופשית של איזופלורן אל תוך חרוט האף.
  10. כבה את זרימת הגז לכיוון תא ההרדמה.
  11. מרחו כמות קטנה של ג'ל אלקטרוד על המשטח הגבי של כפות הרגליים הקדמיות באמצעות אפליקטור עם קצה כותנה ובצד הפלנטר של כפות הרגליים האחוריות. אבטח את הכפות עם סרט על משטח מגע האלקטרודה של משטח ה-ECG, וודא שלג'ל האלקטרודה יש מגע מספק עם משטח ה-ECG.
    הערה: עכברים זקוקים לקונוס אף קטן יותר בהשוואה לעכברים.
  12. הסר את שיער החזה והבטן של החיה באמצעות קרם מסיר שיער עדין כדי להקל על מגע טוב יותר עם העור. נגבו כל קרם שארית לניקוי שיער כדי למנוע גירוי בעור.
  13. ודא שקו הבסיס האיזואלקטרי וגל ה-P-QRS-T במעקב ה-ECG מוצגים על מסך המחשב.
    הערה: בהתאם לקצב הלב, אמפליטודות P ו-T עשויות שלא להיות מובחנות מ-QRS קומפלקס, וגל R הוא האלמנט החשוב ביותר לקביעת תזמון גלי דופלר.

3. הגדרת המחשב

  1. תדליק את המחשב.
  2. צור תיקייה במחשב שמזהה את החיה ואת הנתונים המעניינים. התמונות שצולמו במהלך הניסוי יישמרו בתיקייה זו.
  3. הפעל את מכשיר המשדר הדופלר הפולסי מקדימה ומאחור (קופסה כחולה גדולה).
  4. הפעל את מעבד אות הדופלר (קופסה שחורה קטנה).
  5. פתח את האייקון של תחנת העבודה לעיבוד אותות דופלר כדי להריץ את התוכנה.
    הערה: הגדרות המערכת הראשוניות הן: 10 MHz או 20 MHz בהגדרות מערכת, קצב דגימה: 125 kHz, גודל דגימה: 512, מסנן מעבר נמוך: 150 kHz, מספיק לרוב הניסויים.
  6. לחץ על הגדרה בפינה השמאלית העליונה.
  7. בחר הגדרת מערכת.
  8. בחר את תדר הגשוש המתאים לניסוי (20 מגה-הרץ לעכברים וחולדות קטנות, 10MHz לעכברים גדולים).
    הערה: לממשק יש שני פאנלים: פאנל עליון להצגת ספקטרוגרמות מהירות דופלר ופאנל תחתון להצגת ה-ECG.
  9. חבר את הגשוש של 20 MHz כשאתה בודק עכבר או עכבר צעיר. השתמש בגלאי 10 MHz לחולדות מבוגרות, גדולות או שמנות. ראוי לציין ששני הגשושים יכולים להיות מחוברים בו-זמנית, ומודול המשדר דופלר מאפשר החלפה קלה בין התדרים/הגשושים (מתג מתג בחזית).
  10. הגדר את הגדרות דופלר על מודול המשדר:
    1. ודא שמתמר הגלאי הידני מוגדר לשקע ערוץ A או B.
      הערה: בחירת השקע לא תשפיע על רכישת הנתונים, וגם לא תגרום לשינויים בתוכנה.
    2. בחר את הערוץ המתאים של 10/20 מגה-הרץ כדי להפעיל את הגשוש הנייד במהירות 10/20 מגה-הרץ, בהתאמה.
    3. הגדר תדירות חזרת פולס (PRF) על 62 קילוהרץ לטווח אופטימלי כדי להגדיל את המהירות המרבית שניתן לזהות עם דופלר PW מנפח הדגימה הקרוב ביותר תוך מזעור אליאסינג.
    4. הגדר את מתג הכיוון ל-TWD כדי להציג כל זרימה שמגיעה לכיוון הגשוש כגל מעל קו הבסיס של זרימה אפס.
      הערה: כל זרימה הנעה הרחק מהגשושית תוצג כגל מתחת לקו הבסיס של זרימת האפס.
    5. כוונו את הטווח ל-2.5 - 3.5 מ"מ לעכברים ול-4-6 מ"מ לעכברים כדי לבחור את העומק שבו תונח נפח הדגימה.
      הערה: לב העכבר נמצא במרחק של 1 סנטימטר ראשון מפני הטרנסדוסר, בעוד לב העכבר נמצא ב-0.5 ס"מ הראשון. המרחק נמדד מממשק הגשוש העור לאמצע נפח הדגימה, והטווח לזיהוי זרימת השידור משתנה בהתאם לגודל, גיל והרגלו הגופני של בעל החיים.
    6. הגדר את FILTER ל-15 כדי להחליק את המהירות הפאזית ל"משוככת", כדי למנוע הערכה מוגזמת או נמוכה של המהירויות ולהבטיח הערכה אופטימלית של המהירויות.
  11. לחץ על GO בפינה השמאלית העליונה של מסך ממשק המשתמש. חלון קופץ יופיע.
    1. בחלון החדש, הזינו את פרטי הרכישה הרלוונטיים (סוג בעל חיים, מין, תאריך לידה, גיל בתאריך הרכישה, משקל וכו').
    2. בחרו את התיקייה המוקדמת הרצויה מתפריט הנפתח בתיקייה (ליצירת התיקייה, ראו שלב 3.2) עם מזהי החיה והניסוי.
    3. לחץ אושר.
      הערה: מספר הקובץ ההתחלתי מוגדר ל-_00.
    4. כוון את קו הבסיס של ה-ECG על ידי הזזתו למעלה או למטה באמצעות פס הסקאלה משמאל (לחץ שמאלי על הציר וגרור למעלה או למטה), כך שגלי ה-R יהיו ברורים.
      הערה: ניתן להזיז את קו הבסיס על ידי שמירת הסמן על לוח ה-ECG, לחיצה ימנית על העכבר והזזת העכבר קדימה ואחורה.

4. ביצוע מדידות דופלר

  1. מרחו כמות קטנה של ג'ל אולטרסאונד על האזור התת-סטרנלי/אפיגסטרי בחזה ובבטן של בעל החיים כדי להקל על העברת האולטרסאונד בין הגלאי לעור.
  2. מניחים את הגשוש הדופלר במרכז הקו מתחת לסרעפת מתחת לסטרנום (ממש מתחת ומעט משמאל לזיפואיד), הראש מצביע על הראש ואל האוזן השמאלית של בעל החיים, והתחילו לסרוק זרימה על ידי הזזת הגשושית באיטיות בתנועה מעגלית קטנה עם רדיוס הולך וגדל (1 מ"מ בכל פעם), תוך שימוש בתנועת יד עדינה.
  3. שמרו על לחץ עדין של הגשש על העור מתחת לסרעפת בכל עת.
  4. אם לא מזוהה זרימה מיטרלית, כוונן את הטווח לפי הצורך על ידי סיבוב חוגת ה-RANGE במרווחים של 0.5 מ"מ לזיהוי גל שידור (איור 1A), תוך חזרה על תנועת הסריקה המעגלית בכל סיבוב של החוגה.
    הערה: דפוס זרימה דיאסטולי בצורת M יופיע מעל קו הבסיס האפס (כאשר מתג הכיוון מוגדר ל-"TWD" (לכיוון זה)), מה שמצביע על דפוס זרימה דיאסטולי התואם לזרימה דרך השסתום המיטרלי המתרחשת עם פתיחת השסתום המיטרלי. ראוי לציין שרוב הזרימה צריכה להיות מעל קו הבסיס בדפוס זרימה של שסתום מיטרלי, בעוד שצורת גל אסימטרית בצורת V שנמצאת בעיקר מתחת לקו הבסיס מעידה על זרימה סיסטולית דרך שסתום אחר, כמו שסתום האאורטה. אם נתקלים בצורת גל התואמת דפוס זרימה של האאורטה, הזז את הקצה מעט ימינה של החיה והטה אותו כלפי מעלה (דורש תנועה מינימלית של מילימטר או שניים). כל האותות מוצגים בזמן אמת. זרימה דיאסטולית לאורך שסתום הטריקוספיד תיראה כגל דומה בצורת M מעל קו הבסיס; עם זאת, בשל גרדיאנט לחץ נמוך יותר בין העלייה הימנית לחדר הימני, מהירויות השיא יהיו נמוכות משמעותית (איור 1B). אם נתקלים בגל התואם לזרימת שסתום טריקוספיד, הזיזו את הגשוש מעט שמאלה של החיה מבלי לשנות את זוויתו ביחס לעור.
  5. ודא את התצוגה הסימולטנית של גל דופלר וה-ECG על המסך.
    הערה: מהירות הסריקה של ה-ECG ניתנת לכיוון נוח על ידי לחיצה על החצים למעלה/מטה בפינה הימנית התחתונה של הפאנל. 4-5 פעימות שנראות לכל מסך הן אופטימליות.

5. קבלת נתונים מאולטרסונוגרפיית דופלר

  1. צור תמונות מצב באמצעות דוושת הרגל לאחר זיהוי הזרימה הנכונה. ניתן לחזור על כך מספר פעמים לפי הצורך לאיכות נתונים מיטבית.
    הערה: תמונה אידיאלית תציג הגדרה ברורה של גבולות ספקטרליים, ללא הרחבה ספקטרלית, ללא מילוי ספקטרלי, ללא תצוגה סימולטנית של זרימה קדימה ואחורה, ותצוגה סימולטנית של זרימות שידור דיאסטוליות וסיסטוליות. התמונות נשמרות אוטומטית כאשר לוחצים על דוושת הרגל.
  2. עצור את רכישת הנתונים כאשר אתה מרוצה מאיכות הנתונים על ידי לחיצה על כפתור העצירה בפינה הימנית העליונה של ממשק המשתמש. מינימום של 3 שכפולים של זוג גל ECG ודופלר נדרשים לייצוג אמין של מהירויות ממוצעות וזמני התכווצות/הרפיה.
  3. לחץ על תפריט הקובץ בשורת הפונקציות העליונה.
  4. בחר 'פתח' מהתפריט הנרחב.
  5. בחר את קובץ איכות הנתונים הגבוהה ביותר מהתיקייה המוכנה מראש לניתוח.
  6. לחצו על ניתוח בפינה השמאלית העליונה. חלון קופץ יופיע.
    1. בחר שלב 2: הגדרה כללית
      1. סוג נתונים: דופלר
      2. אות: זרימה מיטרלית
      3. בעל חיים: בחר את הדגם המתאים לניסוי.
      4. הגדר "כל שמות המדידה" תחת שמות מדידה ברירת מחדל.
  7. עבור ל-ולחץ על עורך שלב 5: R peak מתוך תפריט הנפתח של Analysis Control. בחר סימני קצב תצוגה ו-R peak. בחר חישוב אוטומטי.
    הערה: סימנים ירוקים של פסגת R יופיעו. יישר את הסמנים הירוקים עם קצה גלי ה-R. סימני ביט לא רצויים יכולים להיות מוסרים מהלוח על ידי הנחת הסמן על הסמן וביצוע תנועה מהירה ימינה קדימה עם העכבר תוך לחיצה ימנית.
  8. לחץ על עורך שלב 6: ביט מתפריט הנפתח של Analysis Control. בחר להציג את סימני הקצב וה-R Peak ולחץ על Select all beats.
  9. לחצו על שלב 7: עורך הסימנים מתפריט הנפתח של בקרת ניתוח. לחצו על סימוני ניתוח תצוגה. בחר את הפרמטר הרצוי למדידה תחת "סמן זרם נבחר".
    1. ודא שהפרמטרים הבאים נדרשים לשלמות הנתונים (איור 1):
      1. ES: התחלה מוקדמת. זהו תחילת העלייה של הזרימה הדיאסטולית המוקדמת, הנמדדת בקו הבסיס.
      2. EPV: מהירות שיא מוקדמת. מהירות השיא הראשונה מעל קו הבסיס משקפת את גרדיאנט הלחץ של הלב השמאלי (LA) - החדר השמאלי (LV) במהלך דיאסטולה מוקדמת (זהו מהירות השיא של הזרימה הפסיבית מ-LA ל-LV עקב גרדיאנט לחץ LA-LV הקיים מראש).
      3. EEAS: סוף מוקדם, התחלה במערכת העליונה. משקף את איזון הלחץ והפסקת הזרימה בין ה-LA ל-LV (דיאסטזיס).
      4. APV: מהירות שיא בעליזיות. מהירות השיא השנייה מעל קו הבסיס משקפת את גרדיאנט הלחץ של החדר השמאלי השמאלי במהלך דיאסטולה מאוחרת. זו מהירות השיא של זרימת הדם במהלך "בעיטת העלעליים".
      5. AE: קצה העליון. משקף את הפסקת הזרימה בסוף דיאסטולה מאוחרת, ואת איזון הלחץ בין LA-LV.
      6. IVCTE: סיום זמן ההתכווצות האיזווולומי. זהו מרווח הזמן בין סגירת המסתם המיטרלי לפתיחת מסתם האאורטה בתחילת הסיסטולה.
      7. IVRT: זמן ההרפיה האיזווולומי מתחיל. זהו מרווח הזמן בין סגירת שסתום האאורטה לפתיחת המסתם המיטרלי בתחילת הדיאסטולה.
    2. לאחר ביצוע המדידות לעיל, בחר שלב 8: תוצאות מדידה מתפריט הנפתח של בקרת הניתוח .
    3. העתק את הנתונים לקובץ אקסל על ידי לחיצה על העתק תוצאות ללוח הכתיבה. שמור את נתוני האקסל.
    4. סגור את חלון "בקרת ניתוח".
    5. לחץ על קובץ בפינה השמאלית העליונה ובחר 'שמור'. זה יחסוך את המדידות שבוצעו.
    6. צא מתחנת העבודה לעיבוד אותות דופלר.

6. סיום הניסוי

  1. כבה איזופלורן, והסיר את הסרט מכפות הידיים.
  2. הוציאו את החיה משטח האלקטרודה.
  3. נקה את כל קרם הסרת השיער והג'ל האלקטרוד שנותרו.
  4. החזירו את החיה לכלוב עם גישה חופשית למים ולמזון.
  5. אפשר לבעל החיים להתאושש מהרדמה תוך כדי מעקב לפי הפרוטוקול המוסדי.
  6. כבה את החמצן.
  7. נקה את תא ההרדמה.

הגישה מוגבלת. התחברו או התחילו תקופת ניסיון כדי לצפות בתוכן זה.

תוצאות

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

שיטה זו מאפשרת הערכה אורכית של תפקוד דיאסטולי ב-PH-LHD. להערכה המדויקת ביותר של תפקוד דיאסטולי, יש להמחיש דפוסי זרימה אנטגרדיים ורטרוגרדיים הקשורים לפתיחת וסגירת המסתם המיטרלי והאאורטלי בתוך אותו מחזור לב לאורך מספר מחזורים (איור 1). סגירת מסתם האאורטה מסמנת את תחילת הדיאסטולה, שהשלב המוקדם ביותר שלה הוא הרפיית איזובולומית, שמקדימה את פתיחת המסתם המיטרלי ואת תחילת הזרימה הביפאזית המשדרת במהלך הדיאסטולה המוקדמת והמאוחרת. דיאסטולה מסתיימת בהפסקת זרימת הדם ובסג...

הגישה מוגבלת. התחברו או התחילו תקופת ניסיון כדי לצפות בתוכן זה.

דיון

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

במאמר זה, שיטה חלופית להערכת תפקוד דיאסטולי ב-PH-LHD מוצגת במודל מכרסמים מבוסס היטב המשתמש באולטרסאונד דופלר בגל פולסי ללא אקו לב דו-ממדי. דפוס זרימת השידור הדיאסטולי מזוהה מחלון האפיקלי ומקושר למעקב ECG בו-זמנית, המאפשר לקבוע אינדקסים של תפקוד דיאסטולי. טכניקה זולה זו מזהה סימנים לתפקוד דיאסטולי ולקויה לאורך זמן, ומונעת צורך באקולרדיוגרפיה דו-ממדית יקרה.

תפקוד לקוי דיאסטולי הוא תכונה מרכזית של PH-LHD ומאופיין בנוקשות חדרית פסיבית מוגברת ובפגיעה בהרפיה פעילה. ...

הגישה מוגבלת. התחברו או התחילו תקופת ניסיון כדי לצפות בתוכן זה.

גילויים

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

למחברים אין קשרים פיננסיים עם אף יצרן של החומרים בהם משתמשים.

תודות

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

עבודה זו נתמכה על ידי פרס פיתוח קריירה של האגודה האמריקאית ללב ל-MB (24CDA1267633), פרס NHLBI R56 ל-JS (1R56HL169285), ופרס NHLBI ל-LS (R01HL14811201).

הגישה מוגבלת. התחברו או התחילו תקופת ניסיון כדי לצפות בתוכן זה.

חומרים

רשימת החומרים שנעשה בהם שימוש במאמר זה
שםחברהמספר קטלוגהערות
הגדרת הרדמהVetEquip Inc.901806
מחשבדל7420 פלוס
מטלית כותנהחברת המוצרים הרפואיים הפוריטנית806-WC
קרם הסרת שיער   צ'רץ' ודווייט300725
גלאי דופלר 10 ו-20MHzאינדס אינסטרומנטסNA
הגדרת דופלראינדס אינסטרומנטסNA
פד א.ק.גאינדס אינסטרומנטסNA
ג'ל אלקטרודהמעבדות פארקר45993
מאדה איזופלוראן  VetEquip Inc.911103
ג'ל אולטרסאונדמעבדות פארקר45659
תא הרדמה מאווררVetEquip Inc.942102

מקורות

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,
  1. Simonneau, G., et al. Haemodynamic definitions and updated clinical classification of pulmonary hypertension. Eur Respir J. 53 (1), 1801913(2019).
  2. Ghoreishi, M., et al. Pulmonary hypertension adversely affects short- and long-term survival after mitral valve operation for mitral regurgitation: Implications for timing of surgery. J Thorac Cardiovasc Surg. 142 (6), 1439-1452 (2011).
  3. Charalampopoulos, A., et al. Pathophysiology and diagnosis of pulmonary hypertension due to left heart disease. Front Med (Lausanne). 5, 174(2018).
  4. Dunlay, S. M., Roger, V. L., Redfield, M. M. Epidemiology of heart failure with preserved ejection fraction. Nat Rev Cardiol. 14 (10), 591-602 (2017).
  5. Savarese, G., et al. Global burden of heart failure: A comprehensive and updated review of epidemiology. Cardiovasc Res. 118 (17), 3272-3287 (2023).
  6. Thenappan, T., et al. Clinical characteristics of pulmonary hypertension in patients with heart failure and preserved ejection fraction. Circ Heart Fail. 4 (3), 257-265 (2011).
  7. Bauer, M., Gadkari, M., Martinez Yus, M., Santhanam, L., Steppan, J. Sexual dimorphism in animal models of heart failure with preserved ejection fraction. J Appl Physiol (1985). 138 (6), 1449-1473 (2025).
  8. Cameron, D. M., Mclaughlin, V. V., Rubenfire, M., Visovatti, S., Bach, D. S. Usefulness of echocardiography/Doppler to reliably predict elevated left ventricular end-diastolic pressure in patients with pulmonary hypertension. Am J Cardiol. 119 (5), 790-794 (2017).
  9. Nagueh, S. F., et al. Recommendations for the evaluation of left ventricular diastolic function by echocardiography and for heart failure with preserved ejection fraction diagnosis: An update from the American Society of Echocardiography. J Am Soc Echocardiogr. 38 (7), 537-569 (2025).
  10. Yavuz, Y. E., Soylu, A., Gurbuz, A. S. The relationship of systemic and pulmonary arterial parameters with HFPEF scores (h(2) fpef, hfa-peff) and diastolic dysfunction parameters in heart failure patients with preserved ejection fraction. J Clin Ultrasound. 52 (1), 39-50 (2024).
  11. Villalba-Orero, M., Garcia-Pavia, P., Lara-Pezzi, E. Noninvasive assessment of HFPEF in mouse models: Current gaps and future directions. BMC Med. 20 (1), 349(2022).
  12. Watson, L. E., Sheth, M., Denyer, R. F., Dostal, D. E. Baseline echocardiographic values for adult male rats. J Am Soc Echocardiogr. 17 (2), 161-167 (2004).
  13. Kass, D. A. Assessing and interpreting diastolic function in animal models of heart disease. J Mol Cell Cardiol. 197, 1-4 (2024).
  14. Schnelle, M., et al. Echocardiographic evaluation of diastolic function in mouse models of heart disease. J Mol Cell Cardiol. 114, 20-28 (2018).
  15. Westenberg, J. J. Cmr for assessment of diastolic function. Curr Cardiovasc Imaging Rep. 4 (2), 149-158 (2011).
  16. Robinson, S., et al. The assessment of left ventricular diastolic function: Guidance and recommendations from the British Society of Echocardiography. Echo Res Pract. 11 (1), 16(2024).
  17. Del Buono, M. G., et al. Heart failure with preserved ejection fraction diagnosis and treatment: An updated review of the evidence. Prog Cardiovasc Dis. 63 (5), 570-584 (2020).
  18. Little, W. C., Oh, J. K. Echocardiographic evaluation of diastolic function can be used to guide clinical care. Circulation. 120 (9), 802-809 (2009).
  19. Reddy, Y. N. V., Carter, R. E., Obokata, M., Redfield, M. M., Borlaug, B. A. A simple, evidence-based approach to help guide diagnosis of heart failure with preserved ejection fraction. Circulation. 138 (9), 861-870 (2018).
  20. Ram, R., Mickelsen, D. M., Theodoropoulos, C., Blaxall, B. C. New approaches in small animal echocardiography: Imaging the sounds of silence. Am J Physiol Heart Circ Physiol. 301 (5), H1765-H1780 (2011).
  21. Anavekar, N. S., Oh, J. K. Doppler echocardiography: A contemporary review. J Cardiol. 54 (3), 347-358 (2009).

הגישה מוגבלת. התחברו או התחילו תקופת ניסיון כדי לצפות בתוכן זה.

הדפסות חוזרות והרשאות

בקש הרשאה לשימוש חוזר בטקסט או באיורים של מאמר JoVE זה

בקש הרשאה

תגיות

HFpEF

מאמרים קשורים