Name: החדרה ישירה של קנה הנשימה אל הריאות מומסים עכבר (וידאו) | JoVE Journal
Uploaded: 2010-08-29T17:00:00.000+00:00
Duration: 4 min 50 s
Description: למדו את שיטת ההחדרה הישירה לקנה הנשימה בעכברים לחקר פיזיולוגיה נשימתית ומחלות ריאה. פרוטוקול זה מאפשר מסירה ממוקדת של תרכובות לאזורי האלוולולים בריאות.

ai_agent_IP

ai_agent

maintenance

instantTrialDurationMinutes

isBiopharma

enableNewMyJoveSectionDesign

educationFeatures

seoMetaApi

ai_copilot_institution_blacklist

ai_chat_institution_blacklist

freeAccessWindow

ssoRoleCapture

scheduledMaintenanceBanner

joveLabsFeatures

disable_autoplay_for_bots

extended_trial_duration

5 minutes

עבודה זו נתמכה על ידי NIH K99 HL09222601 וה-S &amp; R קרן Ryaji פרס Uneo הוענק MNH.

1. הרדמה <ol style=";text-align:right;direction:rtl"><li style=";text-align:right;direction:rtl"> הרדמה עכברים עם isoflurane עשוי להקל על הטיפול בבעלי חיים באיפוק לפני מתן הרדמה intraperitaneally. באמצעות הרדמה נשאפים עשויה או לא עשויה להיות מתאים מחקר מסוים: לקבוע תחילה את ההשפעה של שימוש isoflurane, או כל חומר הרדמה אחר, על מחקר ריאות המוצע. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> להרדים חיות עם isoflurane. הוידאו מציג את השימוש של החדר מאדה isoflurane להגדיר 2% isoflurane מעורבב עם חמצן. אם אין לך תא isoflurane, אתה יכול לחילופין באמצעות תקן פתוח ושחרר טכניקות חשיפה. הקף חולדות בתוך צנצנת פעמון (או מיכל מתאים אחר שאינו נקבובי) עם רשת תיל מצויד לתחתית. כדי פד גזה ממוקם מתחת לחוטי רשת, להחיל תערובת של 30% v / v isoflurane ב פרופילן גליקול. השימוש הרשת מבטיחה כי החיה לא באה במגע עם כרית isoflurane ספוג, אשר יכול לגרום לגירוי העור ממנת יתר פוטנציאליים. לאחר חשיפה קצרה isoflurane, החיה צריכה להיות מורדמים ולא יגיב עם רפלקס ליישר צנצנת כאשר הוא מוטה ולא יגיב לאחר קמצוץ הבוהן. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> עכברים רגועים נוסף עם הזרקה תוך פריטוניאלית תערובת של Xylazine ו קטמין. (זה תרגול טוב בעת ביצוע זריקות intraperitoneal לסגת על מנת להבטיח כי חלקים במעי או איברים חיוניים אחרים לא היו חדרה). מערבבים 150 Xylazine μL (100 מ"ג / מ"ל) עם קטמין 1000 μL (100 מ"ג / מ"ל) ב μL 8850 של פוספט סטרילי 0.9% בופר סליין (PBS). עבור עכברים, המינון יהיה כ 80 μL לכל 10 גרם של משקל גוף. הריכוזים הסופי יהיה 10 מ"ג / ק"ג Xylazine ו 100 מ"ג / ק"ג קטמין. החיות צריך להישמר יבש מבודדים כדי למנוע איבוד יתר של חום הגוף. משחת עיניים יכול להיות מיושם על העיניים כדי למנוע התייבשות של הקרניות. </li></ol> 2. הכנת שטח כירורגי <ol style=";text-align:right;direction:rtl"><li style=";text-align:right;direction:rtl"> גילוח האזור שבו חתך ניתוחי ייעשה מונע זיהום בלתי prepped אזורים. מכונת גילוח חשמלית יכול לגלח את הפרווה מקרוב את החיה. האזור המגולח צריך להיות גדול יותר מאשר באתר החתך. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> בעקבות יישום של קרם להסרת שיער, כמו נאיר, תסיר את כל הפרווה הנותרים. למרוח שכבה עבה של קרם להסרת שיער לאזור כירורגית והשאירי למשך 3 דקות. למחות את פרווה קרם להסרת השיער במגבת לחה. אל תשאיר את קרם להסרת שיער על עודף של 10 דקות. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> שימוש באלכוהול 70% או פתרון חלופי לקרצף, בסביבה נקייה מחיידקים, כדי להכין את אזור הניתוח. </li></ol> 3. הליך כירורגי <ol style=";text-align:right;direction:rtl"><li style=";text-align:right;direction:rtl"> מקם את החיה הרדים ללוח כירורגית משופע, או לעמוד בזווית הרחקה. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> לעשות חתך קטן ליד ההיבט הקדמי של הצוואר (אזור הגרון). </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> לנתח משם את שרירי קנה הנשימה platysma הקדמי על מנת להמחיש גישה מצלצל קנה הנשימה. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> בדרך כלל, כרכים הזרקת intratracheal הם 3 גרם לכל μl של משקל (כ 30-75 נפח סופי μL). נהל את הכמות המתאימה של instillate באמצעות תת עורית 1mL (תת ש) מזרק עם מד 30, מחט 5/16-inch. הצד החזק שפוע מזרק מעלה במקביל קנה הנשימה, ואת להזריק נפח מלא instillate לתוך קנה הנשימה. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> חיה עלול להגיב על ידי מתנשם לאחר החדרה של המומס לתוך הריאות. הכירו את האוויר דרך המזרק והתבוננות אם לריאות להתרחב גם לאשר טכניקות אינטובציה מוצלחת. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> הסר את המזרק מתוך קנה הנשימה. </li></ol> 4. Sutures. <ol style=";text-align:right;direction:rtl"><li style=";text-align:right;direction:rtl"> אחוז swage של מחט (החלק העבה של המחט שבו חומר תפר מצורפת) עם בעל מחט. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> לחדור את העור עם קצה המחט על מ"מ 90 מעלות כ 1-3 זווית מהקצה של הפצע, בהתאם לעובי העור. תפוס את המחט לאחר היציאה במעבר אחד דרך רקמות. תפרים פשוטים, קשורה בנפרד, יהיה יעיל לסגור את הפצע. </li></ol> 5. בעלי חיים Recovery <ol style=";text-align:right;direction:rtl"><li style=";text-align:right;direction:rtl"> בעלי חיים צריך להחלים לחלוטין מן ההרדמה ועל הליך כירורגי לאחר 3-24 שעות. </li></ol> 6. נציג תוצאות החדרה Intratracheal של המתחם ניאון, Cy5.5 מצומדות כדי dextran, מראה החדרה מוצלחת של המתחם ניאון ריאות B6 העכבר (איור 1). צבע פלואורסצנטי מיועד בעיקר הריאות, והוא מופץ באופן שווה. אות פלורסנט במערכת העיכול מיד לאחר הניתוח עולה כי הוושט היה מחובר לצינורות בשוגג במהלך ההליך (איור 2). חוקרים יכולים גם לוודא משלוח ממוקד של תרכובות לתוך הריאות, ולבדוק חלוקת instillate, בעקבות הליך ידי ניפוח הריאות והכנת רקמת הריאה פרוסות (2, 3) או histolo קבועדגימות gical. <img src="/files/ftp_upload/1941/1941fig1.jpg" alt="איור 1" data-altupdatedat="1787634011000" data-alt="איור 1"> באיור 1. פלורסנט Cy5.5 אות שיתוף רשום עם תמונת רנטגן של ריאות עכבר החדירו בהצלחה. 1.4 מ"ג Cy5.5 dextran (בריכוז של 10 מיקרוגרם / μL) היה החדירו לתוך קנה הנשימה של הריאות B6 העכבר. Cy5.5 האות זוהה באמצעות עירור 675 ננומטר לסנן 695 פליטת לסנן ננומטר. <img src="/files/ftp_upload/1941/1941fig2.jpg" alt="איור 2" data-altupdatedat="1787634011000" data-alt="איור 2"> איור 2. משותף של אות אחת פלורסנט הראו עם כיסוי רנטגן עכבר החדירו גרוע. אינטובציה הולם של הוושט במהלך קנה הנשימה פרוטוקול תוצאות החדרה במשלוח Cy5.5 למעי.

<ol><li>Driscoll, K. E., Costa, D. L., Hatch, G., Henderson, R., Oberdorster, G., Salem, H., Schlesinger, R. B. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Intratracheal+instillation+as+an+exposure+technique+for+the+evaluation+of+respiratory+tract+toxicity%3A+uses+and+limitations%5BTitle%5D)+AND+%22Toxicol+Sci%22%5BJournal%5D)">Intratracheal instillation as an exposure technique for the evaluation of respiratory tract toxicity: uses and limitations.</a> Toxicol Sci. 55, 24-35 (2000).</li>
<li>Helms, M. N., Jain, L., Self, J. L., Eaton, D. C. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Redox+regulation+of+epithelial+sodium+channels+examined+in+alveolar+type+1+and+2+cells+patch-clamped+in+lung+slice+tissue%5BTitle%5D)+AND+%22J+Biol+Chem%22%5BJournal%5D)">Redox regulation of epithelial sodium channels examined in alveolar type 1 and 2 cells patch-clamped in lung slice tissue.</a> J Biol Chem. 283, 22875-22883 (2008).</li>
<li>Helms, M. N., Self, J., Bao, H. F., Job, L. C., Jain, L., Eaton, D. C. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Dopamine+activates+amiloride-sensitive+sodium+channels+in+alveolar+type+I+cells+in+lung+slice+preparations%5BTitle%5D)+AND+%22Am+J+Physiol+Lung+Cell+Mol+Physiol%22%5BJournal%5D)">Dopamine activates amiloride-sensitive sodium channels in alveolar type I cells in lung slice preparations.</a> Am J Physiol Lung Cell Mol Physiol. 291, L610-L618 (2006).</li>
<li>Iyer, S. S., Ramirez, A. M., Ritzenthaler, J. D., Torres-Gonzalez, E., Roser-Page, S., Mora, A. L., Brigham, K. L., Jones, D. P., Roman, J., Rojas, M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Oxidation+of+extracellular+cysteine%2Fcystine+redox+state+in+bleomycin-induced+lung+fibrosis%5BTitle%5D)+AND+%22Am+J+Physiol+Lung+Cell+Mol+Physiol%22%5BJournal%5D)">Oxidation of extracellular cysteine/cystine redox state in bleomycin-induced lung fibrosis.</a> Am J Physiol Lung Cell Mol Physiol. 296, L37-L45 (2009).</li>
<li>Li, T., Folkesson, H. G. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((RNA+interference+for+alpha-ENaC+inhibits+rat+lung+fluid+absorption+in+vivo%5BTitle%5D)+AND+%22Am+J+Physiol+Lung+Cell+Mol+Physiol%22%5BJournal%5D)">RNA interference for alpha-ENaC inhibits rat lung fluid absorption in vivo.</a> Am J Physiol Lung Cell Mol Physiol. 290, L649-L660 (2006).</li>
<li>Sager, T., Porter, D., Robinson, V., Lindsley, W., Schwegler-Berry, D., Castranova, V. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((An+improved+method+to+disperse+nanoparticles+for+in+vitro+and+in+vivo+investigation+of+toxicity%5BTitle%5D)+AND+%22Nanotoxicol%22%5BJournal%5D)">An improved method to disperse nanoparticles for in vitro and in vivo investigation of toxicity.</a> Nanotoxicol. 1, 118-129 (2007).</li>
<li>Xu, J., Gonzalez, E. T., Iyer, S. S., Mac, V., Mora, A. L., Sutliff, R. L., Reed, A., Brigham, K. L., Kelly, P., Rojas, M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Use+of+senescence-accelerated+mouse+model+in+bleomycin-induced+lung+injury+suggests+that+bone+marrow-derived+cells+can+alter+the+outcome+of+lung+injury+in+aged+mice%5BTitle%5D)+AND+%22J+Gerontol+A+Biol+Sci+Med+Sci%22%5BJournal%5D)">Use of senescence-accelerated mouse model in bleomycin-induced lung injury suggests that bone marrow-derived cells can alter the outcome of lung injury in aged mice.</a> J Gerontol A Biol Sci Med Sci. 64, 731-739 (2009).</li>
<li>Yeh, T. F., Lin, H. C., Chang, C. H., Wu, T. S., Su, B. H., Li, T. C., Pyati, S., Tsai, C. H. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Early+intratracheal+instillation+of+budesonide+using+surfactant+as+a+vehicle+to+prevent+chronic+lung+disease+in+preterm+infants%3A+a+pilot+study%5BTitle%5D)+AND+%22Pediatrics%22%5BJournal%5D)">Early intratracheal instillation of budesonide using surfactant as a vehicle to prevent chronic lung disease in preterm infants: a pilot study.</a> Pediatrics. 121, e1310-e1318 (2008).</li>
</ol>

Instillations Intratracheal שימשו מספר מחקרים שונים כדי להעריך את הרעילות של תרכובות מבחן (6), לגרום נזק ריאות מכתשיים (4, 7), להחליף חומרים פעילי שטח (8), כמו גם לשנות ביטוי גנים באמצעות מסירת oligonucleotides קטן ישירות לתוך ריאה (5). כרגע אנחנו בוחנים את השימוש של הקניית 1) חומר זרחני חיזור רגישה לתוך הריאות על מנת למדוד סטרס חמצוני in vivo בתנאים נורמליים pathophysiological, וכן 2) הקניית אינדיקטורים ניאון עם חומרים פרמקולוגיים, וקטורים DNA, וירוסים ו / או microRNA כדי להעריך ...

<table><tbody><tr><td>Isoflurane</td><td>Webster Veterinary</td><td>14043-220-05</td><td></td></tr><tr><td>Xylazine</td><td>Lloyd, Inc.</td><td></td><td>בקשה לתרופה חדשה לבעלי חיים #139-236</td></tr><tr><td>Ketamine</td><td>Bioniche Pharma</td><td>67457-001-10</td><td></td></tr><tr><td>Nair</td><td></td><td></td><td>זמין בבתי המרקחת</td></tr><tr><td>מזרק 1mL להזרקה תת-עורית</td><td>BD Biosciences</td><td>309597</td><td>26 5/8 G</td></tr><tr><td>חוט תפר ניילון 4-0</td><td>Ethicon Inc.</td><td>1894G.S30</td><td></td></tr></tbody></table>

החדרה ישירה של קנה הנשימה אל הריאות מומסים עכבר

Direct Tracheal Instillation of Solutes into Mouse Lung

Instillations Intratracheal לספק מומסים ישירות לריאות. הליך זה מטרות אספקת instillate לתוך אזורים דיסטלי של הריאה, ולכן שולבו לעתים קרובות במחקרים שמטרתם ללמוד alveoli. אנו מספקים הישרדות פרוטוקול מפורט לביצוע instillations intratracheal בעכברים. שימוש בגישה זו, ניתן למקד את המסירה של מומסים מבחן או מוצקים (כגון ריאות ותרופות, פעילי שטח, וירוסים oligonucleotides קטנים) לתוך הריאות דיסטלי. Instillations קנה הנשימה עשוי להיות מתודולוגיה מועדפת, על פרוטוקולים משאיפת שעשויים בעיקר היעד בדרכי הנשימה העליונות ואולי לחשוף את החוקר לחומרים העלולים להיות מסוכנים. בנוסף, באמצעות פרוטוקול החדרה קנה הנשימה, בעלי חיים יכולים להתאושש באופן מלא בהליך פולשני. זה מאפשר ביצוע מדידות פיזיולוגיות לאחר מכן על חיות הבדיקה, או התקנה מחדש באמצעות בעלי חיים זהה. כמות instillate שהוכנסו הריאה צריכה להיקבע בזהירות מאוזנת אוסמוטי על מנת להבטיח התאוששות של בעלי חיים. בדרך כלל, 30-75 נפח instillate μL יכול להיות מוחדר ריאות העכבר.

Instillations Intratracheal לספק מומסים ישירות לריאות. הליך זה מטרות אספקת instillate לתוך אזורים דיסטלי של הריאה, ולכן שולבו לעתים קרובות במחקרים שמטרתם ללמוד alveoli. אנו מספקים הישרדות פרוטוקול מפורט לביצוע instillations intratracheal בעכברים.

הזרקות תוך-קנה (Intratracheal instillations) מעבירות מומסים ישירות לריאות. הליך זה מכוון להחדרת החומר המוזרק אל האזורים הדיסטליים של ה...

בפרוצדורה זו, ניתן להחדיר מומסים ישירות לתוך הריאות. חשפו תחילה את הקנה. הסירו את הפרווה מהמכרסם הקטן ובצעו חתך קטן סמוך לחלק הקדמי של הצוואר.חשוף את הקנה. השתמש במחט תת-עורית של 1 ml כדי להחדיר 3 µL של תמיסה לגרם משקל גוף דרך הקנה. הסר את המזרק ותפר את הפצע.שלום, אני ד"ר Ma Helms מהמחלקה לפיזיולוגיה באוניברסיטת Emory. שלום, אני ד"ר Mauricio Rojas מהמחלקה לרפואה כאן באוניברסיטת Emory. היום נראה לכם פרוצדורה להחדרה ישירה של מומסים לחלקים הדיסטליים של הריאה.אנו משתמשים בפרוצדורה זו באופן שגרתי במעבדתי כדי לחקור את פינוי נוזלי הריאה בתגובה למספר תרכובות שונות שהוחדרו, ואנו משתמשים בטכניקה זו במעבדתי להשראת פגיעה ריאתית בעכבר זכר. החדרה ישירה של מומסים לריאות של מכרסמים קטנים עשויה להיות שימושית במחקריכם.בואו נתחיל. כהכנה לניתוח, העכבר הרדום בהתחלה באמצעות isof fluorine ולאחר מכן מרדימים אותו עוד יותר באמצעות הזרקה תוך-בטנית (intraperitoneal) של תערובת של xylazine ו-ketamine. בצעו צביטה של בהונות כדי לוודא שהבעל חיים מורדם לחלוטין.לאחר מכן, השתמשו במכונת גילוח חשמלית כדי לגלח את הפרווה מאזור הניתוח. כדי להסיר שיער שנותר, מרחו שכבה עבה של קרם להסרת שיער על אזור הניתוח. השאירו את קרם הסרת השיער למשך שלוש דקות, ולאחר מכן נגבו את הפרווה והקרם בעזרת מגבת לחה.נגב את אזור הניתוח עם 70% alcohol, ולאחריו עם Betadine surgical scrub. זאת כדי להכין את בעל החיים באופן אספטי. בעל החיים מוכן כעת לניתוח.כדי להתחיל בהליך של הזרקה תוך-קשקשית (intratracheal installation), מקמו את בעל החיים המורדם על לוח ניתוחים משופע. בצעו חתך קטן ליד ההיבט הקדמי של אזור הצוואר או הגרון. השתמשו בפינצטה כדי להסיט לאחור את שריר הפלטיסמה (platysma) ולאחר מכן בצעו חתך בשרירי הקנה הקדמיים.פעולה זו תאפשר לכם להדמות ולגשת לטבעות הקנה. לאחר חשיפת הקנה, מזריקו את הכמות המתאימה של החומר להחדרה באמצעות מזרק ומחט תת-עורית של 1 mL. החזיקו את המזרק כאשר צד השחוב (bevel) פונה כלפי מעלה ובמקביל לקנה, והזריקו את מלוא נפח החומר לתוך הקנה.נפח הזרקה תו-קשית טיפוסי הוא 3 µL לגרם ממשקל הגוף. הוצא את המזרק מהקנה. בעל החיים עשוי להגיב בנשימות קטועות (gasping) לאחר הזרקת התמיסה לריאות.החדרת אוויר באמצעות המזרק ובדיקה האם הריאות מתרחבות יאשרו גם הן כי האינטובציה הצליחה. סגרו את החתך באמצעות תפרי nylon 4-0. אחזו בבסיס המחט, בחלק העבה ביותר שבו מחובר חומר התפירה, בעזרת מחזיק מחטים; חדרו את העור באמצעות קצה המחט בזווית של 90 מעלות, במרחק של כ-1 עד 3 מילימטרים מקצה הפצע.בהתאם לעובי העור, אחזו במחט היוצאת לאחר מעבר אחד דרך הרקמה. תפריים פשוטים, שכל אחד מהם נקשר בנפרד, יסגרו ביעילות את הפצע; כאן מוצגות תוצאות מייצגות של הזרקות תוך-קשבעתיות. תמונה ראשונה זו מראה הזרקה מוצלחת של תרכובת פלואורסצנטית sci-fi 0.5 המשורשרת לדקסטרין בריאה של עכבר שחור שש.הרישום המשותף (co-registration) של אות ה-SCI 5.5 עם תמונת הרנטגן מאשר כי הצבע הפלואורסצנטי מופנה בעיקר לריאה ומפוזר באופן שווה מיד לאחר ההחדרה. לעומת זאת, תמונה שנייה זו מראה את התוצאה בעכבר שבו ההחדרה בוצעה באופן לקוי. האות הפלואורסצנטי בדרכי העיכול מיד לאחר הפרוצדורה מעיד על כך שהוושט הונבב בטעות במהלך התהליך.הראינו לכם כעת כיצד להחדיר מומסים באופן ישיר לחלקים הדיסטליים של הריאה. כאשר אתם מבצעים הליך זה או כל הליך אחר, חשוב לפעול לפי ההנחיות של המוסד שלכם לגבי שימוש בבעלי חיים במחקר. וזהו הכל.תודה שצפיתם ובהצלחה בניסויים שלכם.

direct-tracheal-instillation-of-solutes-into-mouse-lung

Research

JoVE Journal

Biology

ביולוגיה

אנו מדגימים לא ניתוחי מסירה של חומרי הבדיקה לריאות של העכברים הרדים דרך קנה הנשימה. שיטה זו מאפשרת חשיפה הריאות לפתוגנים, ציטוקינים חיידקים ווירוסים, נוגדנים, חרוזים, כימיקלים, או צבעים. בנוסף, אנו מתארים קציר ועיבוד של הריאות ניקוז ריאה בלוטות לימפה (LDLNs) עבור cytometry הזרימה.

לא ניתוחי Intratracheal החדרה של עכברים עם ניתוח ריאות וניקוז ריאות בלוטות הלימפה על ידי זרימת cytometry

סרטון זה מתאר שיטה פשוטה ואמינה להחדרת נוזלים לקנה הנשימה לצורך החדרת ריאות, קיבוע ומדידת נפח ריאה.

החדרת ריאות וקיבוע: החדרת נוזלים לקנה הנשימה ותיקון ריאות למדידת נפח הריאה הקבוע

השימוש במודל המחקה את המצב של מחלות ריאה בבני האדם הוא קריטי ללימוד הפתופיזיולוגיה ו / או אטיולוגיה של מחלה מסוימת ולפתח התערבות טיפולית. הנה שיטת אינטובציה intratracheal לא פולשנית שיכול ישירות לספק חומרים אקסוגניים לריאות עכבר מוצגת.

פולשנית Intratracheal אינטובציה ללמוד פתולוגיה והפיזיולוגיה של עכבר ריאות

intratracheal החדרת תיווך אינטובציה (IMIT) של חומרים כימיים היא שיטה מצוינת, לא פולשנית ללימוד מחלות בדרכי הנשימה, כמו גם שיטה להחדרת חומרים כימיים טיפוליים ישירות לתוך הריאות. זוהי שיטה מהירה ושחזור ביותר אשר מתאימה לניסויים פרה-קליניים.

Intratracheal החדרת תיווך אינטובציה (IMIT): מערכת לא פולשני, ריאות ספציפי משלוח

המטרה של מאמר זה היא לתאר שיטות פשוטות שיסייעו מאוד בהגדרה והניתוח של ריאות עכבר עם סרטן ריאות או פתולוגיות אחרות. אנו מציגים 3 פרוטוקולים פשוט ואמין לביצוע instillations ריאות, קיבעון, ומדידות נפח ריאות.

שיטות החדרה וקיבוע שימושיות בחקר סרטן ריאות עכבר

מאמר זה מציג שיטה מהירה ופשוטה לניהול בליאומיצין ישירות לתוך קנה הנשימה העכבר באמצעות אינטובציה. יתרונות עיקריים של שיטה זו הם כי הוא מאוד לשחזור, קל לשלוט, ואינו דורשים ציוד מיוחד או פעמי החלמה ממושכות.

שיטה משופרת עבור אינטובציה מהירה של קנה הנשימה של עכברים

Intratracheal (IT) המינהל של סוכנים ניסיוניים בעכברים לעתים קרובות מביא משלוח אסימטרי הריאות המרוחק.  בדוח זה, אנו מתארים גישה ישירה בלתי-מרורונצ'יאל (ליברות) כדי לאגור כל ריאה בעכברים חיים שאינם מבצעית.  גישה זו יכולה לשמש באופן סלקטיבי לניהול סוכנים לריאה אחת או להתאים כדי לשפר את מסירת הסוכן הסימטרי לשתי הריאות.

מינהל הארגון הישיר כדי לשפר את הסוכן הסלקטיבי התצהיר בתוך הריאה של העכבר

הציג כאן הוא צעד אחר צעד הליך כדי לגרום לפציעה ריאה חריפה בעכברים על ידי ישירה intratracheal ליפוסכאלפסיד ולבצע ניתוח FACS של דגימות דם, ברונמכתשי נוזל ששטיפה, ורקמות ריאות. מיניציה מינימלית, טיפול פשוט, תוכנות טובה, ו טיטור של חומרת המחלה הם יתרונות של גישה זו.

גרימת פציעה חריפה של הריאה בעכברים על ידי הישירה ליפופוליסכראסטיליאלגרלציה

טכניקה זו של החדרת תרופות ישירות לקנה הנשימה של מכרסמים יילודים חשובה לחקר ההשפעה של תרופות או ביולוגים מקומיים על מחלות ריאה בילודים. בנוסף, שיטה זו יכולה לשמש גם לגרימת פגיעה בריאה במודלים של בעלי חיים.

שיטה זעיר פולשנית להחדרת תרופות תוך-רחמיות במכרסמים יילודים לטיפול במחלות ריאה

כאן, אנו מציעים פרוטוקול להעברת ליפופוליסכריד תוך טרכאלי (LPS) באמצעות אינטובציה אנדוטרכאלית אורופרכאלית לא פולשנית. שיטה זו ממזערת את הטראומה של ההליך הכירורגי עבור החיה ומעבירה LPS מדויק לקנה הנשימה ולאחר מכן לריאות.

החדרת ליפופוליסכריד תוך טרכאלי לא פולשני בעכברים

פרוטוקול זה מציג כיצד מיקום אופטימלי של עכבר והחדרת אוטוסקופ מבוסס מצלמה באופן טרנסאורלי מאפשר הדמיה של הגלוטיס, אינטובציה מהירה עם טראומה מינימלית לרקמות ואספקת נוזלים עקבית לריאות.

מתודולוגיה משופרת לאספקת נוזלים לריאת העכבר: אינטובציה באמצעות אוטוסקופ צרכני

למדו את שיטת ההחדרה הישירה לקנה הנשימה בעכברים לחקר פיזיולוגיה נשימתית ומחלות ריאה. פרוטוקול זה מאפשר מסירה ממוקדת של תרכובות לאזורי האלוולולים בריאות.

החדרה ישירה של קנה הנשימה אל הריאות מומסים עכבר

גלה סרטונים נוספים