הרשמה ל-JoVE נדרשת לצפייה בתוכן זה. התחברו או התחילו בגרסת ניסיון בחינם.

מאמר שיטה

טכניקה פרוקוטנית מודרכת באמצעות דימות למדידה ישירה של הלחץ הפלאורלי במודל של חזיר

116 צפיות

⸱

DOI:

10.3791/71506

⸱

28 באוגוסט 2026

 ,  ,  ,  ,  ,  ,  ,  ,  ,  , 
1Department of Anesthesia, Critical Care and Pain Medicine, Massachusetts General Hospital, Harvard Medical School, 2School of Medicine and Surgery, University of Milano-Bicocca, 3Electronics Engineering Division, Aeronautics Institute of Technology, 4Department of Medicine, Division of Respirology, University Health Network, 5Unidade de Terapia Intensiva Respiratoria, Divisao de Pneumologia, Instituto do Coracao (InCor), Hospital das Clinicas HCFMUSP, Faculdade de Medicina, Universidade de Sao Paulo, 6Department of Pathophysiology and Transplantation, University of Milan, 7Keenan Research Center, Li Ka Shing Knowledge Institute, St Michael's Hospital, Unity Health Toronto

במאמר זה

סיכום

פרוטוקול זה מתאר טכניקה פרוקוטנית זעיר-פולשנית להחדרת קטטרים פלאורליים קדמיים ואחוריים בחזירים, המאפשרת מדידה ישירה של לחץ פלאורלי אזורי ללא תורהקותומיה.

תקציר

מדידת לחץ פלוראלי מאפשרת הערכה פיזיולוגית מתקדמת, הכוללת חלוקה של מכניקת מערכת הנשימה לרכיבי ריאה ודופן בית החזה, חישוב הלחץ הטרנס-פולמונרי וכמות של מדרגי לחץ פלוראלי אזוריים. מידע זה חיוני לאופטימיזציה של הנשמה מלאכותית, להערכת ההשפעה של פיזיולוגיה משתנה של דופן בית החזה ולקידום מחקר תרגומי בפגיעות ריאה. עם זאת, טכניקות נוכחיות למדידה ישירה של לחץ פלוראלי דורשות לעיתים קרובות השתלה כירורגית של מתני לחץ פלוראליים באמצעות תורקוטומיה (פתיחת בית החזה), תהליך הגוזל זמן, כרוך בסיכון גבוה ועשוי לפגוע במכניקת דופן בית החזה. כדי להתגבר על מגבלות אלו, פיתחנו טכניקה זעיר-פולשנית, תת-עורית וביימום תמונה להחדרת קטטר פלוראלי. הפרוצדורה בוצעה בחזירי הרדמה תחת הנשמה מלאכותית. תחת הנחיית אולטרסאונד, מחט Tuohy הוכנסה לחלל הפלורה, ונוצר פנומואיתורקס מלאכותי קטן (50–100 mL של חמצן) כדי להפריד בין השכבות הפלוראליות. על גבי תיל מנחה, הוכנס מוליך (sheath) במידה של 9 Fr, שאפשר את קידום קטטר בעל בלון אל הפלורה הקדמית. לאחר מכן הובט ה живоל למצב חצי-שכיבה על הבטן (semiprone), וקטטר שני הוכנס גבּית לאחר הגדלת אותו פנומואיתורקס ב-50–100 mL נוספים של חמצן. המיקום אושש באמצעות טומוגרפיה ממוחשבת (CT) ורישומים פיזיולוגיים. לאחר פינוי הפנומואיתורקס והתרחבות מחדש של הריאה, הדימות אישש את המיקום. השמה מוצלחת של קטטרים קדמיים ואחוריים הושגה ב-16 מתוך 20 בעלי חיים (80%), מה שתומך בהיתכנות הפרוצדורלית של גישה זו. פרוצדורות שלא הצליחו נבעו מפנומואיתורקס לא מכוון במהלך הגישה לפלורה הקדמית או ממיקום שגוי של הקטטר הקדמי מחוץ לאזור הוונטרלי המיועד. שיטה זו מספקת גישה פחות פולשנית וניתנת לשחזור לניטור ישיר של לחץ פלוראלי אזורי במודלים של בעלי חיים גדולים. על ידי הימנעות מגישה כירורגית, טכניקה תת-עורית זו, המונחית בדימות, מתאימה מאוד לפרוטוקולים ניסיוניים החוקרים מכניקת נשימה, פיזיולוגיה של הריאה ודופן בית החזה, והנשמה מלאכותית במחקר תרגומי.

מבוא

לחץ פלאורלי שימש באופן נרחב במחקרים ניסויים כסמן מרכזי למכניקה של דופן בית החזה, המסייע בתיאור ההתנהגות המופרדת של מערכת הנשימה והאינטראקציה שלה עם הריאה במהלך הנשמה מכנית1. משתנה זה חיוני לחישוב הלחץ הטרנס-פולמונרי, המהווה את הגורם המכריע העיקרי למאמץ הריאתי2. בפגיעה ריאתית, לחץ פלאורלי יכול גם לסייע בתיאור המכניקה בסוף הנשיפה ולספק תובנות לגבי מפל הלחצים המ superimposed, תופעה הקשורה לעומס הפועל על אזורי ריאה תלויי-כבידה3,4. התפלגות לחצים אזורית זו יוצרת הבדלים ונטרו-דורסליים בלחץ הפלאורלי והטרנס-פולמונרי, אשר במהלך הנשמה מכנית מבוקרת נקבעים בעיקר על ידי העומס הגרביטציוני וחומרת הפגיעה הריאתית, בעוד שבמהלך נשימה ספונטנית או נשימה מסייעת, הם עשויים להתגבר עוד יותר על ידי פעילות אזורית של שרירי השאיפה5.

ניטור ישיר של הלחץ הפלאורלי אינו מבוצע בפרקטיקה הקלינית מכיוון שההליך פולשני מדי כדי להיחשב בטוח. מסיבה זו, הלחץ הווסיגיאלי (Pes) משמש בדרך כלל כמסמן העקיף (surrogate) הטוב ביותר ללחץ הפלאורלי6. עם זאת, Pes מושפע ממספר גורמים העלולים להשפיע על דיוקו, כולל מיקום הקטטר, העברה של לחץ המוערכת באמצעות יחס Baydur, ומצב ההנשמה7. בלון הווסיגוס ממוקם בתוך מבנה גמיש, והאות שלו מעוצב הן על ידי דופן הווסיגוס והן על ידי איברים מדיאסטינליים סמוכים. אפילו שינויים קלים בעומק הקטטר או ביישורו עלולים לשנות את הלחץ הנמדד או את גודל התנודות של נפח הגאות8. יתרה מכך, Pes משקף בעיקר לחץ פלאורלי מרכזי-גבי, מה שהופך אותו לפחות מייצג של אזורים ונטרליים ושל הסביבה הפלאורלית הכללית בפגיעות ריאה הטרוגנית9.

מסיבות אלו, מדידה ישירה של הלחץ הפלורלי נותרה גישת "gold-standard" בפיזיולוגיה תרגומית וניסיונית10. מספר מכשירים שימשו למדידה ישירה של הלחץ הפלורלי. חיישנים פלורליים דמויי וופל נמצאים בשימוש תכוף במודלים ניסיונתיים11,12, ובחלק מהמחקרים, קטטרי בלון של וריד השפשפת הוחדרו אף הם לחלל הפלורה כדי להקליט את הלחץ הפלורלי באופן ישיר13,14. למרות הזמינות של כלים שונים למדידה ישירה של הלחץ הפלורלי, הכנסתם דרשה באופן מסורתי תורקומיות פתוחה או גישה תורקוסקופית. גישות אלו הן פולשניות, דורשות מומחיות כירורגית מתקדמת, מאריכות את ההכנה לפרוצדורה ומשבשות את המכניקה התקינה של דופן בית החזה, ובכך משנות באופן משמעותי את התנאים הפיזיולוגיים הנחקרים.

במאמר שיטה זה, אנו מציגים טכניקה פרוקוטנית חדשנית להחדרת קטטרי בלון של ושט אל החלל הפלאורלי בחזירים, לצורך ניטור ישיר של לחץ פלאורלי אזורי. גישה זו היא פולשנית במידה מינימלית ואינה דורשת תורקוֹטוֹמיה או הכשרה כירורגית מתקדמת. גישה פלאורלית קדמית מבוצעת באמצעות טכניקת דקירה סטנדרטית בהנחיית אולטרסאונד, בעוד שדימות בטומוגרפיה ממוחשבת (CT) משמש לאישור מיקום התיל המנחה והקטטרי בתוך הפלאורה ולסיוע בתכנון הגישה הפלאורלית האחורית. השיטה מאפשרת החדרת קטטרים לאזורים שונים של החלל הפלאורלי לצורך הערכה אזורית של מכניקה נשימתית מחולקת. הטכניקה שואפת להפחית את מורכבות הפרוצדורה ואת הסיכון, תוך שימור רישומי לחץ פלאורלי ברמת דיוק גבוהה למחקר פיזיולוגי ותרגומני.

הגישה מוגבלת. התחברו או התחילו תקופת ניסיון כדי לצפות בתוכן זה.

פרוטוקול

לאחר קבלת אישור מוועדה מוסדית לטיפול ושימוש בבעלי חיים (2020I000073) בבית החולים הכללי של מסצ'וסטס, בוסטון, MA, בוצעו הניסויים בין מרץ לנובמבר 2025 ב-20 חזירי יורקשייר בריאים ששקלם 30–40 kg.

זהירות: פרוטוקול זה יוצר במכוון פניאומותורקס (חזה אוורירי) ומשתמש ב-100% oxygen. יש לבצע את הפרוצדורה תחת ניטור פיזיולוגי רציף על ידי צוות המוכשר בהרדמה של בעלי חיים גדולים ובגישה לפלוּרה, ולהסיר מקורות התלקחות במהלךinsufflation של oxygen.

1. הכנת בעלי החיים

  1. הרגיע את בעל החיים באמצעות הזרקה תוך-שרירית של tiletamine–zolazepam (4.4 mg/kg), xylazine (2.2 mg/kg), ו-atropine (0.04 mg/kg).
  2. הקם גישה לווריד והנח fentanyl (2 µg/kg) ו-propofol (2 mg/kg) באופן תוך-ורידי כדי לאפשר אינטובציה אנדוטראכאלית בטוחה.
  3. בצע אינטובציה לבעל החיים ואשר מיקום נכון של צינור הנשמה על ידי אימות התרחבות דו-צדדית של בית החזה, קולות נשימה דו-צדדיים ונוכחות של גל CO₂ אנד-טידאל (end-tidal) עקבי.
  4. התחל הרפיה בנשמה בנפח קבוע (VCV) עם שבר חמצן שאיפה (FiO₂) של 0.4, נפח שאיפה (tidal volume) של 10 mL/kg, לחץ פליטה חיובי מסתיים (PEEP) של 5 cmH₂O, וקצב נשימה של 15–20 breaths/min. כוונן את קצב הנשימה כדי לשמור על CO₂ אנד-טידאל בין 35 ל-45 mmHg.
  5. שמור על הרדמה ושיכוך כאבים רציפים לאורך הפרוצדורה באמצעות propofol תוך-ורידי (10 mg∙kg-1∙h-1) ו-fentanyl (5 µg∙kg-1∙h-1). לפני מתן חסם נוירו-משקלי, אשר עומק הרדמה מספיק על ידי הערכת רפיון הלסת, היעדר רפלקס העפעפיים, היעדר תגובת נסיגה לצביטה בין האצבעות או בפרסה, והיעדר תגובה המודינמית לגירוי. לאחר מתן החסם הנוירו-משקלי, נטר את הלימות ההרדמה באמצעות משתנים פיזיולוגיים, כולל קצב הלב, לחץ עורקי והיעדר תגובות אוטונומיות לגירויים במהלך הפרוצדורה. מרח משחה עינית לאחר השראת ההרדמה כדי למנוע התייבשות של הקרנית.
  6. נטר באופן רציף את קצב הלב, לחץ הדם, רבד החמצן, CO₂ אנד-טידאל ולחצי דרכי הנשימה. שמור על קצב לב של 70–140 beats/min, לחץ עורקי ממוצע מעל 60 mmHg, רבד חמצן מעל 92%, CO₂ אנד-טידאל בין 35 ל-45 mmHg, ולחץ שיא בדרכי הנשימה מתחת ל-35 cmH₂O במידת האפשר.
  7. תן חומר חסם נוירו-משקלי (pancuronium 0.1 mg∙kg-1∙h-1) ואשר את היעדר פעילות נשימה ספונטנית לפני תחילת הגישה הפלאורלית.

2. הכנת הציוד

  1. הכינו את הציוד הסטרילי הדרוש לגישה פלאורלית מונחית אולטרסאונד ולהחדרת קטטר, כפי שמופיע בטבלת החומרים.
  2. גזזו את השערות, נקו וכסו בבדי סטריליות את פני בית החזה הקדמי והאחורי בתנאים סטריליים.

3. גישה פלוירלית עורית קדמית

  1. הניחו את בעל החיים במצב שכיבה על הגב (supine) עם סיבוב קל לכיוון הצד הנגדי לאתר ההחדרה המתוכנן של קטטר הפלוּרה הקדמי.
  2. זהו את קו העשן (sternal line) ואת כיפת הסרעפת באמצעות אולטרסאונד.
  3. זהו את כיפת הסרעפת באמצעות אולטרסאונד, ולאחר מכן זזו כ-5 cm לצד וכ-5 cm קרניאלית מקו האמצע בגובה הסרעפת כדי לבחור את נקודת הדקירה הקדמית.
  4. הדמיאו את חלל הפלוּרה הקדמי בעזרת מתמר האולטרסאונד.
  5. החדירו את מחט Tuohy תחת הנחיית אולטרסאונד בשולי העליונים של הצלע התחתונה במרווח הבינ-צלעי שנבחר, כאשר העקמומיות מופנית כלפי מעלה.
  6. הובילו את המחט לעבר הפלוּרה הפריאטלית תחת הנחיית אולטרסאונד בזמן אמת בגישה במישור המתמר (in-plane).
  7. הפעילו לחץ חיובי עדין במזרק תוך קידום של 1–2 mm נוספים במהלך תמרון השהייה בסוף נשיפה, עד שאיבוד פתאומי של ההתנגדות מעיד על כניסה לחלל הפלוּרה.
  8. הזריקו כ-50–100 mL של 100% oxygen כדי ליצור פנאומותורקס מלאכותי קדמי קטן. התאימו את נפח החמצן הסופי בהתבסס על ממצאי CT של התרחבות הפנאומותורקס והפרדת הפלוּרה.
  9. החדירו את תיל ההנחיה (spring-wire guide) דרך המחט והוציאו את המחט.
  10. בצעו סריקת CT כדי לאשר את מיקומו הנכון של תיל ההנחיה בתוך חלל הפלוּרה, אשר מורחב ומסומן בבירור על ידי הפנאומותורקס המלאכותי.
  11. לאחר אישור ב-CT, בצעו חתך עורי קטן באתר כניסת התיל.
  12. הובילו אינטרודוקטור בגודל 9 Fr מעל תיל ההנחיה באמצעות טכניקת Seldinger.
  13. הוציאו את תיל ההנחיה והחדירו את קטטר בלון הוודיס (esophageal balloon catheter) לחלל הפלוּרה הקדמי דרך האינטרודוקטור.
  14. נפחו את הבלון בנפח המילוי האופטימלי, שנקבע מעקומת לחץ-נפח (PV) של הבלון in vivo15, כדי להבטיח התרחבות נכונה של הבלון והעברה אמינה של לחצים.
  15. חברו את קטטר הבלון למתמר לחץ דיפרנציאלי חיצוני באמצעות מערכת העברת לחץ מלאה באוויר.
  16. אפסו את מתמר הלחץ ללחץ האטמוספרי לפני חיבור הקטטר כדי להבטיח מדידות לחץ מדויקות.
  17. חברו את מתמר הלחץ למערכת רכישת נתונים ורכשו אותות לחץ באמצעות תוכנת רכישת נתונים.
  18. רכשו את כל אותות הלחץ בתדירות דגימה של 1,000 Hz ללא סינון דיגיטלי נוסף. התחילו את ההקלטה ברגע שצפוי רישום לחץ יציב.

4. גישה פלאורלית פרוקוטנית אחורית

  1. החזירו את בעל החיים למצב חציוני (semiprone) כדי לעודד נדידה גבית של האוויר האינטרה-פלורלי.
  2. הזריקו 50–100 mL נוספים של חמצן 100% דרך הקתטר הקדמי כדי להגדיל את הפנומטורקס הגבי ולהקל על הגישה האחורית.
  3. בצעו סריקת CT כדי לאשר את הנדידה הגבית של הפנומטורקס המלאכותי ולזהות את אזור הדקירה האחורי האופטימלי.
  4. סמנו את נקודת הדקירה האחורית על העור, במחצית המרחק בין הזקירים הספניאליים (spinous processes) לבין הקו הביתה האחורי (posterior axillary line).
  5. החדירו את מחט Tuohy בניצב בשוליים העליונים של הצלע התחתונה במרווח הבינ-צלעות הנבחר, תוך חיבור מזרק ריק לשאיבה רציפה.
  6. הקידמו את המחט במהלך תמרון השהייה בסוף נשיפה (end-expiratory hold) דרך השכבות השריריות תוך שאיבה רציפה עד לקבלת אוויר, המאשרת כניסה לפנומטורקס הגבי.
  7. החדירו את תיל ההובלה (spring-wire guide) והוציאו את המחט.
  8. בצעו סריקת CT כדי לאשר את מיקומו הנכון של תיל ההובלה בתוך החלל הפלאורלי, המוגדל ומובחן בבירור על ידי הפנומטורקס המלאכותי.
  9. לאחר אישור ב-CT, בצעו חתך עור קטן בנקודת כניסת התיל.
  10. הקידמו את המבוא (introducer) בגודל 9 Fr מעל תיל ההובלה באמצעות טכניקת Seldinger.
  11. הוציאו את תיל ההובלה והחדירו את בלון הווסאגו השני אל החלל הפלאורלי הגבי דרך המבוא.
  12. נפחו את הבלון בנפח המילוי האופטימלי, שנקבע מתוך עקומת לחץ-נפח (PV) של הבלון in vivo, כדי להבטיח התרחבות נכונה של הבלון והעברה אמינה של הלחץ.
  13. חברו את הקתטר למתמר לחץ דיפרנציאלי ואשרו את מורפולוגיית גל הפלאורה הנכונה במסך הניטור.

5. מיקום סופי וניטור

  1. יש לוודא שפרמטרי המנשם (נפח שאיפה, ספיקת נשימה ולחץ נשימתי) והערכים ההמודינמיים נותרים יציבים במהלך ואחרי הנחת הקטטר.
  2. יש לנקז את הפנומטורקס (חזה אוורירי) דרך המוליכים האחורי והקדמי על ידי שאיבה עדינה של אוויר תוך-pleural (תוך-חללי הריאה) באמצעות מזרק של 50 מ"ל, עד שלא תהיה התנגדות לניקוז. יש להימנע מיצירת לחץ שלילי מופרז בתוך החלל הפלורלי.
  3. הדביקו את שני קטטרי בלון הוושט לעור באמצעות סרט דבק, ולאחר מכן הוציאו בזהירות את שני המוליכים (introducers) במידה של 9 Fr כדי למנוע תזוזה של הקטטרים.
  4. בצעו סריקת CT להערכת פנומטורקס שיורי. אם קיים פנומטורקס שיורי, הניחו את בעל החיים במנח שכיבה על הבטן (prone position) והפחיתו את ה-FiO2₂ ל-0.25, אם הדבר נסבל פיזיולוגית, כדי לעודד ספיגה חוזרת של חמצן.
  5. יש לאשר את היעדרה של דליפה בדרכי הנשימה או בחלל הפלאורה על ידי השוואה בין נפח השאיפה לנפח הנשיפה של נפח השוטף (tidal volume) וביצוע השהיית שאיפה (inspiratory hold). יש לוודא כי לחץ הפלטו (plateau pressure) יציב וכי הזרימה חזרה לאפס.
  6. העריכו מחדש את גלי הלחץ הפלאורלי הקדמיים והאחוריים לאחר הסרת המוליך (introducer). ודאו שמורפולוגיית הגל המצופה נשארת יציבה; אם היא משתנה, אין להתחיל בהקלטה עד להערכה מחודשת של מיקום הקטטר ויציבות הגל.
  7. התחילו את רישום לחצי הפלאורה הקדמיים והאחוריים בו-סימולטני רק לאחר אישור פינוי או ספיגה של הפנומתורקס, ונטילציה והמודינמיקה יציבות, היעדר דליפה פעילה וצורות גל יציבות של לחץ הפלאורה.
  8. כוון את ההנשמה תוך שמירה על נפח שאיפה (TV) של 10 מ"ל/ק"ג והפחתת ה-PEEP מ-5 ל-3 סמ"ח₂O. ערכי הלחץ הפלאורלי בסוף הנשיפה התקבלו במהלך תמרון השהייה יציב בסוף הנשיפה, כפי שמוצג ב- איור 1.
  9. בסיום כל פרוטוקול ניסיוני, בעוד בעלי החיים שהו תחת הרדמה כללית, בוצע המתנפש (euthanasia) על ידי מתן תוורידי של KCl (תמיסה בריכוז 7%, במינון של 2 מ"ל לק"ג).

הגישה מוגבלת. התחברו או התחילו תקופת ניסיון כדי לצפות בתוכן זה.

תוצאות

ניסוי להחדרת קטטר פלאורלי באמצעות טכניקה פרא-קוטיאנית בוצע ב-20 חזירים (טבלה 1). ב-17 בעלי חיים הוכנסו בסך הכל 34 קטטרים פלאורליים (17 קדמיים ו-17 אחוריים). מתוכם, 33 קטטרים (97%) הגיעו לאזור הפלאורלי המיועד, בעוד שקטטר קדמי אחד חדר לחלל הפלאורלי אך לא הגיע למיקום הוונטרלי המיועד. לפיכך, מיקום אזורי נכון של שני הקטטרים, הקדמי והאחורי, הושג ב-16 מתוך 17 בעלי החיים שבהם בוצעה החדרת הקטטרים (94%), מה שמתאים ל-16 מתוך 20 בעלי חיים באופן כללי (80%; 95% CI, 56.3%–94.3%).

רישומי לחץ ...

הגישה מוגבלת. התחברו או התחילו תקופת ניסיון כדי לצפות בתוכן זה.

דיון

פרוטוקול פרוקוטני זה מספק שיטה מעשית וניתנת לשחזור להשגת מדידות של לחץ פלאורלי אזורי ללא צורך בטורקוטומיה או בגישה תורקוסקופית. מספר היבטים של ההליך חשובים במיוחד להבטחת מיקום מוצלח של הקטטר והקלטות לחץ ברמת דיוק גבוהה.

מרכיב מרכזי בטכניקה הוא הדקירה הקדמית המבוצעת תחת הנחיה ישירה של אולטרסאונד חזי). האולטרסאונד משמש להדמיה ברורה של הפלאורה (קרום הריאה) ושל המרווח הבין-צלעי שנבחר, ובכך מספק אישור בזמן אמת למסלול המחט. מכיוון שההליך דורש טיפול מבוקר ומדויק במחט בעת התקרבותה לפני השטח של הפלאורה...

הגישה מוגבלת. התחברו או התחילו תקופת ניסיון כדי לצפות בתוכן זה.

גילויים

למחברים אין ניגודי עניינים להצהיר עליהם.

תודות

עבודה זו נתמכה על ידי מענקי NIH מספר R01HL177025 ו-R01HL171199.

הגישה מוגבלת. התחברו או התחילו תקופת ניסיון כדי לצפות בתוכן זה.

חומרים

רשימת החומרים שנעשה בהם שימוש במאמר זה
שםחברהמספר קטלוגהערות
סרט דבק3M Tegaderm1624Wקיבוע קטטר לפני המוליך
מכשיר גילוח לבעלי חיים3M Clipper9661Lהסרת שיער מהבית חזה
אטרופין (להזרקה)Sparhawk Laboratories inc.NDC:58005-354טיפול תרופתי מקדים בהזרקה תוך-שרירית
סורק טומוגרפיה ממוחשבת NeuroLogica Omnitom Elite PCD; 1-NL5100-060הערכת מיקום תיל התכוון/קתטר ופנאומותורקס;
תוכנה לרכישת נתונים ADInstrumentsLabChart Pro 8.1.31תוכנת רכישה ב-1,000 Hz ללא סינון דיגיטלי
מערכת רכישת נתונים ADInstrumentsML865עבור רכישת לחץ פלוורלי
מתמר לחץ דיפרנציאליHarvard Apparatus / Hugo Sachs73-3882מתמר לחץ להקלטת לחץ פלוריאלי
מגבת ניתוח חד-פעמיתCardinal HealthCAT 28700-004הכנת שדה סטרילי (שלב 2.1)
אקג (ECG) & מדד חמצן דופק (Pulse Oximetry Monitor)Mindray BeneView T5ניטור מדדים חיוניים
פחית קנה, 7.0 מ"מ Teleflex Medicalסימוכין 5-10314אינטובציה אנדוטראכאלית
קתטר בלון לוושטCooper Surgicalסימוכין 47-9005משמש כקתטר ללחץ תו-פלורלי (שלב 2.1)
פנטניל (להזרקה)HikmaNDC 0641-6030-01אלגזיה תוך-ורידית
רפידות גזה (סטריליות)MedlineREF NON21430LFהכנת האתר (שלב 2.1)
חוט נחייה 0.025" × 33 ס"מTeleflex Medicalסימוכין AW-04025עבור טכניקת סלדינגר (Seldinger technique) (שלב 2.1)
משאבת עירוי Smiths MedicalMedfusion 4000מתן חומרי הרדמה ברציפות
שרוול החדרה (Introducer sheath), 9 FrCordisסימוכין 402-609Xעבור החדרת קטטר תוך-pleural (שלב 2.1)
מנשם מכניMaquet – GetingeServo-I, הנשמה בבקרת נפח
משחה עיניתטיפול ווטרינרי לודיNDC 17033-211-38הגנה על קרנית העין לאחר השראת הרדמה
חמצן 100% (בדרגה רפואית)Airgasלא רלוונטיעבור פנאומותורקס מבוקר
פנקורוניום (להזרקה)Selleck. כימיקליםS2497חסם נוירו-מוסקולרי
פובידון–תמיסת יודBICCACAT 3955-16חיטוי העור
פרופופול (להזרקה)NorthStarNDC 16714-977-01אינדוקציה ותחזוקה
מעגל נשימה (מעגל מאוורר)MedlineREF NON026370מעגל סטנדרטי
סקלפל מספר 11Bard-Parkerסימוכין 372611עבור חיתוך העור (שלב 2.1)
סדין סטריליMedlineסימוכין MDT2168286הכנת שטח סטרילי
כפפות סטריליות (לטקס)ביוגל (Biogel)סימוכין 31280כפפות מגן סטריליות
חלוק סטריליחבל העלאהסימוכין 95121חלוק כירורגי סטרילי
מזרקים 10 מ"לMedlineסיסור SYR110010עבור שאיבה/הזרקה (שלב 2.1)
מזרקים 50 מ"לBDסימוכין 309680לשאיבת אוויר פלאורלי (שלב 2.1)
טילטמין–זולזפאם (להזרקה)VirbacNADA 71805-06Telazol; הרגעה תוך-שרירית
מחט Tuohy, אקו-גנית, 18G × 100 מ"מPajunkסיליקון ג'ל במיסב (Silicone Gel Bearing) 31Cעבור ניקור פלאורלי (שלב 2.1)
מתמר אולטרסאונד (Butterfly iQ+)Butterfly Network950-20002-00נעשה שימוש עם אפליקציית Butterfly iQ עבור iPad (שלב 2.1)
תוכנה/יישום לאולטרסאונד Butterfly Network Butterfly iQ 2.46; iPad 11 iPadOS 26אפליקציית Butterfly iQ עבור iPad
קסילזין (להזרקה)Cronus Pharmaחברת אחריות מוגבלת (LLC)

מקורות

  1. Dornhorst AC, Leathart GL. A method of assessing the mechanical properties of lungs and air-passages. Lancet. 1952;260(6725):109-11.
  2. Rezoagli E, Laffey JG, Bellani G. Monitoring lung injury severity and ventilation intensity during mechanical ventilation. Semin Respir Crit Care Med. 2022;43(3):346-68.
  3. Gattinoni L, et al. Regional effects and mechanism of positive end-expiratory pressure in early adult respiratory distress syndrome. JAMA. 1993;269(16):2122-7.
  4. Spina S, et al. The pleural gradient does not reflect the superimposed pressure in patients with class III obesity. Crit Care. 2024;28(1):306.
  5. Yoshida T, et al. Spontaneous effort causes occult pendelluft during mechanical ventilation. Am J Respir Crit Care Med. 2013;188(12):1420-7.
  6. Akoumianaki E, et al. The application of esophageal pressure measurement in patients with respiratory failure. Am J Respir Crit Care Med. 2014;189(5):520-31.
  7. Restivo A, et al. Impact of Baydur ratio correction on the reliability of esophageal pressure measurement. J Appl Physiol (1985). 2026. doi: 10.1152/japplphysiol.00364.2026.
  8. Hedenstierna G. Esophageal pressure: benefit and limitations. Minerva Anestesiol. 2012;78(8):959-66.
  9. Milic-Emili J, Mead J, Turner JM, Glauser EM. Improved technique for estimating pleural pressure from esophageal balloons. J Appl Physiol. 1964;19(2):207-11.
  10. Cherniack RM, Farhi LE, Armstrong BW, Proctor DF. A comparison of esophageal and intrapleural pressure in man. J Appl Physiol. 1955;8(2):203-11.
  11. Terzi N, et al. Comparison of pleural and esophageal pressure in supine and prone positions in a porcine model of acute respiratory distress syndrome. J Appl Physiol (1985). 2020;128(6):1617-25.
  12. Yoshida T, et al. Esophageal manometry and regional transpulmonary pressure in lung injury. Am J Respir Crit Care Med. 2018;197(8):1018-26.
  13. Bastia L, et al. Role of positive end-expiratory pressure and regional transpulmonary pressure in asymmetrical lung injury. Am J Respir Crit Care Med. 2021;203(8):969-76.
  14. Katira BH, et al. Positive end-expiratory pressure, pleural pressure, and regional compliance during pronation: an experimental study. Am J Respir Crit Care Med. 2021;203(10):1266-74.
  15. Mojoli F, et al. In vivo calibration of esophageal pressure in the mechanically ventilated patient makes measurements reliable. Crit Care. 2016;20:98.
  16. Lichtenstein D. Lung ultrasound in the critically ill. Curr Opin Crit Care. 2014;20(3):315-22.
  17. Northfield TC. Oxygen therapy for spontaneous pneumothorax. BMJ. 1971;4(5779):86-8.
  18. Bellani G, editor. Mechanical Ventilation from Pathophysiology to Clinical Evidence. Springer International Publishing; Cham; 2022.
  19. Roberts ME, et al. British Thoracic Society guideline for pleural disease. Thorax. 2023;78(11):1143-56.

הגישה מוגבלת. התחברו או התחילו תקופת ניסיון כדי לצפות בתוכן זה.

הדפסות חוזרות והרשאות

גלה מאמרים נוספים

קתטר מודרך בדימותהנשמה מלאכותיתמכניקה נשימתיתפיזיולוגיה של דופן בית החזהקתטר עם בלון בקצההנחיה באמצעות אולטרסאונדלחץ פלורלי אזורי

מאמר זה פורסם

הסרטון יגיע בקרוב

צרו קשר
המליצו לספרייה

פרטיות

תנאי שימוש

מדיניות

זכויות יוצרים © 2026 MyJoVE Corporation. כל הזכויות שמורות.