9 במרץ 2009
וידאו זה מראה כיצד morpholino או mRNA יהיה ניתן להזריק לתוך עוברי דג הזברה בשלב אחד התא כדי להגדיל או להקטין את רמת המוצרים גן מסוים במהלך ההתפתחות הבאים.
דגי זברה זכרים ונקבות מושבעים בכלוב גידול שבו ביצי הפירייה נופלות לתחתית, שם ניתן לאסוף אותן בקלות. לאחר מכן, הביצים מסדרות לצד של שקף מיקרוסקופ בתוך צלחת פטרי. לאחר מכן, קצה מחט ההזרקה הטעונה נגזז והגדרות ההזרקה מכווננות, כך שנפח ההזרקה (bolus) יהיה בגודל הרצוי כאשר הוא נמדד באמצעות מיקרומטר.
לבסוף, מזריקים את הביצים אחת אחת לאורך השורה. שלום, אני ג'ונתן רוזן ממעבדתו של ג'ון MA במחלקה לקרדיולוגיה בבית החולים לילדים בבוסטון. ואני מייקל סוויני, גם אני ממעבדת VY.
היום נדגים כיצד ניתן להזריק mRNA או morpholino לעוברים של דגי זב ocurrir. אנו משתמשים בהליך זה במעבדה שלנו כדי לחקור את ההשפעות של knockdown או ביטוי-יתר (overexpression) של תוצרי גנים ספציפיים. אז בואו נתחיל.
ראשית, נצטרך להכין את דגי השכסוכים ואת מיכלי הרבייה עם מחיצות במקומן בלילה שלפני ההזרקה, כדי להגדיל את סך ייצור הביצים. ניתן להגדיר את הדגים ביחס של שתי נקבות לזכר אחד, במידה ורצוי. למחרת בבוקר, לאחר הדלקת תאורת החדר, הוציאו את המחיצות ממספר מיכלים ואפשרו כ-20 דקות של זמן הזיווג ללא הפרעה. בעזרת מסננת, אספו את הביצים מכלובי הרבייה ושטפו אותן במי ביצים לפני מזיגתן לתוך צלחת פטרי.
באמצעות מים עם ביצים, ניתן לקבץ מחדש את הדגים במכלי תרבית גדולים יותר כדי להפיק סבבים נוספים של ביצים להזרקה. יש להתאים את תזמון איסוף הביצים כדי לאפשר הפקה של מספר הביצים המקסימלי, מבלי לתת להן לעבור את שלב התא הבודד. לבסוף, יש להניח זכוכית כיסוי של מיקרוסקופ במכסה ההפוך של צלחת פטרי בנפח 100 מילימטר.
השתמשו בפיפטת העברה כדי לסדר את הביצים בצמוד לדופן השريחה כך שייווצר טור יחיד, ולאחר מכן הסירו את עודפי מי הביצים מהשريחה על ידי לחיצת נייר Kim wipe לצד הנגדי לביצים. כעת, נכין את מחטי המיקרו-הזרקה באמצעות מותח קפילרות (micro pipette puller). נמתח קפילרה מזכוכית בעלת קוטר חיצוני של 1 mm לשתי מחטים ונשמור מחטים אלו בצלחת פטרי בקוטר 150 mm. ניתן למתוח את המחטים מראש על ידי הנחתן על גבי רמפות של silly putty.
אנו משתמשים בהגדרות הבאות. Heat 6 45 pole 60 velocity 80. טענו את הקצה הרחב של המחט עם שלושה µL של חומר ההזרקה באמצעות פפיפט טעינה מיקרוסקופית (micro loader pipette).
נער את הבולוס לכיוון חוד המחט עד שיישארו מעט בועות או שלא יישארו בועות כלל. כעת, נפעיל את מקור האוויר ואת המיקרו-מזרק. הכנס את המחט לתוך המיקרו-מזרק וודא שהיא אטומה היטב בתוך המארז.
בדקו שהמיקרו-מניפולטור נמצא במיקום נכון המאפשר טווח רחב של תנועה וכיוונון. הביאו את קצה המחט למישור הראייה של המיקרוסקופ. הרימו אותה מעל הבמה ומקדו את המיקרוסקופ על האזור הדק ביותר של הקצה.
השתמשו בזוג פינצטות חדות כדי לקטום את המחט בנקודה שתשאיר את המחט צרה מספיק כדי לחדור את ה-chorion והחלמון, אך עדיין מסוגלת להשריץ טיפה בגודל עקבי. כדי לחשב את הנפח של כל הזרקה, נשתמש בטיפת שמן מינרלי על מיקרומטר, נחדיר את המחט אל השמן ונלחץ על דוושת הרגל כדי להזריק טיפה של תמיסה לתוך השמן. עקבו אחר גודל הטיפה תוך כדי קיטום המחט וכיוון לחץ ההזרקה במידת הצורך בעת ההזרקה לשמן.
חריץ בעל קוטר של 0.1 מילימטר מכיל 500 picoliters של חומר הזרקה. בדרך כלל נעשה שימוש בנפחי הזרקה של 500 picoliters או ננוליטר אחד. נפחי הזרקה אידיאליים ימלאו כ-10% מנפח הביצה.
איכות חוד המחט היא קריטית הן לנוחות ההזרקה והן לאיכות ולעקביות של התוצאות. כעת הגיע הזמן להזריק כדי להתחיל בהליך ההזרקה. ודאו שהעוברים לא התפתחו מעבר לשלב ארבעת התאים.
רצוי שהעובר יהיה בשלב התא הבודד. לאחר מכן, הרד את המחט לעבר עמודת הביצים, חדר את פני השכבה החיצונית של ה-corion והחדר אותה אל תוך החלמון בתנועה חלקה אחת תוך כדי צפייה. בכל מקרה של מעיכה או קרע של שק החלמון, הזרק את חומר ההזרקה אל תוך החלמון.
הימנעו מהזרקת בועות אוויר והיו ערניים לעוברים שנפגעו באופן גלוי מההזרקה לאורך השורה. התאימו את הלחץ במידת הצורך כדי לשמור על גודל חרוז עקבי, ובעזרת טיפ של פיפטה, הסירו ביצים שנראות כבלתי מופרות או כאלו שנהרסו במהלך תהליך ההזרקה. לאחר השלמת עמודה של ביצים, השתמשו בזרם עדין של מי ביצים כדי להעביר את הביצים המוזרקות לכלי Petri נקי וחזרו על הפעולה לפי הצורך.
שמרו מספר עוברים שלא הוזרקו כביקורת. מאוחר יותר במהלך היום הראשון, הסירו עוברים מתים ורשמו את מספר העוברים שהוזרקו. החליפו את מי הביצים בצלחת מדי פעם כדי להפחית את הסיכון לזיהום.
שימו לב כי בהתאם לחומר המוזרק, עשוי להיות שיעור הישרדות נמוך יותר של העוברים בהשוואה לאחיהם שלא הוזרקו. למרבה המזל, קל להזריק מספרים גדולים מאוד של עוברים, ולכן הדבר כמעט ואינו מהווה בעיה. כעת נציג מספר תוצאות מייצגות הן של הזרקת morpho והן של mRNA.
הבקרה שלא הוזרקה בנקודת זמן של 48 שעות לאחר ההפריה נראית תקינה כצפוי. עם זאת, עוברים שהוזרקו עם ה-morpho HG E three i three eeg FFR one, המדכא איזופורמים של HG המכילים את הראשון מבין שני החזרות דמויי EEG, מראים בצקת מוחית; הזרקה של mRNA של heart glass הובילה גם היא לפנוטיפ ברור ב-24 שעות לאחר ההפריה.
הראשים של בישקרי הביקורת שלא הוזרקו נראו נורמליים. לעומת זאת, חלק מהעוברים שהוזרקו ב-M NNA הראו אופיאס (opia). הרגע הצגנו בפניכם כיצד הזרקה של מורפולינוס או mRNA במהלך שלב התא הבודד יכולה להגביר או להפחית את הביטוי של גנים ספציפיים במהלך התפתחות מאוחרת יותר. בעת ביצוע פרוצדורה זו, חשוב לזכור שגם.
ריכוז גבוה של mRNA או של morpho עלול לגרום לתמותה לא ספציפית בעוברים עם ה-morpho. יש לבחון כל אחד מהם באופן אמפירי, אך בדרך כלל ריכוזים שבין 200 ל-500 micromolar גורמים להשתקה (knockdown) ספציפית של פעילות הגן מבלי לגרום לתמותה כללית. וזהו.
תודה שצפיתם ובהצלחה בניסוייכם.
סרטון זה מדגים הזרקה של morpholino או mRNA לעוברים של דגי זברה (zebrafish) בשלב התא הבודד, לצורך מניפולציה של ביטוי גנים במהלך ההתפתחות.
מיקרו-הזרקה לעוברים של דגי זברה מאפשרת מודולציה מהירה ובקנה מידה רחב של ביטוי גנים לצורך תיקוף מטרות בשלבים מוקדמים של גילוי תרופות. הטכניקה תומכת בסריקת פנוטיפים בתפוקה גבוהה על ידי מתן אפשרות להשתקה (knockdown) או ביטוי יתר (overexpression) מדויקים של גנים ספציפיים, כדי להעריך השלכות פונקציונליות במערכת של בעלי חוליות. גישה זו מספקת ערך של הפחתת סיכונים מכניסטיים על ידי קישור הפרעה גנטית לפנוטיפים התפתחותיים ניתנים לצפייה, ובכך תורמת לביסוס הביטחון במטרה ולהחלטות לגבי תיעדוף תיק הפיתוח.
השיטה משתלבת ברצף הגילוי המוקדם, תומכת בתיקוף המטרה באמצעות הפרעה גנטית ומאפשרת מעבר לסריקה פנוטיפית וזיהוי מובילים כאשר הדבר נתמך בתוצאות ניתנות לצפייה התלויות במינון.