מחקר זה מזהה חמישה סמנים ביולוגיים הקשורים ל-cuproptosis ול-ferroptosis בקוﻻיטיס כיבית באמצעות למידת מכונה משולבת, רצף RNA של תא בודד ואימות ניסויי, ובכך מספק תובנות לאבחנה קלינית ואימונותרפיה ממוקדת.
הרשמה ל-JoVE נדרשת לצפייה בתוכן זה. התחברו או התחילו בגרסת ניסיון בחינם.
מאמר מחקר
מחקר זה מזהה חמישה סמנים ביולוגיים הקשורים ל-cuproptosis ול-ferroptosis בקוﻻיטיס כיבית באמצעות למידת מכונה משולבת, רצף RNA של תא בודד ואימות ניסויי, ובכך מספק תובנות לאבחנה קלינית ואימונותרפיה ממוקדת.
קולייטיס כיבית (UC) היא הפרעה מעיית כרונית עם פתוגנזה שאינה מוגדרת במלואה, ושיעורי שכיחות ואשפוז עולים במדינות מתועשות חדשות. ב-UC, מוות מוגבר של תאי אפיתל המעי משבש את מחסום הרירית ומעורר תגובות דלקתיות. פרופטוזיס (Ferroptosis) וקופרופטוזיס (Cuproptosis) הן שתי צורות של מוות תאי מתוכנן שתוארו לאחרונה. רוב המחקרים על UC בחנו תהליכים אלו בנפרד; עם זאת, תפקידם המשולב בהתקדמות ה-UC נותר לא מאופיין מספיק. כדי לחקור את תפקידם הסינרגי בפתוגנזה של UC, השתמשנו בגישה מדורגת הכוללת פרופיל טרנסקריפטומי רחב היקף לזיהוי מטרות מועמדות, ולאחריה תיקוף במודלים in vitro. גנים בעלי ביטוי שונה (DEGs) הושוו לגנים הקשורים לפרופטוזיס (FRGs) ולגנים הקשורים לקופרופטוזיס (CRGs). המטרות החופפות תועדפו באמצעות קונסנזוס של אלגוריתמי למידת מכונה ואנליזת רשת של ביטוי גנים משותף משוקלל (WGCNA). חמישה סמנים ביולוגיים — LCN2, IDO1, CXCL2, NOS2, ו-CD274 — הראו עלייה משמעותית בביטוי ב-UC. אנליזה של תאים בודדים אפיינה את ביטוים בסוגי תאים שונים, כאשר LCN2 ו-NOS2 היו מועשירים בעיקר בתאי אפיתל. הרלוונטיות המכניסטית של סמנים אלו הוערכה בהמשך באמצעות בדיקות in vitro. טיפול במעכבי פרופטוזיס או קופרופטוזיס הקל על דלקת הקשורה ל-UC ושינה את ביטוי הסמנים הביולוגיים במודלים של תאי Caco-2. ממצאים אלו מזהים חמישה סמנים ביולוגיים הקשורים להתקדמות UC ומספקים ראיות ניסיוניות התומכות בפוטנציאל יישומם באבחון קליני ובהתערבות טיפולית.
קוליטיס כיבית (UC) היא מחלה דלקתית של המעי המתאפיינת בהישנות, והיא קשורה לנטל גלובלי הולך וגדל ולעלויות טיפול משמעותיות לטווח ארוך1,2. למרות שטיפולים באמינוסליצילטים, קורטיקוסטרואידים, תרופות ביולוגיות וטיפולים במולקולות קטנות הרחיבו את אפשרויות הטיפול, השגת רמיסיה עמידה נותרה מאתגרת עבור מטופלים רבים3,4. צורך קליני לא מסופק זה מדגיש את החשיבות של זיהוי סממנים מולקולריים ניתנים לשחזור ומנגנונים ניתנים לטיפול שעשויים לתמוך באבחנה מוקדמת יותר ובטיפול מונחה-מנגנון5.
פרופטוזיס (Ferroptosis) היא צורה של מוות תאי מווסת התלוי בברזל, המונעת על ידי פריקסדציה של ליפידים, דלדול של גלוטתיון ופגיעה בפעילות של GPX46. רמות מוגברות של ברזל ומלונדיאלדהיד ב-UC עולות בקנה אחד עם פגיעה אפיתליאלית פרופטוטית, בעוד שהפעלה ניסיונית של ציר ה-SLC7A11–GSH–GPX4 או עיכוב ישיר של פרופטוזיס יכולים להגן על מחסום המעי7,8.
קופרופטוזיס (Cuproptosis), שתואר בשנת 2022, מופעל כאשר נחושת נקשרת לחלבונים מיטוכונדריאליים שעברו ליפויליזציה, מה שמוביל לצבירת חלבונים ולעקה פרוטאו-טוקסית9. מכיוון שהמעי ממלא תפקיד מרכזי בטיפול בנחושת, שיבוש של מסלול זה עשוי להגביר פגיעה אפיתלית חמצונית ודלקתית ב-UC10.
פרופטוזיס (Ferroptosis) וקופרופטוזיס (cuproptosis) עשויים להתלכד דרך חוסר איזון של יוני מתכות, מטבוליזם מיטוכונדריאלי, דלדול גלוטתיון ועקה חמצונית11. עם זאת, השאלה האם קשר הדדי זה מייצר חתימה מולקולרית הניתנת לשחזור ב-UC והאם חתימה כזו מגיבה לעיכוב ספציפי למסלול, נותרה לא פתורה.
השערת המחקר הייתה כי הפרה של הדיאלוג (crosstalk) בין פרופטוזיס (ferroptosis) לקופרופטוזיס (cuproptosis) ב-UC מתכנסת לחתימה של סמנים ביולוגיים הניתנים לשחזור, שניתן לתת להם עדיפות במערכי נתונים טרנסקריפטומיים של תאים בודדים ושל אוכלוסיות תאים (bulk), ולהפחית אותם באמצעות עיכוב ספציפי למסלול במודל של פגיעה באפיתל המעי. בהתאם לכך, שולבו ביו-אינפורמטיקה של מספר קוהורטות, למידת מכונה, ניתוח תאים בודדים וניסויים ממוקדים בתאי Caco-2 כדי לזהות ולהעריך תפקודית סממנים ביולוגיים מועמדים (איור 1).

איור 1: זרימת עבודת המחקר. זרימת עבודה משולבת לסריקה טרנסקריפטומית של מספר קוהורטות, תיעדוף סמנים ביולוגיים מבוסס רשתות ולמידת מכונה, לוקליזציה של תא בודד ותיקוף מבוסס מעכבים בתאי Caco-2. UC: colitis ulcerative; GEO: Gene Expression Omnibus; WGCNA: weighted gene co-expression network analysis; PPI: protein–protein interaction; ROC: receiver operating characteristic; GSEA: gene set enrichment analysis. אנא לחצו כאן כדי לצפות בגרסה גדולה יותר של איור זה.
הגישה מוגבלת. התחברו או התחילו תקופת ניסיון כדי לצפות בתוכן זה.
מחקר זה השתמש במערכי נתונים הזמינים לציבור ובקווי תאים אנושיים הזמינים מסחרית. לא היו מעורבים משתתפים אנושיים, רקמות אנושיות שנאספו לאחרונה או בעלי חולחול; לפיכך, לא נדרש אישור מוועדת אתיקה מוסדית. כלי המחקר, התוכנות והמשאבים המקוונים ששימשו בפרוטוקול מפורטים בטבלת החומרים.
1. עיבוד נתונים לניתוח ביטוי דיפרנציאלי
כדי לבסס את קבוצות הגילוי והתיקוף הטרנסקריפטומיות, בוצע חיפוש במאגר הנתונים Gene Expression Omnibus (GEO) באמצעות המונח “ulcerative colitis”. ארבעה סטים של נתונים — GSE87466, GSE92415, GSE107499 and GSE75214 — שימשו כסט האימון, בעוד ש-GSE47908 נשמר לתיקוף חיצוני. סטי נתוני האימון נורמלו ועברו תיקון אפקטים של אצוות (batch-correction) באמצעות ComBat בתוכנת Sangerbox 3.0, בעוד שסט נתוני התיקוף עובד באופן עצמאי.
סה"כ 583 גנים הקשורים לפרופטוזיס (FRGs) הופקו מ-FerrDB והושלמו בגנים שדווחו בספרות המקצועית כדי להפחית הטיות הנובעות ממקור יחיד12סט של 96 גנים הקשורים לקופרופטוזיס (CRGs) נערך מתוך מחקרים שפורסמו12,13,14ביטוי דיפרנציאלי נותח באמצעות limma עם ספי thresholds של |log₂ שינוי מכפלה > 1 ובתיקון Benjamini–Hochberg P < 0.05. תרשימי אבחון של נורמליזציה, תיקון אפקט של סדרות (batch correction), ביטוי דיפרנציאלי והקבצה מוצגים ב- איור משלים 1הרכב הדגימות, הפלטפורמות והקצבת הקוהורטות מפורטים ב- טבלה נלווית 1.
2. זיהוי של CF-DEGs ב-UC
ניתוח מתאם פירסון בוצע תוך שימוש בסף של |r| > 0.5 ו- P < 0.05 כדי לזהות FRGs ו- CRGs בעלי ביטוי משותף. קבוצת הגנים שהתקבלה הועברה לחיתוך עם הגנים בעלי ביטוי דיפרנציאלי (DEGs) כדי לזהות גנים בעלי ביטוי דיפרנציאלי המבטאים ביטוי משותף של קופרופטוזיס-פרופטוזיס (CF-DEGs).
3. אנליזת העשרה
ניתוחי העשרה של Gene Ontology (GO) ו-Kyoto Encyclopedia of Genes and Genomes (KEGG) בוצעו באמצעות clusterProfiler והפלטפורמה Bioinformatics.com.cn. ערך P < 0.05 המתוקנן לפי Benjamini–Hochberg שימש כסף המובהקות. תרשימי העשרה מוצגים ב-איור משלים 2.
4. ניתוח רשת ביטוי משותף שקולה של גנים (WGCNA)
המבנה המודולרי העומד בבסיס פרופילי ביטוי הגנים נותח באמצעות ניתוח רשת ביטוי גנים משותף משוקלל (WGCNA). דגימות חריגות זוהו והוצאו באמצעות קיבוב היררכי בשילוב עם הפונקציה goodSamplesGenes. לאחר מכן נקבע ערך סף רך (β) מתאים כדי לספק את קריטריון הטופולוגיה חסרת הקנה (scale-free topology) לבניית הרשת.
נתוני הביטוי המעובדים שימשו לבניית מטריצת חפיפה טופולוגית (TOM) לצורך ניתוח ביטוי גנים משותף (co-expression). באמצעות גישת חיתוך עץ דינמי, גנים בעלי דפוסי ביטוי עקביים מאוד אורגנו למודולי גנים, כאשר כל מודול הכיל לפחות 100 גנים. קשרים בין גנים ייצגיים של המודולים (MEs) לבין פנוטיפים נותחו כדי לזהות מודולים הקשורים לתהליך המחלה ולהפיק את קבוצות הגנים התואמות. אבחון סינון של WGCNA מוצג ב-איור משלים 3.
5. בחירת סמנים ביולוגיים
כדי לתעדף מועמדים להמשך מעקב ניסיוני, הוחלו במקביל שלושה אלגוריתמים של למידת מכונה15. רגרסיית LASSO (Least absolute shrinkage and selection operator) שימשה לבחירת תכונות, יער אקראי (random forest) עם ntree = 500 שימש לדירוג חשיבות הגנים, ושיטת SVM-RFE (support vector machine–recursive feature elimination) שימשה לזיהוי תת-קבוצת התכונות עם שגיאת האימות הצולב (cross-validation error) הנמוכה ביותר. אבחוני סריקה מלאים מוצגים באיור משלים 5.
חשיבות הגנים הוערכה על פי התרומה של גנים בודדים לדיוק הסיווג, וגנים שדורגו גבוה נאספו כדי ליצור סט גנים ראשוני16. אלגוריתם ה-SVM-RFE ביצע סינון מאפיינים ואופטימיזציה של המודל באמצעות השמטה איטרטיבית של מאפיינים, מה שאיפשר זיהוי של תת-קבוצת המאפיינים האופטימלית לסיווג17. גנים המשותפים לשלושת האלגוריתמים נחשבו כביומרקרים מועמדים שזוהו באמצעות למידה חישובית.
ה-CF-DEGs שימשו לבניית רשת אינטראקציית חלבון-חלבון (PPI), ו-CytoHubba שימשה לדירוג צומת-ליבה. החיתוך בין מודולי WGCNA מרכזיים, שלושת הפלטים של למידת המכונה ומערכת הליבה של ה-PPI הגדיר חמישה סממנים ביולוגיים מועמדים משולבים: LCN2, IDO1, CXCL2, NOS2 ו-CD274. גנים אלה סווגו כמועמדים אבחנאיים הקשורים ל-UC. ניסויי עיכוב המשך סיווגו את LCN2, IDO1, CXCL2 ו-NOS2 כסממנים המגיבים לעיכוב פרוטוזיס, ואת CD274 כסממן המגיב לעיכוב קופרוטוזיס. גנים אלה לא נחשבו לווסתים שמע (upstream regulators) מוכחים של אף אחת מהמסלולים.
6. פיתוח מודל חיזוי והערכה רב-שיטתית
כדי להעריך את פוטנציאל התרגום הקליני של חתימת הגנים שזוהתה, נבנה נומוגרמה באמצעות חבילת rms להערכת הביצועים האבחנתיים. ביצועי המודל הוערכו באמצעות עקומת כיול, מבחן Hosmer–Lemeshow (HL) ומדד ההתאמה של Harrell (C-index).
כיול המודל הוערך באמצעות מבחן HL וטעות מוחלטת ממוצעת (MAE). ערך P > 0.05 ו-MAE < 0.1 נקבעו כספי שערים להתאמה ומדויקות קבילה של המודל, בהתאמה. עקומות מאפיין תגובה (ROC) הופקו, והשטח תחת העקומה (AUC) חושב כדי להעריך את הביצועים הניבויים של הנומוגרמה עבור UC. מאגר נתונים בלתי תלוי שימש להערכת היכולת של המודל להכללה ויציבותו.
7. ניתוח העשרה של קבוצות גנים (GSEA)
בסט האימון, בוצע ניתוח מתאם של Spearman בין כל סמן ביולוגי לבין כל שאר הגנים. תוצאות המתאם דורגו כדי להפיק סט גנים מסודר. ניתוח העשרה של סט גנים (GSEA) בוצע באמצעות סט הגנים c2.cp.kegg_medicus.v2025.1.Hs.symbols ממאגר החתימות המולקולריות (MSigDB) כייחוס. מסלולים ביולוגיים עם P < 0.05 נחשבו להעשירה באופן מובהק.
8. ניתוח נוף חסוני
נעשה שימוש בכלי CIBERSORT ובמטריצת החתימה LM22 לביצוע אנליזת דקונבולוציה (deconvolution) של נתוני הביטוי ולהערכת הפרופורציות של 22 תתי-סוגים של תאי חיסון. לאחר מכן בוצע אנליזת מתאם ספירמן (Spearman correlation) כדי להעריך קשרים בין חמשת הסמנים הביולוגיים לבין תתי-הסוגים של תאי החיסון.
9. ניתוח רשת רגולטורית
מידע על ויסות של גורמי שעתוק (TF) ומיקרו-RNA (miRNA) הקשורים לגנים הופק ממאגרי המידע המשולבים ChEA3 ו-TarBase 9.0 באמצעות פלטפורמת NetworkAnalyst. MiRNAs הקשורים לפחות לשני צמתים נכללו ברשת הוויסות.
10. ריצוף RNA מתאיים בודדים (Single-cell RNA-seq)
בוצעו אינטגרציה למאגרי הנתונים של תאים בודדים של UC, GSE116222, הכולל שלושה דגימות בריאות ושלוש דגימות UC, ו-GSE214695, הכולל שש דגימות בריאות ושש דגימות UC. תאים נשמרו כאשר הם הכילו 200–5,000 גנים מזוהים, >1,000 מזהים מולקולריים ייחודיים (unique molecular identifiers), < 30% תמלילי מיטוכונדריה, < 3% תמלילי המוגלובין, ו-< 50% תמלילי ריבוסומים. לצורך נורמליזציה נעשה שימוש בפונקציה NormalizeData, ולצורך תיקון אפקט של סדרות (batch correction) לפני צבירה (clustering) ואנוטציה נעשה שימוש ב-Harmony.
לאחר הסינון, הנתונים נורמלו באמצעות פונקציית NormalizeData. נעשה שימוש ב-Harmony כדי למזער השפעות אלוף (batch effects) בין הדגימות. קירוב ומסגור של סבך אחיד (UMAP) והטמעה סטוכסטית של שכנים מפוצלים לפי התפלגות t (t-SNE) שימשו להפחתת ממדיים ולצבירה של תאים (cell clustering) על מנת לאפיין מבנים מקומיים וגלובליים בתוך אוכלוסיית התאים. בסך הכל 31,712 תאים באיכות גבוהה נשמרו להמשך הניתוח. סוגי התאים סווגו בהתאם לגנים מסמנים (marker genes) קנוניים של התאים.
ניתוח pseudotime בוצע באמצעות Monocle 2 כדי לבחון שינויים במצבים של תאי אפיתל ותאי מיאלואיד מרקמות UC. נבחנו מסלולי התפתחות של תאים והבדלים בין קבוצות, ותבניות ביטוי של סמנים ביולוגיים לאורך מסלול ה-pseudotime הוצגו באופן ויזואלי.
נעשה שימוש ב-CellChat כדי להעריך תקשורת בין תאים בין תתי-אוכלוסיות של תאי אפיתל ותאי מיאלואיד. דפוסי ביטוי ספציפיים לתתי-אוכלוסיות שולבו כדי להסיק הסתברויות לאינטראקציה ומסלולי איתות מרכזיים בין תאי אפיתל לתאי מיאלואיד, וכדי לאפיין את רשתות הבקרה הבין-תאיות הפוטנציאליות שלהם.
11. ניסויי תאים
תאי אדנוקרצינומה של המעי הגס Caco-2 אנושיים תורבדו במדיום Dulbecco’s modified Eagle המכיל 10% fetal bovine serum, 100 U/mL penicillin ו-100 µg/mL streptomycin בטמפרטורה של 37 °C וב-5% CO₂. תאי Caco-2 נבחרו כמודל שכבה אפיתליאלית אחת (monolayer) הניתן לשחזור עבור בדיקות של מחסום מעי ופגיעה דלקתית; עם זאת, מקורם הממאיר מגביל הכללה ישירה לאפיתליום של מעי הגס שאינו ממאיר. מידע על מספר המעברים (passage) לא היה זמין ברשומות הניסויים שנשמרו.
מודל של פגיעה דלקתית in vitro הוקם על ידי חשיפת תאים ל-1 µg/mL lipopolysaccharide (LPS) למשך 24 h. התאים חולקו לקבוצת ביקורת שקיבלה dimethyl sulfoxide (הנושא), קבוצת LPS בלבד, קבוצת LPS + 4 µM ferrostatin-1, או קבוצת LPS + 40 µM tetrathiomolybdate, עם ריכוזי ממס סופיים תואמים. קבוצת ה-LPS בלבד שימשה כביקורת חיובית לפגיעה/מודל לצורך השוואות של הצלה באמצעות מעכבים.
12. ניתוח סטטיסטי
נורמליות והומוגניות של השונות הוערכו באמצעות מבחני Shapiro–Wilk ו-Levene המבוסס על החציונים, בהתאמה. נתונים שעמדו בשתי ההנחות נותחו באמצעות t-test דו-זנבי למדגמים בלתי תלויים או ניתוח שונות חד-גורמי (one-way ANOVA), ולאחריו מבחן Tukey’s honestly significant difference. כאשר אחת מההנחות לא התקיימה, נעשה שימוש ב-Welch’s t-test או בניתוח שונות של Welch, ולאחריו השוואות Games–Howell.
התוצאות מוצגות כממוצע ± סטיית תקן. מספר החזרות ביולוגיות בפועל, ערכי P מדויקים דו-צדדיים ובדיקות הנחות מדווחים בטבלה משלימה 3. גיליון המקור של איור 13 בארכיון מכיל פחות חזרות של בקרה עבור פאנלים A (n = 4), C (n = 4), ו-F (n = 2), בעוד שכל שילובי הפאנל/קבוצה האחרים מכילים n = 6.
ניתוחים חישוביים בוצעו באמצעות R וספריות העבודה limma, WGCNA, clusterProfiler, glmnet, randomForest, e1071, pROC, rms, Seurat v4, Harmony, Monocle 2, CellChat, ו-Cytoscape/CytoHubba. משאבים מקוונים שנעשה בהם שימוש כללו את FerrDB, GEO, STRING, ChEA3, TarBase 9.0, NetworkAnalyst, CIBERSORT/LM22, MSigDB, Bioinformatics.com.cn, ו-Sangerbox 3.0.
הגישה מוגבלת. התחברו או התחילו תקופת ניסיון כדי לצפות בתוכן זה.
זיהוי ואנוטציה פונקציונלית של גנים המבטאים ביטוי משותף של cuproptosis ו-ferroptosis
שולבו ארבעה מאגרי נתוני אימון הכוללים 421 דגימות UC ו-97 ביקורות בריאות. זוהו סך הכל 551 גנים עם ביטוי Differentially Expressed, הכוללים 362 גנים עם ביטוי מוגבר (upregulated) ו-189 גנים עם ביטוי מופחת (downregulated). ניתוח מתאמי העלה 444 גנים הקשורים ל-ferroptosis ו-cuproptosis, וחיתוך עם הגנים בעלי הביטוי השונה הניב 32 גנים בעלי ביטוי שונה המבטאים ביטוי משותף של cuproptosis ו-ferroptosis (CF-...
הגישה מוגבלת. התחברו או התחילו תקופת ניסיון כדי לצפות בתוכן זה.
מחקר זה שילב טרנסקריפטומיקה של אוכלוסיות תאים (bulk transcriptomics), למידת מכונה, ניתוח של תאים בודדים וניסויי תאים ממוקדים כדי לבחון את השפע והקשר (crosstalk) בין פרופטוזיס (ferroptosis) לקופרופטוזיס (cuproptosis) בקוﻻיטיס כיבבית (UC). חמישה מועמדים לאבחנה הקשורים ל-UC נמצאו ניתנים לשחזור הן בקבוצת הגילוי והן בקבוצת האימות, אותרו בעיקר במדורים האפיטלייאליים והמיאלואידיים, והראו ביטוי המגיב לעיכוב של מסלולים בתאי Caco-2. ממצאים אלו תומכים בזרימת עבודה מדורגת שבה תיעדוף חישובי מנחה אימות ביולוגי ממוקד, תוך הימנעות מהטענה...
הגישה מוגבלת. התחברו או התחילו תקופת ניסיון כדי לצפות בתוכן זה.
למחברים אין דבר להצהיר עליו.
עבודה זו נתמכה על ידי פרויקט מלגות Young Qihuang של המנהל הלאומי לרפואה סינית מסורתית (מענק מס' 2022256). תודה מוענית לכל חברי צוותי המחקר באוניברסיטת ליאונינג לרפואה סינית מסורתית ובבית החולים השלישי המסופח לאוניברסיטת ליאונינג לרפואה סינית מסורתית על התמיכה הטכנית והתרומה לאוצרות הנתונים ולניתוח הביואינפורמטיקה.
OpenAI Codex (OpenAI) שימש במהלך העריכה אך ורק כדי לסייע בעריכה של השפה האנגלית, בפורמט המסמך ובבדיקת איכות האיורים. כל התוכן המדעי, הניתוחים, הציטוטים וההצגה הסופית נסקרו ואומתו על ידי המחברים, הנושאים באחריות מלאה לכתב היד.
הגישה מוגבלת. התחברו או התחילו תקופת ניסיון כדי לצפות בתוכן זה.
| שם | חברה | מספר קטלוג | הערות |
|---|---|---|---|
| ערכה לבדיקת חלבון BCA | Beyotime Institute of Biotechnology | P0010 | כימות חלבונים לצורך נורמליזציה. |
| Bioinformatics.com.cn | Bioinformatics.com.cn | פלטפורמה מקוונת; נגישה בשנת 2026 | פלטפורמה לניתוח ולהצגה חזותית של GO/KEGG. |
| קו תאי Caco-2 | ATCC | HTB-37 | קו תאי אדנוקרצינומה של המעי הגס והחך של בני אדם המשמש למודל של פגיעה אפיתלית. |
| ערכה לספירת תאים 8 (Cell Counting Kit-8) | GLPBio | GK10001 | בדיקת חיוניות תאים שנמדדה באורך גל של 450 ננומטר. |
| CIBERSORT עם חתימת LM22 | מפתחי CIBERSORT | LM22 | דה-קונוולוציה (Deconvolution) של 22 פракציות של תאי מערכת החיסון. |
| ChEA3 | מעבדת מעיין | פלטפורמה מקוונת; נגישה בשנת 2026 | העשרה של גורמי שעתוק וחיזוי רשתות בקרה. |
| CO2 אינקובטור | לא הוקלט | לא רלוונטי | אינקובטור לח (Humidified incubator) המשמש לתרבית ב- 37 °C ו-5% CO22. |
| נחושת<סגנון ספאן ="גודל גופן: 10.8333px;">2+ גשוש פלואורסצנטי | BIOFOUNT | CAS 98907-26-7 | נחושת תוך-תאית (Cu)2+ גילוי פלואורסצנציה. |
| Cytoscape עם CytoHubba | קונסורציום Cytoscape | הגרסה לא תועדה | ויזואליזציה של PPI ודירוג צמתי-ליבה. |
| מצע דאלבקו המשופר (Dulbecco's modified Eagle medium) | Gibco | 11965092 | מצע גידול לתאי Caco-2. |
| דימתיל סולפוקסיד | לא הוקלט | לא רלוונטי | ביקורת נשאי תרופה (Vehicle control). |
| סרום בקר עוברי | לא הוקלט | לא רלוונטי | תוסף מצע בריכוז של 10%. |
| Fe2+ ערכת בדיקה | Abcam | ab83366 | מדידת Fe תוך-תאי2+. |
| FerrDB | מפתחי FerrDB | מאגר נתונים מקוון; נגישה בשנת 2026 | מקור של גנים הקשורים לפרופטוזיס (ferroptosis). |
| Ferrostatin-1 | Sigma-Aldrich | SML0583 | מעכב פרופטוזיס; ריכוז סופי 4 µM. |
| הרמוניה | מכון ברוד/קהילה | גרסה לא תועדה | תיקון אפקטי batch ברמה התאית (Single-cell batch correction). |
| מיקרוסקופ פלואורסצנציה הפוך | Olympus | IX71 | נחושת2+ דימות פלואורסצנציה בעירור/פליטה של 510/578 ננומטר. |
| ליפופוליסכריד | לא הוקלט | לא רלוונטי | גירוי פגיעה דלקתית ב- 1 µg/mL למשך 24 שעות. |
| ערכה לבדיקת מלונדיאלדהיד | Beyotime Institute of Biotechnology | S0131S | מדידה של פירוקסידציה של ליפידים. |
| קורא מיקרו-פלטות | לא הוקלט | לא רלוונטי | מדידת בליעה באורך גל של 450 ננומטר. |
| Monocle | Bioconductor/קהילה | גרסה 2 | ניתוח פסאודו-זמן של תא בודד. |
| מאגר חתימות מולקולריות | Broad Institute | c2.cp.kegg_medicus.v2025.1.Hs | סט גנים ייחוס עבור GSEA. |
| NetworkAnalyst | מפתחי NetworkAnalyst | פלטפורמה מקוונת; נגישה לשנת 2026 | אינטגרציה של רשתות גורמי שעתוק ו-miRNA. |
| פניצילין–סטרפטומייצין | לא תועד | לא רלוונטי | 100 U/mL פניצילין ו- 100 µg/mL סטרפטומייצין. |
| R | R Foundation for Statistical Computing | גרסה לא תועדה | סביבת ניתוח ביואינפורמטית. |
| סט חבילות R | CRAN/Bioconductor | בניית חבילות שלא תועדו | סבבי עבודה של limma, WGCNA, clusterProfiler, glmnet, randomForest, e1071, pROC, ו-rms. |
| מערכת PCR בזמן אמת | לא הוקלט | לא רלוונטי | מכשיר SYBR Green RT-qPCR. |
| ערכה לסנתז גדיל ראשון של cDNA מסוג RevertAid | Thermo Fisher Scientific | K1622 | סינתזת cDNA של הגדיל הראשון מ- 1 µg RNA. |
| Sangerbox | מפתחי Sangerbox | 3.0 | נורמליזציה ותיקון אפקטים של סדרות (batch correction) באמצעות ComBat. |
| Seurat | מעבדת Satija/קהילה | גרסה 4 | בקרת איכות של תא בודד, נורמליזציה, אשכול (clustering) וויזואליזציה. |
| תוכנה לניתוח סטטיסטי | לא הוקלט | לא רלוונטי | ניתוח סטטיסטי של ניסויי התאים המקוריים. |
| אנא ספק את הטקסט באנגלית שברצונך לתרגם. | קונסורציום STRING | מאגר נתונים מקוון; נגישה בשנת 2026 | חלבון–בניית רשת אינטראקציות בין חלבונים. |
| ריאגנטים ל-PCR בזמן אמת עם SYBR Green | Takara | RR820A | PCR כמותי בזמן אמת. |
| TarBase | כלי DIANA | 9.0 | miRNA הנתמך ניסויית–אינטראקציות גנומיות. |
| טטרתיומוליבдат | Sigma-Aldrich | 323446 | קלטור נחושת; ריכוז סופי 40 µM. |
| ריאגנט TRIzol | Takara | 9108 | הפקת RNA כולל. |
הגישה מוגבלת. התחברו או התחילו תקופת ניסיון כדי לצפות בתוכן זה.