הרשמה ל-JoVE נדרשת לצפייה בתוכן זה. התחברו או התחילו בגרסת ניסיון בחינם.

מאמר שיטה

ספקטרוסקופיית תהודה מגנטית של פוספורוס-31 למדידות סדרתיות של אנרגטיקה לבבית במהלך שימור לב מבוקר טמפרטורה

310 צפיות

⸱

DOI:

10.3791/70070

⸱

17 במרץ 2026

 ,  ,  ,  ,  ,  ,  ,  ,  ,  ,  ,  ,  ,  , 
1Division of Cardiac Surgery, Johns Hopkins University School of Medicine, 2Division of MR Research, Russell H. Morgan Department of Radiology and Radiological Science, Johns Hopkins University School of Medicine, 3Krieger School of Arts and Sciences, Johns Hopkins University, 4Johns Hopkins University School of Medicine, 5Department of Pediatric Cardiac Surgery, Johns Hopkins University School of Medicine

* These authors contributed equally

במאמר זה

סיכום

במאמר זה תיארנו פרוטוקול מבוקר טמפרטורה שניתן לשחזור עבור ספקטרוסקופיית תהודה מגנטית של זרחן-31 אקס ויבו, המאפשר הערכה סיריאלית וכמותית של אנרגטיקת שריר הלב במהלך שימור האיברים.

תקציר

שימור איברים אמין הוא קריטי להגדלת זמינות התורמים ולשיפור תוצאות ההשתלה. בעוד שאחסון סטטי נשאר הסטנדרט ללב תורם, יש צורך בשיטות מדויקות למעקב אחר אנרגטיקה שריר הלב לאורך כל תקופת השימור.

ספקטרוסקופיית תהודה מגנטית של פוספורוס-31 (31P MRS) מאפשרת מדידה ישירה ודינמית של מטבוליטים מרכזיים באנרגיה, כולל פוספוקריאטין (PCr), אדנוזין טריפוספט (ATP), פוספט אנאורגני (Pi) ו-pH תוך-תאי. טכניקה זו מאפשרת הערכה אורך, כמותית ומדויקת של מצב מטבוליזם שריר הלב במהלך אחסון מחוץ לחיים . היתרונות של MRS כוללים הערכה דינמית של מצב האנרגיה והערכה גלובלית של אנרגיית חדרים.

הפרוטוקול מתחיל בהחלמה של תורמי חזירים, מתן קרדיופלגיה וכריתת לב. הקשת האאורטלית נחתכת פרוקסימלית לגזע הברכיוצפלי כדי למקסם את אורך האאורטה העולה. קנולה מחולקת מחוברת לאאורטה העולים הרחוקה, העלייה השמאלית מסומנת, והלב מונח במיכל גלילי ומבודד שממולא מראש בקרדיופלגיה ספציפית לטמפרטורה. המכסה מתחבר לקנולה, תולה את הלב בפנים, והמיכל אטום, תוך שמירה על טמפרטורה בטווח של 1°C למשך שעה.

המיכל מונח בקופסת קלקר מותאמת עם פתח לסליל מכוון זרחן, המיישר את מרכז הסליל עם מרכז החדר השמאלי (LV). תמונות סקאוט מאשרות את מיקום ה-LV ליד סליל 31P. שימינג B0 מבטיח עירור אחיד, ואחריו רכישת ספקטרום MR לא מקומי של 31P. עיבוד לאחר מכן מזהה שיאים ספקטרליים לחישוב PCr/ATP, יחס PCr/Pi ו-pH תוך-תאי.

בפרוטוקול שלנו, 31P MRS מתבצעת בנקודות זמן סידוריות בין h 0 ל-8. בין נקודות הזמן, הלב מאוחסן במכשיר אחסון סטנדרטי בטמפרטורה הרצויה.

31P MRS אפשר לנו לחקור שינויים תלויים בזמן בדלדול האנרגיה ותפקיד טמפרטורת האחסון במניעת דלדול אנרגיה לאורך זמן.

מבוא

השתלת לב נותרה הטיפול הסופי עבור מטופלים נבחרים עם אי ספיקת לב בשלב סופי1. עם זאת, מחסור מתמשך באיברים מתאימים לתורם והמגבלות של אסטרטגיות השימור הנוכחיות מהווים מכשולים מרכזיים לתוצאות מיטביות ולהרחבת זמינות ההשתלות 2,3. מסורתית, לבבות תורמים נשמרים באמצעות אחסון סטטי קר, שהוא פשוט וחסכוני, אך חשוף לדלדול אנרגטי תת-קליני במהלך העברה ממושכת 2,4. ככל שתוכניות מקבלות יותר ואיברים בסיכון גבוה ומרוחקים גאוגרפית, יש צורך גובר בכלים אובייקטיביים המאפיינים את מצב המטבוליזם של שריר הלב במהלך השימור, במקום להסתמך רק על זמן איסכמי ובדיקה גולמית 5,6,7. בנוסף, מטבוליזם שריר הלב וסבילות איסכמית מושפעים מאוד מהטמפרטורה, וקירור לא מספק והיפותרמיה מופרזת עלולים להחמיר דלדול אנרגטי ופגיעה תאית במהלך האחסון. הערכת לבבות תורמים בטמפרטורות שימור קליניות מרובות ורלוונטיות מועפות, לכן, מסייעת לזהות מצבים השומרים בצורה הטובה ביותר על חיוניות שריר הלב לאורך זמן3.

הערכה מדויקת ודינמית של ביואנרגטיקה של שריר הלב במהלך האחסון חיונית לשיפור טכניקות השימור ולמקסום ניצול האיברים. כיום, הנוהג הסטנדרטי מתבסס על אחסון קר סטטי בטמפרטורות בטווח של כ-4-8מעלות צלזיוס. למרות שפרוטוקול זה הראה תוצאות מוצלחות לאורך תקופות אחסון קצרות, אחסון ממושך בטמפרטורה זו עלול לסכן את שלמות שריר הלב. לכן, חיוני לבצע מדידות סדרתיות של פעילות מטבולית בטווח טמפרטורות ומשך זמן כדי לקבוע את תנאי האחסון האופטימליים הנדרשים להבטחת השתלת איברים מוצלחת. הערכה קונבנציונלית של פגיעות שימור מתבססת לעיתים קרובות על בדיקות היסטולוגיות או בדיקות ביוכימיות מביופסיות שריר הלב, שהן פולשניות, הרסניות ומספקות רק תמונות אזוריות לסירוגין של מצב הרקמה9. לעומת זאת, ספקטרוסקופיית תהודה מגנטית של פוספורוס-31 (31P MRS) היא שיטה עוצמתית ולא הרסנית המאפשרת מדידה ישירה וסדרתית של מטבוליטים מרכזיים באנרגיה, כולל פוספוקריאטין (PCr), אדנוזין טריפוספט (ATP), פוספט אנאורגני (Pi) ו-pH תוך-תאי, בתוך רקמת הלב השלמה 6,10,11,12. על ידי מתן אפשרות למדידות חוזרות באותו איבר ללא טיפול רקמתי נוסף, 31P MRS מספק תובנות גלובליות ואורכותיות לגבי מצב האנרגיה של שריר הלב, ומגביר את הדיוק והשחזור בניסויי בהשוואה לגישות מבוססות ביופסיה או תחליפי סרום 6,13.

הערכת הקיימות של שתל לב עם 31P MRS נבדקה על ידי ברנרד ואח'14. כאן מוצג פרוטוקול מפורט ומבוקר טמפרטורה ל-ex vivo 3 Tesla 31P MRS של לב החזיר במהלך השימור. שיטה זו מספקת מסגרת מעשית למעקב אחר דלדול המצע, בדיקת משתני אחסון ואימות התערבויות שימור. הפרוטוקול מתאים במיוחד למעבדות המחפשות מדידות סדרתיות של כל החדר במהלך אחסון סטטי בקירור, כגון מחקרים על שימור תלוי טמפרטורה, פגיעות איסכמיה-רפוזיה, או אופטימיזציה של פתרונות ללב תורם שוליים ומורחבים.

הגישה מוגבלת. התחברו או התחילו תקופת ניסיון כדי לצפות בתוכן זה.

פרוטוקול

פרוטוקול זה פועל לפי הנחיות מוסדיות לטיפול בבעלי חיים ואושר על ידי ועדת הטיפול והשימוש בבעלי חיים של ג'ונס הופקינס (מספר פרוטוקול SW24M319) לכל ההליכים הכוללים בעלי חיים חיים עד לקציר כירורגי. כל הניסויים הבאים ב-ex vivo בוצעו באמצעות רקמות שהושגו לאחר המתת חסד.

1. הליך טרום-קציר

  1. הגדר את האינקובטור לטמפרטורה של 2°C מתחת לטמפרטורת השימור היעדית. אפשר לאינקובטור להתייצב לפחות לשעתיים.
  2. הניחו 6-7 שקיות קרח באינקובטור כדי לקרר אותן לטמפרטורה שנקבעה. ודא שכמות שקיות הקרח מספיקות כדי לשמור על טמפרטורה במהלך ההובלה.
  3. הכינו פתרון קרדיופלגיה מותאם לסיינט תומאס:
    1. ב-1 ליטר של שקית התמיסה של Lactated Ringer, הוסיפו
      1. 30 מ"ל של 8.4% נתרן ביקרבונט
      2. 5 מ"ל של 30 מ"מ/10 מ"ל אשלגן כלוריד
      3. 2.5 מ"ל של 20 מ"מ/10 מ"ל מגנזיום סולפט
      4. 15 מ"ל של 50% דקסטרוז
      5. 100 מ"ג של 50 מ"ג/10 מ"ל ניטרוגליצרין
      6. 5000 U של אריתרופויטין קר
    2. הכינו סך הכל 3 ליטר של תמיסת קרדיופלגיה ואחסנו את התמיסה באינקובטור המקורר מראש.
  4. הניחו בצד את המקרר המבודד עם צינור סיליקון מובנה שמאפשר מיקום מיטבי של גובה הלב האנכי. הניחו סימן ייחוס שחור על צינור הסיליקון בנקודה שנמצאת ישירות מתחת לקצה הפתח במכסה המקרר.
  5. הניחו קנולה עם צלעות לאחסון והשעיית הלב שנקטף. הניחו סימן ייחוס שחור על פני השטח החיצוניים של הקנולה כדי לשמש כנקודת יישור שניתן לשחזר.

2. הליך הקציר

  1. הרדימו את החיה באמצעות שילוב של טלאזול, קטמין וקסילזין מעורבבים במזרק אחד ומתן דרך השריר, כדי למזער את הלחץ והכאב הנלווים למספר זריקות.
    1. טלזול (50 מ"ג טילטמין + 50 מ"ג זולאזפאם) במינון 4.4 מ"ג/ק"ג לכל רכיב.
    2. קטמין ב-2.2 מ"ג/ק"ג.
    3. זילזין ב-2.2 מ"ג/ק"ג.
  2. אינטובציה והרדמה של בעל החיים.
    1. נפח גאות של 5-10 מ"ל לק"ג.
    2. קצב הנשימה הוא 12-15 נשימות בדקה.
    3. לחץ סוף נשיפה חיובי בגובה 5 ס"מH2O.
    4. שאפתי איזופלורן ב-0.5-2% עם זרימת חמצן של 1-2 ליטר לדקה.
  3. מניחים קווים תוך-ורידיים היקפיים, מבצעים סטרנוטומיה ופתחו את הפריקרדיום15. תן תרופות נגד הפרעת קצב במידת הצורך.
  4. הניחו מחט קרדיופלגיה באאורטה העולה, ממוקמת מעל מסתם האאורטה אך מתחת לקשת האאורטה.
  5. קוץ וחבר שקית של 1 ליטר תמיסת קרדיופלגיה למחט.
  6. אוורור את העלייה השמאלית, הווריד הנוב התחתון והווריד הנוב העליון.
  7. הניחו מהדק רוחבי באאורטה פרוקסימלי על הקשת.
  8. התחילו זרימת קרדיופלגיה דרך הלב בלחץ של כ-75-80 מ"מ כספית. מעקב אחרי לחץ באמצעות מד קו.
  9. קצור את הלב תוך שמירה על שלמות אנטומית.
  10. שפכו מלח מקורר מראש על הלב שנקטף כדי לקרר במהירות את פני השטח.
  11. שים את הלב בקערה מלאה בתמיסת קרדיופלגיה קרה.
  12. הכנס גלאי טמפרטורת שריר הלב בקצה הלב, ומדחום לקערת התמיסה הקרדיופלגית כדי לעקוב אחרי הטמפרטורה.
  13. הפרד את האאורטה מהעורק הריאתי (PA).
  14. אבטחו את הקנולה המצובעת באאורטה באמצעות קשרי משי ואזיקונים, כדי לוודא שהחלק המסומן של הקנולה תואם למיקום החדר השמאלי (LV).
  15. מלאו את המקרר בתמיסת סיינט תומאס לקיבולת של 60-70%, ואז העבירו את הלב ותמיסת הקערה למקרר למילוי מלא, וממקסם את הטבילה במים.
  16. מדוד ותעד את התמיסה הסופית ואת טמפרטורת הרקמה.
  17. חבר את הקנולה המפוספסת למכסה המקרר עם צינור סיליקון בסימן המוגדר מראש. ודא שהסימנים על הקנולה המפוספסת וצינור הסיליקון מיושרים, כך שה-LV שומר על כיוון אחיד יחסית למכסה כאשר המקרר סגור, ולהבטיח מיקום שחזורי של ה-LV בכל סריקה (איור 1A).
  18. הורד את האיבר מהאוויר כדי להבטיח הומוגניות מיטבית בשדה MR ויחס אות לרעש טוב במהלך איסוף נתוני MR.
  19. אבטח את מכסה הקירור, כדי להבטיח יישור LV.
  20. שים שקיות קרח ומקרר בתוך שקית הובלה.

3. פרוטוקול ספקטרוסקופיה

  1. פרוטוקול זה מותאם לסורק MR של 3T. סורק ה-MR מצויד באפשרות ספקטרוסקופיה רב-גרעינית, הכוללת מגבר ומקלט בתדר רדיו רחב פס של 4 קילוואט, כולל סליל זרחן סטנדרטי (P140) שמספק הספק. סליל 31P הוא סליל שידור/קבלה בקוטר 14 ס"מ, עם שני מוטות לכיוון והתאמה.
  2. הודיעו לצוות מתקן ה-MRI לפני ההעברה ואישור זמינות הסריקה.
  3. הכינו קופסת סטירופום במידות חיצוניות הבאות: אורך 33.5 ס"מ, רוחב 28 ס"מ (קצה ארוך יותר), רוחב 23 ס"מ (קצה קצר יותר) ועובי 4 ס"מ. צרו חריץ ברוחב 3.3 ס"מ בצד אחד של הקופסה כדי לאפשר מיקום סליל 31P ליד הלב (איור 1B).
  4. הכנס את המקרר כשהלב התלוי סמוך לציר המרכזי של הסליל, מכוון למיקום ה-LV (איור 1C). הכינו מקרר בגובה 25.4 ס"מ וברוחב 11.4 ס"מ. צינור הסיליקון מקובע באורך של 7 ס"מ מהמשטח הפנימי של המכסה, בנקודת ההרכבה של הלב (איור 1D).
  5. הניחו שקיות קרח במרווחים סביב המקרר, תוך היזהרות שלא ליצור מרווח בין המקרר לסליל, ואז הדביקו את מכסה הקופסה כדי להבטיח יציבות בזמן הסריקה (איור 1E).
  6. מרכז את המקרר למרכז המגנט באמצעות מדריכי הלייזר וסימן המרכז, כדי להבטיח הומוגניות מיטבית של B0 (איור 1F).
  7. חבר את סליל ה-31Pלמחבר הסריקה וחבר מוטות כיוון והתאמה לסליל (איור 1F).
  8. רכוש תמונות סיור לוקלייזר תלת-מישורי כדי לאמת את מיקום הסליל ואת הקרבה האופטימלית ל-LV לסליל 31P (איור 2).
  9. אם מיקום ה-LV לא נכון, סובב את מכסה הקירור והריץ שוב את סריקת הסקאוט.
  10. רכש שדה סטטי B0-map עבור שימינג מקומי מסדר2 16 כדי להבטיח שדה מגנטי אחיד באזור העניין הנדרש לאיכות ספקטרלית גבוהה:
    1. לאחר רכישת מפתB 0, "שימטול"16 מופעל אוטומטית עם המפה טעונה (איור 3).
    2. נקודות לחיצה של פוליגון חלק המסמנים את שריר הלב בכל הפרוסות (איור 3A).
    3. ה"שימטול" מבצע התאמת ריבועים פחות מוגבלים כדי לקבוע תדר תהודה מקומי ותיקוני שדה שים מסדר ראשון (xy, xz, yz, x2-y 2, z 2-(x2+y2)/2) (איור 3C). העלה את מונחי התיקון הללו לסורק והחלם אותם על הסריקות הבאות.
  11. לפני רכישת 31P MRS, סובבו את מוטות הכיוון של הסליל כדי להבטיח כיוון אופטימלי של סליל התדר הרדיו ולהתאים את ההתנגדות שלו למערכת ה-MR, ובכך למקסם את יעילות שידור האות ולהפחית השתקפויות במערכת התדרים הרדיו (איור 4).
  12. רכישת ספקטרום MR לא מקומי ראשוני של 31P (זמן חזרה [TR]: 10 שניות, זווית היפוך = 90° באמצעות פולסים אדיאבטיים B1-Insensitive Rotation-4 (BIR-4); זמן הד [TE] = 0.1 מילישניות; רוחב פס=3000 הרץ (הרץ); 1024 נקודות ספקטרליות, 5 ממוצעים) כדי לקבוע את תדירות התהודה במרכז בין פסגות PCr ל-γ-ATP. זמן רכישה כולל: 50 שניות.
  13. לאחר מכן רוכשים ספקטרום MR לא מקומי של 31P לאחר התאמת תדר ההיסט בהתבסס על החישוב ב-3.12 (TR: 16 שניות, זווית הפיכה = 90° באמצעות פולסים אדיאבטיים BIR-4; TE = 0.1 מילישניות; רוחב פס = 3000 הרץ; 512 נקודות ספקטרליות, 20 ממוצעים). זמן רכישה כולל: 5 דקות ו-20 שניות.
  14. לאחר הסריקה, למדוד את טמפרטורת הנוזלים ושריר הלב; הבטחת סטייה מהיעד היא ≤1 מעלות צלזיוס.
  15. אחסן את הלב באינקובטור בטמפרטורה הרצויה עד לסריקה הבאה המתוכננת.

4. ניתוח נתונים

  1. ייצוא את נתוני MRS של 31P המשוחררים לחלוטין כ-. קבצי נתוני SDAT וטעינה לממשק משתמש גרפי לעיבוד (איור 5A)17.
  2. ראשית, יש אפודיזציה של הספקטרום באמצעות פילטר לורנציאני של 15 הרץ (איור 5B), לאחר מכן החלת הזזת פאזה מסדר 0 ו-1, והגדר את התדר ל-0 חלקים למיליון (ppm) במרכז שיא ה-PCr (איור 5C).
  3. התאמת הספקטרום באמצעות פונקציית AMARES18 באמצעות ערכי הידע המפורטים בטבלה 1.
  4. בדוק את הניתוח להתאמה מספקת בחלון הבא (איור 6), על ידי הבטחת זיהוי נכון של כל שיא (רכיבים בודדים) ושהאות השאריתי המינימלי נשאר לאחר הניתוח (שאריות).
  5. חשב את יחסי מטבוליטים שריר הלב PCr/ATP ו-PCr/Pi בהתבסס על אמפליטודת השיא הספקטרוסקופית (איור 7). תהודה γ-ATP משמשת כמדד ל-ATP.
  6. חשב את ה-pH התוך-תאי בהתבסס על ההזזה הכימית בין Pi ל-PCr לאחר ההתאמה, כדי לשקף את תנאי הטמפרטורה14.
    הערה: ניתן להשהות את הפרוטוקול לאחר כל סריקת MRI (שלב 3.15). ודא שבקרת טמפרטורה נשמרת לאורך כל הדרך.

5. משוואות

  1. חשב את ה-pH התוך-תאי (pHi) כפי שתואר קודם19:
    משוואה 1
    כאשר T הוא הטמפרטורה ב-°C, ו-δ0 הוא ההפרש הכימי הנצפה בין תהודות PCr ו-Pi, ב-ppm.

הגישה מוגבלת. התחברו או התחילו תקופת ניסיון כדי לצפות בתוכן זה.

תוצאות

השימינגהמקומי מסדר 216 יצר שדה מגנטי הומוגני יותר B0 באזור העניין, כפי שניתן לראות על ידי הפחתה בסטיית התקן בכל נקודת זמן (0 שעות: 14.0 עד 4.0 הרץ; 4 שעות: 17.5 עד 3.2 הרץ; 8 שעות: 16.0 עד 3.2 הרץ). דבר זה הבטיח שהושג איכות ספקטרלית מצוינת בכל נקודת זמן (איור 7). השינויים המטבוליים של שריר הלב במהלך אחסון הקור מחוץ לחיים מעידים על דלדול מהיר של מאגרי הפוספט באנרגיה גבוהה וחמצה תוך-תאית מתקדמת לאורך זמן. בכל הפרמטרים שנמדדו, PCr/ATP, PCr/...

הגישה מוגבלת. התחברו או התחילו תקופת ניסיון כדי לצפות בתוכן זה.

דיון

מאמר זה מתאר הכנה ניתוחית ופרוטוקול רכישה וניתוח MRS של 31P להערכה סדרתית של אנרגטיקה שריר הלב במהלך שימור הלב. 31P MRS מאפשר הערכה סדרתית ולא הרסנית של מטבוליטים מרכזיים בלב בטמפרטורות אחסון קר שונות, מה שמספק תובנות חדשניות לגבי היכולת המטבולית של רקמת שריר הלב. פרוטוקול 31P MRS זה מהיר יחסית, ודורש זמן סריקת מינימלי, מה שמאפשר הערכת אנרגטיקה קרדיאלית לפני שינויים משמעותיים בטמפרטורת הרקמה. הגישה ניתנת להתאמה למודלים אחרים של בעלי חיים גדולים ועשויה להת...

הגישה מוגבלת. התחברו או התחילו תקופת ניסיון כדי לצפות בתוכן זה.

גילויים

אין לנו ניגוד עניינים.

תודות

אנו מבקשים להודות לצוות שלנו בג'ונס הופקינס במחלקת ניתוחי לב ורדיולוגיה כדי לסייע בביצוע המחקר בהצלחה. מחקר זה מומן על ידי האגודה האמריקאית לניתוחי חזה (AATS).

הגישה מוגבלת. התחברו או התחילו תקופת ניסיון כדי לצפות בתוכן זה.

חומרים

רשימת החומרים שנעשה בהם שימוש במאמר זה
שםחברהמספר קטלוגהערות
חממהBenchmark Scientific H2265-HCחממת קירור חימום MyTemp 65HC
קירור מבודדגטוריידUPC 052000047097מקרר משקאות ספורט מבודד של גטורייד
jMRUI גרסה 7.0Javawww.jmrui.euממשק משתמש גרפי לניתוח נתונים
גלאי טמפרטורת שריר הלבדה-רויאל81-030415גלאי טמפרטורת שריר הלב מסדרת DeRoyal 400 (15 מ"מ)
סורק תהודה מגנטיתפיליפסhttps://www.philips.com/healthcare/diagnostic-imaging/magnetic-resonance-imagingAchieva 3T, Philips Healthcare
סליל זרחן בלולאה אחתPhilips Healthcare  https://www.philips.com/healthcare/diagnostic-imaging/magnetic-resonance-imagingP140, Philips Healthcare

מקורות

  1. Lechiancole, A., et al. Graft preservation in heart transplantation: current approaches. Front Cardiovasc Med. 10, 1253579(2023).
  2. Kounatidis, D., et al. Donor heart preservation: current knowledge and the new era of machine perfusion. Int J Mol Sci. 24 (23), 16693(2023).
  3. Ughetto, A., et al. Heart graft preservation technics and limits: an update and perspectives. Front Cardiovasc Med. 10, 1248606(2023).
  4. Wang, C. C., et al. Understanding preservation time thresholds in the modern era of heart transplantation. Sci Rep. 15 (1), 1-10 (2025).
  5. Tang, P. C., et al. Risk factors for heart transplant survival with greater than 5 h of donor heart ischemic time. J Card Surg. 36 (8), 2677-2684 (2021).
  6. Peterzan, M. A., Lewis, A. J. M., Neubauer, S., Rider, O. J. Non-invasive investigation of myocardial energetics in cardiac disease using 31P magnetic resonance spectroscopy. Cardiovasc Diagn Ther. 10 (3), 625-639 (2020).
  7. Lerman, J. B., et al. Donor heart recovery and preservation modalities in 2024. JACC Heart Fail. 12 (3), 427-437 (2024).
  8. Al-Ani, M. A. Z., Farr, M. A., Shah, P. Cold precision: enhancing organ preservation with controlled hypothermia. J Heart Lung Transplant. 43 (9), 1527-1529 (2024).
  9. Mishra, P. K., et al. Guidelines for evaluating myocardial cell death. Am J Physiol Heart Circ Physiol. 317 (5), H891-H922 (2019).
  10. Abdurrachim, D., Prompers, J. J. Evaluation of cardiac energetics by non-invasive 31P magnetic resonance spectroscopy. Biochim Biophys Acta Mol Basis Dis. 1864 (5), 1939-1948 (2018).
  11. Sourdon, J., Lewsey, S. C., Schär, M., Weiss, R. G. Measuring myocardial energetics with cardiovascular magnetic resonance spectroscopy. Heart Fail Clin. 17 (1), 149-156 (2021).
  12. Samuel, T. J., et al. Myocardial ATP depletion detected noninvasively predicts sudden cardiac death risk in patients with heart failure. JCI Insight. 7 (12), e157557(2022).
  13. Buchthal, S. D., et al. 31P-magnetic resonance spectroscopy studies of cardiac transplant patients at rest. J Cardiovasc Magn Reson. 2 (1), 51-56 (2000).
  14. Bernard, M., Kober, F., Caus, T. Assessing cardiac transplant viability with MRS. eMagRes. 4 (3), 627-633 (2015).
  15. Pla, M. M., et al. A porcine heterotopic heart transplantation protocol for delivery of therapeutics to a cardiac allograft. J Vis Exp. (180), e63114(2022).
  16. Schär, M., Kozerke, S., Fischer, S. E., Boesiger, P. Cardiac SSFP imaging at 3 Tesla. Magn Reson Med. 51 (4), 799-806 (2004).
  17. Naressi, A., Couturier, C., Castang, I., De Beer, R., Graveron-Demilly, D. Java-based graphical user interface for MRUI, a software package for quantitation of in vivo/medical magnetic resonance spectroscopy signals. Comput Biol Med. 31 (4), 269-286 (2001).
  18. Vanhamme, L., Van den Boogaart, A., Van Huffel, S. Improved method for accurate and efficient quantification of MRS data with use of prior knowledge. J Magn Reson. 129 (1), 35-43 (1997).
  19. Taylor, D. J., Bore, P. J., Styles, P., Gadian, D. G., Radda, G. K. Bioenergetics of intact human muscle: a 31P nuclear magnetic resonance study. Mol Biol Med. 1 (1), 77-94 (1983).
  20. Kothari, P. Ex vivo preservation of heart allografts-an overview of the current state. J Cardiovasc Dev Dis. 10 (3), 105(2023).
  21. Kober, F., Caus, T., Riberi, A., Le Fur, Y., Bernard, M. Time course of high-energy phosphate depletion during cold storage of human heart grafts using the Celsior solution. Transpl Int. 37, 12994(2024).
  22. Tsampasian, V., Cameron, D., Sobhan, R., Bazoukis, G., Vassiliou, V. S. Phosphorus magnetic resonance spectroscopy (31P MRS) and cardiovascular disease: the importance of energy. Medicina (Kaunas). 59 (1), 174(2023).
  23. Gupta, A. Cardiac 31P MR spectroscopy: development of the past five decades and future vision-will it be of diagnostic use in clinics. Heart Fail Rev. 28 (2), 485-532 (2023).
  24. Michel, S. G., et al. Preservation of donor hearts using hypothermic oxygenated perfusion. Ann Transplant. 19, 409-416 (2014).
  25. Caenegem, O. V., et al. Hypothermic continuous machine perfusion enables preservation of energy charge and functional recovery of heart grafts in an ex vivo model of donation following circulatory death. Eur J Cardiothorac Surg. 49 (5), 1348-1353 (2016).
  26. Spencer, B. L., et al. Extending heart preservation to 24 h with normothermic perfusion. Front Cardiovasc Med. 11, 1325169(2024).
  27. Iyer, A., et al. Normothermic ex vivo perfusion provides superior organ preservation and enables viability assessment of hearts from DCD donors. Am J Transplant. 15 (2), 371-380 (2015).
  28. Brouckaert, J., Dellgren, G., Wallinder, A., Rega, F. Non-ischaemic preservation of the donor heart in heart transplantation: protocol design and rationale for a randomised, controlled, multicentre clinical trial across eight European countries. BMJ Open. 13 (12), e073729(2023).

הגישה מוגבלת. התחברו או התחילו תקופת ניסיון כדי לצפות בתוכן זה.

הדפסות חוזרות והרשאות

תגיות

ספקטרוסקופיה של זרחן-31מטבוליזם של השריר הלבבילב Ex Vivoמטבוליטים של אנרגיהמתן קרדיופלגיהיחס PCr/ATPpH תוך-תאי

מאמר זה פורסם

הסרטון יגיע בקרוב

צרו קשר
המליצו לספרייה

פרטיות

תנאי שימוש

מדיניות

זכויות יוצרים © 2026 MyJoVE Corporation. כל הזכויות שמורות.