כל ההליכים לבעלי חיים אושרו על ידי ועדת הטיפול והשימוש בבעלי חיים המוסדית (מספר פרוטוקול: IACUC-2024-FK-007) ובוצעו בהתאם להצהרת האגודה למחקר בראייה ואופתלמולוגיה לשימוש בבעלי חיים במחקר עיניים וראייה. עכברים זכרים מסוג C57BL/6, בגילאי 8-10 שבועות ומשקלם 20-25 גרם, הוחזקו בכלובים מאווררים בנפרד בתנאי סביבה מבוקרים של 22 ± 2 מעלות צלזיוס ולחות יחסית של 50%-60% עם מחזור בהיר-חושך של 12:12 שעות. בעלי החיים הספציפיים הללו, ללא פתוגן, התקבלו ממעבדות צ'ארלס ריבר (ראו טבלת חומרים). כל העכברים עברו תקופת הסתגלות של שבוע כדי להסתגל לסביבה החדשה לפני ההליכים הניסיוניים, עם גישה חופשית לאוכל מכרסמים ומים סטנדרטיים.
אזהרה: אספרגילוס פומיגאטוס הוא אורגניזם פתוגני שדורש בידוד ברמת בטיחות ביולוגית 2. כל תרביות הפטרייה חייבות להיות מטופלות בארון בטיחות ביולוגי מוסמך באמצעות ציוד מגן אישי מתאים, כולל כפפות, מעילי מעבדה והגנה על העיניים. דימתיל סולפוקסיד (DMSO) דליק ויכול לחדור לעור; לטפל בו באזורים מאווררים היטב ולהימנע ממגע ישיר. קטמין וקסילזין הם חומרים מבוקרים הדורשים אחסון מאובטח ותיעוד מתאים לפי תקנות מוסדיות.
הכנה ניסיונית
כל התגובות, התרופות והחומרים הנדרשים הוכנו בהתאם לתהליך הניסוי (ראו טבלת חומרים ואיור משלים 1 לסכמטי). תמיסות מקור ראסמית (±)-α-חומצה ליפואית (LA) הוכנו באמצעות חומצה α-ליפואית ראסמית (1,2-דיתיולן-3-פנטנואיק) שהומסו ב-DMSO לריכוז של 60 מ"מ ואוחסנו באליקווטים חד-פעמיים בטמפרטורה של -80°C למניעת פירוק חמצוני. מעכב Nrf2 ML385 ומעכב HO-1 SnPPIX הוכנו באופן דומה והופעלו לשימוש חד-פעמי כדי למנוע מחזורי הקפאה-הפשרה. כל מדיום תרבית התאים והתוספים הוכנו בתנאים סטריליים וחוממו מראש ל-37 מעלות צלזיוס לפני השימוש.
כל החומרים המזוהמים בתרביות פטריות, כולל לוחות אגר, צינורות תרבית ופלסטיקים חד-פעמיים, עברו אוטוקלב בטמפרטורה של 121 מעלות צלזיוס למשך 30 דקות לפני ההשלכה במיכלי פסולת ביולוגית. פסולת כימית המכילה ממסים אורגניים נאספה בנפרד והושמדה באמצעות פרוטוקולי בריאות ובטיחות סביבתית מוסדית. רקמות וגופות בעלי חיים נשרפו באמצעות שירותי פסולת ביו-רפואית מאושרים.
תרבית פטריות והכנת זיהום
Aspergillus fumigatus גודלו על אגר Saboraud dextrose בטמפרטורה של 37°C במשך 5-7 ימים עד שנצפתה היווצרות קונידיאלית בוגרת. קונידיות נקטפו על ידי הצפת תרביות בוגרות עם תמיסת מלח סטרילית עם בופר עם פוספט (PBS) המכילה 0.05% Tween-80, ותליות קונידיאליות סיננו דרך גזה סטרילית להסרת שברי היפאל. הריכוז הקונידיאלי נקבע באמצעות המוציטומטר והותאם לריכוזים שנקבעו בהתבסס על מודלים של קרטיטיס פטרייתי שפורסמו. לניסויים במבחנה, נבחר 1 x 106 קונידיות למ"ל (ריבוי זיהום של 10:1) בהתבסס על מחקרים קודמים שהראו כי ריכוז זה מעורר תגובות דלקתיות חזקות בתאי אפיתל בקרנית, תוך שמירה על חיוניות תאית מספקת לניתוחים במורד הזרם16,17. למחקרים in vivo נבחרו 1 x 107 conidia/mL, שכן חיסון זה גורם לקרטיטיס עקבי בחומרה בינונית עם ציוני מחלה ניתנים לשחזור ביום החמישי לאחר ההדבקה, ומספק טווח דינמי מספק להערכת יעילות טיפולית ללא תמותה מופרזת16,19.
טיפול בבעלי חיים וזיהום בקרנית
בהרדמה כללית (הזרקה תוך-מוצקית של קטמין 100 מ"ג/ק"ג וקסילזין 10 מ"ג/ק"ג), נגרם קרטיטיס פטרייתי על ידי יצירת שלושה שריטות ליניאריות בעובי 1 מ"מ על הקרנית המרכזית באמצעות מחט סטרילית של 25G, ולאחר מכן יישום מקומי של 5 מיקרוליטר של השעיה קונידיאלית של A. fumigatus . העכברים חולקו באקראי לקבוצות טיפול (n=8 לכל קבוצה): ביקורת (לא נגועה), קבוצת ביקורת נגועה, נגועים + טיפול ב-LA (60 מיקרומול/L 4 פעמים ביום), וטיפול נגוע + LA + SnPPIX (LA ועוד 5 מ"ג/ק"ג SnPPIX תוך-פריטונית ביום). הערכה קלינית ואיסוף רקמות בוצעו ביום החמישי לאחר ההדבקה.
אמצעי זהירות לטיפול בבעלי חיים: כל ההליכים הכוללים בעלי חיים מורדמים צריכים להתבצע בתנאים אספטיים. יש לעקוב באופן רציף אחרי בעלי חיים במהלך ההרדמה לדיכוי נשימתי. סילוק מצעים מזוהמים, פסולת ניתוחית ורקמות נגועות באמצעות אוטוקלאב ואחריו שריפה, בהתאם לפרוטוקולי ניהול פסולת ביולוגית מוסדית.
תרבית תאים וטיפול
תאי אפיתל קרנית אנושיים (HCECs) נאספו מ-ATCC ונשמרו במדיום DMEM/F-12 עם תוספת של 10% סרום בקר עוברי, 1% פניצילין-סטרפטומיצין ו-1% L-גלוטמין בריכוזים אקווימולריים בטמפרטורה של 37 מעלות צלזיוס באטמוספירה לחה של 5% CO₂. התאים עברו תרבית משנה כל 3-4 ימים לאחר ההגעה למפגש של 80%-90% ושימשו בין המעברים 3-8 כדי להבטיח עקביות. לטיפולים ניסיוניים, התאים זרעו בכמות של 5 על 10⁴ תאים לכל באר בצלחות מתאימות והותרכו להידבק במשך 24 שעות לפני הטיפול. בכל הניסויים המכניסטיים במבחנה , נחשפו תחילה ל-Aspergillus fumigatus conidia ביחס רב-זיהום (MOI) של 10:1 במשך 4 שעות כדי לבסס זיהום, ולאחר מכן נוספו LA (60 מיקרומון), ML385 (5 מיקרומון) או SnPPIX (1 מיקרומון) לבדו או בשילוב למשך 24 שעות נוספות לפני איסוף הדגימה. עיצוב רציף זה מאפשר הערכת ההשפעות הטיפוליות של LA על אתגר פטרייתי מבוסס במקום טיפול מונע במיוחד.
הערכת קיום תאים (ניתוח CCK-8)
כחיות התאים הוערכה באמצעות ערכת ספירת תאים-8 (CCK-8). התאים נזרעו בלוחות של 96 בארות בגודל 5 על 10,4 תאים בכל באר ודגרו במשך 24 שעות לפני הטיפול. לאחר החשיפה לתרופות, נוספו 10 מיקרוליטר תמיסת CCK-8 לכל באר, והצלחות נדגרו למשך שעתיים בטמפרטורה של 37 מעלות צלזיוס. הספיגה נמדדה ב-450 ננומטר באמצעות קורא מיקרופלט רב-מצב. כל תנאי ניסוי בוצע באוקטופליקט, והניסויים חזרו על עצמם שלוש פעמים באופן עצמאי. ריכוז בקרת הרכב (DMSO) נשמר מתחת ל-0.1% כדי למנוע השפעות ציטוטוקסיות.
חילוץ RNA ו-PCR כמותי בזמן אמת
סך ה-RNA בודד מתאים מתורבתים ורקמות קרנית באמצעות ערכת RNeasy Mini בהתאם לפרוטוקול היצרן. דגימות רקמה הומוגנו בבופר RLT באמצעות הומוגניזר רקמתי למשך 2 דקות ב-50 הרץ. איכות וריכוז ה-RNA הוערכו באמצעות ספקטרופוטומטר, כאשר דגימות עם יחס 260/280 של 1.8-2.0 שימשו לניתוח במורד הזרם. סינתזת cDNA בגדיל ראשון בוצעה באמצעות ערכת שעתוק הפוכה cDNA בעלת קיבולת גבוהה עם RNA כולל של 1 מיקרוגרם בכל תגובה. PCR כמותי בוצע באמצעות תערובת מאסטר qPCR מבוססת SYBR Green על מערכת PCR בזמן אמת עם דנאטורציה ראשונית ב-95 מעלות צלזיוס למשך 2 דקות, ואחריה 40 מחזורים של 95 מעלות צלזיוס למשך 15 שניות ו-60 מעלות צלזיוס למשך דקה אחת. בוצע ניתוח עקומת ההתכה כדי לאמת את ספציפיות האמפליקון. כל הפריימרים אומתו ליעילות (90%-110%) ולספציפיות לפני השימוש. הביטוי היחסי של mRNA חושב באמצעות שיטת 2(-ΔΔCT) עם GAPDH כגן ייחוס.
הפקת חלבון וניתוח ווסטרן בלוט
לצורך הפקת חלבון מלאה, תאים ורקמות עברו פירוק בבופר RIPA שהושלמו עם קוקטיילי מעכבי פרוטאז ופוספטאז. חלקי חלבון גרעיניים וציטופלזמיים הוכנו באמצעות תגובות NE-PER לחילוץ גרעיני וציטופלזמי בהתאם לפרוטוקול היצרן. ריכוזי החלבון נקבעו באמצעות מבחן ברדפורד. כמויות שוות של חלבון (30-50 מיקרוגרם) הופרדו על ידי SDS-PAGE והועברו לממברנות PVDF. לאחר חסימה עם 5% חלב דל שומן בתמי מלח טריס-בופר המכיל 0.1% טווין-20 למשך שעה אחת, הממברנות דוגרו בנוגדנים ראשוניים במהלך הלילה בטמפרטורה של 4 מעלות צלזיוס, ולאחר מכן נוגדנים משניים מצומדים ל-HRP למשך שעה בטמפרטורת החדר. רצועות החלבון הוצגו באמצעות תגובת כימילומינסנציה משופרת עם זמני חשיפה של 30-180 שניות בהתאם לעוצמת האות. הרצועות נמדדו באמצעות תוכנת ImageJ, כאשר β-אקטין שימש כבקר עומס לחלבונים כוללים ולמין B1 לחלבונים גרעיניים.
הערכה קלינית וניתוח היסטולוגי
חומרת מחלת הקרנית הוערכה באמצעות מערכת ניקוד קלינית סטנדרטית המבוססת על פרוטוקולים מבוססים לקרטיטיס פטרייתיעכברי 22. מערכת הניקוד מעריכה שלושה פרמטרים בסולם 0-4: אטימות קרנית (0 = נקי, 4 = אטום לחלוטין), אי-סדירות על פני השטח (0 = חלק, 4 = כיב חמור עם חור), ותגובה דלקתית (0 = אין חדירה, 4 = חדירה צפופה עם היפופיון), ומניבה ציונים כוללים מ-0 עד 12. כל ההערכות הקליניות בוצעו על ידי שני צופים עצמאיים שהיו עם מסכות לקבוצות הטיפול, כאשר ההסכמה בין הצופים עברה את 90%. תמונות הקרנית צולמו באמצעות מיקרוסקופ מנורה חריצית המצויד במצלמה דיגיטלית. לצורך ניתוח היסטולוגי, העיניים עברו מחלקה מחדש, קיבעו ב-4% פאראפורמלדהיד, הוטמעו בפרפין, וחתכו בעובי 5 מיקרון. החתכים צובקו בהמטוקסילין ואאוזין להערכת מורפולוגיה כללית.
מבחן אימונוסורבנט מקושר באנזימים (ELISA)
רמות מופרשות של IL-1β ו-TNF-α בסופרנטנטים של תרביות תאים ובהומוגנטים של רקמת הקרנית נמדדו באמצעות ערכות ELISA מסחריות לפי הוראות היצרן. סופרנטנטים של תרביות תאים נאספו לאחר 24 שעות טיפול, בעוד שרקמות הקרנית הומוגניזציה ב-PBS המכילים מעכבי פרוטאז. הדגימות צנטריפוגות בעוצמה של 12,000 x גרם למשך 10 דקות בטמפרטורה של 4 מעלות צלזיוס, ונעשה שימוש בסופרנטנטים לניתוח ELISA. כל הדגימות נותחו בשכפול, וריכוזי הציטוקינים חושבו מעקומות סטנדרטיות.
ניתוח סטטיסטי
כל הניסויים בוצעו עם שכפולים ביולוגיים מתאימים (n ≥6 למחקרים במבחנה , n =8 למחקרים בבעלי חיים) וחזרו על עצמם לפחות פי 3 באופן עצמאי. הנתונים מוצגים כממוצע ± שגיאת תקן של הממוצע (SEM). ניתוח הנתונים בוצע באמצעות גרסה 9.0 של GraphPad Prism. באופן ספציפי, השתמשנו בפונקציית בדיקת נורמליות (שפירו-וילק) להערכת התפלגות הנתונים, ב-ANOVA חד-כיווני עם מבחן ההשוואות המרובות של טוקי לניסויים עם יותר משתי קבוצות, ובמבחן t הלא מזווג של סטודנט להשוואות בין שתי קבוצות. גרפים נוצרו כתרשימי עמודות מקובצים עם נקודות נתונים בודדות שהונחו כגרפים פיזור, כאשר פסי השגיאה מייצגים את השגיאה הסטנדרטית של הממוצע.