הרשמה ל-JoVE נדרשת לצפייה בתוכן זה. התחברו או התחילו בגרסת ניסיון בחינם.

מאמר שיטה

יצירת תאי גזע פלוריפוטנטיים אנושיים מושריים אנאופלואידיים מתאי מי שפיר ראשוניים באמצעות אלקטורופורציה של פלסמיד אפיזומלי

110 צפיות

⸱

DOI:

10.3791/71975

⸱

3 בספטמבר 2026

 ,  ,  ,  ,  , 
1State Key Laboratory of Female Fertility Promotion, Center for Reproductive Medicine, Department of Obstetrics and Gynecology, Peking University Third Hospital, 2National Clinical Research Center for Obstetrics and Gynecology, Peking University Third Hospital, 3Key Laboratory of Assisted Reproduction (Peking University), Ministry of Education, 4Beijing Key Laboratory of Collaborative Innovation in Frontier Technologies for Population Quality

במאמר זה

סיכום

פרוטוקול זה מספק שיטה הניתנת לשחזור להפקת תאי iPSCs אנושיים אנאופלואידיים נטולי אינטגרציה מתאי נוזל מי שפיר ראשוניים באמצעות אלקטרופורציה של פלסמידים אפיסומליים. הפרוטוקול מייעל את תנאי ההחדרה והתרבית להייצוב חריגות כרומוזומליות, ובכך מציע פלטפורמה מעשית ליצירת מודלים ספציפיים למחלות עבור מחקרים המשכיים ויישומים קליניים.

תקציר

יצירת תאי גזע פלוריפוטנטיים מושריים (iPSCs) ספציפיים למטופל מתאי נוזל מי שפיר (AFCs) הנושאים אנאופלואידיות כרומוזומלית מוגדרת מספקת פלטפורמה רבת עוצמה למידול הפרעות גנטיות. עם זאת, ביסוסו של תהליך תכנות מחדש (reprogramming) אמין וניתן לשחזור עבור AFCs אנאופלואידיים נותר מאתגר מבחינה טכנית בשל חוסר היציבות הגנומית המולד ויכולת ההתרבויות המשתנה של תאים אלו. כאן, אנו מציגים שיטה מקיפה ולא-אינטגרטיבית ליצירת iPSCs אנושיים אנאופלואידיים מ-AFCs ראשוניים באמצעות אלקטרופורציה של פלסמידים אפיזומליים. פרוטוקול זה מפרט את זרימת העבודה המלאה, הכוללת הפשרה והרחבה של תאים עם אסטרטגיית הסתגלות הדרגתית של מצע הגידול, העברה אופטימלית של פלסמידים באמצעות מערכת אלקטרופורציה, תרביות עוקבות לאחר אלקטרופורציה עם שינויי מצעים המכוונים למעבר ממזנכימלי לאפיתלי (MET), ובחירה מכנית של מושבות על בסיס קריטריונים מורפולוגיים מוגדרים. אנו מתארים בנוסף הליכי תיקוף, הכוללים צביעה אימונופלואורסצנטית לסמני פלוריפוטנטיות מרכזיים, ניתוח קריוטיפ בשיטת G-banding לאישור שימור הקריוטיפ האנאופלואידי, ואימות נתיקה של הווקטור האפיזומלי באמצעות PCR. פרוטוקול זה, שאינו דורש תאי מאכיל (feeder-free) ואינו כולל אינטגרציה, מניב שורות iPSC אנאופלואידיות המתאימות למידול מחלות, סריקת תרופות ומחקרים בביולוגיה של כרומוזומים.

מבוא

הופעתה של טכנולוגיית תאי גזע פלוריפוטנטיים מושריים (iPSC) שינתה את פני הרפואה הרגנרטיבית, מידול מחלות וגילוי תרופות, בכך שאפשרה יצירה של תאים פלוריפוטנטיים ספציפיים למטופל ללא החששות האתיים הקשורים לתאי גזע עובריים אנושיים (hESCs). הבסיס המושגי של תכנות תאי מחדש מקורו בהדגמתו של Gurdon להעברת גרעין של תא סומטי1, ואחריה ביסוסם של תאי גזע עובריים2,3,4 ובסופו של דבר פיתוח הפלוריפוטנטיות המושרית5 באמצעות ביטוי אקטופי של OCT4, SOX2, KLF4, ו-c-MYC. מאז, טכנולוגיית iPSC הפכה לפלטפורמה חיונית לחקר התפתחות אנושית, הפרעות גנטיות ורפואה מותאמת אישית. שיטות תכנות מוקדמות השתמשו בווקטורים רטרו-ויראליים או לנטו-ויראליים, אך הסיכונים הקשורים לשילובם בגנום הגבילו את היישום הקליני. כתוצאה מכך, פיתוח של שיטות תכנות נטולות שילוב הפך לעדפות עבור יישום קליני. אלו כוללות שימוש בנגיף Sendai6, mRNA סינתטי7, ווקטורים אפיסומליים המבוססים על מנגנון oriP/EBNA1 (Epstein-Barr nuclear antigen-1)8 ותכנות כימי9,10,11,12 באמצעות תרכובות של מולקולות קטנות בלבד.

אנאuplואידיה (Aneuploidy) היא הגורם המוביל להפלות ולמומים מולדים בבני אדם. הבנת המנגנונים התאיים והמולקולריים העומדים בבסיס הפרעות התפתחותיות הקשורות לאנאuplואידיה מחייבת שימוש במודלים תאיים מתאימים המשחזרים נאמנה את הרקע הגנטי של מצבים אלו. תאי נוזל מי שפיר (AFCs) מהווים חומר מוצא אטרקטיבי ויעיל ליצירת iPSC ספציפיים למטופל13,14,15, במיוחד בהקשר של הפרעות גנטיות שנסמנו באופן פרינטלי16,17. שאריות של נוזל מי שפיר שהושגו במהלך בדיקת מי שפיר שגרתית מאפשרות גישה לתאים ממקור עוברי ללא צורך בביופסיית רקמה פולשנית נוספת לאחר הלידה. בהשוואה לתאים סומטיים של מבוגרים, AFCs מראים בדרך כלל יכולת רבייה גבוהה יותר, טלומרים ארוכים יותר, נטל מצטבר נמוך יותר של מוטציות סביבתיות ופלסטיות התפתחותית רבה יותר, שכל אלו מקלים על תכנות תאי מחדש (cellular reprogramming)18,19. חשוב לציין כי AFCs משמרים נאמנה את ההרכב הכרומוזומלי של העובר המתפתח, מה שהופך אותם למקור אידיאלי להקמת מודלי iPSC ספציפיים למחלה של הפרעות כרומוזומליות, כולל טריזומיה 2120, טריזומיה 1821, תסמונת טרנר ותסמונת קליינפלטר22.

פרוטוקול זה מספק מדריך מקיף ליצירת iPSCs נטולי אינטגרציה מתאי נוזל מי שפיר אנויפלואידיים באמצעות וקטורים אפיזומליים. השיטה כוללת הליכים מפורטים לבידוד תאים, תכנות מחדש (reprogramming), בחירת קלונים ואפיון. בהשוואה לשיטות תכנות מחדש אחרות נטולות אינטגרציה, מערכת הפלסמידים האפיזומלית מספקת איזון מעשי בין בטיחות גנומית, פשטות טכנית ועלות-תועלת, מה שהופך אותה למתאימה במיוחד לשימוש שגרתי במעבדה ו ליישומים של ביו-בנקים רחבי היקף. הפרוטוקול ישים הן עבור AFCs קפואים מביו-בנקים קיימים והן עבור דגימות טריות של שאריות נוזל מי שפיר שהושגו במהלך אבחנה פרינטלית שגרתית. למרות שנצפיות של יעילות תכנות מחדש אפיזומלי עבור AFCs הן נמוכות יחסית, וייתכן שיהיה הצלה כרומוזומלית ספונטנית במהלך התכנות מחדש או במהלך תרבית ממושכת, במיוחד באנויפלואידיות מסוימות, זרימת העבודה ישימה בקלות להקמת ביו-בנקים של iPSC ספציפיים למחלה, למחקרים של ביולוגיה כרומוזומלית והתפתחות אנושית מוקדמת, ולגזירה (differentiation) של תאים לסוגי תאים ספציפיים לשושלות. גישה זו מתאימה במיוחד ליצירת קווי iPSC נטולי אינטגרציה בעלי רלוונטיות קלינית מדגימות פרינטליות לצורך מידול מחלות ומחקרים מכניסטיים של הפרעות כרומוזומליות.

הגישה מוגבלת. התחברו או התחילו תקופת ניסיון כדי לצפות בתוכן זה.

פרוטוקול

כל ההליכים שכללו דגימות של נוזל מי שפיר אנושי בוצעו בהתאם להצהרת הלסינקי ואושרו על ידי הוועדה לניסויים בבני אדם (IRB)/ועדת האתיקה למחקר בבני אדם של בית החולים השלישי של אוניברסיטת בקינג (פרוטוקול מס׳ M2023406). הדגימות עם האנויפלואידיות נלקחו מהביובנק של המרכז לרפואה רבייתית בבית החולים השלישי של אוניברסיטת בקינג, מאגר קליני מאושר מטעם המדינה המתמחה במשאבים התפתחותיים ורבייתיים אנושיים. דגימות אלו מורכבות מנוזל מי שפיר שנותר לאחר בדיקת מי שפיר שגרתית לאבחון פרינטלי קליני, ושהיו נזרקות ללא כן. הסכמה מדעת בכתב התקבלה מכל התורמים לפני האיסוף, ואישרה במפורש את אחסון הדגימות הנותרות בביובנק ואת השימוש בהן למחקר בהמשך. כל הדגימות עוברו באופן אנונימי קפדני כדי להגן על פרטיות המטופלים. לצורך השראת iPSCs נבחרו דגימות עם קריוטיפים אנויפלואידיים מאושרים שזוהו באמצעות אנליזת G-banding קלינית, כולל Trisomy 21 (תסמונת דאון, N = 2), Trisomy 18 (תסמונת אדוארדס, N = 1), Monosomy X (תסמונת טרנר, N = 1), ותסמונת קליינפלטר (N = 2). מידע מפורט על שורות התאים האנויפלואידיות ששימשו בתהליך התכנות מחדש מסוכם בטבלה 1.

1. הפשרה ותרבית ראשונית של תאי נוזל מי שפיר ממאגר ביולוגי

הערה: סעיף זה מפרט את הפרוצדורה הסטנדרטית לשליפה והשבה של AFCs אנויפלואידיים מהביובנק. התאים המטופחים מורחבים כדי להשיג אוכלוסיות מספיקות לצורך תכנות מחדש (reprogramming) אפיזומלי בהמשך.

  1. נוהל הפשרה סטנדרטי
    1. השוואת מצע: חממו מצע AmnioType-1 מלא ל- 37 °C לפני השימוש.
    2. שליפת דגימה: שלפו מהאחסון בחנקן נוזלי מבחנה קריוגנית (cryovial) המכילה כ-300,000 תאי AFC שהוקפאו בתווך הקפאת תאים. העבירו את המבחנה באופן מיידי למעבדה על קרח יבש כדי למנוע הפשרה מוקדמת.
    3. הפשרה מהירה: טבול את החצי התחתון של מבחנת הקריו (cryovial) ב- 37 °C בתוך מקלח מים וערבבו בעדינות. הפסיקו את תהליך ההפשרה כאשר נותר רק גביש קרח קטן ונראה לעין.
      ​הערה: יש להימנע מהפשרה מלאה. פעולה זו מונעת מחשיפת התאים להשפעות הרעילות של DMSO חם.
    4. דילול: תחת מנדף זרימה למינרית, העבירו את תרחיף התאים בטיפות למבחנה קונית של 15 מ"ל המכילה 4 מ"ל של מצע AmnioType-1 שחומם מראש.
    5. סבוב במרכזפוגה: סבב את התוחלת במהירות של 300 × ג' במשך 5 דקות בטמפרטורת החדר.
    6. זריעה: שאבו את הנוזל העליון והשעיו בעדינות את משקע התאים ב-2 מ"ל של מצע AmnioType-1 טרי. העבירו את התאים לפלטת 6 בארות או לבקבוק T25 מצופים מראש ב-0.1% ג'לטין, בצפיפות של 30,000–50,000 תאים/סמ"ר.².
    7. דגירה ראשונית: יש להניח את התאים באינקובטור לח במדרגה של 37 °C ו-5% CO22יש לבחון את הבקבוקים תחת מיקרוסקופ פאזה הפוך ביום השלישי לאחר הזריעה כדי לאשש היצמדות ראשונית של התאים.
  2. הרחבה ומעבר מצע גידול של תאי AFC ראשוניים
    1. הכנת מצע לתרבית פיברובלסטים (FC): להכנת 100 מ"ל של מצע ביתי לתרבית פיברובלסטים, ערבבו 82 מ"ל של DMEM עם תכולת גלוקוז גבוהה עם 15 מ"ל של סרום עגל עוברי (FBS). הוסיפו 1 מ"ל של 100× GlutaMAX, 1 מ"ל של 100× חומצות אמינו שאינן חיוניות (NEAA), ו-1 מ"ל של פניצילין-סטרפטומייצין (P/S). סננו את המצע דרך 0.22 µm מערכת סינון בוואקום בסביבה סטרילית.
    2. במהלך ההתרחבות, יש להחליף בהדרגה את המצע של ה-AFC כל 3 ימים, ממצע קליני ייעודי (AmnioType-1) למערכת סטנדרטית לתרבית פיברובלסטים (מצע FC, הכנה עצמית), וזאת כדי להבטיח יציבות מטבולית לפני האלקטרופורציה.
      1. בצעו מעבר הדרגתי של מצע הגידול:
        1. יום 3 (75% AmnioType-1: 25% FC): שאבו את מצע ה-AmnioType-1 הקיים. הוסיפו מצע מעורב המורכב מ-75% AmnioType-1 ו-25% מצע FC.
        2. יום 6 (50% AmnioType-1: 50% FC): יש לשאוב את המצע ולהחליפו ביחס של 1:1 של AmnioType-1 ומצע FC.
        3. יום 9 (25% AmnioType-1: 75% FC): יש לשאוב ולהחליף בתערובת של 25% AmnioType-1 ו-75% מצע FC.
        4. יום 12 (100% FC): שאיפה והחלפה למצע 100% FC.
          הערה: הסתגלות הדרגתית זו מפחיתה את ההלם התאי ומונעת את ניתוקם של שיבוטים (clones) אנאופלואידיים רגישים.
    3. יש לעקוב מדי יום אחר מורפולוגיית המושבות. נוזל מי שפיר מכיל אוכלוסייה הטרוגנית של תאים. תחת מיקרוסקופ ניגודיות פאזה (phase-contrast), זהו את שני הסוגים העיקריים: סוג F (דמוי פיברובלסט, בעל צורה כישפית) וסוג E (דמוי אפיתל, עגול). תת-האוכלוסייה המזנכימלית הדמוית פיברובלסט היא האופטימלית לתכנות מחדש.
      ​הערה: יש לעקוב מקרוב אחר התאים כדי לזהות סימנים של הזדקנות (senescence).
  3. העברה (Passaging) של תאי AFC ראשוניים
    1. ברגע שהתאים מגיעים ל-80%–90% התלכדות (בדרך כלל ביומיים 10–14), יש לשאוב את המצע מהבקבוק ולשטוף פעם אחת בעדינות עם 2 מ"ל של Dulbecco's phosphate-buffered saline (DPBS) ללא Ca²⁺/מגניום²⁺.
    2. הוסף 1 מ"ל של תמיסת Trypsin-EDTA בריכוז 0.25% עבור באער אחת של פלטה בעלת 6 באערים, לכיסוי השכבה התאית החד-שכבתית (monolayer).
    3. דגירה ב- 37 °C במשך 4–5 דקות עד שהתאים ניתקים לחלוטין.
    4. נטרלו את ריאגנט הדיסוציאציה על ידי הוספת 3 מ"ל של מצע FC. העבירו את התו suspension למבחנה קונית של 15 מ"ל.
    5. סבב במ centri-fuge במהירות של 300 × ג במשך 5 דקות בטמפרטורת החדר.
    6. שאבו את הנוזל העליון (supernatant) ותלו את משקע התאים ב-1 מ"ל מצע FC טרי. ספרו את התאים החיים באמצעות המוציטומטר או סופר תאים אוטומטי עם בדיקת החרגת טריפאן כחול (trypan blue exclusion).
    7. זריעת תאים לבקבוק T25 חדש בצפיפות של 30,000–50,000 תאים/סמ"ר² במדיום מלא (בדרך כלל ביחס של 1:2 או 1:3).
    8. הרחב את התאים עד למעבר (passage) 3–5 לפני השימוש בהם לתכנות מחדש. אין להשתמש בתאים מעבר למעבר 6.
      הערה: איכות התאים בזמן האלקטרופורציה היא הגורם המשמעותי ביותר להצלחת התכנות מחדש. השתמשו אך ורק בתאי AFC מסוג F בריאים הגדלים בשלב לוגריתמי, ללא סימני הזדקנות תאית (senescence) או מורפולוגיה לא תקינה.

2. אלקטרופורציה של פלסמידים אפיזומליים לתוך AFCs באמצעות מערכת אלקטרופורציה של תאים

  1. ציפוי כלי תרבית במטריצת קרומי בסיס
    1. הפשיר את מטריצת קרומי הבסיס (Matrigel) במהלך הלילה ב- 4 °C על קרח.
    2. קררו DPBS סטרילי או DMEM/F-12 על קרח. קררו מראש טיפים של פיפטות ומבחנות על קרח למשך 30 דקות.
    3. דללו את המטריקס של קרומי הבסיס (basement membrane matrix) ביחס של 1:200 ב-DMEM/F-12 קר מאוד, תוך שימוש בטיפים ובמבחנות קרים (למשל, 30 µL מטריצה + 6 מ"ל DMEM/F-12 עבור פלטה של 6 בארות).
    4. ערבבו ביסודיות אך בעדינות על ידי שאיבה ושחרור עם פיפטה 5–6 פעמים. הימנעו מהכנסת בועות אוויר.
    5. הוסיפו את תמיסת הציפוי המדוללת לכלי התרבית בנפח של 1 מ"ל לבאר עבור פלטה של 6 בארות.
    6. דגרו את הכליים המצופים ב- 37 °C למשך שעה אחת לפחות, או בטמפרטורת החדר למשך שעתיים.
    7. שאבו את תמיסת הציפוי מיד לפני זריעת התאים. הוסיפו 2 מ"ל מתווך FC נטול אנטיביוטיקה בתוספת 10 μM Y-27632 (מעכב ROCK) והחזר את הפלטה ל- 37 °C אינקובטור. אין לאפשר למשטח המצופה להתייבש.
      ​הערה: ניתן לאחסן פלטות מצופות ב- 4 °C יש לאטום ב-Parafilm למשך עד 7 ימים. יש להביא לטמפרטורת החדר לפני השימוש.
  2. הפשרה והכנה של פלסמידי תכנות מחדש אפיזומליים
    1. בחירת פלסמידים: השתמש בפלסמידים האפיזומליים הבאים לצורך תכנות מחדש: pCXLE-hOCT3/4-shp53, pCXLE-hSK, pCXLE-hUL, ו-pCXLE-EBNA1.
      הערה: (אופציונלי) לצורך אופטימיזציה של תנאי האלקטרופורציה, ניתן לבצע אלקטרופורציה של pCE-GFP במקביל תחת הגדרות זהות. ביטוי GFP במהלך 48–72 השעות הראשונות מהווה אינדיקטור נוח ליעילות הטרנספקציה, בעוד שדעיכה הדרגתית של אות ה-GFP במהלך מעברים (passaging) עוקבים יכולה לשמש למעקב אחר דילול זמני של הפלסמיד.
    2. בקרת איכות (QC): אימות ריכוז ה-DNA והטוהר שלו באמצעות ספקטרופוטומטר. יש לוודא שיחס A260/280 הוא בין 1.8 ל-1.9. יש לוודא שהריכוז של כל פלסמיד גבוה מ- 1 µg/µL וסטרילי.
      ​הערה: חיוני להבטיח כי כל הפלסמידים הוכנו בשיטות נטולות אנדוטוקסינים. שאריות של אנדוטוקסינים עלולות להוביל לרעילות תאית גבוהה ולהפחתה משמעותית ביעילות התכנות מחדש. יש לאחסן את הפלסמידים באליקוטים קטנים בטמפרטורה של -20 °C כדי למנוע מחזורי הקפאה והפשרה חוזרים.
    3. עבור א_ 100 µL תגובה, הכנה 5 µg מתוך תערובת הפלסמידים (יחס משקלי שווה של pCXLE-hOCT3/4-shp53, pCXLE-hSK, pCXLE-hUL, ו-pCXLE-EBNA1).
  3. הגדירו את פרמטרי האלקטרופורציה.
    1. יש להפעיל את מכשיר האלקטרופורציה. הגדירו את פרמטרי הפולס לפי התצורה האופטימלית עבור תאים ראשוניים נצמדים: מתח הפולס: 1,200 V; רוחב הפולס: 20 ms; מספר הפולסים: 2.
    2. מלאו את תחנת הפיפטה ב-2 מ"ל של Buffer E, תוך הבטחה שהאלקטרודה טבולה לחלוטין.
      ​הערה: אם ניסויים ראשוניים מניבים חיות תאים הנמוכה מ-50%, שקלו לבחון סטים חלופיים של פרמטרים: 950 V / 20 ms / 2 פולסים (עדין יותר). חלופות אלו מקריבות חלק מהיעילות לטובת שיפור בשיעורי ההישרדות.
  4. הכנת AFCs לאלקטרופורציה
    1. ביום 0, ודאו כי התאים מראים מורפולוגיה בריאה ובעלת צורה של כישורים (spindle-shaped) תחת המיקרוסקופ, ללא סימנים לצפיפות יתר, להזדקנות (senescence) או לזיהום. ודאו כי התאים הגיעו ל-90% קונפלואנס (confluence) ונמצאים בשלב הצמיחה הלוגריתמי האקטיבי.
    2. ממש לפני הליך האלקטרופורציה, שאבו את ציפוי ה-Matrigel והחליפו אותו ב-2 מ"ל של תמיסה מחוממת מראש ללא אנטיביוטיקה מדיום FC פלוס 10 μM Y-27632 (מעכב ROCK). חמם מראש את מצע ה-FC נטול האנטיביוטיקה הזה ל- 37 °C באינקובטור למשך 20 דקות לפחות לפני קצירת התאים עבור מערכת האלקטרופורציה.
      הערה: אין להוסיף פניצילין-סטרפטומייסין (P/S) או אנטיביוטיקה אחרת למנה ספציפית זו של המצע. לאחר electroporation, ממברנת התא נותרת חדירה ופגיעה באופן זמני. נוכחות של אנטיביוטיקה עלולה להוביל לעלייה באפופטוזיס.
    3. שאבו את המצע של תאי ה-AFCs לצורך אלקטרופורציה ושטפו את השכבה החד-שכבתית (monolayer) פעם אחת בעזרת DPBS ללא Ca²⁺/מגניסיום²⁺.
    4. הוסף 2 מ"ל (עבור בקבוק T25) של TrypLE Select Enzyme והדגר ב- 37 °C במשך 4–5 דקות.
    5. יש לנטרל באמצעות 6 מ"ל של מצע גידול FC complete ולהעביר למבחנה קונית של 15 מ"ל. ספרו את התאים באמצעות סופר תאים אוטומטי.
    6. סבב במערך צנטריפוגה במהירות של 300 × ג' במשך 5 דקות בטמפרטורת החדר.
    7. הסר לחלוטין את הנוזל העליון באמצעות 200 μL קצה פיפטה, תוך הקפדה לא להפריע למשקע התאים הקטן.
    8. שחזר את משקע התאים בבופר R לצפיפות סופית של 1.0 × 10⁷ עד 1.4 × 10⁷ תאים/מ"ל.
      ​הערה: יש לשאוב את העליון (supernatant) באופן מלא ככל האפשר כדי להבטיח שמשקע התאים יבש. שאריות של מצע גידול עלולות לדלל את בופר התלייה מחדש (resuspension buffer), דבר שעלול להפחית את יעילות האלקטרופורציה. עבור AFCs, השתמש ב-Buffer R (לתאים נצמדים). ודא את בחירת הבופר בהתאם להמלצות היצרן.
  5. בצעו אלקטרופורציה.
    1. מנה (Aliquot) 110 μL של תרחיף התאים (המכיל 1.0–1.4 × 106 תאים) לתוך מבחנה סטרילית של מיקרוצנטריפוגה בנפח 1.5 מ"ל.
      הערה: הוסף נוסף 10 μL של Buffer R עד לנפח הסופי כדי להבטיח תהיה תרחיף תאים מספיק, דבר המסייע במניעת חדירת בועות אוויר במהלך השאיבה.
    2. הוסף 5 μg תערובת פלסמיד ל- 110 μL מנה של תאים. ערבבו באמצעות פיפוט עדין 3 פעמים.
    3. חבר רכיב סטרילי 100 μL הרכיבו את טיפ electroporation על הפ pipette. ודאו שהטיפ ננעל במקומו בנקישה.
    4. טעינה 100 μL מת сусפנזיית התאים/ה-DNA, תוך הבטחה כי אין בתוכה בועות אוויר נראות לעין.
      הערה: בועות אוויר גורמות לקשת חשמלית במהלך הפולס החשמלי, דבר שמוביל למות תאים ולנזק לקצה. אם נראות בועות, החזירו את התערובת לשפופרת וחזרו על פעולת השאיבה באיטיות.
    5. הכנס את הפפטה הטעונה בצורה אנכית לשפופרת הבאפר (Buffer) בתחנה עד להישמעו נקישה המעידה על נעילתה במקומה. ודא כי כל הפרמטרים נכונים במסך המגע, ולאחר מכן לחץ על כפתור ההפעלה (Start) כדי לבצע את רצף הדחפים.
    6. המתינו להופעת התצוגה על המסך "השלמה" (בדרך כלל תוך 1–2 שניות). הוצא מיד את הפ pipette מהתחנה והעבר את תרחיף התאים שעברו אלקטרופורציה ישירות לתוך 2–3 בארים של פלטה מצופה בעלת 6 בארים המכילה מצע FC ללא אנטיביוטיקה שחומם מראש + 10 μM Y-27632.
    7. השליכו את הטיפ המשומש באופן בטוח. חזרו על השלבים עבור בארות נוספות או חזרות לפי הצורך. הניחו את הפלטה בעלת 6 הבארות ב- 37 °C, 5% CO2₂ אינקובטור עם לחות למשך לילה.

3. תרבית תכנות מחדש לאחר אלקטרופורציה

הערה: סעיף זה מתאר את החלפות המצעים הרצופות והשגת תכנות מחדש מלא של AFCs ל-iPSCs. לוח הזמנים משתרע על פני כ-25 ימים מרגע האלקטרופורציה ועד לבחירת המושבות.

  1. כ-16–18 שעות לאחר האלקטרופורציה, שאבו בזהירות את המדיום מבלי להסיר תאי דבקים ששרדו. הוסיפו בעדינות 2 mL של מדיום FC מחומם מראש (המכיל P/S) לכל באר כדי לאפשר לתאים להתייצב ב-24 השעות הראשונות. החזירו את הפלטה לאינקובטור.
  2. מימים 2 עד 6, החליפו מחצית מהמדיום מדי יום שני: שאבו בזהירות 1 mL של מדיום משומש והוסיפו 1 mL של מדיום TeSR-E8 (E8) טרי.
    הערה: החלפה חלקית של המדיום משמרת גורמים אוטוקריניים מופרשים התומכים באירועי תכנות מחדש מוקדמים. שאבו באיטיות מקצה הבאר כדי למזער את ההפרעה לתאים במעבר שדבקים באופן רופף.
  3. ביום 7, בצעו החלפה מלאה של המדיום ב-2 mL של E8 מדי יום שני.
  4. עקבו אחר שינויים מורפולוגיים תחת המיקרוסקופ מדי יום. צפויות צבירים דמויי-cobblestone שעברו תכנות מחדש חלקי להופיע סביב יום 10–14.
    הערה: (אופציונלי) ניתן להוסיף לתרביות 25–100 μM sodium butyrate בין ימים 9–15 אם היווצרות המושבות דלה23.
  5. החליפו את מדיום ה-E8 מדי יום החל מיום 15 ואילך.
  6. החל מיום 18 בקירוב, בדקו את הבארים מדי יום כדי לזהות הופעה של מושבות iPSC אמיתיות. ציר זמן מלא של תהליך התכנות מחדש, מיום 0 של האלקטרופורציה ועד לבחירת המושבות, מופיע ב-Table 2.

4. בליטה מכנית של מושבות iPSC והרחבה של שורות iPSC מבוססות

הערה: הבדילה בין מושבות iPSC אמיתיות לבין תאים שעברו תכנות מחדש או תאים שלא עברו תכנות מחדש על סמך הקריטריונים המורפולוגיים להלן. זהה מושבות "אידיאליות" על סמך סימני ההיכר המורפולוגיים הבאים: (1) הגדרת הגבול: חפש קצה חד, חלק ומעגלי המפריד בבירור בין המושבה לתאי נוזל השליה המקיפים אותה; (2) צפיפות תאית: ודא שהתאים בתוך המושבה קטנים, דחוסים מאוד, ובעלי יחס גרעין-ציטופלזמה גבוה עם גרעינונים בולטים; (3) רפרקטיביות: מושבות באיכות גבוהה נראות בהירות ובעלות רפרקטיביות גבוהה תחת מיקרוסקופ ניגודיות פאזה; (4) שטוחיות: המושבה צריכה לגדול כגיליון דו-ממדי שטוח ולא כ"גוש" תלת-ממדי. מושבות שעברו תכנות מחדש חלקי מופיעות לעיתים קרובות מוקדם יותר ממושבות iPSC אמיתיות ונוטות להיות גדולות, עבות ותלת-ממדיות יותר. הן יעברו דיפרנציאציה ספונטנית בעת הבחירה והמעבר (passaging). אין לבחור מושבות המראות "ואקואולות," קצוות משוננים או סימנים לדיפרנציאציה מרכזית.

  1. בחירה והעברה מכנית של מושבות iPSC
    1. הכינו פלטת 24 בארות מצופה ב-Matrigel עם 0.5 mL לכל באר של מצע E8 מועשר ב-10 μM Y-27632. שמרו בטמפרטורה של 37 °C עד לשימוש.
    2. הניחו את פלטת התרבית תחת מיקרוסקופ סטריאו בתוך תא בטיחות ביולוגית Class II. סטריליזרו את העדשה והבמה של המיקרוסקופ ב-70% אתנול לפני קירוב הפלטה לשדה הראייה.
    3. זהו מושבות המציגות מורפולוגיה תקינה (שטוחות, דחוסות, עם גבולות ברורים).
    4. בעזרת טיפ של פיפט סטרילי בנפח 10 μL המוחזק בזווית נמוכה (כ-30° מהמישור האופקי), חרצו בעדינות מסביב להיקף המושבה הנבחרת כדי להגדיר את גבולה. חתכו את המושבה לכ-3 פרגמנטים על ידי ביצוע חתכים מקבילים לאורך הקוטר שלה. השתמשו באותו טיפ של הפיפט כדי לגרד בעדינות ולהרים את פרגמנטי המושבה מהמצע, והעבירו את הפרגמנטים לבאר אחת בפלטת 24 הבארות שהוכנה.
    5. חזרו על השלבים עבור כל מושבה, והניחו את הפרגמנטים בבארות נפרדות.
    6. הניחו את פלטת 24 הבארות באינקובטור. השאירו ללא הפרעה למשך 24 h כדי לאפשר היצמדות של הפרגמנטים.
    7. החל מהיום השני לאחר הבחירה, החליפו את המצע מדי יום במצע E8 ללא Y-27632.
    8. כאשר המושבות שנבחרו מתרחבות ל-70–80% התמזגות (confluence), בדרך כלל לאחר 3–6 ימים, בצעו מעבר (passage) באמצעות Accutase.
  2. מעבר והרחבה של שורות iPSC מבוססות
    1. שאבו את המצע מהבאר המכילה את ה-iPSC. הוסיפו Accutase כך שיכסה את השכבה החד-שכבתית (monolayer). דגרו בטמפרטורת החדר למשך 2–6 min. עקבו אחר קצוות המושבה תחת המיקרוסקופ; התאים צריכים להתחיל להיפרד, ומרווחים צריכים להופיע ביניהם.
    2. שאבו את תמיסת ה-Accutase לחלוטין. הוסיפו 1 mL של מצע E8 + 10 μM Y-27632. העבירו בעדינות את המצע בפיפט על פני שטח המושבה 5–8 פעמים באמצעות פיפט P1000 כדי לפרק את המושבות לצבירים קטנים של 2–8 תאים.
      הערה: הימנעו מפירוק יתר של ה-iPSCs, דבר המפחית משמעותית את סיכויי ההישרדות. המטרה היא לקבל צבירים קטנים אחידים, ולא תרחיף של תאים בודדים.
    3. העבירו את הצבירים עם 1 mL של מצע E8 + 10 μM Y-27632 באופן שווה לפלטת 12 בארות מצופה ב-matrigel טרי. הניחו את הפלטה באינקובטור.
    4. החליפו את המצע מדי יום במצע E8 (ללא Y-27632 לאחר היום הראשון).
    5. המשיכו בביצוע מעברים בכל 3–4 ימים ביחס פיצול של 1:2 עד 1:5, בהתאם לרמת ההתמזגות.
    6. תרבתו את שורות ה-iPSC למשך מינימום של 10 מעברים לפני יישומים המשכיים כדי להבטיח פינוי אפיזומלי יציב.

5. אפיון של קווי iPSC אנאופלואידיים

הערה: בצע את בדיקות התיקוף הבאות על קווי iPSC מבוססים (מעבר 10 ומעלה) כדי לאשר פלוריפוטנטיות, שלמות הקריוטיפ ופינוי של הווקטור האפיזומלי.

  1. אשש את ביטוי סמני הפלוריפוטנציות.
    1. יש לאמת את הביטוי של סמני פלוריפוטנציה מרכזיים באמצעות צביעה אימונופלואורסצנטית, ציטומטריית זרימה, או שניהם. פרופילי הסמנים הצפויים מסוכמים ב- טבלה 3.
      הערה: למרות שצביעה אימונופלואורסצנטית מספקת אישור ראשוני לפלוריפוטנטיות, מומלץ לבצע RT-qPCR ו-RNA-seq להערכה רחבה יותר של ביטוי גנים הקשורים לפלוריפוטנטיות, כולל LIN28A, DPPA4 ו-KLF4.
  2. ניתוח קריוטיפ באמצעות גבנדיינג (G-banding)
    ​קריטי: תכנות מחדש (Reprogramming) עלול להוביל להצלה של טריסומיה (trisomy rescue) בתת-קבוצה של שיבוטים. יש לסרוק מספר שיבוטים (5–10 לכל שורה הורית) כדי לזהות נגזרות שבהן נשמרה האנויפלואידיה ונגזרות שהוצלו לאאופלואידיה (euploid-rescued).
    1. יש לקצור iPSCs במעברים 10–15 כאשר רמת ההצפיפות (confluence) היא 70%–80%.
    2. הוסף 0.1 μg/mL קולסמיד (colcemid) למצע התרבית. הדגרו ב- 37 °C במשך 2–4 שעות כדי לעצור את התאים בשלב המטאפאזה.
      הערה: Colcemid הוא רעל מיטוטי. יש לטפל בחומר באמצעות כפפות בתוך קבינה לבטיחות ביולוגית. יש להשליך פסולת המכילה Colcemid כחומר מסוכן.
    3. הפרידו את התאים לתליה של תאים בודדים (single-cell suspension) באמצעות Accutase או חומר שווה ערך. סובבו בצנטריפוגה במהירות של 300 × ג' למשך 5 דקות.
    4. שחזר את המשקע ב-5 מ"ל של תמיסה היפוטונית שחוממה מראש (0.075 M אשלגן כלוריד). הדגר ב- 37 °C למשך 15–20 דקות.
    5. הוסיפו למבחנה 1 מ"ל של מקבע שהוכן טרי (מתנול: חומצה אצטית, ביחס נפחי של 3: 1) תוך כדי ערבוב עדין. סבבו בצנטריפוגה במהירות של 300 × ג למשך 10 דקות.
    6. שאבו את הנוזל העליון (supernatant). הוסיפו 5 מ"ל של מקבע (fixative) טרי. ערבבו בעדינות והדגירו למשך 10 דקות. סובבו שוב בצנטריפוגה.
    7. חזור על שלב הקיבוע (שלב 6) פעם נוספת, לסך הכל 3 קיבועים.
    8. לאחר הסבב האחרון של סרכזגציה, השביו מחדש את המשקע ב-0.5–1 מ"ל של מקבע טרי כדי להגיע לצפיפות תאים מתאימה.
    9. טפטפו 2–3 טיפות של תרחיף התאים על slides זכוכית נקיים ורטובים מגובה של כ-30 ס"מ. ייבשו באוויר.
    10. חמם את השקופיות בטמפרטורה של 80 °C למשך שעתיים או 65 °C המתנה למשך לילה לצורך יישון הכרומוזומים.
    11. בצעו צביעת פסי G (G-banding): טפלו בلامשטחים בתמיסת טריפסין 0.025% למשך 30–60 שניות, שטפו, וצבעו בתמיסת גימזה (Giemsa) 5% למשך 1–5 דקות.
    12. נתחו לפחות 20 מטאפזות מפוזרות היטב לכל שיבט באמצעות מיקרוסקופ שדה בהיר עם עדשת שמן (100× מטרה).
    13. תעד את הקריוטייפ באמצעות נומנקלטורת ISCN (לדוגמה, 47,XX,+21 עבור טריזומיה 21 בנקבה; 45,X עבור תסמונת טרנר).
      ​הערה: קריוטיפ בשיטת G-banding מזהה חריגות כרומוזומליות משמעותיות אך רזולוציית שלו מוגבלת. מומלץ להשתמש בבדיקות משלימות, כגון ניתוח וריאציית מספר עותקים (CNV), ריצוף אקסום מלא (WES) או ריצוף גנום מלא (WGS), כדי לזהות שינויים גנטיים תת-מיקרוסקופיים ולאשר את השלמות הגנומית של ה-iPSC.
  3. אימות סילוק וקטור אפיסומלי באמצעות PCR.
    ​הערה: שלב זה מאשר כי כל הפלסמידים האפיזומליים אבדו מקו ה-iPSC, באמצעות הגברה של רצפים ספציפיים לווקטור בשיטת PCR.
    1. הפיקו DNA גנומי מתאי iPSCs (מעבר ≥ 10) וממבקר AFCs לא שעברו טרנספקציה, באמצעות ערכה סטנדרטית להפקה מבוססת עמודה.
    2. הקם/י 25 μL תגובת PCR. בצע PCR באמצעות זוגות הפריימרים Orip/GAPDH תחת תנאי המחזור (94 °C במשך 2 דקות; ולאחריהם 35 מחזורים של 94 °C למשך 30 שניות, 55 °C במשך 30 שניות, ו- 72 °C למשך 30 שניות; הארכה סופית ב- 72 °C (במשך 5 דקות). יש לכלול ביקורת חיובית (תבנית פלסמיד) וביקורת שלילית (DNA גנומי מתאים שאינם שעברו טרנספקציה) בכל הרצת PCR.
    3. יש להפריד את תוצרי ה-PCR על ג'ל אגרוז בריכוז של 2% עם סולם DNA מתאים.
    4. פירוש התוצאות: שורות iPSC שבהן הפיסומים הוסרו אינן מראות פסי הגברה בגודל 544 bp. הבקרה החיובית חייבת להראות פסים בגודל הצפוי. הבקרה השלילית חייבת להיות ללא פסים.
  4. גילוי מייקופלסמה באמצעות PCR
    1. אספו 0.5–1 מ"ל של עלי-נוזל התרבית (culture supernatant) מתרביות iPSC לאחר דגירה של 24 שעות לפחות, לפני החלפת המצע, וסובבו בצנטריפוגה במהירות של 12,000 × ג במשך 5 דקות כדי להסיר שיירי תאים.
    2. השתמש בנוזל העל המזולל כתבנית ל-PCR באמצעות ערכת PCR Mycoplasma Detection Kit, בהתאם להוראות היצרן.
    3. הפרידו את תוצרי ה-PCR באמצעות אלקטרופורזה על ג'ל אגרוז בריכוז של 2%. המשיכו בניסויים הבאים רק אם אושר כי תרביות ה-iPSC נקיות ממייקופלסמה.
      ​הערה: אם תאי AFC הוריים אינם מתקבלים מביובנק מאושר עם תיעוד של סטריליות ובדיקות למייקופלסמה, מומלץ מאוד לבצע סריקת מייקופלסמה שגרתית לפני התכנות מחדש (reprogramming) כשלב ראשוני של בקרת איכות.
  5. בדיקת פוטנציאל גמישות להבחנה לשלושה שוכות (אופציונלי)
    1. אשר in vitro יכולת גמישות (differentiation capacity) באמצעות גביעה מופנית לשלושה שוכות (directed trilineage differentiation) או יצירת גופי עובר (EB), ולאחריהם ניתוח של סמנים ספציפיים לשכבות העובר. לחלופין, בצע/י in vivo היווצרות טרטומה בעכברים עם חסר חיסוני לצורך תיקוף של pluripotency בתור הgold-standard.
      הערה: לפרוטוקולים מפורטים של בדיקת טרטומה או בידול מכוון, עיינו בנהלי העבודה הסטנדרטיים (SOP) שפורסמו24בדיקות אלו מומלצות, אך ניתן להשמיטן אם קיים תיעוד מקיף in vitro ניתונים של אנליזת סמנים ובידול תפקודי סופקו.

6. הפקה ואימות של שיבוטים מתא בודד

הערה: כדי להבטיח שכל קו iPSC מקורו בתא בודד, מומלץ לבצע תהליך אימות קלונאלי דו-שלבי. לאחר בידוד מכני והרחבה, מומלץ לבצע זריעה שנייה של קלון תא בודד לאחר אישור הקריוטיפ. אימות העובדה שכל קו iPSC מקורו בתא בודד הוא דרישה קריטית ליצירת iPSC. הדבר מבטיח את הסרת הפסיפס הסומטי ההורי ומאשר שחתימת האנויפלואידיות האבחנתית היא אחידה בכל האוכלוסייה.

  1. זריעת תא בודד
    1. פרקו ותלו את מושבות ה-iPSC שעברו אישור קריוטייפ לתליה של תאים בודדים באמצעות Accutase למשך 2–6 min ב-37 °C.
    2. השתמשו במדיום E8 המועשר ב-10 µM Y-27632 כדי למקסם את הישרדות התאים הבודדים המבודדים. בצעו הפקדה של תאים בודדים באמצעות אחת מהשיטות הבאות:
      1. דילול מגביל (Limiting dilution): דללו את התליה לריכוז של 0.5–1 תא ל-100 µL. זרעו 100 µL לכל באער של פלטת 96 באערים מצופה ב-Matrigel.
      2. מיון תאים מופעל פלואורסצנציה (FACS): מיינו תאים בודדים חיוניים ישירות לבאערים של פלטת 96 באערים מצופה ב-Matrigel.
  2. אימות מונוקלונליות והתרחבות
    1. בדיקה ראשונית: 24–48 שעות לאחר הזריעה, השתמשו במיקרוסקופ ניגודיות פאזה (phase-contrast) ברזולוציה גבוהה כדי לבחון כל באער. סמנו רק את אותם באערים המכילים אירוע היצמדות בודד ומוגדר בבירור. הסירו באערים עם מקבצים מרובים או ללא תאים.
    2. צמיחת מושבות: תחזקו את התאים הבודדים שזוהו במדיום E8 ללא מעכב ROCK לאחר 24 השעות הראשונות.
    3. התרחבות רצפית: ברגע שמושבה שנוצרה מתא בודד מגיעה ל-70% התמזגות (confluence), הרחיבו את התאים באופן רצפי מפלטת 96 באערים לפלטות של 24 באערים, 12 באערים, ולבסוף 6 באערים.
      הערה: עבור מחקרים בתרפיה תאית, נדרשת לעיתים קרובות ראיה צילומית של שלב התא הבודד (יום 0 או יום 1) כחלק מתעודת האנליזה (Certificate of Analysis) כדי להוכיח את הסטטוס של טוהר השושלת של קווי ה-iPSC.
      סיבות פוטנציאליות לתכנות מחדש (reprogramming) לא מוצלח, היווצרות מושבות סובאופטימלית ואתגרים במהלך ביסוס קלוני iPSC מסוכמים יחד עם פתרונות מעשיים ב-טבלה 4.

הגישה מוגבלת. התחברו או התחילו תקופת ניסיון כדי לצפות בתוכן זה.

תוצאות

התקדמות מורפולוגית במהלך תכנות מחדש

תאי נוזל שעור ראשוניים הראו מורפולוגיות הטרוגניות, כולל תאי E-type ותאי F-type (איור 1A). יש להרבות תאי F-type ולהשתמש בהם לתכנות מחדש. בעקבות אלקטרופורציה של תאי AFC עם פלסמידים אפיזומליים של Epi5, נצפית רצף אופייני של שינויים מורפולוגיים. ביום 0, תאי AFC מציגים מורפולוגיה טיפוסית דמוית פיברובלסט בצורת כישוף. ביומים 3–5, מופיעה העדות המורפולוגית הראשונה לתכנות מחדש: מקבצים קטנים של תאים דמויי אפיתל מופיעים בתוך אוכלוסיית התאים ...

הגישה מוגבלת. התחברו או התחילו תקופת ניסיון כדי לצפות בתוכן זה.

דיון

פרוטוקול זה מתאר שיטה שאינה אינטגרטיבית וללא תאי מאכילה (feeder-free) ליצירת תאי גזע פלוריפוטנטיים מושריים (iPSCs) אנושיים אנויפלואידיים מתאי נוזל מי שפיר, באמצעות העברת פלסמידים אפיזומליים באמצעות אלקטרופורציה. מספר שלבים קריטיים קובעים את הצלחתו של התכנות מחדש. ראשית, איכותה של אוכלוסיית ה-AFC ההתחלתית היא בעלת חשיבות עליונה. במעבדות ציטוגנטיקה קליניות, AFCs מורחבים בדרך כלל במצעים השואפים כדי להאיץ את שגשוג התאים לצורך ניתוח קריוטיפ פרינטלי במקום תרבית לטווח ארוך. ההשפעה על יעילות יצירת iPSC עוקבת נותרה ...

הגישה מוגבלת. התחברו או התחילו תקופת ניסיון כדי לצפות בתוכן זה.

גילויים

המחברים מצהירים כי אין להם ניגודי אינטרסים פיננסיים. האיור הסכמטי ב-איור 7A הופק באמצעות כלים מבוססי בינה מלאכותית (AI) ולאחר מכן נבחן ועודכן על ידי המחברים.

תודות

עבודה זו נתמכה על ידי התוכנית הלאומית למחקר ופיתוח מרכזי של סין (מענק מס׳ 2022YFA0913300) ועל ידי הפרויקט הקליני המרכזי של בית החולים השלישי של אוניברסיטת בקינג (מענק מס׳ BYSY2022054) עבור Jianying Guo.

הגישה מוגבלת. התחברו או התחילו תקופת ניסיון כדי לצפות בתוכן זה.

חומרים

רשימת החומרים שנעשה בהם שימוש במאמר זה
שםחברהמספר קטלוגהערות
0.25% Trypsin-EDTAThermo Fisher (Gibco)25200056דיסוציאציה של תאים למעבר (passaging) של AFC
סולם DNA מסוג 100bp Plus IITransGen BiotechBM321-01סולם DNA
מקפיא 80°C-Thermo FisherFDE60086fvאחסון ארוך טווח של דגימות ושל DNA פלסמי
תמיסה לניתוק תאים AccutaseStemCell Technologies07920פירוק עדין של iPSC לגושים קטנים
חומצה אצטית (קרחונית)Sigma-Aldrich338826רכיב קיבוע לקריוטיפינג (MeOH:AcOH 3:1)
אגרוזSigma-AldrichA9539אלקטרופורזה של ג'ל עבור תוצרי PCR (2%)
מצע AmnioType-1VivaCell BIOSCIENCESC3620-0100תווך תרבית ראשוני לתאי AFC
מונה תאים אוטומטי / המוציטומטרCountstarTC20ספירת תאים חיוניים באמצעות דחיית טריפאן כחול
מיקרוסקופ בשדה בהיר (100x שמן)ZeissAxiovert5ניתוח פריסת מטאפאזה לצורך קריוטיפינג
צנטריפוגה (רוטור עם דליים נערכים)Eppendorf5810Rשקיעת תאים בצנטריפוגה ב-300 x g
מטריצת בטיחות ביולוגית מסוג IIESCOAC2-4S8-CNסביבת עבודה סטרילית לכל פעולות תרביות התאים
אינקובטור CO2 (מולחח)מדעיים3131שמור על סביבה של 37°C ו-5% CO2
Colcemid (10 ug/mL)גדי מדעיCOL-Hעצירת מטפאזה לצורך קריוטיפינג (0.1 מק"ג/מ"ל, 2-4 שעות)
תווך הקפאת תאים CryoStor CS10STEMCELL Technologies07959תוכנית להקפאת תאים
DAPIMerck Millipore10236276001צביעה גרעינית
DMEM (גלוקוז גבוה)Thermo Fisher (Gibco)11965092בסיס למצע גידול פיברובלסטים (FC)
DMEM/F-12Thermo Fisher (Gibco)11330032בופר לדילול Matrigel (1:200)
DPBS ללא Ca2+/Mg2+Thermo Fisher (Gibco)14190250בופר שטיפה
פלסמיד אפיזומלי (pCE-GFP)Addgene#41858וקטור תכנות מחדש שאינו משתלב (בקרת GFP)
פלסמיד אפיסומלי (pCXLE-hOCT3/4-shp53-F)Addgene#27077וקטור תכנות מחדש שאינו משתלב (OCT4 + shp53)
פלסמיד אפיזומלי (pCXLE-hSK)Addgene#27078וקטור תכנות מחדש שאינו משתלב (SOX2 + KLF4)
פלסמיד אפיזומלי (pCXLE-hUL)Addgene#27080וקטור תכנות מחדש שאינו משתלב (L-MYC + LIN28)
סרום עוברי בקרHyCloneSH30071.03תוסף סרום להרחבת AFC (מדיום FC, 15%)
מיקרוסקופ פלואורסצנציהLeicaSp8צביעה חיה של TRA-1-60/81 וויזואליזציה ב-IF
מערכת אלקטרופורזה של ג'לBio-Rad164-5056ניתוח של תוצרי PCR באמצעות ג'ל אגרוז
ג'לטין (0.1%)Sigma-AldrichG1393ציפוי כלי תרבית להיצמדות AFC
ערכה למיצוי DNA גנומיTIANGEN4992199בידוד DNA באיכות PCR מתאי iPSCs
תמיסת צבע גימזהSigma-AldrichGS500צביעת פסי G של כרומוזומים (5%)
GlutaMAX (100x)Thermo Fisher (Gibco)35050061תוסף למצע FC
מיקרוסקופ ניגודיות פאזה הפוךZeissAxiovert5ניטור יומי של התרבית ושל מורפולוגיית המושבות
מכל אחסון לחנקן נוזליThermo ScientificCY50985שימור בהקפאה של תאים
מטריצת קרום הבסיס MatrigelCorning354230ציפוי כלי תרבית להיצמדות של iPSC
מתנול (אנहाइडרי)Sigma-Aldrich34860רכיב מקבע לקריוטיפינג (MeOH:AcOH 3:1)
נוגדן NANOG (ארנבת)Abcamab109250אימונופלואורסצנציה; סמן פלוריפוטנציות גרעיני
ערכת אלקטרופורציה Neon NxT (100 uL)Thermo Fisher (Invitrogen)N10025אלקטרופורציה; מכיל את באפרים R, T, E וטיפים של 100 uL
מערכת אלקטרופורציה Neon NxTThermo Fisher (Invitrogen)NEON18Sהחדרה של פלסמידים אפיזומליים באמצעות אלקטרופורציה
חומצות אמינו שאינן חיוניות (NEAA, ריכוז 100x)Thermo Fisher (Gibco)11140050תוסף למצע FC
נוגדן OCT4 (ארנב)AbclonalA7920אימונופלואורסצנציה; סמן גרעיני לפלוריפוטנטיות
תערובת PCR מאסטר (דיוק גבוה)TIANGEN4992920אימות סילוק אפיזומלית באמצעות PCR
pCXWB-EBNA1Addgene#37624ביטוי אפיזומלי שאינו משתכפל של EBNA1
נוגדן PE anti-human TRA-1-81BioLegend330708צביעת פלוריפוטנטיות
פניצילין-סטרפטומייצין (100x)Thermo Fisher (Gibco)15140122תוסף אנטיביוטי (שאינו בשימוש לאחר אלקטרופורציה)
ריאגנט Phalloidin-iFluor 647Abcamab176759סימון F-actin (סיבי אקטין)
אשלגן כלוריד (KCl)Sigma-AldrichP5405תמיסה היפוטונית לקריוטיפינג (0.075 M)
מערכת PCR בזמן אמתThermo Fisher ScientificQuantStudio3qPCR לאימות גן מסמן
סודיום ביוטיראט (NaB)Sigma-AldrichB5887מעכב HDAC; ריכוז של 25-100 uM לשיפור התכנות מחדש
נוגדן SOX2 (עכבר)R&מערכות DMAB2018אימונופלואורסצנציה; סמן פלוריפוטנציות גרעיני
נוגדן SSEA-4BioLegend330408אימונופלואורסצנציה; סמן פלוריפוטנטיות על פני השטח של התא
מיקרוסקופ סטריאוNikonSMZ745בחירת מושבות מכנית תחת הגדלה
TeSR-E8STEMCELL Technologies05990תווך תחזוקה של iPSC ללא תאי מאכילה
נוגדן TRA-1-60Merck MilliporeMAB4360צביעת פלוריפוטנטיות
סממן DNA מסוג Trans DNA Marker IITransGen BiotechBM411-01סולם DNA
ערכה לזיהוי מיקופלסמה באמצעות TransDetect PCRTransGen BiotechFM311-01בדיקת מיקופלסמה 
אנזים TrypLE Select (בריכוז 1x)Thermo Fisher (Gibco)12563011פירוק עדין של תאים עבור AFCs נצמדים
טריפסין (0.025%)Sigma-AldrichT4799טיפול מקדים של שקופיות לצביעת פסי G (30-60 שניות)
מעגל תרמי (Thermal Cycler) בעל 96 בארות מדגם VeritiProThermo Fisher ScientificA48141PCR לאימות סילוק אפיזומלי
אמבט מים (37 °C)Shanghai Zhixin Experimental Instrument Technology Co., Ltd.ZX-S22הפשרת מצעים וריאגנטים
Y-27632 Dihydrochloride (מעכב ROCK)Tocris1254משפר את הישרדות תאי iPSC לאחר פירוק (10 uM)

מקורות

  1. Gurdon JB. The developmental capacity of nuclei taken from intestinal epithelium cells of feeding tadpoles. Development. 1962;10(4):622-640.
  2. Evans MJ, Kaufman MH. Establishment in culture of pluripotential cells from mouse embryos. Nature. 1981;292(5819):154-156.
  3. Martin GR. Isolation of a pluripotent cell line from early mouse embryos cultured in medium conditioned by teratocarcinoma stem cells. Proc Natl Acad Sci U S A. 1981;78(12):7634-7638.
  4. Thomson JA, Itskovitz-Eldor J, Shapiro SS, Waknitz MA, Swiergiel J, et al. Embryonic stem cell lines derived from human blastocysts. Science. 1998;282(5391):1145-1147.
  5. Takahashi K, Tanabe K, Ohnuki M, Narita M, Ichisaka T, et al. Induction of pluripotent stem cells from adult human fibroblasts by defined factors. Cell. 2007;131(5):861-872.
  6. Fusaki N, Ban H, Nishiyama A, Saeki K, Hasegawa M. Efficient induction of transgene-free human pluripotent stem cells using a vector based on Sendai virus, an RNA virus that does not integrate into the host genome. Proc Jpn Acad Ser B Phys Biol Sci. 2009;85(8):348-362.
  7. Warren L, Manos PD, Ahfeldt T, Loh YH, Li H, et al. Highly efficient reprogramming to pluripotency and directed differentiation of human cells with synthetic modified mRNA. Cell Stem Cell. 2010;7(5):618-630.
  8. Yu J, Hu K, Smuga-Otto K, Tian S, Stewart R, et al. Human induced pluripotent stem cells free of vector and transgene sequences. Science. 2009;324(5928):797-801.
  9. Hou P, Li Y, Zhang X, Liu C, Guan J, et al. Pluripotent stem cells induced from mouse somatic cells by small-molecule compounds. Science. 2013;341(6146):651-654.
  10. Guan J, Wang G, Wang J, Zhang Z, Fu Y, et al. Chemical reprogramming of human somatic cells to pluripotent stem cells. Nature. 2022;605(7909):325-331.
  11. Liuyang S, Wang G, Wang Y, He H, Lyu Y, et al. Highly efficient and rapid generation of human pluripotent stem cells by chemical reprogramming. Cell Stem Cell. 2023;30(4):450-459.e9.
  12. Wang Y, Peng F, Yang Z, Cheng L, Cao J, et al. A rapid chemical reprogramming system to generate human pluripotent stem cells. Nat Chem Biol. 2025;21(7):1030-1038.
  13. Li C, Zhou J, Shi G, Ma Y, Yang Y, et al. Pluripotency can be rapidly and efficiently induced in human amniotic fluid-derived cells. Hum Mol Genet. 2009;18(22):4340-4349.
  14. Slamecka J, Salimova L, McClellan S, van Kelle M, Kehl D, et al. Non-integrating episomal plasmid-based reprogramming of human amniotic fluid stem cells into induced pluripotent stem cells in chemically defined conditions. Cell Cycle. 2016;15(2):234-249.
  15. Li Q, Fan Y, Sun X, Yu Y. Generation of induced pluripotent stem cells from human amniotic fluid cells by reprogramming with two factors in feeder-free conditions. J Reprod Dev. 2013;59(1):72-77.
  16. Crosland BA, Hedges MA, Ryan KS, D'mello RJ, Mccarty OJT, Amniotic fluid: its role in fetal development and beyond. J Perinatol. 2025 Aug;45(8):1163-1170. doi: 10.1038/s41372-025-02313-1. Epub 2025 May 8. PMID: 40341778; PMCID: PMC12354197.
  17. Liu L, et al. Amniotic fluid stem cells in birth defects: integrated roles in disease modeling, prenatal diagnosis, and therapy. Stem Cell Rev Rep. 2026. doi:10.1007/s12015-026-11161-1.
  18. Antonucci I, Provenzano M, Rodrigues M, Pantalone A, Salini V, et al. Amniotic fluid stem cells: a novel source for modeling of human genetic diseases. Int J Mol Sci. 2016;17(4):607.
  19. Guillot PV. Induced pluripotent stem (iPS) cells from human fetal stem cells. Best Pract Res Clin Obstet Gynaecol. 2016;31:112-120. doi:10.1016/j.bpobgyn.2015.08.007.
  20. Lu HE, Yang YC, Chen SM, Su HL, Huang PC, et al. Modeling neurogenesis impairment in Down syndrome with induced pluripotent stem cells from trisomy 21 amniotic fluid cells. Exp Cell Res. 2013;319(4):498-505.
  21. Lee CC, et al. Establishment of a human trisomy 18 induced pluripotent stem cell line from amniotic fluid cells. Stem Cell Res. 2018;29:115-119.
  22. D'Aurora M, et al. Modeling Klinefelter syndrome using induced pluripotent stem cells reveals impaired germ cell differentiation. Front Cell Dev Biol. 2020;8:567454.
  23. Mali P, Chou BK, Yen J, Ye Z, Zou J, et al. Butyrate greatly enhances derivation of human induced pluripotent stem cells by promoting epigenetic remodeling and the expression of pluripotency-associated genes. Stem Cells. 2010;28(4):713-720.
  24. Guo J, Lee Q, Qiu H, Wei Y, Zhu X, et al. Patient-derived neural organoids reveal developmental impairments associated with a novel GJB1 mutation in X-linked Charcot-Marie-Tooth disease. Neurobiol Dis. 2026;220:107299.
  25. Nanbo A, Sugden A, Sugden B. The coupling of synthesis and partitioning of EBV's plasmid replicon is revealed in live cells. EMBO J. 2007;26(19):4252-4262.
  26. Chou BK, Mali P, Huang X, Ye Z, Dowey SN, et al. Efficient human iPS cell derivation by a non-integrating plasmid from blood cells with unique epigenetic and gene expression signatures. Cell Res. 2011;21(3):518-529.
  27. Okita K, Matsumura Y, Sato Y, Okada A, Morizane A, et al. A more efficient method to generate integration-free human iPS cells. Nat Methods. 2011;8(5):409-412.
  28. Cheng L, Wang Y, Yang Z, Cao J, Peng F, et al. p53 safeguards chemical reprogramming of human somatic cells toward pluripotency. Cell. 2026. doi:10.1016/j.cell.2026.03.038.
  29. Akutsu SN, Miyamoto T, Oba D, Tomioka K, Ochiai H, et al. iPSC reprogramming-mediated aneuploidy correction in autosomal trisomy syndromes. PLoS One. 2022;17(3):e0264965.

הגישה מוגבלת. התחברו או התחילו תקופת ניסיון כדי לצפות בתוכן זה.

הדפסות חוזרות והרשאות

תגיות

iPSC אנופלואידיים אנושייםסמני פלוריפוטנציהמעבר ממזנכימלי לאפיתליאליקריוטיפ G-bandingסילוק וקטור באמצעות PCRתכנות מחדש ללא תאי מאכילהמידול מחלותביולוגיה של כרומוזומים

מאמר זה פורסם

הסרטון יגיע בקרוב

צרו קשר
המליצו לספרייה

פרטיות

תנאי שימוש

מדיניות

זכויות יוצרים © 2026 MyJoVE Corporation. כל הזכויות שמורות.