יישום של שרף אור נרפא, דבק שיניים אלקטרודות הרכבה או בדיקות Microdialysis בניסויים כרונית

בניסויי אלקטרופיזיולוגיה או מיקרודיאליזה כרוניים, נעשה שימוש נרחב בשרף דנטלי בעל פולימריזציה עצמית כבסיס לקיבוע של אלקטרודה או גשש מיקרודיאליזה. מכיוון שחומרי אקריליים אלו אינם נשפעים למשטח העצם, נעשה שימוש בברגים כעגנים. עם זאת, בניסויים קטנים, בבעלי חיים כמו עכברים או חולדות, הגולגולת שבירה מאוד ואינה יכולה להחזיק עגנים באופן יעיל.

לעיתים ברגים אלו בקרסול גורמים לזיהום ולדלקת ברקמות. בדיווח זה, אנו מציעים יישום חדש של שרף דנטלי שאינו דורש פילמור (light-curing dental resin) כבסיס הרכבה. חומר זה מאפשר קישור ישיר לגולגולת.

לפיכך, אין צורך בברגי עיגון וניתן לצמצם את שטח השטח הכירורגי באופן משמעותי. המשקל הכולל של גשושית, קנולה מדריכה, קבינט ובסיס הרכבה היה פחות מגרם אחד. ניסיונות קודמים מראים כי השפעת ההדבקה נשמרת למשך יותר מחודשיים.

ניתן להשתמש בטכניקה זו גם עבור חיות ניסוי אחרות, כגון עכברים, דגים וכדומה. שני ביצועים בשני סרגים הוקלטו בווידאו. בהדגמה זו, נבחרו והושתמשו בצילומים הטובים ביותר מכל שלב בפרוטוקול.

אלו הן תאורי השחזור הסטריאוטקסיים והבקרים של תא ההחלמה. אלו הם מאה מכשירים לניתוח. Prime PR משמאל ומיקרו-בעיה.

האביזרים שלה מימין. אם תוכנית ה priming אינה זמינה, ניתן להשתמש במקום זאת במקלול מיקרו (micro spatula). זהו סט להקשיה של שרף דנטלי מימין.

פריימר AP וחומר קישור נשמרו בבקבוקוני תרופות אלו. בחרנו במוצר זה מכיוון שהוא מערכת בעלת הפעלה עצמית ופולימריזציה כפולה (dual cure). אם תבחרו בחלופות, אנא התאימו את הפרוטוקול המפורט להוראות המוצר; המכשיר בצורת אקדח המופיע בצד שמאל הוא יחידת הפולימריזציה (curing unit).

ניתן להרכיב יחידת תאורת LED בעבודת יד כפי שמוצג מימין. אנא עיינו בתיעוד לקבלת פרטים נוספים. לאחר מכן, הושגה הרדמה כירורגית, הוסר חלק נוסף מאזור הניתוח והראש קובע למסגרת הסטריאוטקטית.

לפני החדרת ה-EVAs, ניתן אלחוש DI לקצות ה-EVAs כדי למנוע כאב. ראש החיה קובע למסגרת וזווית הראש הותאמה כראוי. האוויר הכירורגי חיתר ביוד, ומיקרופיפט זכוכית קובע על תושבת האלקטרודה.

מיקרופיפט זה שימש ליצירת נקודת ייחוס בניסוי לקוי. נקודת Lambda Y שימשה כנקודת הייחוס. בוצעה חתך קטן בעור כדי לחשוף את נקודת הייחוס.

סמנו את הנקודה באמצעות מיקרופיפט דק מלא בצבע. חתכו את העור כדי לחשוף את פני השטח הגולגולתיים, ונגבו את פני השטח של העצם באמצעות מקלון צמר כדי להסיר שאריות דם. פני שטח נקיים ויבשים נחוצים להדבקה חזקה.

לאחר סימון מיקום המטרה, בוצע קרניוטומי (פתח בגולגולת) קטן באמצעות פינצטה עדינה. ניתן להשתמש גם במיקרו-דוט (microdot) או בפינצטה לעצם כדי לבצע את הקרניוטומי. לאחר מכן, הוצאה צינור מיקרו גס מהמחזיק ומהמנחה, וקנולה או אלקטרודה קובעו למחזיק.

קצה קנולת המדריך הותאם לנקודת הייחוס ולאחר מכן הוזז בזהירות אל נקודת המטרה. חתך קטן ביותר ברקמה בוצע באמצעות מחט הזרקה במידה 30. קנולת המדריך הוזזה אל מיקום המטרה.

בוצע סריקה שנייה של פני העצם באמצעות Supp. פריימר זה מורכב מרכיבים קשיחים A ו-B. טיפה אחת מכל רכיב קשיח הוטלה על צלחתה וערבובה באמצעות מברשת. מרחו את הפריימר על אזור המגע. גם פני השטח של קנולת ההנחיה נמרחו.

השתמשו בזרם אוויר קל כדי לפרוס ולייבש את הפריימר, לאחר מכן החליפו את המברשת ומרחו חומר קישור על האזור. חומר קישור זה רגיש לאור, ולכן יש לכסות אותו במהלך הפרוצדורה. כמו כן, נמרח חומר קישור על פני השטח של קנולת ההובלה.

סופק אוויר נוח ואור כחול גלוי הוסר כדי להאיץ את התגובה הכימית של חומר ההדבקה. יש להשתמש במשקפי מגן שקופים בגוון כתום להגנה על עיני המפעיל. אין לתת לעיני בעלי החיים יישור ישיר אם הדבר נחוץ.

חור אלומיניום משמש להגנה על עיני בעלי החיים. כמות קטנה של שרף מרוכב הודבקה על פני השטח הגולגולתיים ועל הקנולה המנחה באמצעות פקק פשוט. לאחר מכן, קרינה כחולה נראית הופסקה כדי להקשיח את השרף לצורך קיבוע הדרגתי.

חומר קישור הוחל לפני כל קיבוע. אזור הניתוח ישר באופן רציף לצורך הקלטת הווידאו. עם זאת, עדיף להימנע מיישור חזק מדי, שכן הדבר עלול לקצר את חלון הזמן שבו החומרים ניתנים לעיצוב.

מומלץ לבצע קיבוע והצבה הדרגתיים כדי להבטיח תגובה מלאה של המשטר. ניתן לעצב מחדש את הצורה עד להופעתה באופן גלוי. ניתן אנטיביוטיקה או הוחל משחה על האזור הכירורגי כדי למנוע זיהומים.

לאחר השלמת הניתוח, שוחרר המתאם הסטריאוטקטי מתוך מחזיק האלקטרודה. המתאם הסטריאוטקטי הוסר. במקומו הוכנס מוט DAMing והבעל חי השוחרר מהמסגרת הסטריאוטקטית.

לבסוף, הועבר בעל החיים לתא בקרה קיצי להתאוששות מההרדמה. זה היה היום שאחרי הניתוח. בהשוואה לשימוש בשחזור עצמי קונבנציונלי, לטכניקה שהוצגה יש מספר יתרונות חשובים.

ראשית, זה נקשר לעצם באופן ישיר. אקריליק בעל פילוס עצמי יכול להיות מחובר לעצם באמצעות תיל, אך הוא אינו נצמד לעצם. לעומת זאת, שרף המופעל באור יכול להיקשר לעצם באופן ישיר.

הוא נצמד גם לחלק מהחומרים, כולל פלסטיק ומתכות, במידה ומשתמשים בו יחד עם פריימר למתכת. תכונה זו של קישור לחומרים משתנים מאפשרת מגוון רחב של יישומים. שנית, הוא קל לטיפול; חלון זמן העיבוד הרגיל של שרף הוא קצר יחסית.

בתוך מספר דקות היא הופכת לנוזלית מאוד ואינה קלה לטיפול בשלב זה. עם זאת, ברגע שהתגובה הכימית מתחילה, התגובה מואצת בשל תהליך אקסותרמי. החום גורם לשרף להתקשות בזמן קצר.

חלונות זמני העיבוד עבור שרף המקשח בצורה נכונה רחבים משמעותית וניתנים לכיוונון. ביסודו של דבר, שרפים שומרים על מצב קבוע מההתחלה ועד לרגע שבו הם מקשחים כראוי. תגובת ההקשחה השלישית אינה מייצרת חום.

תגובת הפולימריזציה של שרף עם השחיה עצמית היא אקסותרמית. כאשר בסיס הקיבוע עבה, חום זה מצטבר וגורם לנזק. תגובת הרקמה של שרף עם השחיה באמצעות אור אינה מייצרת חום והחומר הוא ביו-קומפטיבילי.

עלות החומרים וציוד מיוחד כמו יחידת תאורה עלולה להוות בעיה. במסמך המשלים אנו מציגים יחידת תאורת LED בהכנה עצמית שאינה עולה הרבה. ניתן לעיין במסמך המהיר לקבלת פרטים נוספים.

טכניקה זו ישימה להטמעת אלקטרודה או מיקרו-גשש בבעלי חיים ניסיינים אחרים, כגון דגים, עכברים, ארנבונים, חתולים וקופים.