Name: שמירה ב Wolbachia בינוני סלולרי חינם (וידאו) | JoVE Journal
Uploaded: 2007-07-04T00:00:00.000+00:00
Duration: 13 min 33 s
Description: למד שיטה לטיהור Wolbachia pipientis מתאי Anopheles gambiae וגידול החיידק בתרחיף נטול תאים. הפרוטוקול כולל שבירת ממברנות בתהליך ליזה בחלוקי זכוכית, סרכוז דיפרנציאלי וסינון להפרדת החיידקים משיירי התאים.

ai_agent_IP

ai_agent

maintenance

instantTrialDurationMinutes

isBiopharma

enableNewMyJoveSectionDesign

educationFeatures

seoMetaApi

ai_copilot_institution_blacklist

ai_chat_institution_blacklist

freeAccessWindow

ssoRoleCapture

scheduledMaintenanceBanner

joveLabsFeatures

disable_autoplay_for_bots

extended_trial_duration

5 minutes

למחברים אין ניגודי אינטרסים להצהיר עליהם.

שמירה ב wolbachia בינוני סלולרי חינם

Maintaining Wolbachia in Cell-free Medium

בפרוטוקול זה וידאו, נהלים הם הפגינו (1) לטהר symbionts Wolbachia מתוך תאים בתרבית יתושים, (2) להשתמש assay ניאון כדי לברר את הכדאיות של Wolbachia מטוהרים (3) לשמור על Wolbachia תאיים כעת בינוני התא ללא . מטוהרים Wolbachia להישאר בחיים בשלב תאיים, אבל לא עד לשכפל מחדש מחוסן לתוך התאים האיקריוטים. Wolbachia תאיים מטוהרים בצורה זו תישאר בת קיימא במשך שבוע לפחות בטמפרטורת החדר, ואולי יותר. מטוהרים Wolbachia מתאימים מיקרו הזרקה, מיצוי DNA ויישומים אחרים.

וידאו זה מתאר שיטה לטיהור Wolbachia pipientis מקו תא אנופלס gambiae ואז culturing endosymbiont במדיום הסלולרי חינם. Assay עבור הכדאיות של החיידק הוא הוכיח.

שמירה ב Wolbachia בינוני סלולרי חינם

בפרוטוקול וידאו זה, מודגמים הליכים ל-(1) ניקוי סימביונטים של Wolbachia מתאי יתושים בתרבית, (2) שימוש במבחן פלואורסצנציה כדי...

שמי קורטני סטון. אני עובדת בבית הספר לבריאות הציבור בלומברג של ג'ונס הופקינס במעבדתו של ד"ר ג'ייסון רסקון. היום נבצע טיהור חיידקים מתאי חרקים מתורבתים.זהו למעשה הליך פשוט מאוד. אנו מתחילים באיסוף התאים ולאחר מכן מבצעים פירוק פיזי של ממברנות התאי המארח האיקריוטי באמצעות ליזיס של חרוזי זכוכית. לאחר מכן, אנו משתמשים בצנטריפוגציה דיפרנציאלית כדי להפריד את החיידקים משאריות התאי המארח.לאחר מכן אנו משתמשים בסדרה של שלבי סינון כדי להסיר עוד יותר חלקיקי תאי מאכסן, כך שבסוף נותרים רק עם המשקע הבקטריאלי המטוהיר. זהו למעשה אחד הדרישות המרכזיות. זוהי תא מטורית לתרביות תאים, והיא משמשת לשמירה על סטריליות של כל התהליך, כיוון שתרביות תאים נדבקות לזיהומים בקלות רבה.אנחנו זקוקים גם למצע גידול תאים, לתאים עצמם, ואנו מגדלים אותם בבקבוקי פלסטיק. נזדקק גם לחרוזי טחינה של 3 mm, למבחנות קוניות של 50 ml, ולצנטריפוגה המסוגלת לבצע סבוב במהירות גבוהה, כ-18,000 G כדי לשקע את החיידקים שלנו, אך מסוגלת גם לבצע סבוב של כ-3,000 G או 2,500 G כדי לשקע את תאי המאכסן שלנו. לכן, הדבר הראשון שנעשה הוא להתחיל עם התאים שגידלנו.הם גדלו, נכון? אלו בקבוקי T 75. יש בהם 15 mls של מצע תרבית וגם אותנו.הדבר הראשון שנעשה הוא להתחיל בפירוק שכבת התאים ואיסופם לשפופרת צנטריפוגה של 50 ml. יש פשוט להניע את השפוד למעלה ולמטה על שכבת התאים, מה שיגרום להעתקתם של כל התאים אל המצע. לאחר שהתאים נמצאים במצע, נעביר אותם באמצעות פיפט לשפופרת קונית של 50 ml.כעת, לשתי תרחיפי התאים, נוסיף חרוזי זכוכית של 3 mm. חרוזים אלו עברו עיקור באוטוקלאב וניתן למעשה להשתמש בהם שוב. ניתן לשטוף ולהשרות אותם בתמיסת אקונומיקה ולאחר מכן לעקר אותם באוטוקלאב לפני השימוש החוזר.שפכו את התוכן תוך כדי וידוא שפיית צנצנת הזכוכית B אינה נוגעת בפתח מבחנת הצנטריפוגה. אנו שמים כמות של חרוזי זכוכית השווה לנפח של כ-5 ml לתוך כל מבחנת צנטריפוגה, עד לסימון של 5 מיליליטר. השלב הבא הוא ביצוע פירוק פיזי של תאי ה-eary כדי לשחרר את החיידקים שלנו לתוך התמיסה.אנו משתמשים בורטקס (vortex), מכוונים אותו להגדרת הרעידה הגבוהה ביותר, ומרעידים למשך חמש דקות. כעת נרעיד את התאים עם חרוזי זכוכית של 3 mm למשך חמש דקות, ולאחר מכן נשאיב את supernatant באמצעות פיפטה נקייה לתוך מבחנה צנטריפוגית סטרילית ונקייה של 50 mL. אנו מקבלים את התרחוף שיצרנו, שכולל את החיידקים ששוחררו ואת התמיסה, וכן את שיירי התאים.השלב הבא שנבצע הוא סבב צנטריפוגציה במהירות נמוכה, כדי שנוכל לשקיע את החומר הגולמי ולהשאיר את החיידקים בתמיסה. נשתמש בצנטריפוגה ב-2,500 ×g למשך 10 דקות. כמו כן, נבצע את הצנטריפוגציה בטמפרטורה של 4 °C כדי לסייע באיסוף המשקע בתחתית.כעת נמקם זאת כאן, נוודא שהמשקל מאוזן, נסגור את המכשיר ונסחרב למשך 10 דקות. כעת סחרבתי את הנוזל העליון המכיל שאריות תאי מאכסן וכן את החיידקים המטוהרים. ביצעתי זאת ב-2,500 G למשך 10 דקות.וכפי שניתן לראות, יש לי משקע בתחתית המבחנה המורכב משאריות תאיים. החיידקים ששוחררו לאחרונה עדיין נמצאים בנוזל העל (supernatant) מכיוון שהסבוב בצנטריפוגה לא היה חזק מספיק כדי להשקיע גם אותם. לכן, הפעולה הבאה שאבצע היא הסרת הנוזל העל וסינונו דרך מסנן של 5 מיקרון.זהו מסנן של 5 µm והוא מתאים לכל סוג של מזרק. אני עומדת להשתמש במזרק של 30 ml, אך פשוט מושכים את הבוכנה כלפי מעלה, ואז מבלי לגעת במסנן עצמו, ובמיוחד בחלק התחתון, שכן הוא חייב להישאר סטרילי. אנחנו מחברים את המזרק למסנן פשוט על ידי הברגה, ואז לוחצים בעדינות על הבוכנה כדי להעביר את ה-supnatant דרך המסנן ואל תוך המבחנה שלנו.אין ללחוץ חזק מדי, שכן הדבר עלול לשבור את המסנן ולהוביל להפסקת תפקודו. אם הגעתם למצב שבו עליכם להפעיל לחץ רב, יש להסיר את המסנן ולהחליפו, כיוון שפירוש הדבר הוא שהוא סתום משאריות תאים רבות. בנקודה זו, בהתאם לנפח שלנו וכשיטה נוספת להשגת תרבית חיידקים טהורה מאוד, אנו מוסיפים לשפופרת הצנטריפוגה המהירה תמיסת sucrose בריכוז 250 millimolar שעברה סטריליזציה באמצעות סינון.יש למלא את הבקבוק עד לנפח של לפחות 80%. בדרך כלל אנו ממלאים אותו עד לצוואר. יש למלא את המבחנות הללו בנפח זה כדי למנוע מהן לקרוס פנימה בתוך הצנטריפוגה המהירה שלנו.כעת נסובב את התסנן שלנו כדי להשיג את החיידקים המזוהים ב-18,000 ×g בצנטריפוגה מהירה זו. עלינו לוודא שהמבחנות ממוקמות בצורה מאוזנת, כמובן, ולאחר מכן נסגור את המכשיר. נקבע את זמן הסבב ל-10 דקות.אנו מעדיפים לבצע זאת בטמפרטורה של 10 °C או פחות, כפי שהטמפרטורה שלנו מוגדרת כאן. המהירות הזוויתית עבור הרוטור הספציפי הזה בצנטריפוגה היא 12.5 revolutions per minute. יש לנו טבלת המרה, כך שהסבב יהיה בערך 18,670 ×g. כעת ביצענו את הסבב בצנטריפוגה במהירות גבוהה כדי לשקיע את הבקטריות המזוקקות שלנו למשקע.כפי שניתן לראות, יש לנו כעת משקע חיידקי יפה בתחתית המבחנה המהירה. לכן, מה שנעשה כעת הוא להסיר את כל הנוזל העליון (supernatant) למכל פסולת נוזלית. השלב הבא הוא לבצע ריסוספנזיה (resuspend) של החיידקים שלנו.אני עומד להמיס אותו שוב בשני מיליליטר של תוצר התרבית שלנו, שהוא Schneider's insect medium, מועשר ב-10% fetal bovine serum שעבר אינאקטיבציה תרמית. אני פשוט אמיס את המשקע על ידי פיפוט מעלה ומטה עד שכל הבקטריות יחזרו לתמיסה. כעת, כשהבקטריות נמצאות שוב בסספנסיה, נבצע שלב טיהור נוסף רק כדי להיפטר מכל שארית אפשרית של תאי מאכסן.עבור שלב זה, נשתמש במסנן של 2.7 מיקרון. אני מעדיפה להשתמש במעטפת הפלסטיק של מסנן ה-5 מיקרון שלנו כתושבת. ניתן לשאוב את התמיסות, להבריג את המזרק אל מסנן ה-2.7 מיקרון, וכעת נסנן את התמיסה אל תוך מבחנה לאחסון לטווח ארוך.בדומה למסנן האחר, פשוט לוחצים בעדינות על הבוכנה. וכעת יש לנו את התמיסה של החיידקים המזוקקים. הדבר הבא שאראה לכם הוא כיצד אנו בודקים את החיוניות.אנו משתמשים בערכה לבדיקת חיוניות חיידקים (live dead bacterial viability kit) של חברת molecular probes. ערכה זו כוללת שני צבעים: propidium iodide ו-cyto nine. ה-propidium iodide פולט פלואורסצנציה אדומה, והוא צובע רק חיידקים שהמעטפת הבקטריאלית שלהם אינה שלמה לחלוטין, בעוד ש-cyto nine צובע את כל החיידקים.לכן, כאשר בוחנים את החיידקים הללו תחת מיקרוסקופ המצויד באופטיקה פלואורסצנטית, כל החיידקים יפגינו פלואורסצנציה בירוק, ותת-קבוצה מהם, אלו המתים, יפגינו פלואורסצנציה באדום. אנו לוקחים אליקוט קטן מהדגימה המטוהרת שלנו, ובמקרה זה אקח 10 µL בלבד, כמות המספיקה להכנת סלייד אחד. ואני אחלק זאת לשני סליידים נוספים.כעת אוסיף את שני הצבעים הנוספים שלנו, מיקרוליטר אחד של תערובת ה-propidium iodide וה-cyto nine לתליה הבקטריאלית. לאחר מכן ניתן להדגיר את הדגימה בחושך למשך 15 דקות. עם זאת, מצאנו שניתן להמשיך למריחה על זכוכית ולהבחין בתוצאות כמעט באופן מיידי.בסדר, כעת אני עומד לבחון במיקרוסקופ את הפיתח שלי המכיל את החיידקים שנצבעו בצבע חי/מת עם תאורה אחורית. נטפטף את הצבע על הפיתח, נניח זכוכית כיסוי ואז נבחן. אשתמש במסנן המשולב אדום-ירוק כדי שאוכל להעריך את החיוניות של החיידקים שלי.כאשר אני פותח את התריס, אני רואה את החיידקים שלי, הם נראים פחות או יותר כנקודות זעירות. אך אני רואה כאן שבערך 90% עד 95% מהחיידקים הם ירוקים, בעוד שרק בערך, הייתי אומר, 5% הם אדומים. אם כך, יש לנו שיעור חיוניות גבוה מאוד, נכון?כעת סיימנו לעבור על תהליך הטיהור של Akia חיונית מתאי חרקים בתרבית. פרוטוקול זה כלל פירוק פיזי של תאי המארח האיקריוטיים ולאחר מכן סרכזגציה דיפרנציאלית כדי לבודד את החיידקים המטוהרים, וכן סדרה של שלבי סינון כדי להבטיח את איכות החיידקים המטוהרים ולטהר אותם לחלוטין מכל רכיבי תאי המארח. לאחר מכן, עברנו על בדיקת live/dead עם תאורה אחורית, המשתמשת בשני צבעים כדי להעריך את חיוניות החיידקים שלכם.כעת ניתן להשתמש בחיידקים המ purified שלכם במגוון יישומים, כולל הדבקה של מערכות תאי תרבית אחרות כדי להגביר את ההדבקה של מערכת ספציפית. ניתן גם לבצע מחקרי מטבוליזם או מחקרים רבים אחרים באמצעות החיידקים המ purified החיים שלכם.

maintaining-wolbachia-in-cell-free-medium

Research

JoVE Journal

Biology

ביולוגיה

Wolbachia זיהום חיידקי ב תסיסנית

בידוד ערפדים של נוזלים מתאיים<em&gt; Elegans Caenorhabditis</em

סרטון זה מציג שיטה לבידוד ותרבית סטרילית של תאי C. elegans עובריים  במבחנה.

עיכול אנזימטי ודיסוציאציה ידנית: שיטה להכנת עוברים מסוג C. elegans לתרבית תאים

סי אלגנס בדרך כלל הוא גדל על צלחות אגר מוצקות או נוזליים בתרבויות זרע עם א ' coli. כדי למנוע תוצרי לוואי חיידקים מבלבול מחקרי טוקסיקולוגי ותזונתיים, אנו מנוצלים מדיום נוזלי axenic, CeHR, לגדול ולסנכרן מספר רב של תולעים עבור מגוון רחב של יישומים במורד הזרם.

Culturing Elegans Caenorhabditis בAxenic נוזלית מדיה ובריאה של תולעים מהונדסים ידי microparticle הפצצה

Aedes aegypti יתושים נגועים Wolbachia שוחררו לאוכלוסיות טבעי לדכא את השידור של arboviruses. אנו מתארים שיטות האחורי Ae. aegypti עם זיהומים Wolbachia במעבדה ניסויים ולשחרר שדה, נקיטת אמצעי זהירות כדי למזער את עיבוד מעבדה ובחירה.

שמירה על Aedes aegypti יתושים נגועים Wolbachia

פרוטוקול זה מתאר כיצד להקים זיהום ויראלי ויוו דרוזופילה melanogaster באמצעות שיטת ננו-הזרקת טכניקות בסיסיות כדי לנתח וירוס-פונדקאי אינטראקציה.

הקמתה של זיהום נגיפי וניתוח של התערבות מארח-וירוס דרוזופילה Melanogaster

ארבע שיטות שימשו לאיתור וולבצ'יה תוך-תאית, אשר השלימו זו את זו ושיפרו את דיוק הזיהוי של זיהום וולבצ'יה של Aa23 שמקורו ב-Aedes albopictus ו-Aa23-T שנרפאו מזיהום וולבצ'יה מקומי באמצעות אנטיביוטיקה.

זיהוי זן וולבצ'יה wAlbB ב Aedes albopictus קווי תאים

נמטודות אנטומופתוגניות חיות בסימביוזה עם חיידקים ויחד הן מדביקות בהצלחה חרקים על ידי ערעור מערכת החיסון המולדת שלהן. כדי לקדם את המחקר על הבסיס הגנטי של זיהום נמטודות, מתוארות שיטות לשמירה ומניפולציה גנטית של נמטודות אנטומופתוגניות.

תרבות ומניפולציה גנטית של נמטודות אנטומופתוגניות

מוצג כאן פרוטוקול אופטימלי לגידול נמטודות בודדות מבודדות על מדיה מוצקה בהתקנים מרובי בארות מיקרו-מפוברקים. גישה זו מאפשרת לעקוב אחר בעלי חיים בודדים לאורך חייהם עבור מגוון פנוטיפים הקשורים להזדקנות ולבריאות, כולל פעילות, גודל וצורת גוף, גיאומטריה של תנועה והישרדות.

תרבית ארוכת טווח וניטור של Caenorhabditis elegans מבודדים על מדיה מוצקה במכשירים מרובי בארות

כאן, אנו מציגים פרוטוקול לתרבית נמטודות בודדות על מדיה מוצקה למעקב אחר פרמטרים פיזיולוגיים לכל החיים וכימות פלואורסצנטי. מערכת תרבית זו כוללת מחסום חומצה פלמיטית סביב בארות תולעים בודדות כדי למנוע מבעלי חיים לברוח, ומאפשרת שימוש בהתערבויות מרתיעות, כולל חיידקים פתוגניים וגורמי עקה כימיים.

תרבות ארוכת טווח של Caenorhabditis elegans בודדים על מדיה מוצקה לניטור פלואורסצנטי אורכי והתערבויות מרתיעות

קווי תאים שימושיים במחקרים על אורגניזמים תוך-תאיים שלא ניתן לגדל מחוץ לתאים המארחים שלהם. למרות שקווים נגועים בוולבכיה אפשרו תגליות רבות, ההטרוגניות בתוך קווים אלה יכולה להוביל לתוצאות ניסוי משתנות. אנו מציגים פרוטוקול ליצירת שיבוטים של תאים בודדים ותרביות רציפות מתאי JW18 נגועים בוולבכיה.

יצירת תרביות חד-שבטיות מקו התאים של Drosophila melanogaster JW18 נגוע בוולבכיה

למד שיטה לטיהור Wolbachia pipientis מתאי Anopheles gambiae וגידול החיידק בתרחיף נטול תאים. הפרוטוקול כולל שבירת ממברנות בתהליך ליזה בחלוקי זכוכית, סרכוז דיפרנציאלי וסינון להפרדת החיידקים משיירי התאים.

שמירה ב Wolbachia בינוני סלולרי חינם

גלה סרטונים נוספים