30 בנובמבר 2006
היכולת למדוד את הקינטיקה של שחרור שלפוחית יכול לעזור לספק תובנה כמה יסודות עצבית. כאן השתמשנו בזמן אמת הדמיה של שלפוחית שכותרתו עם צבע אדום ניאון FM 4-64 למדוד את קצב שחרור שלפוחית presynaptic בתרבויות נוירונים בהיפוקמפוס.
אני ג'ימי לין. אני סטודנט לתואר מתקדם בתוכנית לביולוגיה מולקולרית ותאית באוניברסיטת הרווארד. כעת אני עובד במעבדת מרפי, ובמעבדה אנו עובדים עם נוירונים מההיפוקמפוס.
כעת אראה לכם כיצד לבצע ניסויי FM d. כעת נמשיך ונקבע את זכוכית הכיסוי שעליה נמצאים נוירונים לתוך התא המעוצב במיוחד. המיקרוסקופ שלנו הוא מיקרוסקופ הפוך מסוג CC, D; וודאו שייבשתם היטב את החלק התחתון.
לא נחבר את האלקטרודות. לא. כעת מערכת הפרפוזיה מוכנה. אני אמקם אותה בקצה אחד של התא.
אנו משתמשים בחימר לצורך קיבוע. מובילי ה-HBS לכל ניסוי יוסיפו את כל המרכיבים הללו. מערך ההיתוך מוכן.
ניתן להשתמש בחימר כדי לקבע זאת במקומו, אני מניח בצורה כזו שיש בה גופי תא, כיוון שקממי גופי התא יספגו הרבה מהצבע ויהיו ממש בתוך הסינפסות. אולי באזור סמוך כמו כאן, שבו רק באזור הזה הייתי באופן מיידי ואנחנו ממשיכים. וכך מתבצע הפיגמנטציה הפוטוכימית הראשונית (photo bleaching) מתוך 10 התמונות הראשונות.
וכאן הגענו לשלב שבו, אני ג'מיל ניוטון. אני סטודנט לתואר שני בתוכנית לביולוגיה מולקולרית כאן בהרוורד. אני עובד כעת במעבדה למדעי המוח תחת הנחייתה של Vinky Murphy כחוקרת הראשית (pi).
והנושא עליו אני רוצה לדבר איתכם היום הוא ביצוע ניסויי FM. מהי המטרה של הניסוי שלכם? הדבר הנחמד ב-FM הוא ש-FM הוא צבע פלואורסצנטי המאפשר לנו לעקוב אחר הקינטיקה של האקסוציטוזה.
לכן, ראשית אנו מוודאים שהצבע נספג בסינפסה על ידי מתן גירוי טעינה. לאחר תקופת שטיפה, אנו נותנים גירוי שחרור שבו הצבע משתחרר מהשלחיתות. האם אתם עובדים על סוג ספציפי של נוירונים?
לכן, במעבדה שלנו, אנו משתמשים בשיטה זו עבור נוירונים של ההיפוקמפוס, ואנו משתמשים בה בנוירונים בתרבית ולא בליזיס. מהן הבעיות האפשריות בניסוי זה? חלק מהבעיות הנפוצות, במה שאנו משתמשים בו, הן סימולציה חשמלית.
לעיתים בעבר, מכל סיבה שהיא, היו בעיות בהפעלת הסימולציה החשמלית. ואני יודע שמעבדות אחרות משתמשות גם הן בתמיסת אשלגן בריכוז גבוה. לכן, תמיסת אשלגן בריכוז גבוה יכולה להוות חלופה טובה לשימוש בגירוי חשמלי במקרה של בעיות בגישה זו.
בנוסף, בדרך כלל, מסיבה כלשהי במהלך שלב השטיפה, נראה כי לא מתרחש שחרור מספיק של הצביעה הבלתי ספציפית. מצאתי לעיתים קרובות שרק על ידי הגדלת קצב הזרימה, כך שבמקום חצי ml נבצע 1.5 ml לדקה, ועל ידי הגדלת זמן השטיפה מחמש דקות לעשר דקות, התוצאות משתפרות באופן דרמטי. מהם היישומים האפשריים של ניסוי זה?
מה אתם בעצם רוצים לבדוק? ובכן, ניתן להשתמש בשיטה זו כדי לבחון תאי בקרה לעומת תאים שעברו מניפולציה כלשהי. לדוגמה, בקווי עכברים שונים, תוכלו לבדוק אם קינטיקת השחרור שונה באופן כלשהו, או לבדוק אם הוספה של תרופה מסוימת משפיעה בפועל על הציטוזיס.
תודה.
צפו בתמליל המלא וקבלו גישה לאלפי סרטונים מדעיים
מחקר זה מתמקד במדידת קינטיקת שחרורB של שלפוחיות על מנת להעמיק את ההבנה של התמסורת העצבית. באמצעות דימות בזמן אמת עם צבע FM 4-64, המחקר בוחן את קצבי שחרור שלפוחיות פרה-סינפטיות בתרביתי נוירונים של ההיפוקמפוס.
מדידה כמותית של אקסוציטוזה של שלפוחיות סינפטיות באמצעות סימון בצבע FM מספקת תובנות יישומיות לגבי מנגנוני שחרור מוליכים עצביים, ובכך תומכת בתיקוף מטרות בשלבים מוקדמים של גילוי תרופות הממוקדות בנוירוביולוגיה. גישה זו מאפשרת השוואה ישירה של קינטיקת שחרור השלפוחיות בין נוירונים שעברו מניפולציה גנטית או פרמקולוגית לבין ביקורות, ובכך תורמת להפחתת סיכונים מכניסטיים ולהגברת הביטחון החזוי בנקודת המפנה של הגילוי.
מדידת אקסוציטוזה מבוססת צבע FM משתלבת ברצף שבין הגילוי לשלב הפרה-קליני, ומגשרת בין מחקרים מכניסטיים מוקדמים לבין תיקוף תרגומי במערכות נוירונליות.