כל ההליכים הכוללים משתתפים אנושיים אושרו על ידי ועדת הסקירה האתית של בית החולים המסונף של אוניברסיטת הביי (אישור מס' HDFY-LL-2021-232). הסכמה מדעת בכתב התקבלה מכל המשתתפים או, במידת הצורך, מהנציגים המשפטיים שלהם. כל הניסויים בבעלי חיים בוצעו בהתאם להנחיות מוסדיות ולתקנות לאומיות, ואושרו על ידי אותה ועדת אתיקה. הפרוטוקול המאושר ציין פרטים על הליך קשירת הל (CLP), מתן אדנוויראלי, משטר הרדמה ונקודות סיום הומניות.
איסוף דגימות מטופלים
מטופלים עם ספסיס גויסו באופן פוטנציאלי לבית החולים המשויך של אוניברסיטת הביי בין פברואר 2022 ליולי 2024. בסך הכל 50 מטופלים עמדו בקריטריוני ההכללה, כולל 26 גברים ו-24 נשים, בגילאי 24-69 (ממוצע 52.4 ± 10.2 שנים). אלח דם אובחן לפי קריטריוני ספסיס-3, שדרש חשד או מאומת זיהום בנוסף לעלייה בציון הערכת כשל איברים סדרתיים (SOFA) ב-≥ 2 נקודות. לכל מטופל נרשמו מקור הזיהום העיקרי (כגון זיהום ריאתי, תוך-בטני, דרכי השתן או זרם הדם) וחומרת המחלה (ספסיס או הלם ספטי), והתפלגות ציוני SOFA סוכמה כדי לאפיין את עומס המחלה. כקבוצת ביקורת, נרשמו 39 אנשים בריאים ללא ראיות קליניות לזיהום או למחלת דלקת מערכתית (20 גברים ו-19 נשים, בגילאי 26-70, בממוצע 50.7 ± 11.0 שנים), ולא נמצאו הבדלים משמעותיים בגיל או במין בין הקבוצות.
דם ורידי פריפרי נאסף ממטופלים עם אלח דם לפני תחילת טיפול ייעודי לספסיס, כאשר היה אפשרי. הדם (בדרך כלל 5-10 מ"ל) נמשך לצינורות מצופים חומצה אתילנדיאמינטרטראאצטית (EDTA) והפוך בעדינות מספר פעמים כדי לערבב את נוגד הקרישה. הדגימות עובדו בתוך כ-שעה מהאיסוף. הפלזמה הושגה בצנטריפוגציה ב-1,500 × גרם למשך 10 דקות בטמפרטורת החדר, הועברה למיקרוצינורות מסומנים, ונשמרה ב-80 מעלות צלזיוס למדידות ציטוקינים נוספות. לצורך הפקת RNA וחלבון, תאי דם חד-גרעיניים היקפיים (PBMCs) בודדו מחלק מאותם דגימות באמצעות מדיום הפרדה בצפיפות-גרדיאנט בהתאם להוראות היצרן. התאים נשטפו פעמיים ב-PBS, נספרו ואוחסו ככדורי תאים בטמפרטורה של -80°C.
תרבית תאים והעברה
תאי מקרופאג עכברוניים RAW264.7 נשמרו במדיום RPMI-1640 שהושלמו עם 10% סרום בקר עוברי מושבת-חום, 100 U/mL פניצילין ו-100 מיקרוגרם/מ"ל סטרפטומיצין באינקובטור לח בטמפרטורה של 37°C עם 5%CO2. תאים הועברו באמצעות מגרד תאים לפני שהגיעו למפגש יתר לשימור פנוטיפ יציב.
לצורך טרנספקציה, תאי RAW264.7 נזרעו ב-5 ×-10-5 תאים בכל באר בלוחות עם 6 בארות ב-2 מ"ל של מדיום מלא כ-24 שעות לפני החשיפה למגבה. כאשר התרביות הגיעו למפגש של 70-90%, חומצות גרעין (כגון פלסמידים לביטוי NEAT1 או HMGB1, מבנים קצרי שיער, חיקוי או מעכבים miR-181a-5p, והבקרות המתאימות להם) הורכבו עם תגובת טרנספקציה מבוססת ליפידים בתווך ללא סרום לפי הוראות היצרן. בדרך כלל, 2-3 מיקרוגרם DNA פלסמיד או 50-100 מיקרומול של RNA קטן מעורבבים עם נפח התגובה המומלץ, הורשו ליצור קומפלקסים בטמפרטורת החדר למשך 10-15 דקות, ואז נוספו טיפה לתאים במדיום ללא אנטיביוטיקה. לאחר 4-6 שעות, המדיום הוחלף במדיום טרי ושלם, והתאים הועברו לדגירה נוספת של 24-48 שעות לפני בדיקות במורד הזרם.
השראה של קיטוב מקרופאגים
כדי לגרום לקיטוב מקרופאגים דלקתי, תאי RAW264.7 הורשו להידבק בלוחות עם 6 בארות למשך לפחות 4 שעות במדיום שלם. המדיום הוחלף לאחר מכן ב-DMEM המכיל 100 ng/mL ליפופוליסכריד (LPS), והתאים הוגדרו במשך 6 שעות בטמפרטורה של 37 מעלות צלזיוס עם 5%CO2. לאחר הגירוי, התאים עובדו מיד להפקת RNA וחלבונים, צביעת אימונופלואורסצנציה, בדיקות נדידה או ניתוח אפופטוזיס, בהתאם לעיצוב הניסוי.
תגובת שרשרת פולימראז כמותית בזמן אמת (qRT-PCR)
RNA כולל הופק מתאים מתורבתים, PBMCs או רקמות עכבר באמצעות תגובת מונופאזית מבוססת פנול-גואנידיניום בהתאם לנהלים סטנדרטיים. בקצרה, דגימות עברו פירוק ב-1 מ"ל של תגובה לכל 106 תאים או 50-100 מ"ג רקמה, דגרו במשך 5 דקות בטמפרטורת החדר, ואז ערבבו בנחישות עם כלורופורם (0.2 מ"ל ל-1 מ"ל של תגובה). לאחר דגירה של 2-3 דקות, הליזטים צנטריפוגה ב-12,000 × גרם למשך 15 דקות בטמפרטורה של 4 מעלות צלזיוס כדי להפריד בין הפאזות. השלב המימי הועבר לצינור חדש, וה-RNA הושקע בנפח שווה של איזופרופנול. התערובת הודגרה לאחר מכן למשך כ-10 דקות וצנטריפוגה נוספת ב-12,000 × גרם למשך 10 דקות בטמפרטורה של 4 מעלות צלזיוס. הכדור שהתקבל נשטף עם 75% אתנול, צנטריפוגה ב-7,500 × גרם למשך 5 דקות בטמפרטורה של 4 מעלות צלזיוס, יובש באוויר לזמן קצר והומס במים ללא RNase. ריכוז וטוהר ה-RNA הוערכו באמצעות ספקטרופוטומטריית UV, ודגימות עם יחס A260/A 280 של כ-1.8-2.0 שימשו לניתוחים במורד הזרם. כאשר נדרש, השלמות אושרה באמצעות אלקטרופורזה בג'ל אגרוז.
DNA משלים (cDNA) סונתז מ-RNA כולל באמצעות ערכת שעתוק הפוך מסחרית, בהתאם להוראות היצרן. עבור miR-181a-5p השתמשו בפריימרים ספציפיים לגן או לולאת גזע כפי שהומלץ. PCR כמותי בזמן אמת בוצע באמצעות מערכת PCR בזמן אמת ותערובת מאסטר מתאימה (כגון SYBR Green או כימיה מבוססת פרוב) בנפח תגובה כולל של 20 מיקרוליטר המכיל תבנית cDNA ו-0.2-0.4 מיקרומום מכל פריימר. תנאי המחזור הטיפוסיים כללו דנאטורציה ראשונית ב-95 מעלות צלזיוס למשך 3 דקות, ואחריה 40 מחזורים של 95 מעלות צלזיוס למשך 10 שניות ו-60 מעלות צלזיוס למשך 30 שניות, עם ניתוח עקומת התכה כאשר מתאים לאישור ספציפיות האמפליקון. רמות הביטוי של NEAT1 ו-HMGB1 נורמל ל-GAPDH, וביטוי miR-181a-5p נורמל ל-RNA גרעיני קטן של U6. הביטוי היחסי חושב בשיטת 2-ΔΔCt ובוטא כשינוי קיפול בהשוואה לקבוצות הביקורת. רצפי פריימרים וגדלי אמפליקונים נאספו בגיליון אלקטרוני נפרד להגשה כטבלה משלימה 1.
בלוט מערבי
לצורך ווסטרן בלוטינג, התאים נשטפו פעמיים עם PBS קר כקרח ופורסמו בבופר RIPA מתאים עם מעכבי פרוטאז. הליזטים דוגרו על קרח למשך 15-30 דקות עם ערבוב עדין מדי פעם וצונטריפוגה ב-12,000 × גרם במשך 15 דקות בטמפרטורה של 4 מעלות צלזיוס להסרת פסולת תאית. הסופרנטנטים נאספו, וריכוזי החלבון נקבעו באמצעות מבחן חומצה ביצינכונינית (BCA).
כמויות שוות של חלבון (בדרך כלל 40 מיקרוגרם לכל נתיב) עורבבו עם בופר עומס, הוצפו בטמפרטורה של 95 מעלות צלזיוס במשך 5-10 דקות לשינוי חלבונים, והופרדו על ג'לים סודיום דודציל סולפט (SDS)-פוליאקרילאמיד בריכוז אקרילמיד מתאים (למשל, 10-12% ל-HMGB1). חלבונים הועברו לממברנות פוליווינילידין פלואוריד (PVDF) באמצעות מערכת העברה רטובה או חצי-יבשה, בתנאים המומלצים לטווח המשקל המולקולרי הרלוונטי. הממברנות נחסמו עם 5% חלב דל שומן או אלבומין סרום בקר (BSA) במי מלח טריס-באפר עם 0.1% טווין-20 (TBST) למשך שעה בטמפרטורת החדר ולאחר מכן דגרו במהלך הלילה בטמפרטורה של 4°C עם נוגדנים ראשוניים נגד HMGB1 (למשל, דילול 1:500) ו-GAPDH (למשל, דילול 1:1,000) בדילול חסימה. לאחר שלוש שטיפות ב-TBST, הממברנות דוגרו עם נוגדנים משניים מתאימים עם פרוקסידאז פרוקסידאז למשך שעה בטמפרטורת החדר. לאחר שטיפות נוספות, רצועות החלבון הוצגו באמצעות מצע כימילומינסנציה משופר ונקלטו באמצעות מערכת הדמיה דיגיטלית. עוצמות הרצועות נמדדו באמצעות תוכנת ניתוח תמונה, אותות HMGB1 ננורמו ל-GAPDH, וההבעה היחסית הושוותה בין קבוצות.
מבחן דו-לוציפראז לכתב
שברי פרא ומוטנטים של NEAT1 ואזור HMGB1 3′-לא מתורגם (3′-UTR) המכילים את אתרי הקישור החזויים miR-181a-5p שוכפלו לווקטור דיווח לוסיפראז19. כל המבנים אומתו באמצעות ריצוף סנגר לאישור אתרי ההחדרה והמוטציה20. תאי RAW264.7 נזרעו בלוחות של 24 בארות והורשו להידבק ללילה. התאים עברו לאחר מכן טרנספקטציה משותפת עם פלסמידים של מדווח ומעכבי miR-181a-5p, מימיקים, או בקרות שליליות תואמות באמצעות תגובת טרנספקציה מבוססת שומן, כפי שתואר בהליך הטרנספקציה הכללי.
לאחר כ-24-48 שעות של דגירה, התאים נשטפו עם PBS, עברו ליזה בבופר ליזה פסיבי מתאים (למשל, 20 מיקרוליטר לבאר), וערבבו בעדינות כדי להבטיח פירוק מלא. פעילות הלוציפראז נמדדה באמצעות ערכת בדיקה דו-לוסיפראז ולומינומטר, בהתאם להוראות היצרן. פעילות הלוציפראז של גחלילית הותאמה לפעילות רנילה לוסיפראז כדי לשלוט ביעילות הטרנספקציה, והפעילות היחסית של הלוציפראז של כל קבוצה הושוותה לפעילות הביקורת המתאימה.
בדיקת נדידת טרנסוול
נדידת המקרופאגים הוערכה באמצעות תאי טרנסוול מצופים מראש בג'ל מטריצה חוץ-תאית המתאים לבדיקות פלישת תאים. הג'ל דולל ביחס 1:6 בחומר ללא סרום על קרח, והוספו 50 מיקרוליטר מהתמיסה המדוללת למשטח העליון של כל הוסף. הצלחת נדגרה בטמפרטורה של 37 מעלות צלזיוס במשך כ-4 שעות כדי לאפשר לג'ל להתקשות. תאי RAW264.7 שעברו טרנספקציה או טופלו נקטפו, הושמו מחדש במדיום ללא סרום ב-1 ×10 תאים 6 למ"ל, ו-100 מיקרוליטר של תליית התא (1 × 105 תאים) נוספו לתא העליון. התא התחתון היה מלא ב-600 מיקרוליטר של מדיום שלם המכיל 10% סרום בקר עוברי ככימואטרטנט.
התאים דגרו בטמפרטורה של 37 מעלות צלזיוס עם 5%CO2 למשך 24 שעות. בסיום הדגירה, תאים לא נודדים שנותרו על פני השטח העליונים של הממברנה הוסרו בעדינות באמצעות מטוש כותנה. תאים מהגרים שדבקו לפני השטח התחתון של הממברנה קיבעו עם 95% אתנול למשך כ-20 דקות בטמפרטורת החדר ולאחר מכן צובעו בתמיסת קריסטל סגול של 0.5% למשך 10-15 דקות. הצבע העודף הוסר על ידי שטיפה עם PBS, והממברנות יובשו באוויר. תאים מהגרים נבדקו תחת מיקרוסקופ אור, ותאים במספר שדות שנבחרו באקראי בכל הכנסה נספרו באופן עיוור כדי לכמת את יכולת הנדידה.
בדיקת אפופטוזיס TUNEL
לצורך גילוי אפופטוזיס, תאי RAW264.7 תורבדו על כיסויי זכוכית ונחשפו לטיפולים או טרנספקציות שציינו אותם. התאים תוקנו עם 4% פאראפורמלדהיד למשך 30-60 דקות בטמפרטורת החדר ונשטפו עם PBS. פעילות פרוקסידאז אנדוגנית נחסמה על ידי דגירה במי חמצן של 0.3% למשך 20 דקות, ולאחר מכן שטיפות PBS. נעשה שימוש בערכת בדיקה TUNEL, ותערובת התיוג הונחה לכיסוי התאים. הדגימות נדגרו בטמפרטורה של 37 מעלות צלזיוס למשך כ-60 דקות בתא לח, והתגובה הופסקה לפי הוראות הערכה. לאחר דגירה עם סטרפטווידין-HRP או תגובת גילוי מקבילה למשך 30 דקות בטמפרטורה של 37 מעלות צלזיוס, הגרעינים נראו באמצעות מצע כרומוגני כמו 3,3′-דיאמינובנזידין (DAB) עד שהתגלה גרעינים אפופטוטיים מוכתמים בצבע חום. המחסניות צוללו בהמטוקסילין, יובשו באמצעות אתנול מדורג, נוקו בקסילן, והותקנו במדיום קבוע. תאי אפופטוטיה וכל הגרעינים נצפו תחת מיקרוסקופ אור, ומדד האפופטוטיה חושב כאחוז התאים החיוביים ל-TUNEL.
אימונופלואורסצנציה
לאימונופלואורסצנציה, קטעי רקמה מוטמעים בפרפין פורקו בשעווה בקסילן והודרו מחדש דרך סדרת אתנול מדורגת למים. שליפת אנטיגנים בוצעה באמצעות בופר מתאים (כגון בופר ציטראט, pH 6.0) ושחזור אפיטופים מונע חום באמצעות מיקרוגל או סיר לחץ, בהתאם להמלצות נוגדנים. לאחר קירור ושטיפה, החלקים נחסמו עם 5% סרום תקין ב-PBS למשך שעה אחת בטמפרטורה של 37°C כדי להפחית קשירה לא ספציפית. רקמות דגרו במהלך הלילה בטמפרטורה של 4 מעלות צלזיוס עם נוגדנים ראשוניים נגד סמנים של קיטוב מקרופאגים וציטוקינים דלקתיים, כולל CD206, TNF-α, IL-1β, IL-6, סינתאז תחמוצת חנקן מושרה (iNOS), IL-4, IL-10 ו-Arg-1 (בדרך כלל בדילול של 1:500), מדוללים בבופר חסימה.
ביום הבא, הקטעים נשטפו ב-PBS ודגרו עם נוגדנים משניים מתאימים עם פלואורופור בצורת נוגדנים משניים למשך שעה בטמפרטורה של 37 מעלות צלזיוס בחושך. הגרעינים צובעו נגד ב-4′,6-דיאמידינו-2-פנילינדול (DAPI) למשך 5 דקות. לאחר שטיפות סופיות, החלקים הותקנו על מדיום הרכבה נגד דהייה ונבדקו תחת מיקרוסקופ פלואורסצנציה באמצעות מערכות מסננים מתאימות. התמונות צולמו עם הגדרות חשיפה עקביות בין קבוצות, ופסי קנה מידה (למשל, 20 מיקרון) והגדלות צוינו בכל לוחות הדמויות והמיתות.
מודל עכבר ספסיס מושרה CLP
עכברים זכרים עם C57BL/6 (24-32 גרם) הסתגלו לפחות לשבוע לפני הניתוח ואז שובצו באקראי לקבוצות סיכת שיער קצרה שלילית, או קבוצות CLP עם NEAT1 (n = 6 לכל קבוצה). העכברים הורדמו על ידי שאיפת אתר בתא סגור למשך כ-1-3 דקות עד לאובדן האתר הרפלקסי המתקין או הרדמה אחרת מאושרת על ידי מוסדות, במינון ובמשך חשיפה שגרמו לאובדן הרפלקס המתקן תוך שמירה על תפקוד נשימתי תקין. שיער הבטן גולח, והעור חוטא בתמיסת חיטוי מתאימה. בוצעה לפרוטומיה בקו אמצעי של כ-1-2 ס"מ כדי לחשוף את הצקום עם המעי הסמוך.
ב-CLP, הסקום הועבר בעדינות החוצה וקשור בתפר סטרילי בכשלושה שלישים מאורכו, תוך זהירות שלא לחסום את מסתם האילאוצקל או לפגוע בזרימת הדם המזנטרית. הצקום הקשור ננעץ פעמיים עם מחט סטרילית במידה שצוינה בפרוטוקול המאושר (לדוגמה, 21 G), וכמות קטנה של חומר צואה הוצאה בעדינות כדי להבטיח את היעילות של אתרי הניקוב. הצקום הוחזר לאחר מכן לחלל הפריטונאלי, ודופן הבטן והעור נסגרו בשכבות עם תפרים. עכברים שהופעלו בשמה עברו את אותה לפרוטומיה וחשיפה לצקום ללא קשירה או ניקוב.
כדי להשיג הפלת NEAT1 במצב חי, הוכנו וקטור אדנוויראלי המקודד shNEAT1 ווקטור בקרה שלילי מתאים במדד מוגדר (לדוגמה, 1 ×10 9 יחידות יצירת פלאק/מ"ל). נפח קבוע של השעיה ויראלית (כגון 100 מיקרוליטר לעכבר) ניתן דרך וריד הזנב בזמן מוגדר ביחס ל-CLP (למשל, שעה לאחר הניתוח), כפי שמתואר בעיצוב הניסוי ואושר על ידי ועדת האתיקה. לאחר הניתוח, העכברים קיבלו טיפול סטנדרטי לאחר הניתוח, כולל החייאת נוזלים תת-עוריים במידת הצורך, ונעקבו לסימנים קליניים של ספסיס ומצוקה. בנקודת הזמן שנקבעה מראש, בעלי חיים הושמתו באופן הומאני, באמצעות שאיפת אתר במנת יתר בתא סגור, תוך שימוש בכ-5-10 מ"ל אתר להבטחת הפסקה מהירה של הנשימה, ולאחר מכן אישור המוות, נאסף דם לניתוח ציטוקינים, והאיברים נאספו להיסטופתולוגיה, אימונופלואורסצנציה ובדיקות מולקולריות.
ניתוח סטטיסטי
הניתוח הסטטיסטי בוצע באמצעות גרסה 23.0 של SPSS או חבילת תוכנה סטטיסטית מקבילה. הנתונים מוצגים כסטיית תקן ממוצעת ± (SD) אלא אם צוין אחרת. לצורך השוואות בין שתי קבוצות, נעשה שימוש במבחן t סטודנט לא מזווג כאשר הנתונים היו מחולקים בדרך כלל עם שונות הומוגנית. להשוואות בין שלוש קבוצות או יותר, הוחל ניתוח חד-כיווני של שונות (ANOVA), ואחריו בדיקות לאחר מכן מתאימים להשוואות מרובות כאשר זוהתה השפעה כוללת משמעותית. ערך p דו-צדדי < 0.05 נחשב מובהק סטטיסטית. משמעות הסמלים הסטטיסטיים (למשל, p < 0.05, *p < 0.01) הוגדרה באגדות האיורים, ומספר השכפולים הביולוגיים מצוין בטקסט או באגדות המתאימים.