3 בדצמבר 2009
הסרטון מלווה מתאר את השימוש של מערכת GELFREE 8100 ההיפוך חלוקה, אשר מחיצות דגימות חלבון מורכב על בסיס משקל מולקולרי ומשחזרת את השברים בשלב נוזלי. הסרטון מתאר כיצד הטכנולוגיה עובדת, וכיצד נעשה בו שימוש, ומספק נתונים כתוצאה, עם ניתוח ג'ל אלקטרופורזה polyacrylamide של homogenate מופרדים בכבד בקר.
היי, שמי ג'יי הרקינס. אני מדען חוקר ב-Protein Discovery. היום אדגים כמה קל להשתמש במערכת 8,100 Fractionation החדשה ללא ג'ל כדי להשיג פיצול מבוסס משקל מולקולרי להתאוששות גבוהה.
באמצעות ג'ל ללא ג'ל, אתה יכול לטעון עד מיליגרם אחד של חלבון כולל לכל ערוץ, ולחלק באופן שחזורי עד שמונה דגימות תוך כ-90 דקות. אז המערכת כוללת מכשיר, מחסנית חד פעמית וכל המאגרים הדרושים לביצוע הניסוי. אז בואו נתחיל.
התחל הליך זה על ידי הגדרה ותיוג של עד שמונה צינורות של 500 מיקרוליטר לכל צינור. הוסף עד מיליגרם אחד של דגימת החלבון בנפח של עד 112 מיקרוליטר. כמות החלבון בדגימה תלויה במורכבות הדגימה.
עבור דגימות מורכבות יותר, כגון הומוגנאט הרקמה המשמש להדגמה זו, 150 עד 200 מיקרוגרם לערוץ יניבו את התוצאות הטובות ביותר. לאחר מכן, הוסף 30 מיקרוליטר של מאגר דגימה פי חמישה, המסופק בערכת המחסניות ללא ג'ל. לכל דגימת חלבון, הוסף שמונה מיקרוליטרים של DTT טוחנת אחת.
לאחר מכן התאם כל דגימה במים לנפח סופי של 150 מיקרוליטר. לאחר מכן מחממים את הבקבוקונים למשך חמש דקות בחום של 95 מעלות צלזיוס כדי לפגוע בדגימה. הניחו לדגימות המחוממות להתקרר לטמפרטורת החדר בזמן שהדגימה מתקררת.
הסר את מחסנית 8, 100 ללא ג'ל מנרתיק נייר הכסף. הסר והשליך את אוטם הצלחות. הסר את מאגר האחסון מתאי מיכל הדיו באמצעות פיפטה.
אם ייעשה שימוש בכל שמונת התאים של המחסנית, הפוך את המחסנית כדי לנקז את מאגר האחסון מהתאים. שמונה מיליליטר הבאים של מאגר ריצה ללא ג'ל מתווספים לכל אחד ממאגרי מאגר האנודה. שישה מיליליטר מתווספים לכל אחד ממאגרי חיץ הקתודה, ו-100 מיקרוליטר מוזרמים לכל אחד מתאי האיסוף.
בעזרת צינור שמונה תעלות של 100 עד 200 מיקרוליטר, הסר והשליך כל מאגר שזרם ממאגר חיץ הקתודה לתא טעינת הדגימה וטען מיד את הדגימות לתאי הטעינה. לאחר טעינת הדגימות, הנח את המחסנית בתחנת ההפרדה ללא ג'ל 8, 100. לאחר מכן הורד את מערכי האלקטרודות וסגור את המכסה באמצעות ממשק המשתמש הגרפי הקל לתכנות בתצוגת מסך המגע של המכשירים, עבור לרשימת השיטות הזמינות המתוכנתות מראש.
בחר את השיטה המתאימה על ידי לחיצה על כפתור השיטה. לחץ על כפתור האחזור והזן את מספר השיטה הרצויה שתוכנתה מראש באמצעות לוח המקשים שעל המסך לחץ על אישור. לאחר מכן לחץ על כפתור ההחלה.
השיטה שיושמה תופיע בתחתית המסך הראשי. כל אחת מהשיטות המתוכנתות מראש מורכבת ממתחים מוגדרים והפסקות מבוססות זמן שנועדו לפתור חלבונים בטווח מסוים של משקלים מולקולריים. לאחר בחירת השיטה המתאימה, לחץ על כפתור הערוץ במסך הראשי.
לאחר מכן בחר את הערוצים שישמשו בריצה. כדי לבחור את כל שמונת הערוצים, לחץ על בחר הכל. לאחר מכן לחץ על סיום.
כדי לחזור למסך הראשי, ודא שמכסה הבטיחות סגור ושנורית החיווי ירוקה בתחתית המסך. כעת לחץ על התחל כדי להתחיל את הניסוי בזמן שהמערכת פועלת, העיגולים המוצגים בתיבה בצד שמאל של המסך מתארים את המצב של כל ערוץ. עיגול ירוק מציין שהערוץ פעיל.
המתחים והזרמים המופעלים מוצגים מימין למעגלי מצב הערוץ. ה-8, 100 ללא ג'ל יושהה אוטומטית לאיסוף שברים במרווח שצוין בשיטה. כאשר המכשיר מושהה כדי לאסוף שברים, תופיע תיבת טקסט המודיעה לך שהתרחשה הפסקה ועיגולי הסטטוס יהפכו לצהובים.
בתוך המחסנית מופעל מתח קבוע בין מאגרי האנודה והקתודה. תחת פוטנציאל זה, תערובת החלבון מונעת אלקטרופורטית מתא הטעינה לתוך יציקת הדיוק שתוכננה במיוחד. חלבוני ג'ל נערמים תחילה בתוך פס חד בג'ל הערימה ולאחר מכן נפתרים על סמך המשקל המולקולרי שלהם בג'ל הפתרון.
כאשר חלבונים נפלטים מהג'ל, הם נלכדים ומרוכזים בשלב נוזלי. בתא האיסוף ללא ג'ל. לאחר מכן המכשיר מושהה.
בהתבסס על מרווחי זמן שנבחרו מראש, ושברים נאספים באמצעות פיפטה. ואז הפוטנציאל מופעל שוב כדי לרמוז ללכוד את חלק המשקל המולקולרי השני המעניין. לאחר מכן חוזרים על תהליך זה עד לאיסוף כל השברים הרצויים.
כל מחסנית מכילה שמונה ערוצים אלקטרופורטיים עצמאיים כך שהמשתמש יכול להפעיל כמה ערוצים שהוא צריך ולשמור את הערוצים שאינם בשימוש לשימוש במועד מאוחר יותר. כדי להסיר את השברים, פתח את מכסה המכשיר ולאחר מכן השתמש בפיפטה של התעלה המולדת. העבירו את 150 המיקרוליטר של הנוזל בכל אחד מתאי האיסוף לצינורות איסוף או לצלחת מרובת בארות.
לאחר הסרת השברים, שטפו את תא האיסוף פעמיים עם מאגר פועל ללא ג'ל על ידי הוספת 100 מיקרוליטר לתעלה ופיפטינג למעלה ולמטה פעמיים. לאחר הכביסה, הוסף 100 מיקרוליטר של מאגר רץ ללא ג'ל בחזרה לתאי האיסוף. סגור את המכסה ולחץ על כפתור קורות החיים.
ה-8, 100 ללא ג'ל יפעל עד מרווח הזמן הבא. הזמן הכולל שנותר בניסוי מוצג בצד ימין של המסך. לחץ על הכפתור מעל התיבה המציג את הזמן כדי לעבור בין הזמן שנותר, הזמן שחלף לזמן ההפסקה.
לאחר איסוף כל השברים, ניתן להשתמש בהם מיד להכנה נוספת במורד הזרם, כגון מיקוד איזואלקטרי או אלקטרופורזה של ג'ל או לניתוח באמצעות כרומטוגרפיה נוזלית, ספקטרומטריית מסה או זיקה חיסונית. בהדגמה זו, שמונה דגימות חלבון במשקל 200 מיקרוגרם כל אחת חולקו ל-12 שברים כל אחת בסך הכל 96 שברים. כדי להמחיש את תוצאות הפיצול והפיצול של כל אחד מ-12 השברים מכבד הבקר, דגימת הומוגנאט הופעלה לאחר מכן על ג'ל 1D סטנדרטי וצבוע בכסף.
כפי שמוצג באיור זה, דגימת החלבון חולקה ל-12 שברים נפרדים המשתרעים על טווח המשקל המולקולרי מ-3.5 קילודלטון ל-150 קילודלטון. הג'ל המוצג כאן מדגיש את היכולת של מערכת 8,100 ללא ג'ל לפירוק כמות גדולה של חלבון לשברי משקל מולקולרי נפרדים. זהו כלי רב עוצמה להפליא עבור פרוטאומיקה מלמעלה למטה ומלמטה למעלה באמצעות ספקטרומטריית מסה כמו גם ניסויי זיקה חיסונית שבהם נדרש שבר משקל מולקולרי שלם של חלבון מטוהר יחיד.
זה היה תענוג להראות לך כמה קל להשתמש במערכת הפיצול ללא ג'ל 8, 100 כדי לחלק את הדגימה שלך לשברי משקל מולקולרי נפרדים, ולהשיג התאוששות פאזה נוזלית גבוהה. אז זהו. תודה על הצפייה ובהצלחה בניסויים שלך.
סרטון זה מדגים את מערכת הפרקציונציה GELFREE 8100, המבצעת חלוקה יעילה של דגימות חלבון מורכבות על בסיס משקל מולקולרי. תהליך זה מאפשר השבה גבוהה של פרקציות במופע נוזלי, ובכך מקל על ניתוחים נוספים.
מערכת השבירה GELFREE 8100 מאפשרת הפרדת חלבונים המבוססת על משקל מולקולרי בשיעור התאוששות גבוה ובפאזה נוזלית, ובכך היא מבטלת שלבים התלויים בג'ל ומשפרת את השחזוריות. יכולת זו תומכת בתהליכי גילוי מוקדמים על ידי יצירת פראקציות מטוהרות לניתוחים פרוטאומיים המשכיים, ומפחיתה שונות טכנית בתהליכי תיקוף מטרות ובפיתוח בדיקות. תכנונה הרב-ערוצי המבוסס על מחסניות מאפשר עיבוד מקבילי של עד שמונה דגימות, ובכך הוא מגביר את התפוקה במאמצים לזיהוי מובילים (lead identification) ולהפחתת סיכונים מכניסטיים.
המערכת משתלבת ברצף הגילוי, החל מבדיקת היפותזות ועד לזיהוי מובילים (leads), ומספקת תוצרי פרקציונציה המשמשים כתשומות לתהליכי עבודה של תיקוף אנליטי ותפקודי.