הבחירה הנכונה של הרדמה לניתוח והליכים אחרים שעלולים להיות כואבים חייבת להיקבע על ידי וטרינר. זה מבוסס על היבטים רבים, כולל היקף ומשך ההליך, המין והמתח, הגיל והמצב הפיזיולוגי של החיה.
הרדמה זמינה כמו ממסים במשאפים או הזרקה. הרדמה כירורגית יכולה להתבצע באמצעות שילוב של הרדמה להזרקה ותחנוך משאף. 2
1. אינדוקציה להרדמה נדינית
הרדמה משאיפה כוללת איזופלוראן, סבופלוראן, ו desflurane, עם איזופלוראן בשימוש הנפוץ ביותר. הרדמה אלה משמשים לעתים קרובות יותר כי, איתם, קל יותר לשלוט על עומק ההרדמה. אינדוקציה של הרדמה באמצעות הרדמה שאיפה יכול להתבצע עם צנצנת פעמון או תא אינדוקציה כי הוא מצויד מאדה מדויק.
2. אינדוקציה של הרדמה באמצעות הרדמה להזרקה
הרדמה להזרקה היא בעיקר תערובת של קטמין, תרופות הרגעה או מרפה שרירים.
השילובים הנפוצים הם: 1) קוקטייל מכרסמים, המורכב קטמין (100 מ"ג/ מ"ל), קסילאצין (20 מ"ג/מ"ל), אקרומאזין (10 מ"ג/מ"ל), ותמיסת מלח סטרילית (0.9% NaCl); 2) קטמין/קסילאזין 2:1, המורכב קטמין (100 מ"ג/מ"ל), קסילאסין (20 מ"ג/מ"ל), ותמיסת מלח סטרילית (0.9% NaCl); ו-3) תערובת עכבר קטמין/קסילאסין, המורכבת מקטמין (100 מ"ג/מ"ל), קסילאסין (20 מ"ג/מ"ל) ותמיסת מלח סטרילית (0.9% NaCl). בעת שימוש משולב קטמין/קסילן, לחיזוק צריך להיעשות רק עם קטמין בלבד, לא קסילאזין, בשל מחצית החיים של תרופות אלה.
השילוב של קטמין עם תרופות הרגעה ו/או מרפה שרירים צריך להיות מוכן כפתרון מלאי שממנו ניתן לצייר מינונים בודדים. הסוכנים חייבים להיות מדודים במדויק מדולל עם תמיסת מלח סטרילית כדי להבטיח כי מינונים נאותים מנוהלים לבעלי החיים. מכיוון שקטמין הוא חומר מבוקר, יש לציין את הכמות המשמשת את הבקבוקים ב"יומן סמים מבוקר", והתערובות חייבות להיות "יומני חומרים מבוקרים" בודדים. בעת הכנת תערובות, מוסיפים את הקטמין לאט לבקבוק, כפי שהוא נוטה קצף אם מוזרק עם כוח. בקבוק סטרילי 20 מ"ל משמש לתערובת. הבקבוקים חייבים להיות מסומנים כראוי עם שם התרכובות, התאריך מעורבב, תאריך התפוגה, מספר הרבה קטמין (כפי שהוא חומר מבוקר), ואת המינון המוצע. תאריך התפוגה עשוי להיקבע לפי תאריך התפוגה של המרכיב הקרוב ביותר (תלוי בכללים/הנחיות של המתקן/המדינה). לתיעוד מדויק של קטמין, יש לשקול הן את הבקבוק הריק והן את הבקבוק המלא. לאחר מכן, המשקולות חייבות להיות מוקלטות על התווית של התערובת ועל גיליון יומן החומרים המבוקרים הבודדים שמוכן לכל בקבוק. יש לאחסן תערובות קטמין באזור חשוך ומבוקר טמפרטורה כדי לשמור על העוצמה.
3. הערכת הרדמה
ניתן להעריך עומק הרדמה על ידי בדיקת התגובה לגירויים שונים. תנועה מרצון תיווצר מגירויים פיזיים של הגוף. ראה טבלה 1 לקבלת רשימה של שיטות פיזיות המשמשות להערכת עומק הרדמה.
| שיטת | פרוצדורה | תגובה |
| צביטת בוהן | להאריך את הרגל ולבודד את webbing בין בהונות. אזור זה הוא צבט בחוזקה באמצעות ציפורניים או מלקחיים אטראומטיים. | רפלקס חיובי מסומן על ידי נסיגה של הרגל או משיכה של כף הרגל. החיה אינה נמצאת במישור כירורגי של הרדמה אם יש תנועת רגליים או גוף, ווקאליזציה, או עלייה ניכרת בנשימה. |
| צביטת זנב | קצה הזנב צבט באמצעות האצבעות או מלקחיים אטראומטיים. | תגובה חיובית מסומנת על ידי עוויתות או תנועה של הזנב. החיה אינה נמצאת במישור כירורגי של הרדמה אם יש תנועה של הזנב, ווקאליזציה, או עלייה ניכרת בנשימה. |
| צביטת אוזניים | באמצעות האצבעות או מלקחיים אטראומטיים, לצבוט את קצה הפינה. | תגובה חיובית היא לנער את הראש או את תנועת השפם קדימה. אם יש תנועה של הראש, השפם, הקול, או עלייה ניכרת בנשימה, החיה אינה במישור כירורגי של הרדמה. |
| רפלקס פלבריאלי | באמצעות קצות האצבעות, לגעת הקנתוס המהודל (הפינה הפנימית) של העין. | רפלקס חיובי מסומן על ידי מצמוץ בתגובה לנגיעה בעפעפיים. אם יש תנועה של העפעפיים, השפם, או עלייה ניכרת בנשימה, החיה אינה במישור כירורגי של הרדמה. |
| רפלקס קרנית | בעזרת אפליקטור עם קצה כותנה, יש לגעת בעדינות בקרנית (גלגל העין). | תגובה חיובית מסומנת על-ידי מצמוץ. אם יש תנועה של העפעפיים, השפם, או עלייה ניכרת בנשימה, החיה אינה נמצאת במישור עמוק מספיק של הרדמה כירורגית. |
טבלה 1. שיטות גירוי פיזי להערכת עומק הרדמה. 2
אינדיקטורים פיזיולוגיים כגון קצב הלב, קצב הנשימה, לחץ דם, צבע רירי, וזמן מילוי נימי יש להשתמש גם. בעוד תצפיות כלליות יכולות להיות שימושיות כדי לזהות שינויים בקצב הנשימה של בעלי החיים, כדי לנצל את קצב הלב, או לחץ דם להערכת עומק, ציוד מיוחד נדרש. אם אלקטרוקרדיוגרפיה זמינה, ניתן למדוד את קצב פעימות הלב ואת חוזק פעימות הלב. למדידת לחץ הדם, ישנם מגוון מכשירים המותקנים על הזנב או אפילו על כל הגוף. גירויים פיזיים כמתואר בטבלה 1 יגרמו לעלייה בכל שלושת הפרמטרים הללו.
צבע הקרומים הריריים, העיניים, האוזניים, הפה, האף, פי הטבעת, ובמידה פחותה - כפות הרגליים והזנב נצפים לשינויים. האזורים צריכים להיות ורודים, מה שמצביע על נשימה נאותה ותפקוד לב. כאשר החיה עוברת להרדמה בשלב 4, הנשימה מפסיקה, וכתוצאה מכך ציאנוזיס - המצוין על ידי צבע כחול או אפור - אל הריריות והעור שמסביב.
זמן מילוי נימי מוגדר ככמות הזמן שנדרש לצבע לחזור למיטה נימית חיצונית לאחר שהוא כבר blanched על ידי היישום של לחץ על האזור. מקל אפליקטור או אצבע נלחצים על החניכיים, הפינה או מיטות הציפורן של בעלי החיים המרדימים. מספר השניות שלוקח לאזור הלוהט לחזור לצבע ורוד לא צריך להיות יותר מ 1-2 שניות. זמן מילוי מורחב מצביע על ירידה בקצב הלב או בכוח של התכווצויות לב, מה שמצביע על כך שבעל החיים עשוי להיות מרדים מדי וכמעט מוות.
חשוב לנצל מספר פרמטרים שונים להערכת עומק הרדמה. שימוש באותה בוהן או אוזן לצביטות חוזרות ונשנות יפחית את הרגישות של האזור, והתגובה תודחק ולא תיתן הערכה מדויקת של עומק ההרדמה. השתמש באתרים חלופיים להערכות צביטת בוהן ואוזן. יש להעריך מחדש את עומק ההרדמה כל 10-30 דקות לאורך כל הניתוח. 2
מחקרים הראו כי ישנם שינויים cardiorespiratory בחיה מרדים. בעוד מורדם עם תרופות להזרקה, בעלי החיים חווים שיעור נשימה יציב; עם זאת, הם מדגימים שונות בתפוקת הלב. התגובה להרדמה להזרקה דווחה להשתנות מאוד בין זנים שונים, ולכן קשה לתקנן את המינון. 7 סוכני משאף נוטים להפחית את קצב הנשימה אך יש להם השפעה פחותה על מערכת הלב וכלי הדם. כמו המינון של הרדמה משאף מותאם בקלות לאורך כל ההליך, זה לעתים קרובות השיטה המועדפת.
מקור: קיי סטיוארט, RVT, RLATG, CMAR; ואלרי א. שרודר, אר.די.ג'י, אר-אל-ג'י. אוניברסיטת נוטרדאם, IN
המדריך לטיפול ושימוש בחיות מעבדה ("המדריך") קובע כי…
הבחירה הנכונה של הרדמה לניתוח והליכים אחרים שעלולים להיות כואבים חייבת להיקבע על ידי וטרינר. זה מבוסס על היבטים רבים, כולל היקף ומשך ההליך, המין והמתח, הגיל והמצב הפיזיולוגי של החיה.
הרדמה זמינה כמו ממסים במשאפים או הזרקה. הרדמה כירורגית יכולה להתבצע באמצעות שילוב של הרדמה להזרקה ותחנוך משאף. 2
1. אינדוקציה להרדמה נדינית
הרדמה משאיפה כוללת איזופלוראן, סבופלוראן, ו desflurane, עם איזופלוראן בשימוש הנפוץ ביותר. הרדמה אלה משמשים לעתים קרובות יותר כי, איתם, קל יותר לשלוט על עומק ההרדמה. אינדוקציה של הרדמה באמצעות הרדמה שאיפה יכול להתבצע עם צנצנת פעמון או תא אינדוקציה כי הוא מצויד מאדה מדויק.
2. אינדוקציה של הרדמה באמצעות הרדמה להזרקה
הרדמה להזרקה היא בעיקר תערובת של קטמין, תרופות הרגעה או מרפה שרירים.
השילובים הנפוצים הם: 1) קוקטייל מכרסמים, המורכב קטמין (100 מ"ג/ מ"ל), קסילאצין (20 מ"ג/מ"ל), אקרומאזין (10 מ"ג/מ"ל), ותמיסת מלח סטרילית (0.9% NaCl); 2) קטמין/קסילאזין 2:1, המורכב קטמין (100 מ"ג/מ"ל), קסילאסין (20 מ"ג/מ"ל), ותמיסת מלח סטרילית (0.9% NaCl); ו-3) תערובת עכבר קטמין/קסילאסין, המורכבת מקטמין (100 מ"ג/מ"ל), קסילאסין (20 מ"ג/מ"ל) ותמיסת מלח סטרילית (0.9% NaCl). בעת שימוש משולב קטמין/קסילן, לחיזוק צריך להיעשות רק עם קטמין בלבד, לא קסילאזין, בשל מחצית החיים של תרופות אלה.
השילוב של קטמין עם תרופות הרגעה ו/או מרפה שרירים צריך להיות מוכן כפתרון מלאי שממנו ניתן לצייר מינונים בודדים. הסוכנים חייבים להיות מדודים במדויק מדולל עם תמיסת מלח סטרילית כדי להבטיח כי מינונים נאותים מנוהלים לבעלי החיים. מכיוון שקטמין הוא חומר מבוקר, יש לציין את הכמות המשמשת את הבקבוקים ב"יומן סמים מבוקר", והתערובות חייבות להיות "יומני חומרים מבוקרים" בודדים. בעת הכנת תערובות, מוסיפים את הקטמין לאט לבקבוק, כפי שהוא נוטה קצף אם מוזרק עם כוח. בקבוק סטרילי 20 מ"ל משמש לתערובת. הבקבוקים חייבים להיות מסומנים כראוי עם שם התרכובות, התאריך מעורבב, תאריך התפוגה, מספר הרבה קטמין (כפי שהוא חומר מבוקר), ואת המינון המוצע. תאריך התפוגה עשוי להיקבע לפי תאריך התפוגה של המרכיב הקרוב ביותר (תלוי בכללים/הנחיות של המתקן/המדינה). לתיעוד מדויק של קטמין, יש לשקול הן את הבקבוק הריק והן את הבקבוק המלא. לאחר מכן, המשקולות חייבות להיות מוקלטות על התווית של התערובת ועל גיליון יומן החומרים המבוקרים הבודדים שמוכן לכל בקבוק. יש לאחסן תערובות קטמין באזור חשוך ומבוקר טמפרטורה כדי לשמור על העוצמה.
3. הערכת הרדמה
ניתן להעריך עומק הרדמה על ידי בדיקת התגובה לגירויים שונים. תנועה מרצון תיווצר מגירויים פיזיים של הגוף. ראה טבלה 1 לקבלת רשימה של שיטות פיזיות המשמשות להערכת עומק הרדמה.
| שיטת | פרוצדורה | תגובה |
| צביטת בוהן | להאריך את הרגל ולבודד את webbing בין בהונות. אזור זה הוא צבט בחוזקה באמצעות ציפורניים או מלקחיים אטראומטיים. | רפלקס חיובי מסומן על ידי נסיגה של הרגל או משיכה של כף הרגל. החיה אינה נמצאת במישור כירורגי של הרדמה אם יש תנועת רגליים או גוף, ווקאליזציה, או עלייה ניכרת בנשימה. |
| צביטת זנב | קצה הזנב צבט באמצעות האצבעות או מלקחיים אטראומטיים. | תגובה חיובית מסומנת על ידי עוויתות או תנועה של הזנב. החיה אינה נמצאת במישור כירורגי של הרדמה אם יש תנועה של הזנב, ווקאליזציה, או עלייה ניכרת בנשימה. |
| צביטת אוזניים | באמצעות האצבעות או מלקחיים אטראומטיים, לצבוט את קצה הפינה. | תגובה חיובית היא לנער את הראש או את תנועת השפם קדימה. אם יש תנועה של הראש, השפם, הקול, או עלייה ניכרת בנשימה, החיה אינה במישור כירורגי של הרדמה. |
| רפלקס פלבריאלי | באמצעות קצות האצבעות, לגעת הקנתוס המהודל (הפינה הפנימית) של העין. | רפלקס חיובי מסומן על ידי מצמוץ בתגובה לנגיעה בעפעפיים. אם יש תנועה של העפעפיים, השפם, או עלייה ניכרת בנשימה, החיה אינה במישור כירורגי של הרדמה. |
| רפלקס קרנית | בעזרת אפליקטור עם קצה כותנה, יש לגעת בעדינות בקרנית (גלגל העין). | תגובה חיובית מסומנת על-ידי מצמוץ. אם יש תנועה של העפעפיים, השפם, או עלייה ניכרת בנשימה, החיה אינה נמצאת במישור עמוק מספיק של הרדמה כירורגית. |
טבלה 1. שיטות גירוי פיזי להערכת עומק הרדמה. 2
אינדיקטורים פיזיולוגיים כגון קצב הלב, קצב הנשימה, לחץ דם, צבע רירי, וזמן מילוי נימי יש להשתמש גם. בעוד תצפיות כלליות יכולות להיות שימושיות כדי לזהות שינויים בקצב הנשימה של בעלי החיים, כדי לנצל את קצב הלב, או לחץ דם להערכת עומק, ציוד מיוחד נדרש. אם אלקטרוקרדיוגרפיה זמינה, ניתן למדוד את קצב פעימות הלב ואת חוזק פעימות הלב. למדידת לחץ הדם, ישנם מגוון מכשירים המותקנים על הזנב או אפילו על כל הגוף. גירויים פיזיים כמתואר בטבלה 1 יגרמו לעלייה בכל שלושת הפרמטרים הללו.
צבע הקרומים הריריים, העיניים, האוזניים, הפה, האף, פי הטבעת, ובמידה פחותה - כפות הרגליים והזנב נצפים לשינויים. האזורים צריכים להיות ורודים, מה שמצביע על נשימה נאותה ותפקוד לב. כאשר החיה עוברת להרדמה בשלב 4, הנשימה מפסיקה, וכתוצאה מכך ציאנוזיס - המצוין על ידי צבע כחול או אפור - אל הריריות והעור שמסביב.
זמן מילוי נימי מוגדר ככמות הזמן שנדרש לצבע לחזור למיטה נימית חיצונית לאחר שהוא כבר blanched על ידי היישום של לחץ על האזור. מקל אפליקטור או אצבע נלחצים על החניכיים, הפינה או מיטות הציפורן של בעלי החיים המרדימים. מספר השניות שלוקח לאזור הלוהט לחזור לצבע ורוד לא צריך להיות יותר מ 1-2 שניות. זמן מילוי מורחב מצביע על ירידה בקצב הלב או בכוח של התכווצויות לב, מה שמצביע על כך שבעל החיים עשוי להיות מרדים מדי וכמעט מוות.
חשוב לנצל מספר פרמטרים שונים להערכת עומק הרדמה. שימוש באותה בוהן או אוזן לצביטות חוזרות ונשנות יפחית את הרגישות של האזור, והתגובה תודחק ולא תיתן הערכה מדויקת של עומק ההרדמה. השתמש באתרים חלופיים להערכות צביטת בוהן ואוזן. יש להעריך מחדש את עומק ההרדמה כל 10-30 דקות לאורך כל הניתוח. 2
מחקרים הראו כי ישנם שינויים cardiorespiratory בחיה מרדים. בעוד מורדם עם תרופות להזרקה, בעלי החיים חווים שיעור נשימה יציב; עם זאת, הם מדגימים שונות בתפוקת הלב. התגובה להרדמה להזרקה דווחה להשתנות מאוד בין זנים שונים, ולכן קשה לתקנן את המינון. 7 סוכני משאף נוטים להפחית את קצב הנשימה אך יש להם השפעה פחותה על מערכת הלב וכלי הדם. כמו המינון של הרדמה משאף מותאם בקלות לאורך כל ההליך, זה לעתים קרובות השיטה המועדפת.
השראת הרדמה ותחזוקה מהווים מרכיב בלתי נפרד מהטיפול הווטרינרי בחיות מעבדה העוברות כל סוג של הליך כירורגי. מטרת ההרדמה היא לשתק את בעל החיים בצורה נאותה ולהקל על כל תחושות הכאב. בנוסף לזירוז, נדרש ניטור מדויק ומתמיד כדי לשמור בבטחה על עומק ההרדמה הנכון לאורך כל ההליך.
בסרטון זה, נדון תחילה בקצרה ברמות הרדמת המכרסמים ובאיזה שלב יש לשאוף להשיג. לאחר מכן, נסקור את שיטות האינדוקציה והתחזוקה השונות, דרכים שונות להבטיח שהחיה תמיד נמצאת בשלב ההרדמה הרצוי, ולבסוף כמה ניסויים בעולם האמיתי הכוללים שימוש בחומרי הרדמה שונים למטרות מגוונות.
נתחיל בדיון ברמות. ישנם ארבעה שלבים של הרדמה וארבעה מישורים בשלב השלישי או השלב הכירורגי.
במהלך השלב הראשון, החיה נעשית מבולבלת. שלב שני מסומן בקצב נשימה לא סדיר ואובדן רפלקס הימני. במישור הראשון של השלב השלישי, רפלקסי הפלפברל והבליעה נעדרים. במהלך המישור השני, הרפלקסים של הגרון והקרנית הולכים לאיבוד. עד לנקודה זו, חומר ההרדמה לא גרם לאמנזיה או לשיכוך כאבים.
במישור השלישי האמנזיה ושיכוך הכאבים מתקדמים מחלקית למלאה, והחיה מורדמת לחלוטין להליך כירורגי. מישור שלישי מסומן גם על ידי שיתוק של השרירים הבין-צלעיים, מה שמביא לנשימה סרעפתית שהיא נשימה רדודה. במישור הרביעי, החיה קיבלה מנת יתר ויכולה להתקדם במהירות לשלב הרביעי, שבו יש שיתוק מוחלט של השרירים הבין-צלעיים והסרעפת, מה שעלול לגרום לדום נשימה, ובסופו של דבר להוביל למוות.
חומרי הרדמה זמינים כמשאף או בהזרקה, ועל הווטרינר להחליט במה להשתמש כדי לבצע את ההליך. בחירה זו מבוססת על היבטים רבים כולל: היקף ומשך ההליך, המין והזן, הגיל והמצב הפיזיולוגי של בעל החיים.
קבוצת חומרי ההרדמה הנדיפים הנפוצים כוללת תרכובות כמו איזופלורן, סבופלורן ודספלורן. תרכובות אלו מאפשרות שליטה קלה בעומק ההרדמה. ישנן מספר אפשרויות בציוד שניתן לבחור מהן למתן חומרי הרדמה נדיפים.
אחת האפשרויות היא צנצנת פעמון, שיש להשתמש בה מתחת למכסה המנוע - ולא על הספסל - כדי למנוע חשיפה של אנשי צוות לגזי ההרדמה. הרכיבו את הצנצנת עם פלטפורמה מחוררת קרמיקה או פלסטיק היוצרת רווח בין תחתית הצנצנת לפלטפורמה. לאחר מכן, תוך כדי לבישת כפפות אטומות, יש להרוות צמר גפן בחומר הרדמה ולהניח אותו מתחת לפלטפורמה כך שינוח בתחתית הצנצנת. לאחר מכן אבטח מיד את המכסה כדי למנוע בריחה של אדי ההרדמה. כדי למקם את החיה, החלק את המכסה לצד אחד, הכנס את החיה ואבטח אותה מיד. לאחר מכן, התבונן בפעילות ובנשימות כדי לקבוע את עומק ההרדמה, וחשוף את החיה למשאף להשפעה. שימו לב שהפלטפורמה משמשת כמחסום ומונעת מבעל החיים לבוא במגע ישיר עם חומר ההרדמה הנוזלי.
אלטרנטיבה לצנצנת הפעמון היא תא אינדוקציה המשמש בשילוב עם מכונת אידוי מדויקת המחוברת למיכל חמצן. השלב הראשון הוא לוודא כי הוופורייזר מלא בכמות מתאימה של חומר ההרדמה הנוזלי. לאחר מכן, בדוק את מערכת פינוי גז הפסולת. אם זו המערכת הפסיבית הנפוצה, שקול את המיכל כדי לקבוע אם הוא עדיין יעיל. בדרך כלל עלייה של חמישים גרם מעל המשקל ההתחלתי היא הנקודה שבה מוציאים את המיכל. השלב הבא הוא הרכבת תא האינדוקציה. ודא שהקלט הוא מהוופורייזר והפלט הוא למערכת ניקוי גזי הפסולת.
כדי להתחיל, הכנס את החיה לתא האינדוקציה ואבטח את המכסה. ברגע שהחיה נמצאת בתא, התחל תחילה את זרימת החמצן בקצב של 1 ליטר לדקה, ולאחר מכן התאם את הגדרת האידוי המדויקת לרמת אינדוקציה של 3-4% לאיזופלורן. כמו צנצנת פעמון, חשוף את החיה לחומר ההרדמה כדי להשפיע עליה. לאחר שהחיה מורדמת לחלוטין, שטפו את החדר בחמצן על ידי כיבוי האיזופלורן לפני הוצאת החיה. זאת כדי למנוע חשיפת כוח אדם לגזי הרדמה.
שיטה נוספת לזירוז הרדמה היא באמצעות חרוט אף או מסכת פנים המחוברת גם למכשיר האידוי המדויק. עם זאת, מכיוון שלגזי הרדמה יש ריח לא נעים, בעלי חיים עשויים להתנגד למסכה לצורך אינדוקציה. בנוסף, קיים גם סיכון לגרום לחנק בגלל אחיזה חזקה מדי. לכן, השיטה המועדפת היא להשתמש בקופסת האינדוקציה או בצנצנת הפעמון כדי לגרום להרדמה ואחריה תחזוקה עם חרוט האף. לעתים קרובות יותר מאשר לא, ההרכבה היא כזו שהחרוט ותא האינדוקציה מחוברים שניהם לאותו וופורייזר עם מתג ביניהם כדי להעביר את אספקת אדי ההרדמה מתא האינדוקציה לחרוט האף ולהיפך. לאחר הרדמת החיה בתא, אבטח את פניה בקונוס, והחלף את המתג על הצינור כדי להפנות את זרימת הגז לחרוט האף. עקוב אחר הנשימה ולאחר שווידאתם שהחיה רגועה, הפחיתו את חומר ההרדמה לרמת תחזוקה של 0.5 - 1.5%. כמו כן, יש למרוח משחה עיניים על העיניים למניעת ייבוש הקרנית.
להרדמה בהזרקה, תערובת של קטמין ותרופות הרגעה אחרות או מרפי שרירים כולל קסילזין ו/או אצפרומזין. ניתן להכין שילובים שונים באמצעות תרכובות אלה. ראה טקסט למטה ליחסים נפוצים. שימו לב שקטמין הוא חומר מבוקר ולכן יש לציין את הכמות המשמשת ביומן התרופות המבוקרות ולתערובות חייבים להיות יומני החומרים המבוקרים האישיים שלהם. בהתאם למין, לגיל ולמצב הבריאותי של החיה, נבחרים התערובת ומינון חומר ההרדמה וניתן להזריק את התמיסה תוך צפקית או תוך שרירית. בדרך כלל, חומרי הרדמה בהזרקה ובשאיפה משמשים בשילוב להשגת הרדמה כירורגית.
כעת, כשאתם יודעים כיצד לגרום להרדמה, בואו ללמוד על הערכת עומק הרדמה, שחשוב לעקוב אחריה כל 10-30 דקות כדי להבטיח שהחיה לא תיפגע במהלך ההליך. ישנן מספר שיטות לעשות זאת במכרסמים.
שיטה נפוצה היא צביטת הבוהן. האריכו את רגל החיה ובודדו את הרצועה בין אצבעות הרגליים. לאחר מכן צבט בחוזקה את האזור באמצעות הציפורניים או מלקחיים אטראומטיים. רפלקס חיובי מסומן על ידי נסיגת הרגל או נסיגת כף הרגל. שיטה נוספת היא צביטת הזנב המתבצעת בקצה הזנב. תגובה חיובית מודגמת על ידי עוויתות או תנועת זנב. אתה יכול גם לצבוט את קצה האפרכסת, ואם יש טלטול של הראש או תנועת השפם קדימה, אז החיה לא נמצאת במישור הכירורגי של ההרדמה.
כדי לבדוק את עומק ההרדמה, ניתן גם לגעת בקנטוס המדיאלי או בפינה הפנימית של העין כדי לעורר את רפלקס הפלפברל - המסומן על ידי מצמוץ בתגובה לנגיעה בעפעפיים. גם אם יש תנועה של העפעפיים, השפם או עלייה ניכרת בנשימות, החיה אינה נמצאת במישור הניתוחי של ההרדמה.
לבסוף, אפשר לבדוק את רפלקס הקרנית על ידי נגיעה בקרנית עם אצבע עטויה כפפה או אפליקטור עם קצה כותנה. תגובה חיובית מסומנת על ידי מצמוץ.
חשוב לעבור לסירוגין בין אתרים כדי להעריך את עומק ההרדמה. שימוש באותה בוהן או באוזן לצביטות חוזרות ונשנות יפחית את הרגישות של האזור והתגובה תדוכא ולא תיתן הערכה מדויקת של עומק ההרדמה.
בנוסף לשיטות ההערכה הללו של גירויים גופניים, יש לעקוב גם אחר האינדיקטורים הפיזיולוגיים כולל קצב הלב, קצב הנשימה, לחץ הדם, צבע הקרום הרירי וזמן מילוי הנימים. בעוד שתצפיות כלליות יכולות להיות שימושיות לאיתור שינויים בקצב הנשימה, כדי לנצל את הדופק להערכת עומק, ניתן להשתמש בציוד מיוחד כמו אלקטרוקרדיוגרף. למדידת לחץ הדם ישנם מגוון מכשירים הניתנים להתקנה מעל הזנב או אפילו על כל הגוף. צבע הריריות, העיניים, האוזניים, הפה, האף, פי הטבעת, הכפות והזנב יכול גם להצביע על עומק הרדמה. אזורים אלה צריכים להיות ורודים, מה שמרמז על נשימה וקצב לב נאותים.
כדי לבדוק את זמן מילוי הנימים, לחצו על האפרכסת של בעלי החיים המורדמים, וספרו את מספר השניות שלוקח לאזור המולבן לחזור לצבע ורוד. זה לא צריך להיות יותר מ -1 עד 2 שניות. זמן מילוי ממושך מרמז על ירידה בקצב הלב או בעוצמת התכווצות הלב, מה שמצביע על כך שהחיה עשויה להיות מורדמת עמוק מדי וקרובה למוות. לאחר הוצאת בעל החיים מההרדמה, אין להחזירם למתקן הדיור עד להתאוששות מההרדמה, אלא אם כן הם נמצאים במעקב רציף באזור הדיור.
כעת, לאחר שלמדנו את העקרונות והנהלים של השראת הרדמה ותחזוקה של מכרסמים, בואו נסתכל על כמה מהיישומים התכופים של חומרי הרדמה במחקר ביו-רפואי כיום.
ככל הנראה השימוש הנפוץ ביותר בהרדמת מכרסמים הוא לפני ובמהלך הניתוח. לדוגמה, כאן החוקרים רצו לפתח מודל של שבץ שנגרם על ידי היווצרות קרישי דם במוח. כדי להשיג זאת, הם גרמו להרדמה בעכברים ולאחר מכן קדחו את הגולגולת כדי ליצור חלון דק. ובזמן שהחיה עדיין הייתה מורדמת, מדענים אלה הזריקו צבע רגיש לאור למחזור הדם. לאחר מכן, הם גרמו לפוטו-אקטיבציה בעזרת לייזר דרך הגולגולת הקדוחה כדי לגרום להיווצרות קריש בכלי הדם של הגולגולת.
מקרה נוסף בו נדרשת הרדמת מכרסמים הוא לביצוע ניתוח פיזיולוגי. לדוגמה, מדענים משתמשים לעתים קרובות באלקטרודות א.ק.ג על חיות מורדמות כדי לנטר את פעילות הלב. או שהם משתמשים בבדיקות אולטרסאונד כדי לקבוע את קצב תנועת הסרעפת כדי לכמת בצורה מדויקת יותר את קצב הנשימה.
לבסוף, השימוש בהרדמה הוא חובה בעת ביצוע הישרדות בניסויי רחם. לדוגמה, באלקטרופורציה של הרחם - שיטה שבה מרדימים נקבה בהריון, מבצעים חתך כדי לחשוף את העוברים המתפתחים, ואלקטרודות משמשות כדי לגרום לספיגה תאית עוברית של החומר הגנטי המוזרק.
זה עתה צפיתם בסרטון של JoVE על ניהול ותחזוקה של הרדמה. מכיוון שהרדמת מכרסמים מאפשרת ביצוע של מגוון כה רחב של ניסויים ביולוגיים, הכרחי שכל מדען יהיה בעל המיומנות לגרום ולשמור על עומק ההרדמה הנכון לאורך כל הניסוי. כמו תמיד, תודה שצפית!
View the full transcript and gain access to JoVE Science Education videos
Q1: What are the four stages of anesthesia in rodents?
Stage one involves an increasing pain threshold with minimal behavioral changes. Stage two is characterized by disorientation and irregular breathing. Stage three, the surgical stage, has four planes where the animal progresses from loss of righting reflex to complete anesthesia suitable for surgery. Stage four represents overdose with complete paralysis, potentially leading to respiratory arrest and death.
Q2: How should you prepare equipment before inducing anesthesia with an inhalant anesthetic?
First, fill the precision vaporizer with appropriate liquid anesthetic. Check the waste gas scavenging system canister by weighing it; replace if it has increased fifty grams above starting weight. Assemble the induction chamber ensuring input connects from the vaporizer and output connects to the scavenging system. Verify all connections are secure before placing the animal in the chamber.
Q3: What is the preferred method for inducing anesthesia in rodents?
The preferred method is induction in a precision vaporizer-connected chamber at 3-5% isoflurane with 1 liter per minute oxygen flow. After the animal is fully anesthetized, flush the chamber with oxygen by turning off isoflurane before gently removing the animal. This reduces personnel exposure to anesthetic gases compared to using a nose cone or facemask, which animals may resist.
Q4: How do you assess anesthetic depth during a surgical procedure?
Assess anesthetic depth every 10-15 minutes using physical methods like toe pinch, tail pinch, or pinna pinch to check for withdrawal reflexes. Also evaluate the palpebral reflex by touching the medial canthus and the corneal reflex by touching the cornea. Monitor physiological indicators including heart rate, respiratory rate, blood pressure, mucous membrane color, and capillary refill time, which should not exceed 1-2 seconds.
Q5: What factors determine which anesthetic to use for a rodent procedure?
The choice of anesthetic depends on the extent and duration of the procedure, the species and strain, the animal's age, and its physiological status. Accurate body weight measurement is essential before anesthesia to ensure appropriate dose calculation, minimize overdose risk, and support animal welfare. Injectable anesthetics like ketamine combined with sedatives or muscle relaxers offer alternatives to inhalant compounds like isoflurane.
Q6: Why is thermal support necessary during rodent anesthesia?
Rodents are prone to hypothermia during anesthesia lasting longer than five minutes. Controlled thermal support is required to maintain body temperature and prevent overheating. Hypothermia can complicate recovery and compromise animal welfare. Temperature monitoring and appropriate heating devices should be used throughout the anesthetic procedure to maintain normal body temperature.
Q7: What should you do after anesthesia to ensure proper animal recovery?
Animals should recover in a controlled environment with thermal support and appropriate analgesia. Monitor animals continuously until they regain sternal recumbency, normal respiratory function, and appropriate responsiveness. Only fully recovered animals should be returned to their housing. Animals showing anesthetic complications like respiratory depression or delayed recovery require immediate humane intervention and veterinary consultation.
Chapters in this video
0:15
Overview
1:10
Levels of Anesthesia
2:49
Anesthesia Induction Procedures: Inhalation and Injection
8:25
Anesthetic Depth Assessment
11:55
Applications
13:34
Summary
Videos from this collection: