JoVE Encyclopedia of Experiments
ביולוגיה
0 צפיות • 3:42 דק' • April 30th, 2023
- התחילו בהנחת תא הקלטה המכיל דגימה בתמיסת אמבטיה, שהרכבה תואם את הסביבה החוץ-תאית הפיזיולוגית או את הציטופלסמה, על במת מיקרוסקופ. הקדמו את מיקרופיפטת ההקלטה, פיפטה המכילה אלקטרודה כסופה שטופה בתמיסת אלקטרוליטים, המחקה את התנאים התוך-תאיים, לכיוון תא העצב על ידי הפעלת לחץ חיובי, וצרו מגע עם קרום התא.
עברו בעדינות מלחץ חיובי לשלילי כדי ליצור אטימה הדוקה בין הממברנה לבין הפיפטה. הגדר פוטנציאל אחיזה על המגבר כדי לשמור על התא במתח קבוע. לאחר מכן קרע את קרום התא בתוך micropipette על ידי החלת יניקה.
ברגע שקרום התא נקרע, פוטנציאל האחיזה גורם לזרימת יונים דרך תעלות יונים מגודרות מתח, ויוצר פוטנציאל ממברנה, אשר נרשם על ידי אלקטרודת ההקלטה. מיד לרשום את פוטנציאל הממברנה. אלקטרודת ההקלטה מעבירה את האות למגבר המשוב, אשר מפחית את פוטנציאל הממברנה מפוטנציאל ההחזקה - אוסצילוסקופ, המציג תצוגה חזותית של פוטנציאל הממברנה, ומחשב. בפרוטוקול הבא נבצע מדידת מהדק טלאי על תא מאוטנר בעובר דג זברה.
- כדי להתכונן להידוק טלאי, התחילו במשיכת כמה פיפטות מהדק טלאי עם זכוכית בורוסיליקט בעלת דופן דקה במושך אופקי. קוטר קצה הפיפט הוא כ-0.2 עד 0.4 מיקרומטר לאחר ליטוש האש לקצה חלק, ואורכו של טייפר השוק הוא כ-4 מילימטרים.
מלאו את קצה הפיפטה בתמיסה תוך-תאית על ידי טבילת הקצה בנוזל התוך-תאי. לאחר מכן הכנס מחט מזרק לתוך פיפטה בעדינות לגרש פתרון תאית מן המזרק כדי לסיים מילוי פיפטה. חבר את הפיפטה לשלב ראש המגבר במערך האלקטרופיזיולוגיה. חשוב לשמור על שלב הראש בזווית של כ-45 מעלות לציר האופקי, שכן הדבר מבטיח זווית כניסה לפיפטה המתאימה להיווצרות אטמים בעלי התנגדות גבוהה עם תא מאוטנר.
ממש לפני שהפיפטה יורדת לתמיסת האמבטיה, הפעילו כמות קטנה של לחץ חיובי על הפיפטה כדי להפחית את הסיכוי לחסימת החוד. המשך להתקרב לתא M עם כמות קטנה של לחץ חיובי בפיפטה. הלחץ החיובי דוחף בעדינות את התא מצד לצד, וכאשר הוא ממוקם מיד מעל התא, יוצר גומה קטנה על קרום התא.
עכשיו, להשאיר פיפטה במקום במשך כמה שניות כדי לנקות בעדינות את פני התא, כך אטם חזק בין פיפטה לבין הממברנה יכול להיווצר. לאחר מכן שחררו את הלחץ החיובי בפיפטה כדי ליזום את החותם. כמות קטנה של לחץ שלילי, יחד עם פוטנציאל פיפטה שלילי, גורמת להיווצרות אטמי ג'יגה-אוהם תוך מספר שניות.
לאחר מכן, לשנות את פוטנציאל ההחזקה במגבר למינוס 60 מיליוולט. קרע את קרום התא עם סדרה של פולסים קצרים של יניקה. לאחר מכן רשום מיד פוטנציאלים של קרום ומזער את ממצאי הקיבול. פיצוי על קיבול התא והתנגדות הגישה ב-70% עד 85%.
ישלעקוב אחר התנגדות הגישה כל 30 שניות עד דקה, ואם יש שינוי של 20% או יותר, לבטל את הניסוי. לאחר שהניסוי הסתיים והושגו מספיק נתונים, הקריבו את העובר על ידי הסרת המוח האחורי עם זוג מלקחיים.
מאמר זה מפרט את הפרוטוקול לביצוע מדידות patch clamp בתא Mauthner בעובר של דג זבוב. הוא סוקר את ההכנות והשלבים הדרושים להשגת חתימות בעלות התנגדות גבוהה (high resistance seals) והקלטות מדויקות של פוטנציאל ממברנה.
אלקטרופיזיולוגיה בשיטת patch clamp של תא שלם מאפשרת מדידה ישירה של פעילות חשמלית נוירונלית, ומספקת נתונים קריטיים לתיקוף מטרות (target validation) בתהליכי גילוי תרופות למערכת העצבים. באמצעות כימות תפקוד תעלות יונים ועירור ממברנה במודלים נוירונליים הרלוונטיים למחלה, שיטה זו תומכת בהסרת סיכונים מכניסטיים (mechanistic de-risking) של היפותזות טיפוליות בשלב מוקדם של תהליך הגילוי. יישומה בעוברים של דגי זברה מציעה מערכת ניתנת להרחבה וניתנת לבינוי גנטי להערכה פרה-קלינית של מטרות ולהתאמה של סממנים ביולוגיים.
שיטה זו משתלבת ברצף הגילוי, החל מתיקוף מטרות ראשוני, דרך זיהוי מובילים ועד למחקרים פרה-קליניים, ובמיוחד עבור פורטפוליוים המתמקדים במערכת העצבים המרכזית (CNS) הדורשים נתונים תפקודיים של נוירונים.
סרטונים קשורים
0 צפיות
סרטונים קשורים
0 צפיות
סרטונים קשורים
0 צפיות
סרטונים קשורים
0 צפיות
סרטונים קשורים
0 צפיות
סרטונים קשורים
0 צפיות
סרטונים קשורים
0 צפיות
סרטונים קשורים
0 צפיות
סרטונים קשורים
0 צפיות
סרטונים קשורים
0 צפיות
עודכן לאחרונה: 29 אוגוסט 2026